BIODIVERSIDAD DE LA
CUENCA DEL ORINOCO
BASES CIENTÍFICAS PARA LA IDENTIFICACIÓN
DE ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA CONSERVACIÓN
Y USO SOSTENIBLE DE LA BIODIVERSIDAD
Carlos A. Lasso, José S. Usma, Fernando Trujillo y Anabel Rial (Editores)
PÁGINA LEGAL
C. Lasso.
PÁGINA
LEGAL
NOTA DE LOS EDITORES:
La denominación o designación de entidades geográicas en esta publicación y muestras cartográicas, no implica en ninguna
forma la expresión por parte de los editores ni de ninguna de las organizaciones que apoyan los estudios aquí publicados, en lo
que se reiere al estado legal de ningún país, región o área, ni de sus autoridades, ni en lo concerniente a los límites fronterizos.
Todas las opiniones expresadas en esta publicación son de la entera responsabilidad de los autores y no necesariamente relejan la posición de los editores ni de las organizaciones participantes.
CITACIÓN SUGERIDA:
Obra completa: Lasso, C. A., J. S. Usma, F. Trujillo y A. Rial (Editores). 2010. Biodiversidad de la cuenca del Orinoco: bases
cientíicas para la identiicación de áreas prioritarias para la conservación y uso sostenible de la biodiversidad. Instituto de
Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt, WWF Colombia, Fundación Omacha, Fundación La Salle e
Instituto de Estudios de la Orinoquia (Universidad Nacional de Colombia). Bogotá, D. C., Colombia. 609 pp.
Capítulos y casos de estudio: Acosta-Galvis, A. R., J. C. Señaris, F. Rojas-Runjaic, D. R. Riaño-Pinzón. 2010. Anibios y
reptiles. Capítulo 8. Pp. 258-289. En: Lasso, C. A., J. S. Usma, F. Trujillo y A. Rial (eds.). 2010. Biodiversidad de la cuenca del
Orinoco: bases cientíicas para la identiicación de áreas prioritarias para la conservación y uso sostenible de la biodiversidad.
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt, WWF Colombia, Fundación Omacha, Fundación La Salle e Instituto de Estudios de la Orinoquia (Universidad Nacional de Colombia). Bogotá, D. C., Colombia.
Corrección de textos:
Carlos A. Lasso
Angélica Díaz
Foto portada:
Francisco Nieto
Foto portada interior:
Alejandro Siblesz Vera
Diseño y diagramación:
Luisa F. Cuervo G.
luisa.cuervo@gmailcom
Impresión:
Unión Gráica Ltda.
Contribución IAvH #450
ISBN: 978-958-8554-13-6
© Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt, WWF Colombia, Fundación Omacha, Fundación La Salle de Ciencias Naturales e Instituto de Estudios de la Orinoquia (Universidad Nacional de Colombia). 2010.
Los textos pueden ser citados parcial o totalmente citando la fuente.
Impreso en Bogotá, D. C., noviembre de 2010
1.000 ejemplares
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
“ El propio Bolívar dijo que Humboldt había visto en tres años en el nuevo continente más de lo que habían visto los españoles en tres siglos. El sabio alemán combinaba lucidez y pasión, había sido capaz de asombrarse con América en tanto
que otros sólo la habían codiciado, y acababa de ver con ojos casi espantados un
mundo virgen, un mundo exuberante, el milagro de la vida resuelto en millones
de formas, lores inverosímiles, selvas inabarcables, ríos indescriptibles, de modo
que lo que Bolívar vio surgir ante él, no fue la América maltratada por los españoles sino la América desconocida y desaprovechada por los propios americanos,
el bravo mundo nuevo....”
En busca de Bolívar
WILLIAM OSPINA
Llanero cruzando el río con su ganado, Casanare. Foto: A. Navas.
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
TABLA
DE CONTENIDO
Presentación
7
Prólogo
9
Participantes y autores
11
Periles organizacionales
15
Agradecimientos
25
Resumen ejecutivo
27
1.
Introducción
38
2.
Metodología: priorización de áreas para la conservación y uso sostenible de la biodiversidad en la cuenca
del Orinoco
44
3.
Descripción del medio natural de la cuenca del Orinoco
50
4.
Biodiversidad de la cuenca del Orinoco: síntesis temática y cartográica
74
5.
Flora y vegetación
124
6.
Insectos: escarabajos coprófagos, hormigas y mariposas
196
7.
Peces
216
8.
Anibios y reptiles
258
9.
Aves
290
10. Mamíferos
310
11. Casos de estudio
337
11.1
Evaluación de la contaminación por mercurio en peces de interés comercial y de la concentración
de organoclorados y organofosforados en el agua y sedimentos de la Orinoquia.
338
11.2
Crustáceos decápodos de la Orinoquia venezolana: biodiversidad, consideraciones biogeográicas
y conservación.
356
11.3
Mamíferos acuáticos de la Orinoquia venezolana.
366
11.4
Flora de la cuenca del Orinoco útil para el sostenimiento de la diversidad íctica regional.
384
11.5
El fuego como parte de la dinámica natural de las sabanas en los llanos orientales de Colombia.
408
11.6
Efectos en la ecología de un humedal de los llanos de Venezuela (cuenca del Orinoco) causados
por la construcción de diques.
416
11.7
Evaluación y oferta regional de humedales de la Orinoquia: contribución a un sistema de clasiicación de ambientes acuáticos.
432
Anexos
448
Palma moriche, Casanare. Foto: F. Trujillo.
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
PRESENTACIÓN
INSTITUTO DE
INVESTIGACIÓN DE RECURSOS
BIOLÓGICOS ALEXANDER VON
HUMBOLDT
FUNDACIÓN LA SALLE DE
CIENCIAS NATURALES
Con más de 50 años de labor continua la Fundación La Salle de Ciencias Naturales (FLSCN) ha servido a Venezuela,
a través de la educación, la investigación y la extensiónproducción, con la irme misión de facilitar el desarrollo
personal y comunitario en armonía con el medio ambiente y la cultura propia de cada región del país. El quehacer
cientíico, asumido por sus seis centros de investigación
extendidos por toda la geográica nacional, ha tenido el
compromiso de contribuir con el conocimiento, resguardo y conservación de los recursos naturales venezolanos.
Así, para la Fundación La Salle ha sido motivo de orgullo
y satisfacción apoyar y colaborar activamente en la realización del I Taller Binacional (Colombia-Venezuela) sobre la
Identiicación de las Áreas Prioritarias para la Conservación y el Uso Sostenible de la Biodiversidad en la Cuenca
del Orinoco, donde además de compartir experiencias, hemos sumado grandes esfuerzos para sintetizar buena parte del conocimiento biológico y esbozar futuros caminos
para el reconocimiento de la importancia medular de esta
gran cuenca en ambos países. Coniamos que esta iniciativa, así como sus aportes, inspiren la generación de más
conocimiento, que ello repercuta en una mayor calidad de
vida y en una sociedad más comprometida y consciente de
la necesidad de gestionar equilibradamente y conservar la
biodiversidad orinoquense.
Es un placer para el Instituto de Investigación de Recursos
Biológicos Alexander von Humboldt presentar a la comunidad cientíica, conservacionista y autoridades ambientales de Colombia y Venezuela la obra Biodiversidad de la
cuenca del Orinoco: bases cientíicas para la identiicación
de áreas prioritarias para la conservación y el uso sostenible de la biodiversidad. Este libro es fruto de un esfuerzo
de una década de trabajo y recoge numerosos proyectos de
carácter institucional que han venido desarrollándose en la
Orinoquia, incluyendo el Plan de acción en biodiversidad
para la cuenca del Orinoco (2005-2015), además de los resultados de reuniones técnicas de carácter binacional.
Una de nuestras misiones como instituto de investigación
es liderar iniciativas de carácter nacional y regional, con
una visión ecosistémica y actual de la conservación, que
integre las variables necesarias para una apropiada toma
de decisiones. Por ello, durante el Primer Taller Binacional
(Colombia-Venezuela) sobre la Identiicación de las Áreas
Prioritarias para la Conservación y Uso Sostenible de la
Biodiversidad en la Cuenca del Orinoco (Bogotá 21 al 25
de septiembre de 2009), surgió la necesidad de compilar en
un solo documento toda la información disponible sobre la
biodiversidad de la cuenca y su conservación. Haber reunido en mesas temáticas de trabajo a más de 90 especialistas
de 30 instituciones reconocidas en ambos países, y haber
logrado un consenso para la priorización de áreas para la
conservación, es todo un logro que nos llena de satisfacción.
Dra. Josefa Celsa Señaris
Directora Museo de Historia Natural La Salle
Fundación La Salle de Ciencias Naturales
Caracas, Venezuela
Agradecemos a las organizaciones y los participantes de
ambos países por su valiosa contribución a este proyecto
que sin duda alguna redundará en acciones concretas para
la conservación de la cuenca del Orinoco.
Eugenia Ponce de León Chaux
Directora General
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos
Alexander von Humboldt
7
PRESENTACIÓN
C. Lasso.
WWF COLOMBIA
FUNDACIÓN OMACHA
Hace siete años, WWF, el Instituto de Investigación de
Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (Instituto
Humboldt), la Fundación para la defensa de la Naturaleza
(FUDENA), la Fundación La Salle de Venezuela, la Fundación Omacha y otros socios de Colombia y Venezuela
unimos esfuerzos para promover, entre los gobiernos y la
sociedad civil de los dos países, la apreciación de la Cuenca
del río Orinoco como una prioridad para la conservación y
el uso sostenible de la diversidad biológica y cultural en armonía con el rescate de las costumbres tradicionales de sus
pobladores. En aquella época, nuestro trabajo estaba enfocado en cuatro objetivos que siguen relevantes: 1) entender
y reducir las principales amenazas de la cuenca; 2) apoyar
el fortalecimiento de los planiicadores y tomadores de decisiones de los dos gobiernos a través de sus comisiones
oiciales técnicas binacionales; 3) promover la creación de
áreas protegidas públicas y privadas (individuales y colectivos) en sitios que requirieran protección prioritaria; y 4) inluenciar a los sectores productivos para que incorporaren
sistemas de producción limpia en sus políticas y prácticas.
La Fundación Omacha tiene un gran compromiso con la
región de la Orinoquia, relejado en más de 15 años trabajando con especies y ecosistemas acuáticos en la zona de
Reserva de Biósfera El Tuparro (Vichada), en Casanare y en
Arauca. En la primera de las zonas ha ido consolidando una
Red de áreas protegidas privadas en el marco de una iniciativa del Forest Conservation Agreement. Igualmente ha
contribuido con planes de manejo de humedales y especies
amenazadas (delines de río, manatíes, nutrias, tortugas y
jaguares). En Casanare, en alianza con WWF y la Fundación Palmarito ha venido realizando caracterizaciones biológicas que apoyen la toma de decisiones en la designación
de áreas de conservación, que sería la base para el SIDAP de
Casanare. Más recientemente, la Fundación ha venido consolidando trabajo en Arauca para la propuesta del Sistema
Departamental de Áreas Protegidas.
A nivel regional, la Fundación hizo parte de la Mesa de
trabajo interinstitucional Orinoco que diseñó el Plan de
Biodiversidad de la Orinoquia (PARBO), e igualmente iniciativas en la cuenca del Orinoco (Colombia-Venezuela)
en el tema de aves migratorias, peces ornamentales, evaluación de mercurio en peces comerciales, clasiicación de
humedales de la Orinoquia y estimaciones de abundancia
de delines de río. Por esta razón es un gran orgullo para
nosotros haber apoyado y contribuido en la realización del
segundo Taller Binacional (Colombia-Venezuela) sobre la
Identiicación de las Áreas Prioritarias para la Conservación y el Uso Sostenible de la Biodiversidad en la Cuenca
del Orinoco, donde una vez más investigadores reputados
de Colombia y Venezuela consolidaron información de
toda la cuenca y lograron plasmarla en este libro que sin
duda se convertirá en material de referencia para la región,
y servirá para que los gobiernos y sectores productivos tomen decisiones oportunas para no afectar ecosistemas y
especies altamente sensibles.
Para alcanzar estos objetivos concertamos una visión de
conservación basada en un análisis riguroso de la información físico-biótica y socio-cultural. En el primer taller
binacional de la Cuenca Orinoco de 2004 hicimos énfasis
en su diversidad biológica acuática, identiicamos las subregiones biogeográicas de la cuenca y desarrollamos mapas temáticos de biodiversidad y amenazas para cada una
de las subcuencas. Hace dos años, con el apoyo decidido
del Instituto Humboldt, llevamos a cabo el Segundo Taller
Binacional cuyos resultados presentamos con satisfacción
en este documento.
Ahora que contamos con la nominación de varias áreas
prioritarias para la conservación de diversidad, tenemos el
reto de promover su implementación a través de la gestión
y articulación de nuestras acciones y la incidencia en las
políticas tanto públicas como privadas. El Orinoco enfrenta
grandes presiones de desarrollo y el futuro de una de las
cuencas más diversas y menos intervenidas del planeta depende de la armonización de las agendas de desarrollo con
la valoración de la biodiversidad y las culturas locales. Con
estos trabajos, aspiramos contribuir a generar el compriso
de todos los sectores con el apoyo político, sectorial, académico, técnico y inanciero necesarios para evitar y reducir
las amenazas que se ciernen sobre esta gran región.
Fernando Trujillo
Director Fundación Omacha
Mary Lou Higgins
Representante WWF Amazonia Norte/Chocó Darién
8
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
PRÓLOGO
Cientos de proyectos, reportes técnicos, tesis académicas,
trabajos en revistas cientíicas y libros han tratado independientemente la riqueza biológica, agrícola, minera e
hidráulica, potencial manejo y explotación, amenazas y
conservación de la biodiversidad en la cuenca del río Orinoco. Con esto en mente, un diverso grupo binacional
(Colombia-Venezuela) de profesionales, fue convocado y
coordinado por el Instituto Humboldt y con el apoyo de
diversas instituciones y ONG´s de Colombia y Venezuela,
para la realización de un intercambio fructífero de sus experiencias profesionales y conocimientos sobre la cuenca
del río Orinoco. Varias reuniones de trabajo, desarrollo
metodológico, discusiones plenarias y redacción parcial y
inal de reportes, han permitido tener un cuerpo integrado
de información cientíica que ha hecho posible el desarrollo
de este libro que presentamos a la colectividad regional y
mundial.
rio para deinir la naturaleza de la cuenca del río Orinoco
y su biodiversidad. Cada grupo presenta información sobre
el estado del conocimiento, riqueza, abundancia y endemismos, usos, manejo y una descripción preliminar de las
amenazas para cada una de las bioregiones deinidas.
Además, se integra información de temas particulares sobre: la evaluación de la contaminación, crustáceos decápodos (biodiversidad y conservación), mamíferos acuáticos
en la orinoquía venezolana, la lora y los peces, el fuego y la
quema como herramienta de manejo de sabanas, la construcción de diques y la dinámica ecológica de humedales
que enriquecen el conocimiento cientíico y permiten proponer acciones de manejo y conservación del sistema en
forma integral.
En conclusión, este trabajo ofrece información cientíica
integrada que ha permitido la priorización de áreas para
la conservación y uso sostenible de la biodiversidad en la
cuenca del Orinoco. Esperamos que el mismo sea una herramienta útil para las agencias e instituciones públicas y
privadas encargadas del desarrollo de políticas, dirigidas al
beneicio de la calidad de vida humana y la preservación
integral del ambiente.
Se presenta un análisis del estado del conocimiento de temas generales como los aspectos físicos y naturales de la
cuenca del Orinoco en forma de una síntesis temática con
mapas y cartografía, enriquecido con discusiones particulares de los grupos estudiados como: lora y vegetación,
insectos, peces, anibios y reptiles, aves y mamíferos como
elementos emblemáticos para conigurar el soporte necesa-
Antonio Machado-Allison
9
Llanero del Casanare. Foto: A. Navas.
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
PARTICIPANTES
AUTORIDADES
INSTITUCIONALES
Dra. Eugenia Ponce de León Chaux
Directora
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
Dra. Mary Lou Higgins
Representante
WWF Colombia
Dra. Josefa C. Señaris
Directora
Fundación La Salle de Ciencias Naturales
(FLSCN) - Museo de Historia Natural La
Salle
Dr. Fernando Trujillo
Director
Fundación Omacha
Dr. Moisés Wassermann
Rector
Universidad Nacional de Colombia
Dr. Rafael Molina
Vicerrector de Investigación
Universidad Nacional de Colombia
Dr. Rodrigo Cárdenas
Director
Sede Orinoquia de la Universidad Nacional
de Colombia
Dr. Carlos Caicedo
Director
Instituto de Estudios de la Orinoquia
Dra. Yurany Duarte Mojica
Asesora de Investigaciones
Instituto de Estudios de la Orinoquia
Coordinación cientíica y
planeación general
Dr. Carlos A. Lasso Alcalá
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
classo@humboldt.org.co
Y AUTORES
Asistencia de coordinación logística
Mónica Morales
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
monicaamorales@gmail.com
Hernando García
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
hgarcia@humboldt.org.co
Asistencia editorial
Angélica Diaz-Pulido
Fundación Panthera
adiaz@pantheracolombia.org
Jairo Chavarriaga
Instituto Geográico Agustin Codazzi
(IGAC)
jachaga77@hotmail.com
Mónica Morales
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
monicaamorales@gmail.com
Moderadora taller
Carmen Candelo
WWF Colombia
ccandelo@wwf.org.co
FLORA Y
VEGETACIÓN
Alma Ariza
Pontiicia Universidad Javeriana (PUJ)
ariza.a@javeriana.edu.co;
alma_ariza@yahoo.es
Judith Rosales
Universidad Nacional Experimental de
Guayana, Venezuela (UNEG)
jrosales2@cantv.net
jrosales@uneg.edu.ve
Mireya Córdoba
Pontiicia Universidad Javeriana (PUJ)
mpcordobas@gmail.com
Reina Gonto
Instituto Venezolano de Investigaciones
Cientíicas (IVIC)
rgonto@ivic.gob.ve
homas Walschburger
he Nature Conservancy – Colombia (TNC)
twalshburger@tnc.org
Anabel Rial
Fundación La Salle de Ciencias Naturales
(FLSCN)
rialanabel@gmail.com
INSECTOS
Ángel Fernández
Instituto Venezolano de Investigaciones
Cientíicas (IVIC)
angelfern56@gmail.com
Claudia Medina
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
camedina@humboldt.org.co
Bibiana Salamanca
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)Proyecto Ecopetrol
bibiana_salamanca@yahoo.com
Fernando Fernández
Universidad Nacional de Colombia (UNAL)
Instituto de Ciencias Naturales (ICN)
fernandezca@unal.edu.co
Dairon Cárdenas
Instituto Amazónico de Investigaciones
Cientíicas (SINCHI)
dcardenas@sinchi.org.co
Gonzalo Andrade
Universidad Nacional de Colombia (UNAL)
Instituto de Ciencias Naturales (ICN)
mgandradec@unal.edu.co
11
PARTICIPANTES Y AUTORES
C. Lasso.
PECES
CRUSTÁCEOS
Ana Isabel Sanabria
Ministerio de Medio Ambiente, Vivienda y
Desarrollo Territorial
ansanabria@minambiente.gov.co
Martha R. Campos
Universidad Nacional de Colombia (UNAL)
Instituto de Ciencias Naturales (ICN)
mhrochad@unal.edu.co
Antonio Machado-Allison
Universidad Central de Venezuela (UCV)
amachado@ciens.ucv.ve
Carlos A. Lasso Alcalá
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
classo@humboldt.org.co
Armando Ortega
Instituto Colombiano Agropecuario (ICA)
Vinculación actual: Fundación para la
investigación y el desarrollo sostenible
(FUNINDES)
ictiologo@hotmail.com
ANFIBIOS Y REPTILES
Andrés Acosta
Pontiicia Universidad Javeriana (PUJ)
andres.acosta@javeriana.edu.co
Carlos A. Lasso Alcalá
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
classo@humboldt.org.co
Ángela Suarez
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
amsuarez@humboldt.org.co
Donald Taphorn
Universidad Nacional Experimental de los
Llanos (Unellez)
Centro para el estudio de la biodiversidad
neotropical (Biocentro)
taphorn@gmail.com
Josefa C. Señaris
Fundación La Salle de Ciencias Naturales
(FLSCN) - Museo de Historia Natural La
Salle
josefa.senaris@fundacionlasalle.org.ve
Germán Galvis
Universidad Nacional de Colombia (UNAL)
Instituto de Ciencias Naturales (ICN)
ggalvisv@unal.edu.co
Gilberto Cortés
Fundación Universitaria Internacional del
Trópico Americano (Unitrópico)
gilbertocortesm@gmail.com
Hernando Ramírez-Gil
Universidad de los Llanos (Unillanos)
hramirezgil@gmail.com
José I. Mojica
Universidad Nacional de Colombia (UNAL)
Instituto de Ciencias Naturales (ICN)
jimojicac@unal.edu.co
Hollman Miller Hurtado
Secretaria de Salud - Mitú
hollmanmiller@gmail.com
John Lynch
Universidad Nacional de Colombia (UNAL)
Instituto de Ciencias Naturales (ICN)
jdlynch@unal.edu.co
Santiago Castroviejo
Universidad de Los Andes (Uniandes)
castroviejo.isher@gmail.com
AVES
Gary Stiles
Universidad Nacional de Colombia (UNAL)
Instituto de Ciencias Naturales (ICN)
fgstilesh@unal.edu.co
Juan David Bogotá
Consultor independiente
juandbogota@gmail.com
Juan David Amaya
Pontiicia Universidad Javeriana (PUJ)
jamayae@javeriana.edu.co
Rosa Elena Ajiaco
Corporación Colombia Internacional (CCI)
reajiaco@gmail.com
Luis German Naranjo
WWF Colombia
lgnaranjo@wwf.org.co
José Saulo Usma
WWF Colombia
jsusma@wwf.org.co
Miguel Lentino
Colección Ornitológica Phelps (COP)
lentino.miguel@gmail.com
12
Sebastián Restrepo
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
srestrepo@humboldt.org.co
William Bonilla
Corporación Llanera de Ornitología y de la
Naturaleza (Kotzala)
wbonillarojas@gmail.com
MAMÍFEROS
Angélica Diaz-Pulido
Fundación Panthera
adiaz@pantheracolombia.org
Arnaldo Ferrer
Fundación La Salle de Ciencias Naturales
(FLSCN) - Museo de Historia Natural La
Salle
arnaldo.ferrer@fundacionlasalle.org.ve
Diana Morales
Fundación Palmarito
dianamoralesb@fundacionpalmarito.com
Eliana Tarazona
Fundación Zizua
elianaastrid@hotmail.com
Esteban Payán Garrido
Fundación Panthera
epayan@panthera.org
Fernando Castillo
Fundación Zizua
castillofdo@gmail.com;
lacoveterinaria@hotmail.com
Fernando Trujillo
Fundación Omacha
fernando@omacha.org
Laura Rodríguez
Fundación Zizua
laura.rodriguez88@gmail.com
Marisol Beltrán
Fundación Omacha
beltran_marisol@hotmail.com
Sonia Adamia
Fundación Zizua
funzizua@gmail.com
DIVERSIDAD CULTURAL
Hayrán Sánchez
Corporación Ágora Verde
jjsanchezg@hotmail.com
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
Miguel Ángel Perera
Fundación La Salle de Ciencias Naturales
(FLSCN)
Instituto Caribe de Antropología y
Sociología (ICAS)
miguel.perera@fundacionlasalle.org.ve
Miguel Lobo-Guerrero
Fundación Etnollano
enred@etnollano.org; mx@etnollano.org
OTROS TEMAS
Alejandro Olaya
Fundación Palmarito Casanare
alejandroolayav@gmail.com
Andrés Felipe Alfonso
Fundación Omacha
andres_jaguarrior@yahoo.com.ar
Brigitte L.G. Baptiste
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
brigittebaptiste@humboldt.org.co
Carlos Caicedo
Universidad Nacional de Colombia (UNAL)
Instituto de Estudios de la Orinoquia
chcaicedoe@unal.edu.co
Catalina Arias
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
catica01@gmail.com
César Zárate Bottia
Unidad Administrativa Especial de Parques
Nacionales Naturales de Colombia
(UAESPNN)
cazarate@parquesnacionales.gov.co
Clara Inés Caro
Universidad de los Llanos (Unillanos)
clarainescaro@unillanos.edu.co;
claracaro2003@yahoo.es
Clara Matallana
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
cmatallana@humboldt.org.co
Doris N. Alvis Palma
Universidad Nacional de Colombia (UNAL)
Instituto de Estudios de la Orinoquia
dnaluisp@unal.edu.co
Maria P. Baptiste E.
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
mpbaptiste@humboldt.org.co
Elvinia Santana
Universidad de los Llanos (Unillanos)
elvinia@unillanos.edu.co
Nelly Rodríguez
Consultora independiente
neraso2000@gmail.com
Germán Andrade
Universidad de Los Andes (Uniandes)
jiandradep@yahoo.com
Paola Bernardi
Corporación Colombia Internacional (CCI)
pbernardi@cci.org.co
German Corzo
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
Unidad Administrativa Especial de Parques
Nacionales Naturales de Colombia (UAESPNN)
Patricia Falla
Fundación Omacha
patriciafalla@gmail.com
Javier Mendoza
Ministerio de Medio Ambiente, Vivienda y
Desarrollo Territorial
jmenodza@minambiente.gov.co
Juan Carlos Espinosa
WWF Colombia
jcespinosa@wwf.org.co
Julian Quezada
Fundación Omacha
julian@omacha.org
Laura Rojas Salazar
Universidad Nacional de Colombia (UNAL)
lerojass@unal.edu.co
Lourdes Peñuela Recio
Fundación Horizonte Verde
horizonteverdelupe@gmail.com
Luz Piedad Romero
Instituto de Investigación de Recursos
Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
(consultora)
lprd@gmail.com
María Angelica Montes
Fundación Omacha
montesarenas@gmail.com
Clarita Bustamante
WWF Colombia (consultora)
guiasclarita@gmail.com
María Cecilia Londoño
Instituto de Investigación de Recursos
Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
- Proyecto Ecopetrol
mariaclondo@gmail.com
Dora Bernal
Universidad Nacional de Colombia (UNAL)
Instituto de Estudios de la Orinoquia
ddbernaln@unal.edu.co
María Isabel Jiménez Lara
Fundación para la investigación y el desarrollo sostenible (FUNINDES)
isabeljimenez@colombia.co
13
Sandra Ruiz
Instituto de Investigación de Recursos
Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
(consultora)
sandraluruiz@gmail.com
Silvio Echeverri
Fundación Mariano Ospina Pérez
silvioecheverri@yahoo.es
Yurany Duarte
Universidad Nacional de Colombia (UNAL)
Instituto de Estudios de la Orinoquia
yurarte@yahoo.fr
SISTEMAS DE
INFORMACIÓN
GEOGRÁFICA (SIG)
Andres Felipe Trujillo
WWF Colombia
atrujillo@wwf.org.co
Carlos Pedraza
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
cpedraza@humboldt.org.co
Carlos Sarmiento
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
csarmiento@humboldt.org.co
César Suárez
WWF Colombia
cfsuarez@wwf.org.co
Claudia Fonseca
Instituto de Investigación de Recursos
Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
- Proyecto Ecopetrol
claudia_fonseca_t@yahoo.com
PARTICIPANTES Y AUTORES
C. Lasso.
Eduardo Zea
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
ezea@humboldt.org.co
Juliana Rodríguez
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
julianarc@gmail.com
AUTORES ADICIONALES
Aniello Barbarino
Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias (INIA)
abarbarino@inia.gob.ve
Carolina Alcázar
Instituto de Investigación de Recursos
Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
(consultora)
alcazarcaicedo@gmail.com
Célio Magalhães
Instituto Nacional de Pesquisas da Amazonia (Inpa/CPBA)
celiomag@inpa.gov.br
Diego Raúl Riaño-Pinzón
Consultor independiente
kdonal94@gmail.com
Fernando Rojas-Runjaic
Fundación La Salle de Ciencias Naturales
(FLSCN) - Museo de Historia Natural La
Salle
fernando.rojas@fundacionlasalle.org.ve
Francisco Castro
Consultor independiente
bojonawi@gmail.com
Guido Pereira
Ministerio del Poder Popular para el Ambiente y los Recursos Naturales. Despacho
del Viceministro de Conservación Ambiental, Caracas, Venezuela
gpereira@minamb.gob.ve
Magdalena González
Fundación La Salle de Ciencias Naturales
(FLSCN) - Estación Hidrobiológica de
Guayana
magdalena.gonzalez@fundacionlasalle.org.
ve
María Claudia Díaz-Granados
Conservación Internacional - Colombia (CI)
mdiazgranados@conservation.org
Milton Romero
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
mromero@humboldt.org.co
Jose Ayarzagüena
Asociación Amigos de Doñana - Sevilla,
España
Ayarza03@hotmail.com
Oriana Farina
Fundación La Salle de Ciencias Naturales
(FLSCN) - Estación Hidrobiológica de
Guayana
orianafarina@gmail.com
Julián Mora-Day
Fundación La Salle de Ciencias Naturales
(FLSCN) - Museo de Historia Natural La
Salle
julianmoraday@gmail.com
Oscar M. Lasso-Alcalá
Fundación La Salle de Ciencias Naturales
(FLSCN) - Museo de Historia Natural La
Salle
oscar.lasso@fundacionlasalle.org.ve
Luis E. Pérez
Fundación La Salle de Ciencias Naturales
(FLSCN) - Estación Hidrobiológica de
Guayana
torio79@cantv.net
Paula Sánchez-Duarte
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
paulapalito@yahoo.com
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BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
PERFILES
A.C. BioHábitat
ONG que agrupa a cientíicos venezolanos
con más de 20 años de experiencia en taxonomía, sistemática, biogeografía, evaluaciones
de biodiversidad, uso de recursos, detección
de amenazas, planes de manejo y conservación de la biodiversidad en el Neotrópico.
Especialmente ha desarrollado trabajos sobre
priorización de áreas para la conservación en
el Escudo Guayanés y en el Corredor de los
Andes de Venezuela.
BioHábitat
Av. Manaure, Zona K, Qta. Mis Hermanos,
Urb. Macaracuay
Caracas, Venezuela
acbiohabitat@cantv.net
Centro para el Estudio
de la Biodiversidad
Neotropical
(Biocentro)-Unellez
El Centro para el Estudio de la Biodiversidad
Neotropical es una asociación civil sin ines
de lucro, creado para apoyar el Museo de
Ciencias Naturales de la UNELLEZ en Guanare, Estado Portuguesa. Consiste de cuatro
unidades: el Museo de Zoología, con colecciones de invertebrados, peces, herpetofauna,
aves y mamíferos; el Herbario Universitario
(PORT) con colecciones de plantas; el Centro
Cartográico con colecciones de mapas e imágenes de satélites; y la Oicina de Proyectos,
que funciona como una Consultora Ambiental que ejecuta proyectos de impacto ambiental, inventarios de lora y fauna, planiicación
ambiental, conservación de biodiversidad,
catastro rural e ingeniería ambiental.
BioCentro – UNELLEZ
Mesa de Cavaca
Guanare, Estado Portuguesa, 3310
Venezuela
0257 256 8007 Fax 0257 256 8130
biocentro@cantv.net
ORGANIZACIONALES
Colección
Ornitológica Phelps
(cop)
La Colección Ornitológica Phelps (COP)
desde sus inicios en 1938, comenzó un programa de investigaciones sobre la diversidad, distribución geográica, taxonómica y
sistemática de las aves de Venezuela, lo cual
ha permitido que Venezuela sea uno de los
países de Latinoamérica mejor conocido en
dicho grupo. Hasta el presente se han descrito 310 formas diferentes de aves, 246 de
estas descripciones provienen de sus propias
investigaciones. Es la colección de aves más
grande y completa de Latinoamérica, y se encuentra entre los primeros 20 lugares de las
mayores colecciones del mundo y cuenta con
una extensa biblioteca especializada en aves.
La Colección Phelps ha sido la base de numerosas publicaciones sobre las aves del país y
ha sentado las bases para que los ornitólogos
venezolanos puedan desarrollar otros campos de la biología de las aves.
Colección Ornitológica Phelps
Ediicio Gran Sabana. Piso 3.
Boulevard de Sabana Grande
Caracas 1050, Venezuela
Tel. (212) 7615631. Fax (212) 7633695
Conservación
Internacional (ci)
Conservación Internacional (CI), es una
organización sin ines de lucro, fundada en
1987 y con programas en más de 40 países en
cuatro continentes donde se encuentran las
áreas de mayor riqueza biológica del mundo.
En Colombia inició sus actividades en 1991 y
con la cooperación de organizaciones nacionales e internacionales ha trabajado en el diseño y ejecución de programas que integran
la conservación de los recursos naturales con
el desarrollo socio-económico en el ámbito
nacional, regional y local. Estos programas
15
involucran a los sectores gubernamental,
académico-cientíico y a la población civil
en las diferentes instancias de participación.
Actualmente todo su accionar se enfoca en
dar cumplimiento a las siguientes seis seguridades que se relacionan directamente con
el bienestar de las poblaciones humanas: 1)
Garantizar que el clima global se estabilice y
lograr la adaptación de los ecosistemas naturales y sus especies al cambio climático, 2)
Entender y proteger las fuentes y cuencas de
agua dulce en el mundo, 3) Asegurar la habilidad de la naturaleza para proveer alimento
que supla las necesidades de las comunidades
humanas, 4) Minimizar las presiones ambientales sobre la salud humana, 5) Valorar el
rol de la naturaleza en la cultura de los pueblos y 6) Conocer y salvaguardar los beneicios y las riquezas de la naturaleza.
Conservación Internacional (CI)
Cra. 13 No. 71 - 41
Bogotá, D.C. - Colombia
Tel.: +57 (1) 345 28 52
Corporación Ágora
Verde profesionales por
la biodiversidad y el
desarrollo
La Corporación “ÁGORA VERDE, Profesionales por la Biodiversidad y el Desarrollo”, es
una organización no gubernamental sin ánimo de lucro. Tiene como misión promover y
gestionar el desarrollo integral de la sociedad,
con énfasis en el uso racional y la conservación de la diversidad biológica, para el fortalecimiento de los grupos humanos, los sistemas productivos tradicionales y la protección
de los ecosistemas naturales, con principios
de solidaridad, equidad de género, igualdad
social, generacional y étnica.
La corporación busca contribuir al desarrollo humano integral, sostenible y autogestionario de las comunidades, mediante la
capacitación, la investigación de la diversidad
biológica y cultural y la transferencia de tec-
PERFILES ORGANIZACIONALES
C. Lasso.
nologías, en un marco de respeto, tolerancia y
pluralismo ideológico, para el fortalecimiento de los sistemas productivos tradicionales,
agroindustrial, pecuario y la conservación o
la restauración de los ecosistemas naturales.
Corporación Ágora Verde
Calle 25B # 4A – 29
Bogotá, D.C. - Colombia
Tel. 2868468
agoraverde@gmail.com
Corporación Colombia
Internacional (cci)
La Corporación Colombia Internacional
(CCI), es una entidad mixta de derecho privado y sin ánimo de lucro que busca apoyar,
promover y desarrollar la agricultura moderna no tradicional de cara a las necesidades del
mercado. Cuenta con sedes en las principales
ciudades de Colombia, con un equipo interdisciplinario de más de 300 personas buscando la generación de ingresos y empleo en el
campo, particularmente en zonas aptas para
ampliar la frontera agropecuaria del país.
Dentro de este marco, la Corporación en
convenio con el Ministerio de Agricultura
y Desarrollo Rural - MADR, desarrolla un
proyecto, “Estadísticas Pesqueras”, con el in
de identiicar el potencial del subsector pesquero y acuícola del país. Dentro de las actividades del proyecto, se encuentra la toma de
datos de producción pesquera desembarcada,
captura por unidad de esfuerzo y parámetros
biológicos (talla, sexo, peso y madurez gonadal), en los diferentes puertos de desembarco
a nivel nacional.
En la región de la Orinoquía se hace seguimiento al aprovechamiento de especies ícticas de consumo y de interés ornamental de
las principales subcuencas como son las de
los ríos Arauca, Meta, Guaviare e Inírida;
con puntos de toma de información directa
en los municipios de Arauca (Arauca), Villavicencio, Puerto López y Puerto Gaitán en
el Meta, Puerto Carreño en el Vichada, San
José del Guaviare en el Guaviare e Inírida en
el Guainía.
Los análisis de la información obtenida son
publicados con periodicidad mensual en la
página de la entidad www.cci.org.co, y anualmente se publica el libro Pesca y Acuicultura
Colombia, donde se recopila y presentan los
resultados del comportamiento anual de las
pesquerías nacionales.
Corporación Colombia Internacional
Calle 16 N 6 - 66 Piso 7
Teléfono (571) 3 44 31 11
Bogotá D.C. - Colombia
contactenos@cci.org.co
Corporación Llanera de
Ornitología y de la
Naturaleza – Kotsala
La corporación KOTSALA es una entidad sin
ánimo de lucro cuya inalidad es gestionar,
promover, investigar, conservar y desarrollar la ornitología, el manejo de los recursos
naturales y el bienestar de las comunidades
humanas, buscando en todo momento el
adelanto del conocimiento, la conservación y
el desarrollo sostenible en la Orinoquía Colombiana, bajo dos ejes transversales. El ambiental: que involucra la investigación y conservación de las aves, la biodiversidad y los
recursos naturales, el ecoturismo regional,
los sectores productivos, la sanidad animal
y los impactos ambientales, y el social, que
integra el desarrollo sostenible y humano, el
fortalecimiento de la base social, la concientización, educación y valoración del entorno
natural, al igual que el apoyo y fortalecimiento de iniciativas para disminuir la pobreza y
el desarraigo rural.
Corporación KOTSALA
Calle 4 Sur No. 35 – 95
Barrio Centauros Int. C27 Apto. 302
Villavicencio, Meta – Colombia
Tel. +57 (8) 6732281. A.A. 118
corporacionkotsala@yahoo.com
Fundación Etnollano
La fundación Etnollano es una organización
privada, constituida en 1984, con el objeto
de mejorar la calidad de vida de las comunidades indígenas, campesinas y marginales
urbanas de la Orinoquía, la Amazonía y otras
regiones de Colombia.
16
La fundación desarrolla su labor a través de
la puesta en marcha de programas que refuerzan el patrimonio cultural de estas comunidades, propenden por su desarrollo autónomo y sustentable, y por la conservación
de la biodiversidad. Realiza investigación
participativa aplicada al diseño, adecuación,
implementación y evaluación de programas
interculturales de salud, etnoeducación, educación ambiental, producción sostenible, manejo ambiental y protección del patrimonio
cultural.
Fundación Etnollano
Carrera 5ª No. 117-25
Bogotá D.C. - Colombia
enred@etnollano.org
Tel.: +57 (1) 6204932
www.etnollano.org
Departamento de
Ciencias Biológicas Universidad de los Andes
La Universidad de los Andes es una institución autónoma e independiente que propicia
el pluralismo, la diversidad, el diálogo, el debate, la crítica, la tolerancia y el respeto por
las ideas, creencias y valores de sus miembros.
Además, busca la excelencia académica e imparte a sus estudiantes una formación crítica
y ética para aianzar en ellos la conciencia de
sus responsabilidades sociales y cívicas, así
como su compromiso con el análisis y la solución de los problemas del país.
Para lograr este in, desarrolla y pone en
práctica metodologías de avanzada en la docencia y la investigación, orientadas a que el
estudiante sea el principal agente de su formación y resuelva los problemas que se le
presenten con creatividad y responsabilidad.
Así mismo, para estimular la formación integral, propicia el ambiente interdisciplinario
lexible esencial para integrar las artes, las
ciencias, la tecnología y las humanidades.
El Departamento de Ciencias Biológicas
inició sus actividades docentes en el año de
1953. En la actualidad cuenta con 25 profesores que además de sus tareas docentes
desarrollan programas de investigación en
diferentes áreas como genética evolutiva,
biología del desarrollo, sistemática, ecología
y paleontología. Para ello cuenta con diferentes laboratorios perfectamente equipados y
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
un Museo de Historia Natural que conserva
colecciones botánicas y zoológicas.
Departamento de Ciencias Biológicas
Universidad de los Andes
Carrera 1 Este # 18A - 10
Bogotá D.C. - Colombia
Tel.: +57 (1) 339 49 49
http://cienciasbiologicas.uniandes.edu.co/
index.htm
Fundación Estación Biológica Bachaqueros - febb
La Fundación Estación Biológica Bachaqueros - FEBB - se constituyó en 1993, si bien
el grupo de investigadores que le da origen
se conformó en 1990. La misión institucional de la FEBB, se resume en su consigna :
“Alternativas para el hombre en la Naturaleza”, en la búsqueda de vías para el desarrollo
armónico de la sociedad colombiana a través
del conocimiento y respeto de las leyes de
la naturaleza. Hacia el interior de la Fundación se persigue la generación de opciones
para sus miembros para hacer un proyecto
de vida individual, grupal o familiar en estrecho contacto con la Naturaleza por lo que
su labor también gira alrededor de fortalecer
las estaciones biológicas (Vichada y Caribe).
El objeto social de la Fundación Estación Biológica Bachaqueros es la investigación y la formación de investigadores en el campo transdiciplinario de la ecología y la promoción de la
organización y participación comunitarias en
pro de la conservación de la naturaleza para
el desarrollo sostenible y la equidad social.
Fundación Estación Biológica
Bachaqueros -FEBB
Carrera 56 No. 59 bis 36
Bogotá D.C. - Colombia
Tel: 3163198651 / 7518098
bachaqueros@hotmail.com
http://bachaqueros.blogspot.com/2007/12/
la-fundacin-estacin-biolgica.html/
Fundación
Horizonte Verde
Organización no gubernamental sin animo
de lucro, constituida en mayo de 1991, con
área de acción en la Orinoquia colombiana;
trabaja en investigación en sistemas sostenibles de producción, educación ambiental,
programas de investigación, conocimiento,
conservación y uso de la biodiversidad, conservación en tierras privadas, capacitación a
campesinos y productores en sistemas alternativos de producción, turismo de naturaleza, e investigación en aspectos de impacto
y economía ambiental; y consolidación de
grupos de base en comunidades urbanas y
rurales. Desde el año 2003 coordina el Nodo
Orinoquía de Reservas Naturales de la Sociedad Civil. Su reto: contribuir a la sostenibilidad social, ambiental y productiva de la
Orinoquia.
Fundación Horizonte Verde
Carrera 19 # 11-23
Cumaral, Meta, Colombia
Celular: 57+ 3112264801
horizonteverdelupe@gmail.com
www.horizonteverde.org.co
Fundación La Salle
de Ciencias Naturales
(flscn)
La Fundación La Salle de Ciencias Naturales
es una institución civil venezolana sin ines
de lucro, creada en el año 1957, con la inalidad de impulsar el desarrollo social del país
a través de tres modos de acción: la investigación, la educación y la extensión. Actualmente Fundación La Salle cuenta con una red
institucional enraizada en diversas regiones
del país, que incluyen los estados Cojedes,
Nueva Esparta, Bolívar, Amazonas, Delta,
Trujillo y el Distrito Capital, y que incluyen
siete centros de investigación, cinco liceos
técnicos, seis institutos universitarios, cuatro
empresas de producción, un barco oceanográico, dos barcos de pesca y un proyecto
adelantado de Universidad Nacional en los
Valles del Tury. Los centros de investigación,
con algo más de 100 investigadores, técnico y asistentes de investigación, incluyen la
Estación Hidrobiológica de Guayana (EDIDEGU), Estación de Investigaciones Agropecuarias (EDIAGRO), Instituto Caribe de
Antropología y Sociología (ICAS), Estación
de Investigaciones Marinas de Margarita
(EDIMAR), Estación Andina de Investigaciones Ecológicas (EDIAIE) y el Museo de
Historia Natural La Salle (MHNLS). Estos
centros se dedican esencialmente a estudios
ambientales del país en las áreas de biodiver-
17
sidad, oceanografía, ciencias agropecuarias,
suelos, sedimentología, limnologia, biología
marina, piscicultura, antropología y sociología, entre otras. Adicionalmente, Fundación
La Salle es editorial de dos revistas cientíicas con más de 50 años de existencia, como
son la Memoria y Antropológica. El Museo
de Historia Natural La Salle tiene objetivos
orientados hacia la realización de inventarios
de fauna y lora de Venezuela, además de investigación en áreas de taxonomía, sistemática, biogeografía, ecología y conservación. En
más de 60 años de investigación ha reunido
cerca de 130.000 registros de la biodiversidad
venezolana, constituyendo una de las colecciones más completas e importantes del país,
manteniendo ejemplares de aves, mamíferos
anibios, reptiles, peces, diversas colecciones
de invertebrados (moluscos, crustáceos, arácnidos, paracitos) y un herbario.
Fundación La Salle de Ciencias Naturales
Ediicio Fundación La Salle
Avenida Boyacá, sector Maripérez
Caracas, Venezuela
Tel.: +58 (0) 212 7095868
Fax: +58 (0) 212 7095871
www.fundacionlasalle.org.ve
Fundación Mariano
Ospina Pérez
La Fundación Mariano Ospina Pérez es una
entidad sin ánimo de lucro, creada en 1976
por familiares y amigos, para conservar y
proyectar los principios, valores y realizaciones del ex presidente, así como sus lecciones
de patriotismo y servicio a favor del mejoramiento de la calidad de vida de los hombres
y mujeres de Colombia y en particular de los
campesinos, quienes fueron una de sus mayores preocupaciones.
Entre sus campos de acción destaca la investigación y en particular estudiar la factibilidad
de la integración luvial de Suramérica como
sistema básico de infraestructura de transporte que coadyuve a lograr el desarrollo
sostenible y a prestar los servicios necesarios
para la integración económica y social del
continente.
Fundación Mariano Ospina Pérez
Av. Cra.24 No. 39-32
Bogotá D. C. -Colombia
PERFILES ORGANIZACIONALES
C. Lasso.
Tel.: +57 1 2878611
fundmop@gmail.com
www.fundmop.org
Fundación Omacha
La Fundación Omacha es una organización
no gubernamental enfocada a la investigación y conservación de la biodiversidad con
especial énfasis en especies y ecosistemas
acuáticos. Su trabajo se sustenta en cuatro
programas: investigación y monitoreo, desarrollo e implementación de medios de vida
sostenibles, conservación de áreas protegidas
y educación y conservación. Cuenta con más
de 20 años de trabajo en el territorio colombiano, y ha asesorado proyectos en varios países de Suramérica y Asia. En Colombia tiene
tres áreas focales de trabajo: la Orinoquia, la
Amazonía y el Caribe.
La Fundación cuenta con una Estación Biológica en el Amazonas y administra una reserva privada de 4680 hectáreas en la Reserva
de Biósfera El Tuparro. En los últimos años
ha diseñado e implementado varios planes de
manejo con socios estratégicos para especies
amenazadas (mamíferos acuáticos, peces ornamentales, tortugas, jaguares), ecosistemas
(humedales), regiones (Plan de Biodiversidad
de la Orinoquia) y promovido acuerdos de
manejo con comunidades locales, enfocados
especialmente a la pesca. Su presencia a largo
plazo en diversas regiones ha permitido un
trabajo continuo con comunidades locales,
especialmente indígenas y pescadores, desarrollando estrategias de manejo de recursos y
alternativas económicas.
Fundación Omacha
Calle 86A No. 23 - 38
Barrio El Polo. Bogotá D.C. - Colombia
Tel: +57 (1) 2362686 / 2187908
info@omacha.org - www.omacha.org
Sociedad Civil Palmarito Casanare, santuario
de lora y fauna ubicado en el departamento
orinoquence del Casanare, cerca a la desembocadura del río Cravo Sur en el río Meta.
Desde el inicio de sus actividades, se buscó
la concertación de alianzas estratégicas con
organizaciones aines que permitieran alcanzar los objetivos propuestos de conservación
de los ecosistemas de sabana inundable, característicos de la zona geográica en que se
encuentra ubicada la reserva.
Es asi como en la actualidad la Fundación
Palmarito desarrolla proyectos conjuntos
con WWF, Parques Nacionales Naturales
de Colombia, Conservación Internacional y
las Fundaciones Omacha y Panthera, entre
otros, que han permitido adelantar una pormenorizada caracterización geográica y biológica del enclave con miras a la construcción
a corto plazo de un Plan de Manejo Ambiental, que sea ejemplo para iniciativas similares,
en ésta y otras zonas de nuestra vasta Orinoquía Colombiana.
Ampliando su radio de acción a otras zonas
del país y fuera de este, la Fundación Palmarito Casanare en alianza con la Fundación
Omacha, promueve actualmente una importante iniciativa contra el tráico ilegal de
especies silvestres, denominada Yahui, travesía a la Libertad, con la cual se busca generar
conciencia a nivel global, de la necesidad de
generar estrategias contra esta actividad ilícita que se constituye en uno de los principales
lagelos y amenazas para la conservación de
nuestra lora y fauna.
Fundación Palmarito Casanare
Avenida Calle 72 6-30. Piso 13
Bogotá D.C. - Colombia
Tel.: +57 (1) 313 9333
palmaritocasanare@gmail.com
www.fundacionpalmaritocasanare.org
www.yahuiyahui.org
Fundación Panthera
Colombia
Fundación
Palmarito Casanare
La Fundación Palmarito Casanare es una organización sin ánimo de lucro, que nace en el
año 2008, con la misión indeclinable de velar
por los intereses de la Reserva Natural de la
Panthera Colombia se dedica a conservar los
jaguares a largo plazo a través de estrategias
de conservación aplicada basadas en ciencia.
Nuestro trabajo se concentra en cuatro grandes líneas: apoyo a creación y fortalecimiento
de áreas protegidas, promoción y aplicación
de usos de la tierra amigables con el jaguar,
producción de datos cientíicos claves para la
18
conservación del jaguar y acompañamiento a
ganaderos para lograr manejo de ganado antipredatorio. Aunque trabajamos de la mano
con el gobierno y con otras ONG´s nacionales e internacionales, nuestros grandes aliados son los indígenas, campesinos, agricultores y ganaderos los cuales son las personas
que viven con el jaguar todos los días.
Fundación Panthera Colombia
Calle 93 Bis # 19 - 40. Oicina 206
Tel: +57 (1) 6185229 - 6185169
Bogotá D.C. - Colombia
www.panthera.org
www.pantheracolombia.org
Fundación para La
Gestión Comunitaria y
Ambiental “zizua”
La Fundación Zizua es una organización no
gubernamental sin animo de lucro y grupo
de investigación, que fue creada en el año
1998, tiene como misión la investigación en
temas de conservación, manejo y uso sustentable de la biodiversidad, a in de propiciar
las economías comunitarias en todas sus manifestaciones, para elevar la calidad de vida
de la población colombiana, por medio de
la identiicación, formulación, gestión y ejecución de proyectos relacionados con el uso
sustentable de la biodiversidad.
En cumplimiento de sus funciones misionales la Fundación Zizua lidera en el Departamento de Casanare Colombia, el establecimiento del observatorio para la fauna
silvestre con énfasis en tres especies, pecarí
de collar o zaino (Pecari tajacu), lapa, tinajo
o borugo (Agouti paca) y venado cola blanca
(Odocoileus virginianus apurensis).
Para lograr sus objetivos, la Fundación Zizua
trabaja por medio de alianzas estratégicas,
convenios de cooperación técnico cientíica
y donaciones, con diferentes entidades como
son: las Autoridades Ambientales Corporaciones Autónomas Regionales, grupos de
investigación de universidades privadas y públicas, entes territoriales y empresas privadas.
La Fundación Zizua ha desarrollado investigación básica en el Departamento de Casanare en convenio con CORPORINOQUIA, LA
UNAD, LA UPTC Y UNISANGIL, en venado cola blanca y cuentan con la recopilación
de información de línea base para la especie
de Colombia y otros países latinoamericanos.
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
Fundación Zizua
Sede principal: Carrera 10 No 20-24
Sogamoso, Boyacá - Colombia
Subsede: Calle 20 No 8 -67
Yopal, Casanare - Colombia.
Cel.: +57 310 6786865
funzizua@gmail.com
Fundación para la
investigación y el
desarrollo sostenible
(funindes)
La Fundación FUNINDES es una organización no gubernamental sin ánimo de lucro,
creada en 1997 como una entidad educativa
e investigativa, con el objeto de impulsar procesos de educación, investigación y desarrollo sostenible, mediante la concentración y
canalización de esfuerzos intelectuales, humanos, físicos, económicos y cientíicos con
la inalidad de facilitar la protección de los
recursos naturales en procura de un ambiente sano, limpio y apto para la vida en el territorio colombiano. Sus planes y programas
dependen económicamente de donaciones,
convenios o contratos con entidades estatales
o de otra índole por medio de consultorías.
En cumplimiento de estos objetivos ha desarrollado y está en el desarrollo de algunos
proyectos enfocados principalmente hacia la
investigación en peces, especialmente de las
cuencas hidrográicas del Pacíico, Magdalena – Cauca y Orinoco, cuyos productos son
libros especializados, inventarios, estandarización de metodologías de muestreo y descripción de especies nuevas para la ciencia.
Fundación FUNINDES
Carrera 61 No. 7 – 64 Apto 301 D
Cali, Valle del Cauca, Colombia
Cel. +57 (03) 300 7808683
funindes@colombia.com
Fundación Universitaria
Internacional del
Trópico Americano
unitrópico
La Fundación Universitaria Internacional
del Trópico Americano “UNITROPICO”,
con sede en Yopal, Casanare, Orinoquia Colombiana, fue creada el 16 de marzo de 2000
como la Universidad de Casanare, como una
asociación de utilidad común, sin ánimo de
lucro, de participación mixta y como una institución Universitaria de Educación Superior,
La misión de la Fundación Universitaria Internacional del Trópico Americano es formar
jóvenes y profesionales de Casanare, de la región, del país y de otras regiones del mundo
con un elevado nivel cultural y con una visión
integral de los problemas humanos y ambientales, que incluya una concepción innovadora y de curiosidad cientíica, una actitud
tolerante y solidaria, un interés de alcanzar la
excelencia y deseo de servir a sus comunidades y a sus conciudadanos. Especial énfasis se
hará en la formación integral de los alumnos
como investigadores cientíicos para el conocimiento de nuestras riquezas naturales, de
nuestra biodiversidad y de nuestra diversidad
étnica y cultural y para la generación y realización de prácticas sostenibles de desarrollo
económico y social.
En la actualidad cuenta con 12 programas
de pregrado y 1 programa de postgrado, e
igualmente una amplia experiencia en la investigación de la biodiversidad y los aspectos
socioeconómicos del Casanare.
Fundación Universitaria Internacional del
Trópico Americano, UNITRÓPICO.
Carrera 19 # 39 – 40
Yopal, Casanare - Colombia
Tel: +57 (8) 6320715
Fax: +57 (8) 6320700
www.unitropico.edu.co
del convenio de diversidad biológica (CBD),
y punto focal para Colombia de ANDINONET, la red de países andinos miembros de
BIONET- INTERNATIONAL (he Global
Network for Taxonomy). Reúne las colecciones cientíicas más importantes del país sobre
fauna, lora y arqueología, que se constituyen en patrimonio nacional de incalculable
valor para el entendimiento de la diversidad
biológica y cultural de Colombia. Estas colecciones y la información contenida en cada
de los especímenes y restos arqueológicos,
son importantes para el desarrollo de investigaciones orientadas al conocimiento de la
biodiversidad y las relaciones de los grupos
humanos con el ambiente. Las colecciones
cientíicas son representativas de la biota colombiana, con cerca de 900.000 ejemplares,
fundamentan el estudio de la biota pasada,
actual y futura cuya utilidad va a la par con
el avance de la ciencia y el desarrollo del conocimiento.
También el Instituto de Ciencias Naturales
participa activamente en la formación de profesionales capacitados para la investigación y
administración de nuestros recursos bióticos.
Los grupos de investigación se relejan directamente en los programas de postgrado en
las modalidades de Maestría en Biología y a
nivel de Doctorado en Ciencias – Biología, en
sus líneas de Biodiversidad y Conservación,
Manejo de Vida Silvestre, Palinología y Paleoecologia y Taxonomía y Sistemática.
Instituto de Ciencias Naturales
Universidad Nacional de Colombia
Ciudad Universitaria, Calle 53, Edif. 425
Tel.: +57 (1) 316 5000, Ext. 11501
Fax: +57 (1) 1 316 5365
Inscien_bog@unal.edu.co
www.icn.unal.edu.co
Instituto de Ciencias
Naturales – Universidad
Nacional de Colombia
El Instituto de Ciencias Naturales, adscrito
a la Facultad de Ciencias de la Universidad
Nacional de Colombia, es el más importante centro de investigaciones sobre la lora, la
fauna y los ecosistemas actuales y pasados
representados en Colombia, al igual que sobre el uso el uso y al conservación de estos
recursos biológicos en el país. El Instituto
de Ciencias Naturales es autoridad cientíica
CITES (convención sobre el comercio internacional de especies amenazadas de fauna y
lora silvestres) para Colombia, punto focal
del país de la iniciativa global en taxonomía
19
Instituto de Estudios de
La Orinoquia (ieo)
El Instituto de Estudios de la Orinoquia, fue
creado mediante el Acuerdo 024 de 1997,
emitido por el Consejo Superior Universitario, de la Universidad Nacional de Colombia,
como una unidad académica que desarrolla
actividades de investigación, docencia y extensión interdisciplinaria, con el in de promover y ejecutar actividades de investigación, docencia y extensión universitarias en
la región de la Orinoquia.
PERFILES ORGANIZACIONALES
C. Lasso.
A través de este Instituto, la Universidad proyectó vincular las ciencias naturales y humanas, las artes y la tecnología, con la cultura y
con los recursos y necesidades de la Orinoquia colombiana. Fundamentalmente, el Instituto se dedica a la promoción, orientación y
coordinación de estudios en las diversas áreas
del conocimiento relacionadas con la Región
de la Orinoquia.
El Instituto de Estudios de la Orinoquia, tiene como misión mantener y ampliar el stock
de conocimientos sobre la Orinoquia, y contribuir al desarrollo sostenible de la región
y el país a través del desarrollo de proyectos
de Investigación y Extensión (consultoría,
asesoría, interventoría y educación continuada). En este sentido, la generación de conocimiento a través del fortalecimiento de las
dinámicas de investigación en la región y el
aporte a los procesos de desarrollo sostenible
e integral basados en alta tecnología requiere de la participación de distintos actores;
es así como el Instituto ha realizado investigación en diferentes áreas del conocimiento
en compañía de instituciones académicas de
carácter regional y con organismos estatales y
privados de orden local, regional y nacional.
El Instituto promueve acciones y proyectos
en la región, con el apoyo de Instituciones
como Colciencias, el Sena, la Oicina del Alto
Comisionado de las Naciones Unidas para los
Refugiados (ACNUR), el Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander
von Humboldt, las Cámaras de Comercio de
Arauca y Casanare y la Fundación el Alcaraván, entre otras; fortaleciendo la capacidad
académica de la Universidad Nacional y así
poder ofertarla en la región.
Instituto de Estudios de la Orinoquia
Universidad Nacional de Colombia
Unidad Camilo Torres.
Bloque 10, nivel 6, oicina 601
Telefax: +57 (0) 3165000 Ext. 10613/14/15
Bogotá D.C. - Colombia
ieorinoc_iara@unal.edu.co
www.arauca.unal.edu.co
Instituto de Investigación de Recursos
Biológicos Alexander
von Humboldt IAvH
Creado en 1993, el Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von
Humboldt es el brazo investigativo en biodiversidad del Sistema Nacional Ambiental
(SINA). El Instituto es una corporación civil
sin ánimo de lucro, vinculado al Ministerio
de Ambiente, Vivienda y Desarrollo Territorial (MAVDT). Como parte de sus funciones,
el Instituto se encarga de realizar, en el territorio continental de la Nación, investigación
cientíica sobre biodiversidad, incluyendo
los recursos hidrobiológicos y genéticos. Así
mismo, coordina el Sistema de Información
sobre Biodiversidad de Colombia y la conformación del inventario nacional de la biodiversidad.
Venezuela, que incluye una de las colecciones
más importantes de peces en Latinoamérica
y del Acuario “Agustín Codazzi”, en el cual,
atreves de sus exhibiciones y programas
educacionales, se disemina conocimiento al
público acerca de los peces venezolanos y la
conservación ambiental. El Instituto publica
la revista cientíica Acta Biológica Venezuelica, fundada en 1951.
Instituto de Zoología y Ecología Tropical Universidad Central de Venezuela
Apartado 47058, Caracas, 1041 – A
Venezuela
http://strix.ciens.ucv.ve/-instzool.
En el contexto del Convenio sobre la Diversidad Biológica, ratiicado por Colombia en
1994, el Instituto Humboldt genera el conocimiento necesario para evaluar el estado de
la biodiversidad en Colombia y para tomar
decisiones sostenibles sobre la misma.
El Instituto tiene cuatro programas de investigación:
•
Política, legislación y apoyo a la toma
de decisiones.
•
Dimensiones socioeconómicas del uso
y la conservación de la biodiversidad.
•
Biología de la conservación y uso de la
biodiversidad.
•
Sistema Nacional de Información sobre
biodiversidad de Colombia.
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH)
Calle 28A # 15 – 09 - Bogotá D.C. -Colombia
Tel.: +57 (1) 3202767
webmaster@humboldt.org.co
Instituto de Zoología y
Ecología Tropical –
Universidad Central de
Venezuela (ucv)
El Instituto de Zoología y Ecología Tropical
(IZET) es un instituto de investigación de
la Facultada de Ciencias de la Universidad
Central de Venezuela (UCV). Dentro de las
vastas disciplinas de Zoología y Ecología,
IZET enfatiza la educación y la investigación
en sistemática zoología, parasitología, ecología teórica y aplicada, estudios ambientales
y conservación. El Instituto de Zoología y
Ecología Tropical es el responsable del Museo de Biología de la Universidad Central de
20
Instituto Venezolano
de Investigaciones
Científicas (ivic)
El IVIC es una institución del estado venezolano que tiene la visión de ser un ente impulsor y generador del desarrollo cientíico
y tecnológico del país a través de la implementación de proyectos en áreas de impacto nacional e internacional. Su misión en
generar nuevos conocimientos a través de la
investigación cientíica, el desarrollo tecnológico y la formación de recursos humanos
de alto nivel mediante postgrados del Centro
de Estudios Avanzados (CEA). El Instituto
es fuente de acopio informativo en el área,
asesor y facilitador de servicios externos que
garantizan el acceso directo y la difusión del
conocimiento cientíico en Venezuela y en el
mundo, además sirve de organismo consultivo para el Gobierno Nacional y entes privados venezolanos. El IVIC realiza sus actividades en disciplinas cientíicas como: docencia
de pre y el post- grado, servicio y asistencia
técnica y asesoría en las ramas agroambientales, biológicas, medicas, físicas, químicas,
matemáticas, socio- antropológicas y tecnológicas, así como diversos proyectos interdisciplinarios. Los programas de maestría y
doctorado comprenden las especialidades
de Antropología, Bioquímica, Ecología, Fisiología y Biofísica, Genética Humana, Inmunología y Microbiología, Biología de la
Reproducción Humana, Estudios Sociales de
la Ciencia, Física, Matemáticas, Química y
Física Medica. El Proyecto Biomedicinas del
Bosque Tropical, adscrito al Centro de Biofísica y Bioquímica se encarga de prospectar,
bioenseñar y validar la actividad biológica
de compuestos naturales pertenecientes a la
biodiversidad nacional en contra de enferme-
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
dades. Para ello no solo se colectan muestras
vegetales para estudios bioquímicos, sino que
se hacen inventarios de vegetación y lora en
las áreas destinadas para prospección.
Instituto Venezolano de Investigaciones
Cientíicas (IVIC)
Carretera Panamericana Km 11, Altos de
Pipe. Centro de Biofísica y Bioquímica
Apartado Postal 21817
Caracas 1020 - A, Venezuela
Tel.: 00 58 212 5041468
Fax. 00 58 212 5041093
Ministerio de Ambiente,
Vivienda y Desarrollo
Territorial
El Ministerio de Ambiente, Vivienda y Desarrollo Territorial es la entidad pública del
orden nacional rectora en materia ambiental,
de vivienda, desarrollo territorial, agua potable y saneamiento básico que contribuye y
promueve acciones orientadas al desarrollo
sostenible, a través de la formulación, adopción e instrumentación técnica y normativa
de políticas, bajo los principios de participación e integridad de la gestión pública. El
Ministerio tiene como objetivos contribuir
y promover el desarrollo sostenible a través
de la formulación y adopción de las políticas,
planes, programas, proyectos y regulación
en materia ambiental, recursos naturales
renovables, uso del suelo, ordenamiento territorial, agua potable y saneamiento básico
y ambiental, desarrollo territorial y urbano,
así como en materia habitacional integral.
Ejerce un liderazgo en la toma de decisiones
relacionadas con la construcción de equidad
social desde la gestión ambiental, mediante la
consolidación de una política de desarrollo
sostenible y alianzas estratégicas con actores
sociales e institucionales en diferentes escenarios de gestión intersectorial y territorial.
DIRECCIÓN DE ECOSISTEMAS
La Dirección de Ecosistemas del Ministerio
de Ambiente, Vivienda y Desarrollo Territorial es la dependencia responsable de generar los fundamentos técnicos para liderar y
orientar la deinición de la política y gestión
ambiental, así como la toma de decisiones en
relación con la diversidad biológica a partir
de un enfoque ecosistémico que contribuya
al desarrollo sostenible del país. Sus acciones
contribuyen a la preservación, conservación,
restauración, manejo, uso y aprovechamiento
de la diversidad biológica a nivel de ecosistemas, especies, genomas y otros niveles de organización como base estratégica actual y potencial para el desarrollo sostenible del país, a
través de la formulación de políticas, planes,
programas y regulaciones, así como la gestión
ambiental en el ámbito de su competencia.
La Dirección de Ecosistemas tiene los siguientes objetivos misionales:
1. Formular e implementar las políticas,
planes, programas, proyectos y regulación con respecto a la conservación, manejo, restauración y uso sostenible de los
ecosistemas forestales, terrestres, acuáticos continentales, costeros y marinos y
de la biodiversidad.
2. Formular el Plan Nacional de Desarrollo
Forestal y coordinar su implementación.
3. Proponer, conjuntamente con la Unidad
del Sistema de Parques Nacionales Naturales y las autoridades ambientales, las
políticas y estrategias para la creación,
administración y manejo de las áreas de
manejo especial, áreas de reserva forestal
y demás áreas protegidas y la delimitación de las zonas amortiguadoras de las
áreas del Sistema de Parques Nacionales
Naturales
4. Diseñar y proponer las reglas y criterios
técnicos y metodológicos para la zoniicación y ordenación ambiental de los
ecosistemas de valor estratégico como
apoyo a los procesos de ordenamiento
territorial.
5. Proponer los criterios técnicos para el
establecimiento de las tasas de uso y
aprovechamiento de los recursos naturales renovables y la deinición de metodologías de valoración de los costos
ambientales por el deterioro y/o conservación de los ecosistemas y sus recursos
asociados.
6. Coordinar con las entidades del Sistema
Nacional Ambiental -SINA la implementación de sistemas de inventarios,
la deinición de criterios técnicos y metodologías para establecer las especies y
cupos globales para el aprovechamiento
de bosques naturales.
7. Proponer los criterios técnicos para el
ordenamiento, manejo y restauración de
cuencas hidrográicas.
8. Regular las condiciones generales del
uso sostenible, aprovechamiento, manejo, conservación y restauración de la diversidad biológica tendientes a prevenir,
mitigar y controlar su pérdida y/o deterioro.
9. Vigilar que el estudio, exploración e investigación de nacionales o extranjeros
en relación a los recursos naturales, respete la soberanía nacional y los derechos
21
10.
11.
12.
13.
14.
de la Nación sobre los recursos genéticos.
Aportar los criterios técnicos que deberán considerarse dentro del proceso de
licenciamiento ambiental y demás instrumentos relacionados.
Formular y conceptuar para el desarrollo
de un marco normativo en materia de
recursos genéticos.
Proponer y coordinar las prioridades de
investigación que en el área de su competencia deben adelantar los institutos de
investigación y realizar su seguimiento.
Fijar de común acuerdo con el Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural especies y los volúmenes de pesca susceptibles de ser aprovechados en las aguas
continentales y en los mares adyacentes
con base en los cuales la autoridad competente, expedirá los correspondientes
permisos de aprovechamiento.
Aportar los criterios técnicos requeridos
para la adopción de las medidas necesarias para asegurar la protección de especies de lora y fauna silvestres amenazadas; e implementar la Convención sobre
el Comercio Internacional de Especies
Amenazadas de Fauna y Flora – CITES.
Ministerio de Ambiente, Vivienda y Desarrollo Territorial. Dirección de Ecosistemas
Calle 37 No. 8-40
Tel.: +57 (1) 3323400 Ext. 2340
Fax: +57 (1) 3323457
www.minambiente.gov.co
Parques Nacionales
Naturales de Colombia
Parques Nacionales Naturales es una entidad
adscrita al Ministerio de Ambiente, Vivienda
y Desarrollo Territorial, que ejerce como autoridad ambiental en las áreas del Sistema de
Parques Nacionales Naturales de Colombia,
lidera procesos de conservación, administración y coordinación de áreas protegidas, contribuyendo al ordenamiento ambiental del
país, con el propósito de conservar in situ la
diversidad biológica y ecosistémica, proveer y
mantener bienes y servicios ambientales, proteger el patrimonio cultural y el habitad natural donde se desarrollan las culturas tradicionales como parte del Patrimonio Nacional
y a portar al desarrollo Humano Sostenible.
En la actualidad el Sistema de Parques Nacionales Naturales de Colombia está conformado por 56 áreas protegidas, que ocupan
PERFILES ORGANIZACIONALES
C. Lasso.
12.602.320,7 de hectáreas y el porcentaje del
territorio que se conserva en los Parques Nacionales es 1.30 % territorio marino y 9.98 %
territorio terrestre. En estas áreas se protege
gran parte del tesoro natural del paìs que a su
vez es riqueza irremplazable para todo el planeta: 10% de la biodiversidad mundial, Colombia es el primero en el mundo en diversidad de aves, segundo en diversidad de plantas
y anibios, tercero en diversidad de reptiles.
En el sistema de Parques Nacionales Naturales están representados 28 de los 41 distritos
biogeográicos del país. Se mantiene cerca del
40% de los 58 centros de biodiversidad local
única. Incluye el 12% de los refugios húmedos y secos de Latinoamérica y dos de las
más importantes zonas de alta biodiversidad
mundial: el corredor del Chocó biográico y
los bosques amazónicos. Más de 25 millones
de personas dependen del agua suministrada
por las áreas protegidas, es decir de manera
directa a 31 por ciento de la población colombiana y, de manera indirecta a 50 por ciento.
Las áreas protegidas son responsables del
20% de los recursos hídricos que abastecen
de energía eléctrica al país y contribuyen al
crecimiento vegetal y la producción de oxígeno.
En sus territorios están incluidas cuatro de
las seis estrellas hidrográicas más importantes. Más del 62% de los acuíferos de Colombia se origina en áreas del sistema y allí
se protege el 75% de las lagunas y ciénagas
naturales. El 76% de los Parques Nacionales
Naturales contiene ecosistemas de humedales. Al menos 40 pueblos indígenas y decenas
de comunidades afrocolombianas utilizan las
áreas protegidas en el sistema de Parques Nacionales Naturales para garantizar su supervivencia y el mantenimiento de sus culturas.
Casi la mitad de los 82 pueblos indígenas del
país están directamente relacionados con las
áreas protegidas existentes. Con ellos se conserva el patrimonio histórico y cultural de los
diferentes grupos humanos de Colombia.
Parques Nacionales Naturales de Colombia
Cra 10 No. 20 - 30. Dir. General – Piso 5
Tel.: +57 (1) 3532400 ext. 566 – 590
www. parquesnacionales.gov.co
Pontificia Universidad
Javeriana. Facultad de
Estudios Ambientales y
Rurales
Su misión es impulsar prioritariamente la investigación y la formación integral centrada
en los currículos; fortalecer su condición de
universidad interdisciplinaria. El Proyecto
Educativo de la Pontiicia Universidad Javeriana comprende las directrices concretas
para el ejercicio de las funciones universitarias que desarrolla la comunidad educativa
en el marco de la formación integral de sus
miembros y en la perspectiva de la interdisciplinariedad. Las funciones de docencia,
investigación y servicio convergen en el que
hacer general de la Institución y generan relaciones interpersonales y de organización
que involucran a todos los estamentos de la
Universidad y aun a personas o entidades de
fuera de ella.
La misión de la Facultad de Estudios Ambientales y Rurales es generar y transmitir
conocimiento cientíico desde un enfoque
interdisciplinario y participativo, dirigido a
la formación integral, al estudio y solución de
problemas ambientales y rurales en el marco
del desarrollo sostenible. Fue creada en 1997
integrando de varias unidades académicas y
programas docentes de la Universidad, con
trayectoria académica e investigativa en los
temas concernientes al ambiente y el desarrollo rural. Hoy en día la Facultad está constituida por: el instituto de estudios ambientales
para el Desarrollo – IDEADE; El instituto de
estudios rurales- IER; El departamento de
Desarrollo Rural; el departamento de ecología y territorio; la carrera de ecología; la especialización en gestión de empresas del sector
solidario; la maestría en desarrollo rural; la
maestría en gestión ambiental y el doctorado
en estudios ambientales y rurales.
Facultad de Estudios Ambientales
y Rurales
Transv.4° No.42-00
Bogotá, D.C. - Colombia.
Ediicio J. Rafael Arboleda, S.J. Piso 8
Tels: + 57 (1) 320 8320 ext. 4814 - 4811 - 4810
Secretaria Departamental de Salud de Vaupés
Entidad del orden departamental responsable de la construcción de políticas públicas
en salud, inspección vigilancia y control de
los planes y programas ejecutados por los
actores del sistema general de seguridad social en salud. Vigila y controla dentro de los
componentes de salud ambiental, nutrición y
programa de enfermedades transmitidas por
vectores, lo riesgos de tipo biológico asocia-
22
dos al consumo y a la interacción del hombre
con el ambiente físico y poblaciones naturales. Adelanta desde el programa de E.T.V y
laboratorio de Entomología, investigaciones
de tipo operativo orientadas a mitigar las
interacciones negativas de los habitantes con
serpientes venenosas, insectos transmisores
de enfermedades y otros animales con potencial de daño para los humanos en el departamento de Vaupés.
Secretaria departamental de Salud de Vaupés. Gobernación de Vaupés
Cra 13 A N°15 A 127
Barrio El Centro
Telefax: 09856 42051
Mitú, Vaupés - Colombia
saludvaupes@yahoo.com
The Nature Conservancy
(tnc) - Colombia
he Nature Conservancy es la organización
global líder que tiene como misión la conservación de tierras y aguas ecológicamente importantes para la gente y para la naturaleza.
TNC desarrolla en Colombia, junto con sus
socios, evaluaciones del estado de los ecosistemas y determina objetos de conservación a escala del paisaje. Esta información se
constituye en una herramienta básica para
proponer alternativas para evitar, mitigar o
compensar el daño que se hace sobre los ecosistemas del país.
En la actualidad, han sido identiicadas las
áreas prioritarias de conservación en las zonas marinas del Mar Caribe y el Océano Pacíico, el Caribe y el Pacíico continental, los
Andes colombianos, la cuenca del Río Magdalena y los Llanos orientales.
Este ejercicio proporciona a todos los sectores
del país información invaluable sobre donde
está la biodiversidad del país y cómo se debería conservar. Así, permite la planiicación
informada y la inclusión de la biodiversidad
en los primeros pasos del ciclo de megaproyectos de infraestructura y desarrollo en el
país incluyendo actividades como hidrocarburos, minería, carreteras, hidroeléctricas y
puertos.
he Nature Conservancy (TNC) Colombia
Carrera 7 #80-49 Oicina 204
Tel: (0057) 1- 321-4051
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
Bogotá D.C. - Colombia
http://espanol.tnc.org/dondetrabajamos/colombia/
Universidad de Los
Llanos
La Universidad de los Llanos es una institución de educación superior de carácter
público creada mediante la Ley 8 del 30 y el
Decreto 2513de 1974. Funciona desde el 1
de febrero de 1975 y se ha concentrado en
la formación de profesionales que necesita la
región de los Llanos Orientales de Colombia.
Está considerada como “el proyecto estratégico más importante de la Orinoquía”. Tiene
establecido en su misión “formar integralmente ciudadanos, profesionales y cientíicos
con sensibilidad y aprecio por el patrimonio
histórico, social, cultural y ecológico de la humanidad, competentes y comprometidos en
la solución de los problemas de la Orinoquía
y el país con visión universal, conservando su
naturaleza como centro de generación, preservación, transmisión y difusión del conocimiento y la cultura”. Según los expresa su PEI,
“propende por ser la mejor opción de educación superior de su área de inluencia, dentro de un espíritu de pensamiento relexivo,
acción autónoma, creatividad e innovación.
“Como institución de saber y organización
social, mantiene estrechos vínculos con su
entorno natural a in de satisfacer y participar
en la búsqueda de soluciones a las problemáticas regionales. Para ello se apoya en la tradición académica y, al contar con un acervo
de talento humano de probadas capacidades
y calidades, interpreta, adecua y se apropia
de los avances de la ciencia y la tecnología
para cualiicarse, a través de la docencia, la
investigación y la proyección social.” Se rige
por principios como la autonomía, universalidad, responsabilidad social, pluralidad
argumentada, equidad, libertad de cátedra y
convivencia. Su oferta educativa para los habitantes de la región se caracteriza por la pertinencia, participación, lexibilidad y enfoque
investigativo, integración teórico-práctica e
interdisciplinariedad. En la actualidad ofrece
16 programas de pregrado y 15 programas de
posgrado.
Universidad de Los Llanos
Sede Barcelona
Km. 12 Vía Puerto López
PBX: 661 68 000
Sede San Antonio
Calle 37 No. 41 - 02 Barzal
PBX: 661 69 00
Villavicencio, Meta - Colombia
http://web.unillanos.edu.co/new/
Universidad Nacional
Experimental de Guayana
- uneg
Es misión de la Universidad Nacional Experimental de Guayana, formar ciudadanos,
intelectuales y líderes para la transformación
socio-cultural y técnico-cientíica que aseguren el desarrollo social y económico sustentable, con respeto y protección al ambiente
y a la diversidad biológica y cultural de la
región Guayana para las generaciones futuras. La UNEG se constituye en un espacio de
construcción colectiva de conocimientos y
compartir de saberes, fomentando el arraigo
cultural en el marco de la diversidad, fundamentada en la ética, la solidaridad, la paz, la
libertad académica, la autorrelexión crítica y
comprometida con la preservación y defensa de los valores que hacen posible la convivencia ciudadana y el respeto a los derechos
humanos como patrimonio fundamental de
la sociedad.
Los objetivos institucionales representan
los propósitos especíicos enmarcados en la
misión. Los mismos son permanentes en el
tiempo y orientan las acciones hacia la situación deseada.
1.
2.
3.
4.
Desarrollar el potencial humano en los
campos sociocultural y tecnocientíico y
ambiental que requiere el desarrollo sostenible de la región Guayana.
Aianzar los procesos culturales y sociopolíticos para la profundización de
la democracia directa y protagónica, en
atención a la etnodiversidad en la región
Guayana.
Asegurar los procesos de investigación
y desarrollo orientados a la búsqueda
de respuestas innovadoras a los requerimientos del desarrollo sostenible de la
región Guayana, fomentando la integración de las iniciativas interinstitucionales.
Asegurar la vigencia permanente de la
calidad en las estructuras y los procesos
académicos - administrativos para dar
respuesta oportuna a las demandas de la
sociedad en atención a la diversidad biológica, cultural y geográica de la región
Guayana.
23
5.
Rectorar la integración de los recursos
- humanos, tecnológicos y inancieros que conforman el sub-sistema de Educación Superior en la región Guayana y de
éstos con los demás niveles del sistema
educativo regional.
Universidad Nacional Experimental de
Guayana – UNEG
Av. Las Américas, 3er. Piso, Pto. Ordaz
Estado Bolívar – Venezuela
Telefax: 58 (0) 286 - 9225673
http://site.uneg.edu.ve/
WWF - La Organización
Mundial de
Conservación
Fundada el 11 de Septiembre de 1961. WWF
es una organización global que actúa localmente a través de una red de más de 90 oicinas en 40 países alrededor del mundo las
cuales varían en su grado de autonomía y con
una red de colaboradores de casi 5 millones
de personas. WWF trabaja por un planeta
vivo. Su misión es detener la degradación
ambiental de la Tierra y construir un futuro
en el que el ser humano viva en armonía con
la naturaleza:
1. Conservando la diversidad biológica del
mundo.
2. Asegurando que le uso de los recursos
naturales renovables sea sostenible.
3. Promoviendo la reducción de la contaminación y del consumo desmedido
WWF - Programa Regional Amazonas
Norte y Chocó Darién
Oicina Principal: Carrera 35 No. 4A-25
Tel.: +57 (2) 558 25 77
Fax: +57 (2) 558 25 88
Cali, Colombia
Oicina Bogotá: Calle 70 A No. 12-08
Tel.: 57 (1) 313 22 68 /70/71
Fax: 57 (1) 217 80 93
www.wwf.org.co
www.panda.org
Cissus sp. Casanare. Foto: A. Navas.
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
AGRADECIMIENTOS
sitaria Internacional del Trópico Americano- Unitrópico;
Instituto de Investigaciones de la Orinoquia (UNAL); Instituto de Ciencias Naturales (ICN-UNAL); Instituto Amazónico de Investigaciones Cientíicas- SINCHI; Ministerio
de Ambiente, Vivienda y Desarrollo Territorial; Secretaria
Departamental de Salud de Vaupés; Universidad de los Llanos (Unillanos) y Universidad de los Andes.
El Comité Editorial agradece a todos los participantes del
Segundo Taller Binacional y a los autores de los casos de
estudio, quienes publicaron sus resultados inéditos en esta
obra que hoy presentamos. Mención especial a la Directora del Instituto de Investigación de los Recursos Biológicos
Alexander von Humboldt, Eugenia Ponce de León Chaux,
por haber abierto el espacio institucional que permitió la
realización de este Taller.
Los autores del capítulo de lora y vegetación de Venezuela
agradecen a sus instituciones (IVIC, FLSCN, UNEG,) y a
todos los investigadores que han aportado al conocimiento
de este tema en Venezuela y cuya síntesis mostramos aquí;
gracias a la voluntad conjunta del Instituto de Investigación de los Recursos Biológicos Alexander von Humboldt,
WWF Colombia, Fundación Omacha, Fundación Palmarito, Instituto de Estudios de la Orinoquia y Fundación La
Salle de Ciencias Naturales. Nuestra gratitud a Carlos Lasso
por su compromiso generoso.
A las organizaciones que han respaldado y liderado de primera mano esta iniciativa: Fundación La Salle de Ciencias
Naturales de Venezuela (Museo de Historia Natural La Salle, Estación Hidrobiológica de Guayana e Instituto Caribe
de Antropología y Sociología); Instituto de Investigación de
los Recursos Biológicos Alexander von Humboldt; WWF
Colombia; Fundación Omacha; Fundación Palmarito y
Universidad Nacional de Colombia (Instituto de Estudios
de la Orinoquia).
Los autores del capítulo de peces agradecen a los colegas
que participaron en la deinición de las subregiones biogeográicas y áreas prioritarias para la conservación del recurso ictiológico: Donald Taphorn, Gilberto Cortés, José Iván
Mojica, Hernando Ramírez, Rosa Elena Ajiaco, Ana Isabel
Sanabria, Francisco Villa, Armando Ortega, Juan David
Bogotá, Germán Galvis y Martha Campos.
Este esfuerzo no habría sido posible sin la participación de
los diferentes autores y el respaldo de sus organizaciones
e instituciones. En Venezuela: AC BioHábitat-Venezuela;
Estación Biológica El Frío (Asociación Amigos de Doñana); Fundación Phelps (Colección Ornitológica Phelps);
Instituto Venezolano de Investigaciones Cientíicas (IVIC);
Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias
(INIA-Estación Experimental San Fernando de Apure);
Ministerio del Poder Popular para el Ambiente; Universidad Central de Venezuela-Instituto de Zoología y Ecología
Tropical (UCV-IZT); Universidad Nacional Experimental
de los Llanos Ezequiel Zamora (UNELLEZ) y Universidad
Experimental de Guayana (UNEG).
Los autores del capítulo de anibios y reptiles agradecen a
John Lynch, Santiago Castroviejo-Fischer, Ángela Suárez y
Hollman Miller por sus valiosos aportes durante la jornada
de trabajo del II Taller Binacional. A César Barrio-Amorós
por ofrecer algunas de las fotografías que ilustran el capítulo de herpetofauna.
En Colombia: Asociación Calidris; Corporación para el
Desarrollo Sostenible del Norte y Oriente Amazónico
(CDA); Corporación Colombia Internacional (CCI); Corporinoquia; Corporación Kotsala; Fundación Horizonte
Verde; Fundación Puerto Rastrojo, Fundación Etnollano;
Fundación Panthera Colombia; Fundación Estación Biológica Bachaqueros; Fundación Mariano Ospina Pérez;
Fundación Zizua; Fundación Funindes; Fundación Univer-
Los autores del capítulo de aves agradecen a Gary Stiles,
William Bonilla y Juan David Amaya por su valiosa contribución durante este Taller Binacional, base de este documento. Agradecen también a diferentes organizaciones
como la Colección Ornitológica Phelps Venezuela, WWF
Colombia, Asociación Calidris, Fundación Omacha y Corporación Kotsala que han promovido y desarrollado mu-
25
AGRADECIMIENTOS
C. Lasso.
Alexander von Humboldt, quienes con la GTZ en el marco
del proyecto Biodiversidad del Orinoco, apoyaron con recursos la evaluación de tóxicos en Colombia. En Venezuela,
agradecemos el permanente respaldo de la Fundación La
Salle de Ciencias Naturales y la participación de los investigadores y pescadores que colaboraron en la recolección
de las muestras. En Colombia, gracias a Patricia Camargo,
María Stella Matallana, Marcela Velasco y Lucía Bermúdez
por su apoyo en la toma de muestras. Igualmente agradecemos a la CDA en San José de Guaviare e Inírida. Finalmente expresamos nuestro agradecimiento a Catalina Gómez,
Salvador Herrando Pérez y Marisol Beltrán por sus comentarios al manuscrito.
chos de los estudios que han sido base para esta contribución.
Los autores del capítulo de mamíferos agradecen a los participantes de la mesa mastozoológica del Taller Binacional:
Sonia Adame, Fernando Castillo, Diana Morales, Carmen
Rosa Largo, Maria Angelica Montes y Alejandra Baquero.
En Venezuela a Olga Herrera, Belkis A. Rivas, Haidy Rojas
y Daniel Lew de la Fundación La Salle de Ciencias Naturales (Museo de Historia Natural); Javier Sanchez del Ministerio del Poder Popular para el Ambiente; a Julián Quesada, Andrés Felipe Alfonso y Juan David Aristizabal por su
cooperación en la organización de los datos. Finalmente a
Carlos A. Lasso por el apoyo, la constancia y valiosa gestión
de este proceso.
Francisco Castro agradece a Antonio Machado-Allison,
Anabel Rial, Saulo Usma, Carlos A. Lasso y Angélica Diaz
por su colaboración en la revisión del artículo. A Luz Mila
Quiñones Méndez por el apoyo logístico brindado en el
Herbario Llanos de la Universidad de Llanos y a las personas que colaboraron en el trabajo de campo.
Gracias a nuestros colegas por ceder sus fotografías para
esta publicación: Aniello Barbarino, Alejandro E. Siblesz
Vera, Alfredo Navas, Andrés Acosta, Ángel Fernández,
Angélica Diaz-Pulido, Antonio Machado-Allison, Camila
Plata, J. Celsa Señaris, Cesar Suárez, Cesar Barrio-Amorós, Donald Taphorn, Fernando Rojas-Runjiac, Francisco
Castro, Francisco Nieto, Franklin Rojas, Gustavo Romero,
Jeisson Zamudio – Asociación Calidris, Juan M. Rengifo,
Leeanne Alonso, Miguel Lentino, Nadia Milani, Natalia
Ocampo, Oscar Lasso-Alcalá, Oscar Mahecha, Pascual
Soriano, Paula Sánchez-Duarte, Sebastián Restrepo, Steve
Winter – Panthera y a la Unidad de Producción Audiovisual del Instituto Humboldt (UPA).
Este Portafolio reúne mucha de la información binacional
recopilada en los últimos siete años por WWF y sus socios en Colombia y Venezuela. Saulo Usma agradece especialmente todo el apoyo recibido por parte de Mary Lou
Higgins, Luis German Naranjo, Ximena Barrera, Sandra
Valenzuela, Alice Eymard Duvernay, Marco Flores, Cesar
Suarez, Carmen Candelo, Julio Mario Fernandez, Hannah
Williams y Heinz Stalder (q.e.p.d.). Igualmente, a los socios
de la Mesa Orinoco (GTZ, Instituto von Humboldt, Fundación Omacha, Unillanos, Pontiicia Universidad Javeriana, Unitrópico, Corporinoquia, Cormacarena, CDA, Parques Nacionales, Fundación Horizonte Verde), Fundación
La Salle de Ciencias Naturales, Fudena, TNC, Fundación
Puerto Rastrojo, Unellez, Universidad Simón Bolívar y la
Universidad Central de Venezuela.
A Carmen Candelo (WWF) en la moderación y guía del
Taller; Mónica Morales-B., Angélica Díaz-Pulido y Claudia
Villa (IAvH) por el apoyo en el proceso del taller y posterior
edición, así como a Luisa F. Cuervo por su excelente trabajo editorial; a Carlos Sarmiento, Carlos Pedraza, Juliana
Rodríguez (IAvH), Cesar F. Suárez, Andrés Felipe Trujillo
y Leidy Cuadros (WWF) por la elaboración de los mapas.
Por último, queremos agradecer a Conservación Internacional Colombia, especialmente a su director, Fabio Arjona,
por el apoyo recibido para hacer posible esta publicación.
En el caso de estudio sobre la contaminación mercurial y
por agroquímicos los autores expresan su agradecimiento a
WWF Colombia. Igualmente a Patricia Falla y al Instituto
26
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
RESUMEN
EJECUTIVO
Anabel Rial, Carlos A. Lasso Alcalá, Carlos Sarmiento, Carlos Pedraza y Juliana Rodríguez
ÁREA DE ESTUDIO
peces, anibios y reptiles, aves y mamíferos), donde cada
uno deinió las subregiones biogeográicas pertinentes y
analizó en cada una el respectivo estado del conocimiento.
El análisis de estado del conocimiento consideró tres variables: 1) esfuerzo de muestreo, 2) nivel de conocimiento y 3)
vacios de información, y la valoración de la importancia
biológica otras cinco: 1) riqueza, 2) número de endemismos, 3) número de especies amenazadas, 4) número de
especies con valor de uso y 5) procesos ecológicos o evolutivos relevantes.
La cuenca del Orinoco se localiza al norte de Suramérica
entre -60 y -75 grados de longitud y entre los 2 a 10 grados
de latitud norte. El Orinoco es uno de los ríos más largos de
Suramérica (2.150 km), el tercero a nivel mundial en caudal (31.061 m3/seg) y el quinto en transporte de sedimentos
(150 millones de ton/año). Se extiende a lo largo de 981.446
km2 compartidos por Venezuela (65%) y Colombia (35%)
y sintetiza las tres grandes estructuras geológicas de la naturaleza: cordilleras de plegamiento, escudos o cratones y
megacuencas de sedimentación, así como los tres tipos de
agua: blancas (turbias), claras y negras (color té). Bajo el
enfoque ecosistémico de ecorregiones terrestres y ambientes acuáticos, se reconocen en ella diez grandes regiones
incluyendo los corredores ribereños: 1) Zona de transición
Orinoco-Amazonas, 2) Delta del Orinoco, 3) Corredor
Medio Orinoco, 4) Corredor Bajo Orinoco, 5) Corredor
Alto Orinoco, 6) Guayanesa, 7) Costera, 8) Andina, 9) Llanera y 10) Altillanura orinoquense.
Finalmente y en razón del análisis de las variables se nominaron las áreas importantes para la conservación de cada
grupo y inalmente en consenso para todos. Los resultados
incluyen 220 objetos distribuidos de la siguiente manera:
• 71 subregiones biogeográicas para los seis grupos taxonómicos (lora y fauna).
• 29 cuencas hidrográicas para el análisis de importancia
biológica del grupo de peces.
• 101 áreas nominadas por los diferentes grupos.
• 19 áreas seleccionadas por consenso de la intersección
de las anteriores y otras adicionadas por la plenaria del
grupo de especialistas.
Se deinieron sus límites al occidente por la división de
aguas de la cordillera Oriental en Colombia, al oriente por
su desembocadura en el Océano Atlántico, al norte por la
divisoria de aguas de la vertiente sur de la cordillera de la
Costa en Venezuela y al sur, por la cuenca del río Guaviare
incluyendo Inírida, Atabapo y todo el Estado Amazonas de
Venezuela, excluyendo la cuenca del río Negro.
RESULTADOS
Flora y vegetación
METODOLOGÍA
Deinición de regiones y subregiones biogeográicas
Siguiendo criterios lorísticos y de vegetación, se diferenciaron ocho grandes regiones: 1) Amazonas, 2) Andes Altos,
3) Andes-Piedemonte, 4) Cordillera de La Costa, 5) Guayana Norte, 6) Guayana Sur, 7) Llanos y 8) Orinoco-Delta.
En dichas regiones se deinieron 29 subregiones. 1. Amazonas: a) Bosque de transición amazónica, 2. Andes altos:
a) Bosques, arbustales y páramos del orobioma andino semihumedo, b) Bosques, arbustales y páramos del orobioma
andino húmedo, c) Bosques, arbustales y páramos del oro-
Más de 90 participantes de unas 32 instituciones y con especialidad en diferentes temas, se reunieron en durante una
semana en Bogotá, en el marco del Primer Taller Binacional de Identiicación de Áreas Prioritarias para la Conservación y Uso Sostenible de la Biodiversidad en la Cuenca
del Orinoco, para analizar la información disponible y proponer áreas prioritarias para la conservación. La metodología se llevó a cabo por grupos (lora y vegetación, insectos,
27
RESUMEN EJECUTIVO
C. Lasso.
bioma andino Serrranía de la Macarena 3. Andes-Piedemonte: a) Bosques semicaducifolios y arbustales xerofíticos
del piedemonte andino norte, b) Bosques semicaducifolios
del piedemonte andino medio, c) Bosques siempreverdes
del piedemonte andino sur. 4. Cordillera de la costa: a) Bosques montanos y submontanos de la Cordillera de la Costa. 5. Guayana norte: a) Sabanas arboladas occidentales del
norte de la Guayana, b) Sabanas arbustivas orientales del
norte de la Guayana. 6. Guayana sur: a) Sabanas inundables de arenas blancas Inírida-Atabapo, b) Bosques húmedos de arenas blancas, c) Bosques en áreas de aloramientos, d) Sabanas, bosques y arbustales de la altiplanicie Gran
Sabana, e) Herbazales, arbustales y bosques montanos de
los tepuyes orientales, f) Herbazales, arbustales y bosques
montanos de los tepuyes occidentales, g) Bosques húmedos
de la Guayana oriental, h) Bosques húmedos de Guayana
occidental. 6. Llanos: a) Sabanas inundables, b) Sabanas de
altillanura húmeda, c) Sabanas de altillanura seca, d) Sabanas de altillanura seca arenosa eólica, e) Sabanas de galeras,
f) Sabanas de llanos altos centrales, g) Sabanas de llanos
orientales. 7. Bosques y herbazales del Delta: Bosques: a)
arbustales y herbazales inundables del Corredor Bajo Orinoco, b) Bosques, arbustales y herbazales inundables del
Corredor Medio Orinoco, c) Bosques, arbustales y herbazales inundables del Corredor Alto Orinoco.
ría de las plantas amenazadas. El 35% de las especies de la
región son endémicas de Colombia y cerca de 75 especies
amenazadas en Colombia habitan en esta cuenca. El uso de
este recurso tiene diversos ines. Al menos 75 especies son
empleadas en ambos países, principalmente en el Amazonas, los Andes y el delta del Orinoco. Los procesos ecológicos vitales se llevan a cabo en los bosques de transición del
Amazonas, los Andes y los llanos inundables y se reieren
a la captación de carbono, el refugio de fauna y el conjunto
de beneicios que proveen los humedales.
Áreas prioritarias nominadas
Analizados los aspectos de riqueza, endemismo, especies
amenazadas, especies con valor de uso y procesos ecológicos, las áreas del piedemonte andino, llanos inundables,
cuenca de los ríos Tomo-Vichada, Estrella Fluvial AtabapoInírida y Corredor Bajo Orinoco-Delta Sur, son prioritarias para la conservación de la lora y la vegetación de esta
cuenca.
Insectos
El análisis incluyó solo la porción de la cuenca colombiana
y consideró los tres grupos focales del programa de inventarios del Instituto Humboldt: escarabajos coprófagos, mariposas y hormigas.
Estado del conocimiento
Deinición de subregiones biogeográicas
Como resultado del trabajo conjunto de especialistas e instituciones en Venezuela, han sido publicadas obras generales que representan un gran aporte al conocimiento de este
tópico en la Orinoquia. Las más recientes incluyen el Nuevo Catálogo de la Flora de Venezuela, el Catálogo Ilustrado
de la Flora de los Llanos, los diversos volúmenes de la Flora
de la Guayana, las Plantas Acuáticas de Venezuela y de los
Llanos Inundables, los boletines RAP y diversas loras locales andinas y del extenso corredor del Orinoco. En Colombia, pese a la complejidad del orden público en algunas
áreas de la Orinoquia, el estado del conocimiento de la lora
ha avanzado de manera notoria en los últimos diez años. Se
cuenta con trabajos a nivel de inventarios muy detallados
en áreas como la Selva de Matavén y el Parque Nacional
Natural El Tuparro en el departamento del Vichada y la
Estrella Fluvial de Inírida. Son necesarios esfuerzos como
el presente trabajo que tengan la capacidad de articular y
hacer visible la suma de aportes. La riqueza estimada para
la cuenca en Venezuela es de 15.820 especies. Las regiones
más estudiadas han sido la Guayana sur, el delta del Orinoco y los Llanos. La mayor diversidad de especies endémicas
corresponde a los tepuyes de la Guayana, mientras que en
los Andes y en el Corredor Orinoco se concentran la mayo-
Se deinieron cuatro subregiones a partir del mapa de vegetación, fusionadas de las sub-áreas escogidas para los tres
grupos de insectos que habitan distintos tipos de cobertura
vegetal en los diferentes paisajes de la Orinoquia: 1) piedemonte llanero; 2) corredor Estrella Fluvial - El Tuparro:
sabanas y bosques de la penillanura Guainía-Vaupés, incluyendo el Parque Nacional Natural (P.N.N.) El Tuparro
y la Selva de Matavén; 3) sabanas inundables y 4) bosques
húmedos - Reserva Nacional Natural Nukak.
Estado del conocimiento
En Colombia se han estudiado aceptablemente algunos
grupos (e.g. Ephemeroptera, Plecoptera, Mantodea, hysanoptera, Coleoptera, Himenoptera, Lepidoptera y Diptera),
pero no existen catálogos, claves, monografías y estudios
regionales. Los insectos de la región de la Orinoquia han
sido poco estudiados, por tanto no hay datos completos
sobre su riqueza. El esfuerzo de muestreo en hormigas y
mariposas ha sido mayor en el piedemonte y las sabanas
inundables y bajo para los tres grupos de insectos en los
bosques húmedos de la Reserva N.N. Nukak. La riqueza
de escarabajos coprófagos es alta en el piedemonte, media
en el corredor Estrella Fluvial y R.N.N. Nukak y muy bajo
28
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
bajas adyacentes al Escudo de Guayana, 10) tierras altas
del Escudo Guyanés (mayormente desconocidas) GAP, 11)
delta del Orinoco, 12) zona especial complejo Ríos Aguaro-Guariquito, 13) zona especial Caño Guaritico, llanos de
Apure, 14) zona especial río Nula (enclave selvático SarareSaravena).
en las sabanas inundables. Se han registrado 105 especies
de escarabajos coprófagos para la Orinoquia colombiana,
25 de ellas son nuevos registros según el listado de especies
de Colombia, aportando el 35% de las especies de todo el
país. La zona del eje cafetero ha sido mejor estudiada, sin
embargo, la región de la Orinoquía presenta un número
alto de especies comparado con el bajo esfuerzo de muestreo y los vacíos de información en la región. La riqueza de
especies de hormigas es alta en el piedemonte y la R.N.N.
Nukak y muy bajo en las sabanas inundables. En la Reserva
de la Macarena (subregión Piedemonte) y R.N.N. Nukak
la riqueza de especies es de 95 y 158 especies, respectivamente. Las riqueza preliminar de de mariposas en la región
Orinoquia asciende a 158 especies, considerando solo los
registros de la colección del Instituto de Ciencias Naturales
de la Universidad Nacional de Colombia. Al menos cinco
escarabajos coprófagos son endémicos de la cuenca y aunque más de 350 especies de mariposas son endémicas de
Colombia aun no se conoce cuántas de ellas son exclusivas
de la cuenca del Orinoco. Tampoco se conoce el número de
insectos amenazados para la región. Dada la antigüedad de
este grupo de fauna su importancia en los procesos ecológicos y su valor de uso es probablemente mayor de la que
hemos conocer aún.
Estado del conocimiento
Actualmente, se conocen cerca de un millar de especies de
peces en la cuenca del río Orinoco, ampliamente distribuidos y ocupando una gran diversidad de ambientes acuáticos que incluyen cauces principales de ríos de aguas blancas, claras y negras, caños, madreviejas, lagos y lagunas de
rebalse, sabanas y bosques inundados, y biotopos frágiles
y especiales como los morichales. Hay un gran número de
subcuencas que están mediana o altamente muestreadas y
con colecciones depositadas en varios museos públicos y
privados que lo respalden. Sin embargo, se recomienda la
necesidad de realizar esfuerzos prioritarios en aquellos sistemas con valores bajos y muy bajos, para tener un mayor
conocimiento de la ictiofauna presente en esas subcuencas
del río Orinoco. Hay un buen conocimiento en más del
50% de las subcuencas. Esfuerzos de estudios son necesarios en aquellos sistemas en los cuales se determinó que el
nivel de conocimiento es bajo o muy bajo. Estos están localizados principalmente en el Escudo de Guayana y sur
de Colombia y Venezuela. La Orinoquia colombiana es la
segunda región con mayor riqueza de peces en Colombia
(658 especies); es decir, que cerca del 46% de las 1.435 especies dulceacuícolas de Colombia se distribuyen en esta área.
De este total, 56 son especies endémicas. Para toda la cuenca se reconocen hasta el momento 181 especies endémicas,
con patrones muy interesantes y precisos de distribución en
algunos casos a nivel de subcuencas y en otros restringidos
a las cabeceras de los aluentes. Para Colombia 12 especies
tienen algún grado de amenaza: una en peligro crítico, siete en peligro, tres vulnerables y una casi amenazada. Para
Venezuela se listan 16 especies donde sólo tres son vulnerables, diez están casi amenazadas, dos en preocupación
menor y una con datos insuicientes. Prácticamente la totalidad de las especies de peces tienen valor de uso en sus
diferentes acepciones. En las zonas más remotas tienen una
gran importancia alimentaria por ser en algunos casos la
única fuente disponible y segura de ingesta proteica. Las
cuencas de acuerdo al tipo de aguas tienen diferente vocación pesquera y por lo general aquellos ríos de aguas blancas apuntan hacia las pesquerías de consumo mientras que
los ríos de aguas claras y negras están dirigidas a la pesca
ornamental. Se contemplaron una serie de aspectos de importancia biológica y ecológica para la ictiofauna como por
Áreas prioritarias nominadas
Se seleccionaron doce áreas prioritarias para la conservación de escarabajos coprófagos, hormigas y mariposas
ubicadas en las cuencas del río Duda, alto Guaviare y alto
río Meta, río Tomo y Vichada, Estrella Fluvial del Inírida y
llanuras de Arauca y Casanare.
Peces
Deinición de regiones y subregiones biogeográicas
Integrando los resultados del anterior taller binacional
del 2004 y la nueva información, se ainó la selección de
18 subregiones biogeográicas, 15 de ellas bien deinidas y
tres con poca información disponible, que sirven también
para los crustáceos decápodos de la Orinoquia colombiana
(Campos com. pers.) y venezolana (Lasso obs. pers.). Partiendo de estas, se delimitaron las subcuencas de la Orinoquia como unidad de trabajo natural para los análisis.
1) Andina, 2) abanicos de ríos trenzados del piedemonte
andino, 3) llanos bajos inundables de Colombia y Venezuela, 4) llanos centrales no inundables de Venezuela , 5)
vegas de grandes ríos con aguas blancas y planicies de inundación, 6) río Orinoco desde la Estrella Fluvial de Inírida
(conluencia de los ríos Inírida, Guaviare, Atabapo y Alto
Orinoco) hasta el raudal de Atures, 7) altillanura, 8) sabana
llanera con aloramiento del Escudo Guayanés, 9) tierras
29
RESUMEN EJECUTIVO
C. Lasso.
biogeográicos dos regiones - Guayana con 196 especies
y Llanos con 135 especies - poseen la mayor riqueza. En
los Andes la riqueza es media siendo mayor en el sector
de Colombia (104 sp.) respecto a Venezuela (84 sp). En la
cuenca del Orinoco venezolana, son endémicas el 39% del
total de las especies de anibios y el 20,6% de los reptiles,
principalmente concentradas en las tierras de mayor elevación de la Guayana. El 80-90% de los anibios y el 40-50%
de los reptiles registrados son endémicos del Pantepui. Las
especies de anibios amenazados ascienden a 266 según la
UICN (2010), 80 según el Libro Rojo de la Fauna de Venezuela y seis según el Libro Rojo de Colombia. Guayana
y los Andes colombianos son las áreas con mayor número
de especies amenazadas. Los reptiles amenazados habitan
principalmente en las regiones de los Llanos, Guayana y
Guaviare-Vichada y ascienden a 290, 12 y 14 especies según la UICN, y los libros rojos de Venezuela y Colombia,
respectivamente. En el convenio CITES se han identiicado bajo el criterio de explotación comercial tres especies de
anibios y 23 reptiles.
ejemplo sitios de reproducción, crecimiento y desarrollo,
fragilidad del sistema; así como importancia en procesos
evolutivos o biogeográicos, iniquidad o rareza de grupos,
comunidades o especies. Se pudieron clasiicar las regiones
en cuatro grupos. Es importante anotar que a pesar de a
que alguna cuenca tenga valores bajos, todas las cuencas
clasiicadas tienen al menos un proceso ecológico importante.
Áreas prioritarias nominadas
Se propusieron seis áreas importantes para la conservación de acuerdo al componente ictiológico, las cuales están
enmarcadas en ocho subcuencas o subregiones: delta del
Orinoco, Caura, Ventuari, Inírida, Guaviare, Bita, Meta y
Apure.
Anibios
Deinición de regiones y subregiones biogeográicas
Con base en los registros disponibles se deinieron ocho
subregiones: 1) Amazonía, 2 ) Llanos, 3) Guayana, 4) Andes Colombia-Venezuela, 5) zonas de transición, 6) Cordillera de la Costa, 7) área Guaviare-Vichada.
Áreas prioritarias nominadas
Se propusieron las anteriores siete regiones como áreas
prioritarias para la conservación de los anibios y reptiles :
1) Amazonía, 2 ) Llanos, 3) Guayana, 4) Andes ColombiaVenezuela, 5) zonas de transición, 6) Cordillera de la Costa, 7) área Guaviare-Vichada.
Estado del conocimiento
Se incluyen los tres órdenes de la clase Amphibia: ranas y
sapos (Anura), salamandras (Caudata) y caecilias o culebras ciegas (Apoda) y para la clase Reptilia: tortugas (orden Testudinata, subordenes Cryptodeira y Pleurodeira),
caimanes y cocodrilos (orden Crocodylia), lagartos (orden
Squamata, suborden Sauria), serpientes (orden Squamata,
suborden Ophidia) y tatacoas (orden Squamata, suborden
Amphisbaenia). En Colombia, se conoce esencialmente la
herpetofauna de la región de piedemonte y algunos registros puntuales en el Escudo Guayanés y la región Andina.
Es desconocida, en gran parte, en las regiones de transición
Amazonas-Orinoco, el piedemonte de los departamentos
de Arauca y Casanare, las planicies de los departamentos
del Vichada y región oriental de Arauca. En Venezuela, los
esfuerzos de muestreo se consideran relativamente altos en
las laderas de la Cordillera de La Costa, medios para los
llanos colombo-venezolanos, bajos en la extensa región
Guayana y piedemonte de la Cordillera Andina. Venezuela
aporta una síntesis actualizada del estado de conocimiento
de los anibios nacionales que muestra el bajo conocimiento que se tiene de la bioecología, abundancia, acervo genético y estado de conservación de la mayoría de especies.
En la cuenca del Orinoco se han registrado 266 especies
de anibios y 290 de reptiles. En términos biogeográicos la
región Guayana presenta la mayor riqueza de especies de
anibios gracias a la presencia de los tepuyes. En términos
Aves
Deinición de regiones y subregiones biogeográicas
Se deinieron 15 subregiones considerando las formaciones vegetales predominantes, los accidentes geográicos,
aspectos climáticos e información sobre la distribución de
las especies: 1) Andes - piedemonte sur, 2) Andes - piedemonte centro, 3) Andes - piedemonte Mérida, 4) Andes piedemonte de la Cordillera de la Costa, 5) llanos aluviales
planos recientes occidentales, 6) llanos aluviales planos recientes centro – oriente, 7) llanos inundables, 8) altillanura,
9) transicional bosque húmedo Orinoco-Amazonas, 10)
Alto Orinoco-Río Caura, 11) río Caura-Imataca, 12) tepuyes, 13) delta del Orinoco, inluencia marina, 14) cauce del
río Orinoco y 15) Serranía de la Macarena.
Estado del conocimiento
La mayor parte del trabajo ornitológico en la cuenca se
ha concentrado en Venezuela, en las subregiones del Alto
río Orinoco-Caura y río Caura-Imataca, mientras que las
áreas de transición entre los ecosistemas del Amazonas y el
Orinoco han sido los menos estudiados y por tanto es ahí
donde los vacios de información son mayores.
30
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
dianos y grandes, han sido estudiados principalmente en
las subregiones de los Llanos y Delta y menos en las zonas
transicional Orinoco-Amazonas, piedemonte y escasamente en la subregión de la Guayana. Los mamíferos pequeños
solo se conocen a través de inventarios aislados en regiones
especíicas de la región.
No existe un listado uniicado de la riqueza de especies de
la cuenca. La información de diversos autores muestra que
la mayor riqueza ocurre en el piedemonte sur, el área de
transición entre el Orinoco y el Amazonas , el Escudo Guayanés - tepuyes y el cauce del río Orinoco. La mayor cantidad de especies endémicas habita en la subregión de los
tepuyes seguida de las regiones de piedemonte, en esta última se concentra además, la mayoría de las 56 especies de
aves amenazadas que habitan en la cuenca. La mayor parte
de la cuenca es importante por el uso que le da a la avifauna,
especies cinegéticas y de interés comercial y ornamental
principalmente. Los procesos ecológicos importantes para
las aves ocurren de modo resaltante en la cordillera de Mérida, el piedemonte de la Cordillera de la Costa, la zona del
río Orinoco, los llanos inundables y el delta del Orinoco.
El listado más reciente de especies de la cuenca en ambos
países no toma en cuenta la diversidad de especies en las
subregiones Andina y Serranía de la Macarena; y se considera a las regiones de transición Orinoco-Amazonas y
tepuyes dentro de la subregión Guayana. En ella se estima
la presencia de 318 especies de mamíferos, distribuidas en
12 órdenes. La mayor riqueza de mastofauna habita en la
zona de la Guayana (239 sp.), seguida de las regiones de
piedemonte (208 sp.), llanos (183 sp.) y delta (127 sp.). La
subregión de los tepuyes, la Macarena y la zona transicional
Orinoco-Amazonas registran una baja riqueza, asociado al
bajo nivel de esfuerzo de muestreo en estas zonas. La mayor proporción de endemismos se encuentra en la subregión Guayana (13 especies), en las restantes tres regiones
solo dos otres especies son exclusivas. De las 318 especies
de mamíferos reportadas en la cuenca del Orinoco, 314 se
encuentran en alguna categoría de amenaza según la IUCN
(2010), el mayor número de ellas en la subregión Guayana. Se conocen seis tipos de uso que las comunidades dan
a los mamíferos de la cuenca del Orinoco: caza deportiva,
de subsistencia (73 sp.), uso cultural (36 sp.), mascotas (35
sp.), comercio (incluyendo tráico ilegal) y zoocría, principalmente en las subregiones de Guayana y los Llanos. Las
cuatro especies más explotadas son Leopardus pardalis,
Leopardus wiedii, Panthera onca y Tapirus terrestris, con
cinco de los seis tipos de usos considerados.
Áreas prioritarias nominadas
Para la conservación de la avifauna de la cuenca se nominaron 21 áreas de interés: Macarena - Tinigua- Picachos, 2)
Guatiquía - Buena Vista- Guayabetal, 3) Orocué- CusianaCravo Sur, 4) sabanas inundables río Ariporo, 5) conluencia río Meta - Casanare, 6) Tamá, 7) Sierra Nevada de Mérida, 8) Guaramacal, 9) Guatopo, 10) sabanas inundables del
bajo Apure, 11) Orinoco Medio-Caura-Caicara, 12) Bajo
Orinoco -Catillos de Guayana Imataca, 13) Cinaruco, 14)
conluencia ríos Meta-Orinoco-Bita, 15) Tuparro – Sipapo,
16) Estrella Fluvial de Inírida, 17) Ventuari, 18) Duida, 19)
Canaima-Gran Sabana,20) delta del Orinoco – Capure y
21) Guaquinima – Paragua.
Mamíferos
Este grupo fue clasiicado en tres categorías: 1) mamíferos
acuáticos: incluye especies pertenecientes al orden Cetacea,
Mustelidae (nutrias únicamente) y Sirenidae; 2) mamíferos
pequeños: incluye especies pertenecientes a los órdenes
Chiroptera y Rodentia, a excepción del chigüiro (Hydrochoerus hydrochaeris) y 3) mamíferos medianos y grandes:
incluye todas las demás especies de mamíferos excepto las
pertenecientes a los órdenes anteriormente mencionados
en las otras dos categorías.
Áreas prioritarias nominadas
Se nominaron 33 áreas importantes para la conservación de
estas especies: 1) bosques montañosos cordillera de la costa; 2) Vallecito-Macapo; 3) El Piñal; 4) páramos norte; 5)
paramos centrales; 6) Galeras del Pao; 7) El Baúl; 8) Sierra
de la Macarena; 9) humedales del Lipa; 10) Paz de Ariporo;
11) Cusiana – Cravo Sur; 12) Cinaruco; 13) conluencia Bita-Meta-Orinoco; 14) ribera Arauca; 15) ribera Casanare;
16) ribera Meta; 17) transición Orinoco-Amazonia; 18) tepuyes de la Guayana; 19) Canaima; 20) Duida-Marahuaca;
21) Sierra Maigualida; 22) Sierra de Parima; 23) Jaua-Sarisariñama; 24) Alto Paragua 1; 25) Alto Paragua 2; 26) Alto
Paragua 3; 27) Canaima 1; 28) Canaima 2; 29) Caura; 30)
Estrella Fluvial de Inírida; 31) Imataca (bosques húmedos
Guayana); 32) Transición Guayana – Llanos y 33) Delta.
Deinición de regiones y subregiones biogeográicas
De acuerdo a las subcuencas hidrográicas y el tipo de paisaje y de cobertura vegetal, se deinieron ocho regiones: 1)
Andina , 2) piedemonte, 3) Serranía de la Macarena, 4) Llanos , 5) zona transicional Orinoco-Amazonas, 6) Guayana,
7) tepuyes y 8) Delta.
Estado del conocimiento
Ninguna región cuenta con un alto esfuerzo de muestreo
de mamíferos. Los mamíferos acuáticos así como los me-
31
RESUMEN EJECUTIVO
C. Lasso.
ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN DE TODOS
LOS GRUPOS CONSIDERADOS
cuenca del río Ariari hasta cruce con subcuenca del
río Guejar. D) Este-sur: se retoma el límite de la sierra
de La Macarena. Parte del área nominada se encuentra
dentro del Parque Nacional Natural Sierra de la Macarena que se localiza en Colombia. Como principales
ríos que atraviesan esta área se pueden mencionar el
río Guejar y el río Guayabero con sus aluentes en la
parte alta de la cuenca.
A continuación de describen las 19 áreas priorizadas según
el ejercicio de consenso (Figura 1).
1. Alto río Meta
3. Estrella Fluvial de Inírida
Localizada en el piedemonte andino de la Cordillera
Oriental (vertiente oriental). Se encuentra principalmente en el departamento del Meta y en menor proporción en los departamentos de Cundinamarca y
Boyacá (Colombia), abarcando especialmente los municipios de Castilla La Nueva, San Carlos de Guaroa,
Acacias, Villavicencio, Restrepo, Cumaral, Medina,
Paratebueno, Cabuyaro, Barranca de Upía, Ubala, Santa María, San Luis de Gaceno y Puerto López. Las coordenadas geográicas corresponden a 03°41’ − 4°57’
N y 72°45’ − 73°53’ W. aproximadamente, entre los
160 m y 1400 m de altitud. La siguiente es la delimitación del área. A) Norte y norte-este: se delimitó por
el río Cienegal hasta su conluencia con el río Upía.
B) Este: desde el río Upía hasta su conluencia con el
río Meta que después se convierte en el río Metica. C)
Sur: desde el río Metica hasta su conluencia con el río
Humadea. D) Oeste - noroeste: aguas arriba por el río
Humadea hasta el corte con el límite del piedemonte
hasta su cruce con el río Cienegal. Como principales
ríos que se encuentran en el área se pueden mencionar el río Humadea, Guamal, Guayuriba, Guatiquia,
Humea, Meta y el río Upía. En esta área también se
pueden encontrar las sabanas del Varital y de Potosi, la
Serranía de Las Palomas y el alto Pan de Azúcar, entre
otros.
Comprende la región denominada Estrella Fluvial del
río Inírida, que incluye el río Atabapo, Inírida y boca
del Guaviare, los cuales forman a su vez el río Orinoco,
sobre la frontera de Colombia y Venezuela. Coordenadas: 02° 40’ y 04° 36’ N y 66°35’ y 68°55’ W. Abarca parte de los departamentos del Guainía y Vichada
en Colombia y el Estado Amazonas en Venezuela. Se
extiende desde los nacimientos del caño Guasacaví
(Colombia), hasta el río Matavén (límite norte), incluyendo sus tributarios directos, sobresaliendo la conluencia de los ríos Inírida, Atabapo, Guaviare y Orinoco. En el territorio colombiano, incluye la planicie
aluvial del río Guaviare desde el Brazo Amanavén, la
cuenca baja del río Inírida e incluye parcialmente la
zona conocida como Selva de Matavén. La mayor altura reportada para la zona es de 200 m y la menor de
90 m, sobre el cauce del río Orinoco. Cuenta con una
supericie de 2.850.000 Ha. En la zona se encuentran
resguardos indígenas de diferentes etnias, entre ellas,
Piapoco, Sicuani y Puinaves. Se encuentra dentro de
la ecorregión denominada Bosques Húmedos del Río
Negro y Blanco.
4. Corredor Bita-Meta-Orinoco
Comprende las zonas más bajas de las cuencas del río
Meta y Bita, los cuales desembocan sobre el río Orinoco sobre la ciudad de Puerto Carreño, departamento del Vichada (Colombia). Tiene una extensión de
284.000 Ha. Se ubica entre los 05° 51’ y 6° 26’ N y entre
los 67° 26’ y 68° 13’ W, en alturas que varían entre los
90 y 50 m. Al sur limita con el caño Negro (Colombia)
y al norte, sobre territorio venezolano, con la divisoria
de aguas de los cauces menores que drenan hacia el río
Meta. Esta zona se encuentra ubicada en la ecoregión
Llanos, con aloramientos menores propios del Escudo Guyanés.
2. Alto río Guaviare
Esta área se localiza en el piedemonte andino de la cordillera oriental (vertiente oriental) en el departamento
del Meta (Colombia) e involucra los municipios de La
Macarena, Vista Hermosa, Mesetas, San Juan de Arama, Puerto Lleras, Puerto Rico, Fuente de Oro, Granada, El Castillo y El Dorado, entre otros. Las coordenadas geográicas corresponden a 02° 11’ – 03° 46’ N y
73° 11’ – 74° 14’ W, aproximadamente y situada entre
los 200 m y 1300 m de altitud. La delimitación corresponde a la siguiente. A) Oeste: con la parte oriental de
la sierra de La Macarena y después de la cota de 500 m
hasta el límite de la subcuenca del río Ariari. B) Norte:
límite subcuenca del río Ariari. C) Este: límite sub-
5. Corredor Meta - Casanare
Se localiza en las planicies aluviales de los ríos Meta y
Casanare en los departamentos de Vichada, Casanare,
32
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
6. Cusiana (Maní/Tauramena)
Arauca y Meta (Colombia) y una pequeña área en el
Estado Apure (Venezuela). Involucra los municipios
de Orocué, San Luis de Palenque, Trinidad, Paz de
Ariporo, Hato Corozal, Cravo Norte, La Primavera,
Santa Rosalía y Puerto Gaitán en Colombia y Pedro
Camejo en Venezuela. Las coordenadas geográicas
corresponden a 04° 43’ – 06° 19’ N y 69° 16’ – 71° 24’
W aproximadamente, entre los 70 m y 130 m de altitud. La delimitación corresponde a un corredor de 5
km alrededor del cauce de los ríos Casanare y Meta.
Por el noroeste limita desde la conluencia del río Cravo Norte con el río Casanare y de este a su vez con el
río Meta, por el noreste desde la conluencia del caño
El Gallo con el río Meta, hasta cerca de 16 km antes de
la conluencia de este con el río Cravo Sur en el municipio de Orocue. A esta área se encuentran cercanas las
sabanas de La Esmeralda, Camuara y El Campín.
Se ubica en el piedemonte andino de la Cordillera
Oriental (vertiente oriental) en el departamento de
Casanare (Colombia), principalmente en el municipio
de Mani y en menor área en los municipios de Aguazul y Tauramena. Las coordenadas geográicas corresponden a 04° 30’ – 05° 05’ N y 71° 50’ – 72° 43’ W
aproximadamente, entre los 130 m y 650 m de altitud.
La delimitación corresponde a los tributarios principales del río Cusiana, el cual atraviesa el área hasta su
conluencia con el río Meta. En la parte nororiental se
encuentra la loma Tunda.
7. Humedales de Casanare (Paz de Ariporo Hato Corozal)
Se ubica en las sabanas inundables del departamento
de Casanare (Colombia), en el municipio de Paz de
33
RESUMEN EJECUTIVO
C. Lasso.
Ariporo. Las coordenadas geográicas corresponden a
05° 37’ – 06° 07’ N y 70° 07’ – 70° 54’ W aproximadamente, entre los 100 m y 130 m de altitud. La delimitación por el norte corresponde al río Ariporo hasta su
conluencia con el caño Palones Grandes. En el este va
en línea recta hasta el límite del área nominada “Corredor Meta-Casanare”. Hacia el sur toma el curso del
caño Picapico y de otros drenajes menores que luego
conectan por el oeste en línea recta con el río Ariporo,
nuevamente. Otro drenaje de importancia que atraviesa el área es el río Agua Clara. En esta área se encuentran las sabanas de Agua Clara y La Perra.
W, ubicada al oeste del Estado Barinas norte de Apure
y sur de Guárico (Venezuela). Se encuentra ubicada a
lo largo de las áreas de desborde del río Apure y sus
límites son: A) Norte: Caparrito, caño Los Caballos,
Santa Lucia, caño El Gato, caño Paraparito, caño San
Pablo, caño El Cojín, río Guanaparo, caño Guanaparo
Viejo, La Raya, caño Falcón, caño El Lajero, caño El
Garcero, Las Culebritas, caño Mocho, río Apurito y
caño Cara. B) Sur: caño Guajiro, caño Setenta, represa
La Morita, caño Rabo de Iguana, caño Boca de Lamedero, caño Capuchinos, caño La Zancuda, río Apure
Seco, La Casualidad, río Apure Viejo, El Negro, caño
Turumba, río Payara, caño El Machete y caño Palmarito. Finalmente, desde El Palaciego al oeste hasta
la conluencia del Apure − Orinoco al este. Presenta
unidades de vegetación como sabanas abiertas inundables, bosques ribereños semi-caducifolios y sabanas
arboladas con clima predominantemente basal seco.
8. Humedales de Arauca
Se ubica en las sabanas inundables del departamento de Arauca (Colombia) y Estado Apure (Venezuela), incluye los municipios de Cravo Norte, Arauca y
Arauquita (este último en menor proporción), en Colombia y Rómulo Gallegos en Venezuela. Las coordenadas geográicas corresponden a 06° 18’ – 07° 06’ N y
69° 34’ – 71° 18’ W aproximadamente, entre los 80 m y
150 m de altitud. La delimitación en la parte norte corresponde a los cursos de varios ríos y drenajes secundarios, incluyendo un tramo del río Arauca y Capanaparo, y los caños Las Dantas, Agua Verde, Manantiales
y Cubarro. Por el este desde el río Capanaparo traza
una línea recta para tomar el río Riecito en el municipio Rómulo Gallegos (Venezuela). Hacia el sur toma
el río Cinaruquito y el caño Los Araguatos y de ahí en
línea recta hasta la conluencia del río Cravo Norte con
el río Casanare. Por el oeste toma el río Cravo Norte
hasta el río Lipa, luego el río Ele o Cusay, el caño El
Dorado y conecta con el río Lipa nuevamente. En esta
área se encuentran las sabanas de La Pastora, San José
y Saladillales.
11. Macizo de El Baúl
Corresponde al macizo de El Baúl entre los 09° 17’ y
08° 30’ N y desde 67° 45’ y 68° 48’ W, ubicada al sur
del Estado Cojedes, oeste de Guárico y este de Portuguesa (Venezuela). Límites. A) Norte: limita con La
Yagua, Guyabal, Fundo El Carmen, La Aduana y El
Placer. B) Sur: con Mata Oscura, El Chaparro, Boquerones, Costa de Gadín, Negro Bonito y Guadarrana.
C) Este: limita con el caño El Venado y a lo largo del
río Chirgua. D) Oeste: con Chiriguare, Totumito, Garabito, Caurarito, Uverito y Jobal. Presenta unidades
de vegetación de sabanas arbustivas, bosque de galería
semi-deciduos y bosques tropóilos bajos caducifolios
con clima predominante basal seco.
12. Piedemonte de Barinas
9. Río Negro - Estado Táchira
Cordillera de Mérida (425 km) entre 07° 30’ y 10° 10’N
y desde 69° 20’ a 70° 50’ W. Incluye los estados Táchira, Mérida y Trujillo y parte de Barinas, Lara y Portuguesa (Venezuela). El Ramal de Calderas se localiza en
la vertiente llanera de esta cordillera. Limita al norte
por el valle del río Burate que lo separa de la Sierra de
Trujillo, hacia el NE por la sección transversal del valle
del río Boconó que lo diferencia del Ramal del Rosario
y al SO por el abra del río Santo Domingo en la Mitisús
(Represa José Antonio Páez) que lo separa de la Sierra
Nevada. Se eleva desde el curso principal del río Santo
Domingo en el Cerro La Camacha (3000 m), Páramo
del Volcán (3840 m), Pico El Güirigay (3869 m), Páramo Bartolo (3400 m), Pico Calderas (3580 m), páramos Ortiz y Castillejo (3500 m) y Pico Peñas Blancas
Cuenca media del río Negro entre los 07° 51’ y 07°
21’N y desde 71| 47’ y 72° 24’ O; se encuentra al oeste
del Estado Táchira (Venezuela) entre los 2500 m hasta
los 200 m y es parte de la cuenca del río Apure. Colinda al norte con los Parques Nacionales Chorro del
Indio y Páramos Batallón y La Negra, y al sur tiene su
intersección con el Parque Nacional El Tamá. Presenta
tipos de vegetación predominantes: bosques ombróilos submontanos/montanos siempreverdes y bosques
ombroilos basimontanos semi-deciduos estacionales
con un clima predominantemente húmedo.
10. Sabanas inundables del río Apure
Llanos bajos (menos de 100 m) inundables del río
Apure entre 08° 12’ y 07° 30’ N y desde 66° 23’ y 69° 42’
34
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
(3363 m). Las aguas del Ramal de Calderas drenan
hacia la red del río Santo Domingo, destacan los ríos
Calderas, La Yuca y el Masparro. Presenta la típica secuencia de unidades ecológicas descritas para las vertientes húmedas que inicia en las selvas submontanas
(500-1000 m), selvas semicaducifolias (1000-1800 m)
y nubladas (1800-3000) hasta los páramos (> 3000 m).
inundables, bosques ombróilos medios sub-siempre
verdes con clima predominante basal seco.
16. Sierra de Maigualida (río Cuchivero)
Cuenca alta y media del río Cuchivero (Venezuela),
entre 06° 51’ y 05 51’ N y desde 64° 58’ y 65° 38’ W.
Se encuentra en el Estado Bolívar en límites con el
Estado Amazonas (Venezuela). El área prioritaria es
parte de la sierra de Maigualida a partir de los 150 m
aproximadamente. Límites. A) Norte: con el raudal del
Zariapo y cerro la Culebra. B) Sur: con el cerro Campanero. C) Este: con los morichales El Pinal y El Pino.
D) Oeste: con la Sierra de Guamapi, Cuchivero, cerro
el Negro y cerro San Vicente. El área es parte de las
cuencas de Cuchivero-Guaniamo y Caura donde nacen los ríos Ziriapo, Mato, Nichare y Cuchivarito. Presenta unidades de vegetación de bosques ombróilos
basimontanos, submontanos y montanos con un clima
predominantemente húmedo.
13. Conluencia río Orinoco-río Caura
Planicies aluviales de la conluencia del río Caura y
Orinoco (Venezuela), entre 08° 4’ y 07° 20’ N y desde 64° 48’ y 65° 58’ W. Se distribuye en límites de los
estados Guárico, Anzoátegui y Bolívar y hace parte
de las cuencas de los ríos Zuata, Claro, Mapire - Ature, Carapa, Algarrobito, Manapire, Tucuragua, Caura
y Cuchivero - Guaniamo. Corresponde a las planicies
inundables desde la conluencia de los ríos. Al sur limita con los centros poblados de Guayabo, Ariapo,
El Rosario y Cuchivero. Presenta una vegetación dominante de bosques ribereños estacionalmente inundables con alguna presencia de sabanas arbustivas; el
clima predominante es basal seco.
17. Río Ventuari
Cuenca alta y media del los rios Ventuari y Manapiare
(Venezuela), entre 05° 48’ y 04° 1’ N y desde 65° 43’ y
66° 46’ W; se encuentra en el norte del estado Amazonas donde limita con el estado Bolívar. El área es parte
de la cuenca de Ventuari. Límites. A) Norte: limita con
las serranías de Guayapu, El Santo y Yutaje. B) Este:
llega hasta el centro poblado de Majagua y conluencia de los ríos Asita y Ventuari. C) Oeste: limita con
caño Lombriz, el cerro Marairona y Serrania Mapichi.
D) Sur: llega hasta Yacuari en límites nororientales del
Parque Nacional Yapacana. Presenta variedades de tipos de vegetación entre los que predominan bosques
ombróilos submontanos siempreverdes y boques ombróilos siempreverdes, parcialmente inundables con
clima húmedo.
14. Isla de Mamo
Isla de Mamo (Venezuela), situado entre los 08° 27’ y
08° 6’ N y desde 62° 51 y 63° 34’ W; incluye los estados Anzoátegui y Bolívar (Venezuela) y hace parte de
las cuencas de los ríos Morichal Largo – Uracoa – Tigre y Maparo – Curiapo – Orocopiche − Marhuanta
y el propio cauce principal del río Orinoco, donde se
dispone la isla. Corresponde a los bosques de galería
semi-caducifolios con morichales asociados al río
Orinoco, desde el centro poblado de La Soledad hasta
la población de Matanzas al oeste. Con un clima predominantemente basal seco.
15. Corredor bajo Orinoco-Delta sur
18. Cuenca rios Tomo y Vichada
Delta del río Orinoco (Venezuela), entre 09° 20’ y 08°
23’ N y desde 60° 38’ y 62° 22’ W; incluye los estados
Delta Amacuro y Monagas y es parte de la reserva de
la biosfera Delta del Orinoco. En el oeste se desprende
de los brazos del delta del Río Orinoco a partir de la
población Los Castillos; el límite sur dirección oriente
corresponde al límite de la cuenca delta del Orinoco
hasta Punta Yautica; por el brazo norte pasando por
los centros poblados de Barrancas, El Mosquero, Guiniquina, El Borbollón hasta Punta Tobejuga. Al oriente
limita con la costa continental de Venezuela. Presenta unidades de vegetación como manglares, bosques
ombróilos y palmares, sabanas arbustivas y/o palmas
Esta zona abarca la parte más baja del interluvio de los
ríos Tomo y Vichada, excluyendo el Parque Nacional
Natural El Tuparro, partiendo desde el oeste a la altura
del caño Yacuera en el departamento del Vichada (Colombia). Cuenta con una supericie de 610.000 Ha y se
ubica entre los 04° 40’ y 05° 16’ N y 67° 46’ y 69° 34’
W; altitudinalmente se encuentra entre los 80 y 140 m.
La zona más baja corresponde a la desembocadura del
Caño Tiro sobre el río Orinoco justo al frente de la Isla
Ratón (Venezuela). La vegetación dominante se encuentra conformada por sabanas y bosques de galería
sobre mantos de sedimentos cuarzosos del Terciario
provenientes del Escudo Guayanés.
35
RESUMEN EJECUTIVO
C. Lasso.
19. Corredor medio Orinoco
subregión Delta alberga la mayor riqueza de especies (42
sp.- 48,3 %) y las subcuencas del alto Orinoco en el estado Amazonas la mayor cantidad de especies endémicas de
crustáceos; 17 especies endémicas de cangrejos (19,5 %) y 9
especies endémicas de camarones (11,5 %) habitan en toda
la cuenca en el sector venezolano. Aunque pocas especies
tienen valor comercial se mencionan algunos casos de especies localmente importantes por su consumo y comercio.
Esta zona comprende un corredor de 15 km de ancho sobre el río Orinoco, partiendo desde la desembocadura del río Matavén (Colombia) hasta el sector
conocido como río Parguaza, en el Estado Bolívar
(Venezuela). La mayor altura registrada en este sector
es de 400 m al norte del Cerro Campana. Tiene una
extensión de 800.000 Ha y se encuentra entre los 04°
28’ 6° 35’ N y 68° 0’ 67° 1’ W. Esta zona se encuentra
ubicada dentro de la eco-región “Llanos” en contacto
con las ecoregiones “bosques húmedos del río Negro y
Blanco” y los “bosques húmedos de las tierras altas de
las Guayanas”.
Mamíferos acuáticos de la Orinoquia venezolana
Actualización de la distribución geográica, hábitat, abundancia y amenazas para la conservación de los mamíferos acuáticos, manatí (Trichechus manatus), delines (Inia
geofrensis, Sotalia sp.), nutrias (Pteronura brasiliensis, Lontra longicaudis), perrito de agua (Chironectes minimus) y
chigüire (Hydrochaeris hydrochaeris) en la cuenca del Orinoco en Venezuela. Resultado de la revisión de colecciones
(museos nacionales), referencias bibliográicas, consultas a
expertos y observaciones personales. La mayoría de estas
especies carece de estudios que permitan establecer su estatus poblacional y la información existente sobre aspectos
ecológicos se encuentra fragmentada y dispersa.
ESTUDIOS DE CASO
Se presentan siete estudios inéditos sobre biodiversidad,
ecología y efectos antrópicos sobre los ecosistemas de la
cuenca del Orinoco. Tres de ellos relativos a Colombia, tres
a Venezuela y uno en ambos países.
Evaluación de la contaminación por mercurio en
peces de interés comercial y de la concentración
de organoclorados y organofosforados en el agua
y sedimentos de la Orinoquia
Flora de la cuenca del Orinoco útil para el sostenimiento de la diversidad íctica regional
Investigación sobre las semillas, hojas, frutos y lores de 230
especies de plantas del bosque inundable y de tierra irme,
consumidas por 82 especies de peces de las familias Anostomidae, Characidae, Doradidae, Auchenipteridae y Pimelodidae. El estudio de esta relación alimentaria aporta datos
relevantes para el conocimiento de los ciclos productivos
de los peces, la ictiocoria, el valor nutricional y la diversidad de lora consumida y el valor ecológico de los bosques
inundables de gran utilidad para el manejo sostenible, la
acuicultura y la conservación de los ecosistemas de la cuenca del Orinoco.
Resultados de la evaluación de la concentración de mercurio organoclorados y organofosforados en el agua y
sedimentos de la cuenca del Orinoco, causado por la fumigación masiva de cultivos ilícitos y otras razones en la
zona. En Colombia, se tomaron muestras en los ríos Meta,
Guaviare, Inirida, Orinoco y la conluencia Meta-Orinoco.
En Venezuela, las evaluaciones se hicieron en la conluencia del Ventuari-Orinoco, en los ríos Orinoco y Apure. Los
resultados muestran elevadas concentraciones de mercurio. En Colombia, 16 de 17 especies analizadas presentaron
valores del índice Cuota de Riesgo (HQ)>1 y en Venezuela
13 de 18 especies. Estos valores sugieren una seria situación
de riesgo para la salud de las poblaciones locales, debido al
consumo de pescado.
El fuego como parte de la dinámica natural de las
sabanas en los Llanos Orientales de Colombia
La actividad del fuego es esencial en la dinámica ecológica
de las formaciones vegetales de praderas, pastizales naturales, sabanas y herbazales. Esta dinámica ha contribuido a
que en promedio 30.000 km2 de sabanas se hallan quemado
entre el 2000 y 2009, equivalente al 19% de este territorio.
Estos eventos se maniiestan por causas naturales y no naturales. De ser removido este proceso, las sabanas pueden
ser fuertemente transformadas y la pérdida de hábitat y especies puede ocurrir. Actualmente los procesos de transformación que están afectando estas sabanas aparentemente
han modiicado los patrones de fuego.
Crustáceos decápodos de la Orinoquia venezolana: biodiversidad, consideraciones biogeográicas
y conservación
Evaluación preliminar sobre el estado del conocimiento
y los vacíos de información de este grupo de fauna acuática en la cuenca del Orinoco. Actualmente se registran
87 especies de crustáceos decápodos correspondientes a
34 especies de camarones y 53 especies de cangrejos. La
36
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Machado
Efectos en la ecología de un humedal de los Llanos de venezuela (cuenca del Orinoco) causados
por la construcción de diques
cia la sabana, ocasiona alteraciones físicas, químicas y biológicas a tres niveles: 1) pérdida de conectividad sistema
léntico-lótico, 2) limitación en el lujo de nutrientes y 3)
disminución de la riqueza de especies.
Como en todos los humedales, dos factores afectan de forma determinante el ecosistema: la calidad y la cantidad de
agua. En el caso de los humedales llaneros, la cantidad de
agua disponible ha sido reducida y regulada durante los
últimos 70 años mediante la construcción de módulos en
las tierras bajas (sabanas inundables) y represas en las secciones medias y altas de las cuencas. La Estación Biológica
El Frío, ha sido por cinco décadas, uno de los mayores escenarios de estudio y conservación de la biodiversidad en
los Llanos de Venezuela. En este caso, documentamos las
observaciones y conclusiones luego de dos décadas (19882008) de ocurrencia de fenómenos anuales típicos del humedal. Ciertos eventos inusuales durante algunos de esos
años desencadenaron cambios clave para interpretar cómo
el impedimento al desborde de los grandes ríos y caños ha-
Evaluación y oferta regional de humedales de la
Orinoquia: contribución a un sistema de clasiicación de ambientes acuáticos
Aporte de criterios técnicos para ajustar el sistema de clasiicación de ambientes acuáticos de la orinoquia colombiana. Hace un análisis de los diferentes acercamientos de
clasiicación y propone jerarquías de clasiicación preliminares. Se describen complementariamente los principales
insumos cartográicos existentes para la delimitación de
estos ambientes orinoquenses, incluyendo una propuesta
metodológica para el ensamblaje de los criterios propuestos
en el sistema de clasiicación.
37
Curatella americana. Casanare. Foto: A. Navas.
1.
INTRODUCCIÓN
A. Barbarino.
Carlos A. Lasso Alcalá, José S. Usma, Anabel Rial B., Judith Rosales y J. Celsa Señaris
ANTEDECENTES
Al introducir esta obra deinimos la Orinoquia en un contexto ecohidrográico como: “cuenca hidrográica binacional colombo-venezolana, donde se localiza la red luvial
que recoge la mayor proporción de las aguas corrientes del
norte de Suramérica, las cuales luyen hacia el este y drenan
tierras de los ecosistemas de los macizos guayaneses, las
cordilleras andinas, las montañas de la costa y las planicies
de los llanos, a través de una serie de capturas de miles de
tributarios, desde su nacimiento en la Sierra Parima hasta
su desembocadura deltaica en el Océano Atlántico, reprocesados por la inluencia de los ecosistemas ribereños inundables en las planicies de inundación actuales a lo largo de
paisajes luviales”.
Desde hace varias décadas diversas organizaciones de ambos países han contribuido directa o indirectamente a la
estrategia de conservación y uso sostenible de la biodiversidad en la cuenca del río Orinoco, desde diferentes aproximaciones y enfoques.
En 1982 Franz Weibezahn coordinó en Venezuela el proyecto multidisciplinario: “Ecosistema Orinoco (PECOR)”,
un estudio de referencia del río Orinoco como Sistema
Ecológico -lo que hoy llamaríamos socioecosistema-, que
resultó de la alianza entre la Universidad Simón Bolívar, la
Universidad de Colorado (USA), Petróleos de Venezuela
y el Ministerio del Ambiente. A este proyecto le siguieron
varias iniciativas locales como la Subcomisión de Limnología del Orinoco (FUNDACITE-Guayana-Programa de
Limnología del Orinoco) de la que surgió el Subprograma
Orinoco del Programa de Biodiversidad de la Región Guayana - Bioguayana (FUNDACITE Guayana - Universidad
Nacional Experimental de Guayana UNEG- Fundación La
Salle de Ciencias Naturales FLSCN), que ha apoyado las actividades del Instituto de Limnología del Orinoco en Caicara (Universidad de Oriente). Los proyectos de Limnología
del Caura y la Laguna de Mamo, realizados por la Estación
Hidrobiológica de la FLSCN y en cuyo marco desde el año
2002 se desarrolló el Proyecto Corredor Orinoco (coordinado por la UNEG).
En el marco del Primer Taller Binacional (Colombia-Venezuela) sobre la Identiicación de las Áreas Prioritarias para
la Conservación y Uso Sostenible de la Biodiversidad en
la Cuenca del Orinoco (Bogotá, 21 al 25 de septiembre del
2009), se deinieron sus límites al occidente por la división
de aguas de la Cordillera Oriental en Colombia, al oriente
por su desembocadura en el Océano Atlántico, al norte por
la divisoria de aguas de la vertiente sur de la Cordillera de la
Costa en Venezuela y, al sur por la cuenca del río Guaviare,
incluyendo los ríos Inírida y Atabapo, así como el Estado
Amazonas de Venezuela, excluyendo la cuenca del río Negro.
39
INTRODUCCIÓN
A. Navas.
al. 2009, Lasso et al. 2009, Renjifo et al. 2009, Usma et al.
2009). En Venezuela, la alianza entre más de 50 instituciones y sus investigadores, ha contribuido al conocimiento
de la riqueza biológica de la Orinoquia. Los trabajos más
representativos en los últimos 20 años incluyen los desarrollados en la cuenca del río Cucurital en la Guayana venezolana por la FLSCN -quizás el único proyecto de campo
de larga duración y a lo largo de un gradiente altitudinal
y estacional de una cuenca hidrográica -, (Proyecto N°
98003384 de la Agenda Biodiversidad FONACIT) (Señaris
2008). Mención aparte requieren las Evaluaciones Biológicas Rápidas realizadas por Conservación Internacional
Venezuela (CI Venezuela) y sus socios, especialmente
FLSCN y la Universidad Central de Venezuela (UCV), en
las que se estudiaron a profundidad varias cuencas y regiones de la Orinoquia: cuenca del río Caura (Chernof et
al. 2003 ); delta del Orinoco y golfo de Paria- (Lasso et al.
2004); conluencia de los ríos Ventuari y Orinoco (Lasso
et al. 2006); alto Paragua-Caroní (Señaris et al. 2008) y el
Ramal de Calderas, en el piedemonte andino-orinoquense
(Rial et al. 2010). Otras contribuciones de envergadura en
la región del Escudo Guayanés incluyen el ejercicio de “Deinición y Priorización de Áreas del Escudo Guayanés en la
Orinoquia Venezolana” llevado a cabo por BioHábitat y CI
Venezuela en 2008 y la evaluación de la biodiversidad del
mayor parque nacional del país con más de 3.000.000 de
hectáreas, el Parque Nacional Canaima (Señaris et al. 2009).
En 1992 Colombia llevó a cabo un diagnóstico y deinición
de prioridades para la conservación y manejo de la biodiversidad en la Orinoquia colombiana a través del Centro
para la Investigación en Sistemas Sostenibles de Producción Agropecuaria (CIPAV), la Fundación Horizonte Verde
y WWF Colombia. En el 2000 el Instituto de Investigación
de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAVH),
inició gestiones ante el gobierno alemán a través de la GTZ
para ejecutar el proyecto “Diversidad Biológica y Desarrollo en Ecorregiones Estratégicas de Colombia - Orinoquia”,
mientras que en Venezuela en esa fecha la Fundación para
la Defensa de la Naturaleza (Fudena) daba inicio al proyecto GEF “Conservación y Uso Sostenible de la Biodiversidad
en la Ecorregión de los Llanos”.
En el 2003, la campaña mundial de WWF “Aguas para la
Vida” priorizó cinco cuencas estratégicas del planeta y inanció el proyecto “La cuenca del río Orinoco: una aproximación al manejo integrado de la cuenca”, el cual integró la
información producida por las dos iniciativas de conservación lideradas, respectivamente, en Venezuela y Colombia
por Fudena y el IAvH.
En el marco de este proceso de integración de información
se realizaron en Colombia varios talleres de conservación
de carácter binacional, en temas de biodiversidad acuática (WWF y Fudena 2004), peces migratorios (Incoder y
WWF 2004), aves migratorias (TNC et al. 2006), caimán
del Orinoco (UESPNN 2008) y peces ornamentales (WWF
et al. 2005, MAVDT et al. 2008). Igualmente se realizaron
dos ejercicios de priorización con los sectores palma de
aceite (WWF, IAvH y Fedepalma) e Hidrocarburos (ANH,
TNC, IAvH e Ideam), para ordenar las áreas clave para la
conservación de la biodiversidad e incorporar criterios de
sostenibilidad ambiental en el desarrollo de sus actividades.
En Venezuela, Fudena y la Fundación La Salle de Ciencias
Naturales apoyaron estos proyectos que establecieron la línea base de información en los ejes del conocimiento, conservación y aprovechamiento, dentro de la Política Nacional de Biodiversidad, recogidos en la propuesta técnica del
Plan de Acción en Biodiversidad de la Cuenca del Orinoco
(Colombia 2005 – 2015) o PARBO.
También el conocimiento hidrosedimentológico y geoquímico del Orinoco ha sido incrementado gracias a la atención de la Universidad Central de Venezuela, Universidad
Simón Bolívar, Universidad de Oriente e Instituto Venezolano de Investigaciones Cientíicas. Estudios publicados
por Weibezahn et al. (1990), Colonnello (1990 a, b), Vásquez et al. (1990) y Vásquez y Wilbert (1992), entre otros,
son hoy día una referencia fundamental. La aproximación
de Instituto Geográico Agustín Codazzi (IGAC) (1999),
sobre los paisajes isiográicos de la Orinoquia en Colombia, también ha sido una herramienta muy útil para el desarrollo de posteriores estudios en este país. Desde hace
tres años Venezuela incluyó al Orinoco en el Programa
del Observatorio de Grandes Ríos del IRD Hybam a través
de un convenio entre el IRD de Francia y la Universidad
Nacional Experimental de Guayana, en el que también
participan el Instituto de Mecánica de Fluidos (IMF) de la
Universidad Central de Venezuela y el Ministerio del Poder
Popular para el Ambiente. Al mismo tiempo se inicia otro
estudio interinstitucional para analizar la transferencia hidrosedimentaria en el bajo Orinoco a cargo de Ecos Nord
- Centro de Investigaciones Ecológicas de la UNEG - IMFUCV (Venezuela) e IRD, GeoLab -Universidad Clermont
Los estudios multidisciplinarios e interinstitucionales de
biodiversidad de la última década efectivamente han actualizado y aportado al conocimiento y conservación de
la lora y la fauna de áreas poco conocidas en la cuenca.
Destacan en Colombia los realizados en el Parque Nacional
Natural El Tuparro (Villareal-Leal y Maldonado-Ocampo
2007), Selva de Mataven (Villareal-Leal et al. 2009) y la Estrella Fluvial del río Inírida (Cárdenas et al. 2009, Ferrer et
40
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
BIBLIOGRAFÍA
Ferrand y EcoLab - Universidad de Toulouse (Francia). Por
su parte, el IDEAM en Colombia y el Minamb en Venezuela, mantienen una red de estaciones hidroclimatológicas en
diferentes sitios de la cuenca que ofrecen registros desde
hace casi un siglo como es el caso de la Estación de Ciudad
Bolívar desde 1923.
•
•
Recientemente, la Facultad de Administración de la Universidad de Los Andes en respuesta a una iniciativa de la
Corporación Autónoma Regional de la Orinoquia (Corporinoquia), publican un documento muy interesante, cuyo
objetivo fue propiciar y estimular un diálogo social sobre
el futuro de la Orinoquia colombiana (Andrade-Pérez et al.
2009).
•
•
•
•
Con el objetivo de analizar en conjunto el conocimiento
que sobre esta cuenca binacional tenemos en ambos países, más de 32 instituciones participaron en el Primer Taller Binacional de Identiicación de Áreas Prioritarias para
la Conservación y Uso Sostenible de la Biodiversidad en
la Cuenca del Orinoco. Flora y vegetación, insectos, peces,
anibios y reptiles, aves y mamíferos, fueron los grupos
considerados en la evaluación del estado del conocimiento,
a partir del cual se obtuvieron por consenso las 19 áreas
prioritarias de conservación en la cuenca binacional del
Orinoco.
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•
•
En las páginas siguientes, se muestran los resultados de este
análisis, incluyendo nueve capítulos relativos a la descripción del medio biofísico, la aproximación metodológica, la
argumentación de cada grupo biológico para su respectiva
deinición de áreas prioritarias y inalmente un conjunto de
estudios de caso inéditos en temas clave. La información
que aporta este documento servirá para el entendimiento
de la biodiversidad de la cuenca, sus componentes, procesos, distribución y patrones biogeográicos actuales, y
permitirá considerar las áreas propuestas como espacios
geográicos únicos que ameritan acciones urgentes de conservación para el bienestar de ambos países.
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41
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Hymenaea sp. Casanare. Foto: A. Navas.
Morichal. Tauramena, Casanare. Foto: F. Nieto
2.
METODOLOGÍA:
PRIORIZACIÓN DE ÁREAS PARA LA
CONSERVACIÓN Y USO SOSTENIBLE DE LA
BIODIVERSIDAD EN LA CUENCA
DEL ORINOCO
C. Lasso.
Carlos A. Lasso, José S. Usma, Fernando Trujillo,
Mónica Morales-Betancourt, Carlos Sarmiento y César F. Suárez
ÁMBITO GEOGRÁFICO
Cordillera de la Costa en Venezuela y al sur, la cuenca del
río Guaviare incluyendo Inírida y Atabapo y todo el Estado
Amazonas de Venezuela, excluyendo la cuenca del río Negro (Figura 2.1).
Para efectos de este ejercicio de priorización, los límites de
la cuenca del río Orinoco fueron deinidos al occidente por
la división de aguas de la Cordillera Oriental en Colombia,
al oriente por su desembocadura en el Océano Atlántico,
por el norte la divisoria de aguas de la vertiente sur de la
Figura 2.1 Límites de la cuenca del río Orinoco considerada en el análisis de priorización.
45
METODOLOGÍA:
PRIORIZACIÓN DE ÁREAS PARA LA CONSERVACIÓN Y USO
SOSTENIBLE DE LA BIODIVERSIDAD EN LA CUENCA DEL ORINOCO
C. Lasso.
PASOS METODOLÓGICOS
(Basado en Lasso 2008)
Análisis de estado del conocimiento por
grupo taxonómico
- Riqueza
- Especies endémicas
- Especies amenazadas
Valoración de la
Importacia biológica
Nominación de áreas importantes
por grupo taxonómico
Áreas importantes para la
conservación de la biodiversidad
Valoración de las
amenazas - presiones
Análisis de actores
y oportunidades
Selección de
prioridades de conservación
Paso 1. Deinición de las subregiones biogeográicas
de la Orinoquia según cada grupo taxonómico
Productos de este paso:
a. Mapa de unidades biogeográicas/subcuencas de cada
grupo.
b. Matriz de las unidades biogeográicas/subcuencas de
cada grupo.
Para la compilación y análisis de la información, cada uno
de los grupos de trabajo de lora y fauna terrestre (insectos,
anibios-reptiles, aves y mamíferos) deinió las subregiones
biogeográicas y/o ecorregiones que consideró pertinente
para su grupo. Esta regionalización permite conocer el ámbito biológico en el cual se deinen las áreas importantes
de conservación para cada grupo taxonómico (Dinerstein
2000, Abell et al. 2002). Para el caso de los peces, esta información fué compilada a nivel de las 24 subcuencas hidrográicas deinidas por Lasso et al. (2004a) y a partir de las
regiones biogeográicas deinidas por Lasso et al. (2004b),
las cuales fueron complementadas y corregidas en la medida de la nueva información recopilada en el taller binacional (ver capítulo de peces para mayor detalle).
Paso 2. Estado del conocimiento por grupos en cada
subregión zoogeográica, itogeográica o subcuenca
Unidades de trabajo: subregiones biogeográicas ó subcuencas
Variables del estado de conocimiento:
• Esfuerzo de muestreo
• Nivel de conocimiento
• Vacios de información
46
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Valoración ó puntaje de las variables: 4 = Alto; 3 = Medio; 2
= Bajo y 1 = Muy Bajo.
especies amenazadas, especies con valor de uso y procesos ecológicos-evolutivos.
En este paso los especialistas por grupo taxonómico valoraron cada una de las subregiones biogeográicas, ecorregiones o cuencas (unidades de análisis deinidas según el
caso), con base en la experiencia y conocimiento de cada
uno de los integrantes de cada grupo de trabajo. Esta valoración cuantitativa en cuatro rangos será tomada en cuenta
en pasos posteriores para nominar áreas de importancia
por grupo taxonómico.
Paso 4. Nominación de áreas importantes para la
conservación de cada grupo
Unidades de trabajo: áreas nominadas por cada grupo
Tomando como base las unidades biogeográicas deinidas para cada grupo taxonómico (Paso 1), la valoración
del estado del conocimiento (Paso 2) y la valoración de
la importancia biológica (Paso 3), los especialistas delimitaron durante el taller binacional áreas de importancia
para la conservación utilizando cartografía base a escala
1:1.500.000. Estas áreas fueron revisadas a la luz de la ubicación geográica y los criterios de delimitación indicados
en el taller. Para ello, se empleó la información cartográica
básica y temática disponible en cada caso, incluyendo mapas e imágenes satelitales.
Productos de este paso:
a. Matriz (tabla base) con valor asignado de esfuerzo de
muestreo, nivel de conocimiento y vacíos de información por subregiones o subcuencas para cada uno de los
grupos.
b. Mapas temáticos de esfuerzo de muestreo, nivel de conocimiento y vacíos de información por subregiones o
subcuencas para cada uno de los grupos.
Razón para la nominación del área (sumatoria de las siguientes variables):
• Riqueza de especies (4 = alto; 3 = medio; 2 = bajo y 1
= muy bajo)
• Endemismo (4 = alto; 3 = medio; 2 = bajo y 1 = muy
bajo)
• Especies amenazadas (4 = alto; 3 = medio; 2 = bajo y 1
= muy bajo)
• Especies con valor de uso (4 = alto; 3 = medio; 2 = bajo
y 1 = muy bajo)
• Procesos ecológicos (4 = alto; 3 = medio; 2 = bajo y 1
= muy bajo)
Paso 3. Valoración de la importancia biológica
Unidades de trabajo: subregiones biogeográicas o subcuencas
Variables de biodiversidad:
• Número de especies: riqueza.
• Número de endemismos.
• Número de especies amenazadas (de acuerdo a Libros
Rojos Nacionales).
• Número de especies con valor de uso (pesca de consumo, ornamental, deportivo ó recreativo, turístico, sanitario, piscicultura, cacería, zoocría, medicinal, comercio, subsistencia, cultural).
• Procesos ecológicos o evolutivos relevantes (p. e. pasos
migratorios, anidamiento, descanso, áreas de reproducción y refugio, etc.).
La valoración inal ó puntaje responde a la sumatoria de
la valoración de los criterios anteriormente descritos. Los
rangos fueron los siguientes: 16 a 20 = Alto; 11 a 15 = Medio; 6 a 10 = Bajo y 1 a 5 = Muy Bajo.
Productos de este paso:
a. Matriz (tabla base) con valores absolutos de riqueza,
endemismos, especies amenazadas y con valor de uso,
para cada área nominada por cada grupo.
b. Mapas de las áreas nominadas para cada grupo de
acuerdo a la sumatoria de las variables (endemismos,
especies amenazadas, especies con valor de uso y procesos ecológicos-evolutivos).
Valoración ó puntaje de las variables: dado que estos valores absolutos variaron para los diferentes grupos, cada
mesa de trabajo deinió sus respectivos rangos de puntaje
(Alto, Medio, Bajo, Muy Bajo).
Productos de este paso:
a. Matriz (tabla base) con valores absolutos de riqueza,
endemismos, especies amenazadas y con valor de uso,
por subregiones o subcuencas para cada uno de los
grupos. Los procesos ecológicos y/o evolutivos fueron
descritos en la medida de lo posible.
b. Mapas temáticos para cada uno de los grupos y por
subregiones o subcuencas, de riqueza, endemismos,
Paso 5. Selección de áreas prioritarias para la conservación de la biodiversidad de la cuenca
Etapa 1
Cartográicamente se superpusieron las áreas nominadas
de todos los grupos taxonómicos, generando un solo mapa
de áreas importantes para la conservación de la biodiversi-
47
METODOLOGÍA:
PRIORIZACIÓN DE ÁREAS PARA LA CONSERVACIÓN Y USO
SOSTENIBLE DE LA BIODIVERSIDAD EN LA CUENCA DEL ORINOCO
C. Lasso.
dad para la cuenca. De esta manera la valoración inal de
estas áreas responde a la suma de las valoraciones de cada
grupo; así una región que posee un mayor número de coincidencias y a su vez valoraciones altas en el paso 4, obtendrá
la caliicación más alta.
PROCESAMIENTO DE
INFORMACIÓN GEOGRÁFICA Y GENERACIÓN DE MAPAS
TEMÁTICOS
El rango de valor de cada área nominada por grupo está entre 5 y 20. Al ser sumados los seis grupos (plantas, insectos,
peces, anibios-reptiles, aves y mamíferos) se obtuvieron los
siguientes rangos:
• Alta: entre 91 y 120 (6 grupos x 20: caliicación nominación Alta)
• Media: entre 61 y 90 (6 grupos x 15: caliicación nominación Media)
• Bajo: entre 31 y 60 (6 grupos x 10: caliicación nominación Baja)
• Muy bajo: hasta 30 (6 grupos x 5: caliicación nominación Muy Baja)
Desarrollo e implementación de las bases de datos
La base de datos se desarrolló en MS Access 2000 para facilitar su interoperabilidad con diferentes paquetes ESRI
(ArcView 3.2 y ArcGIS 9.3) y se alimentó con las tablas obtenidas de las mesas de expertos de los grupos temáticos
(lora y fauna). Estas tablas soportaron la generación de los
productos cartográicos. Se registraron 220 objetos distribuidos de la siguiente manera:
• 71 subregiones biogeográicas para los seis grupos taxonómicos (lora y fauna).
• 29 cuencas hidrográicas empleadas para el análisis de
importancia biológica del grupo de peces.
• 101 áreas nominadas por los diferentes grupos.
• 19 áreas seleccionadas por consenso de la intersección
de las anteriores y otras adicionadas por la plenaria del
grupo de especialistas.
Espacialmente, el mapa generado para representar las áreas
importantes para la conservación de la cuenca del río Orinoco es una grilla de 25 Km2 de resolución espacial, la cual
se generó previamente producto de la suma de las áreas
nominadas. En cada grilla se obtuvo el valor promedio en
cada una de las variables caliicadas por los especialistas
(Paso 4) y cuya suma aritmética representará el mapa de
área importantes de todos los grupos taxonómicos. Visualmente se resalta las áreas con mayores valores generando
cinco intervalos aplicando el método logarítmico.
El procesamiento de los datos se hizo usando ArcGIS 9.3 y
ArcView 3.2. Para efectos de planimetría (medición de áreas
y distancias), los datos recopilados fueron transformados a
proyección World Mercator (sistema de coordenadas planas en metros con origen 0º de latitud y 0º de longitud). Los
productos inales muestran el sistema de coordenadas en
grados, minutos y segundos. La cartografía base de referencia correspondió a los datos previamente compilados por
WWF Colombia adicionando algunas fuentes nuevas de
información, como es el caso de la hidrografía compilada
y publicada por la Comunidad Andina de Fomento (CAF
2009) y el modelo digital de terreno del SRTM modiicada
por el (CGIAR-CSI 2009) y re-muestreada a 500 m de resolución.
Productos de este paso:
a. Matriz con la lista de áreas clave seleccionadas y su puntaje.
b. Mapa de áreas clave seleccionadas resultantes del ejercicio de consenso grupal.
Paso 6. Reconocimiento de amenazas y oportunidades para la conservación
Los polígonos preliminares, identiicados y trazados por
los diferentes grupos de especialistas, fueron revisados de
acuerdo a la ubicación geográica y criterios de delimitación indicados en el taller. Para ello, se empleó la información cartográica básica y temática disponible en cada caso,
incluyendo además mapas e imágenes satelitales en línea
provistos por diferentes servicios, entre ellos Google Earth,
Goggle Maps, Global Land Cover Facility, entre otros.
De manera preliminar y como un paso previo al II Taller
Binacional a realizarse en el 2010 sobre amenazas y oportunidades para la conservación de la biodiversidad en la
cuenca, cada uno de los grupos temáticos de lora y fauna,
identiicaron y describieron las amenazas más importantes
para la biodiversidad así como las oportunidades para su
conservación, con énfasis en las áreas nominadas. Estos insumos serán utilizados para el próximo taller donde serán
representadas cartograicamente y cuantiicadas en la medida de lo posible.
Para la delimitación deinitiva se usó como referencia la
cartografía base ya mencionada y modelos digitales de terreno obtenidos del programa Shuttle Radar Topography
48
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Mission (NASA 2000), modiicado y re-muestreado a 500
m de resolución por CGIAR (CGIAR 2009). De este último
se derivaron curvas de nivel y cuencas hidrográicas cuando
fue necesario. Lo anterior permitió ajustar las áreas a escala
1:1’000.000 bajo el sistema de referencia WGS-84, posteriormente reproyectado al sistema World Mercator (origen
0º Lat y 0º Long), para el cálculo preliminar de extensión
en hectáreas. Posteriormente cada área fue transformada al
datum local respectivo bajo el Sistema UTM.
BIBLIOGRAFÍA
Mapas de contexto
•
•
•
Los mapas de contexto como su nombre lo indica, buscan
brindar elementos del producto inal a los lectores para
valorar y entender la distribución de las áreas seleccionadas y las variables de importancia biológica, pesquerías y
población étnica. Las fuentes de información fueron las
siguientes:
• Hidrografía general, vías terrestres, población y divisiones político administrativas (Corporación Andina de
Fomento CAF y Digital Chart of the World, modiicada
por WWF).
• Global Land Cover (NASA-UMD, 2004).
• Modelo digital de terreno (Shuttle Radar Topography
Mission, NASA, 2000, modiicado por CGIAR, 2009).
• Áreas naturales protegidas (Unidad Administrativa
Especial del Sistema de Parques Nacionales Naturales
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WWF 2004).
• Resguardos indígenas de Colombia y territorios indígenas de Venezuela (Convenio IGAC-ANH 2007 y compilación hecha por WWF 2004).
•
•
•
•
•
Mapas de localización general
•
Están dirigidos a informar la localización en diferentes
ámbitos geográicos de la cuenca Orinoco. Igualmente,
se construyeron para dar la percepción del tamaño e importancia de la cuenca en un contexto global, continental
(Centro y Suramérica) y subcontinental-nacional (noroccidente de Suramérica). Los mapas se proyectaron al sistema
sinusoidal (origen 0ºLat y Long 63ºW).
Las fuentes de información empleadas fueron las siguientes:
• Modelo digital de terreno (Shuttle Radar Topography
Mission, NASA 2000, modiicado por CGIAR-CSI,
2009).
• Límites internacionales (Digital Chart of the World,
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3.
DESCRIPCIÓN
DEL MEDIO NATURAL DE LA
CUENCA DEL ORINOCO
F. Rojas-Suárez.
Judith Rosales, Cesar F. Suárez y Carlos A. Lasso
MARCO GEOGRÁFICO
DE LA CUENCA
el Escudo Guayanés, donde hoy habitan 23 etnias (Gasson
2002). La mayor parte de la población se concentra en las
riberas y los ríos han sido tradicionalmente la vía de colonización y desarrollo.
La cuenca del río Orinoco está localizada al norte de Suramérica entre -60 y -75 grados de longitud y entre los -2
a -10 grados de latitud norte, siendo uno de los ríos más
largos de Suramérica con 2.150 km de recorrido, el tercero a nivel mundial en caudal 31.061 m3/seg y el quinto en
transporte de sedimentos: 150 millones de ton/año (Tabla
3.1) (Global Runof Data Centre 1996). Sus aguas recorren
el Macizo Guayanés, la vertiente oriental de los Andes del
Norte, la Cordillera de la Costa, la planicie de transición
amazónica y las sabanas inundables y no inundables del
oriente de Colombia y área central - oriental de Venezuela,
donde inalmente por medio de un sistema deltaico se une
al océano Atlántico.
El río Orinoco fue documentado por Cristobal Colón el 1
Agosto de 1498 en su tercer viaje y posteriormente durante el siglo XVI por expediciones lideradas por Ambrosius
Ehinger y Diego de Ordaz (1531). La más importante de las
siguientes expediciones de ese siglo, fue dirigida por Don
José de Iturriaga (1754), a petición de la Corona Española y tenía el objetivo de establecer los límites del Orinoco
y el Amazonas. En esta viajaría por primera vez a tierras
orinoquenses desde el Real Jardín Botánico de Madrid, un
grupo de naturalistas, los médicos Benito Paltor y Salvador Condal y los dibujantes Bruno Salvador Carmona y
Juan de Dios Castel, comandados por un discípulo sueco
de Linneo, botánico y zoólogo, Pehr Löling. Este último
realizó las primeras descripciones de lora y fauna del Orinoco y muere en 1756 en la Misión San Antonio del Caroní,
a 25 km de la desembocadura del Caroní en el Orinoco.
Sus colecciones botánicas del Orinoco se perdieron pero
quedaron asentadas importantes descripciones ictiológicas. Posteriormente Antonio de Berrío y luego Alexander
El Orinoco es una cuenca binacional compartida por Venezuela (65%) y Colombia (35%), con un área de 981.446
km2 (Figura 3.1), a lo largo de la cual habita una población
de unos 10 millones de habitantes que vive y realiza actividades productivas, sustento de las economías tanto de
Venezuela como de Colombia (INE 2005, DANE 2005).
Presenta una baja densidad poblacional pero una muy alta
diversidad cultural, con una historia de poblamiento amerindio de más de 10 mil años que se ha conservado particularmente en las regiones de selva y sabana de los Llanos y
51
DESCRIPCIÓN
DEL MEDIO NATURAL DE LA CUENCA DEL ORINOCO
J. S. Usma.
Figura 3.1 Mapa físico de la cuenca del río Orinoco.
Tabla 3.1 Principales cuencas del mundo. Fuente: Berner y Berner (1987); GRDC (1996); área del Orinoco actualizada, Bernhard
(2008).
Río
Área
(Km2)
Descarga
media
anual
(m3/seg)
Máxima
descarga
(m3/seg)
Mínima
descarga
(m3/seg)
Escorrentía
(mm/año)
Volumen
(Km3)
Sólidos
suspendidos
(mill/ton/
año)
Sólidos
disueltos
(mill/ton/
año)
Amazonas
(Suramérica)
4.640.300
155.432
176.067
133.267
3.653
4.901
275
1200
Congo
(África Central)
3475.000
40.250
54.963
32.873
1.056
1.296
41
43
Orinoco
(Suramérica)
981.446
31.061
37.593
21.540
1.172
980
32
150
Yangtze (China)
1.705.383
25.032
28.882
21.377
463
789
247
478
Brahmaputra
(India)
636.130
19.674
21.753
18.147
975
620
61
540
Yenisei
(Federación Rusa)
2.440.000
17.847
20.966
15.543
231
563
68
13
Lena
(Federación Rusa)
2.430.000
16.622
19.978
13,234
216
524
49
18
Paraná
(Argentina)
1.950.000
16.595
54.500
4.092
265
516
—
—
Mississippi
(EEUU)
3.923.799
14.703
20.420
10.202
118
464
125
210
52
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
von Humboldt y J. Bonpland en 1800 (Figura 3.2), realizan
con mejor suerte las primeras colecciones extensivas y descripciones geográicas, botánicas y zoológicas de la región,
hasta la ciudad de Angostura (Helferich 2004).
noreste hacia el océano Atlántico. Desde el punto de vista
limnológico el río Orinoco recibe al inicio ríos de aguas
claras y negras, y luego con los aportes del Guaviare y especialmente del Meta, adquiere su coloración característica
de aguas blancas dada la carga sedimentaria recibida.
Hidrológicamente las principales cabeceras del Orinoco se
encuentran en el Escudo Guayanés y la Cordillera Oriental
en Colombia, cuyos diferentes orígenes geológicos junto
con una evolución marcada por cambios en el drenaje, han
propiciado el nacimiento de ríos provenientes de montañas
y planicies, conigurando así una colección de paisajes que
sustentan la biodiversidad acuática y terrestre de la cuenca.
La singularidad hidrológica en la cuenca está dada por el
río, caño o brazo Casiquiare, el cual forma un canal natural
entre los ríos Amazonas y Orinoco. Está ubicado en el Estado Amazonas en Venezuela y sirve de límite político entre
el municipio de Atabapo y los municipios de Alto Orinoco
y Río Negro. Este canal natural nace en el lugar denomina-
Oicialmente se ha otorgado el nacimiento del Orinoco
al pico Delgado-Chalbaud de la sierra Parima, un macizo
granítico de la región Guayana, a una elevación de 1.074
m.s.n.m., y un recorrido de 2.150 kilómetros. No obstante,
es oportuno señalar que desde el punto de vista hidrológico, tomando en cuenta la acumulación total de lujos, el
páramo Los Tambos de Colorado en el Parque Nacional
Natural Sumapaz a 4.150 m.s.n.m., (cabecera del rio Duda
tributario del Guaviare), sería el punto más lejano desde el
océano Atlántico en su desembocadura, con un recorrido
de 2.800 kilómetros. Por otro lado, el pico más alto se encuentra en la sierra Nevada del Cocuy (5.350 m.s.n.m.) en
la Cordillera Oriental Andina de Colombia, protegido por
el Parque Natural Nacional que lleva su mismo nombre.
La alta descarga de agua promedio del Orinoco, lo ubica
en el tercer lugar de la lista de los ríos más caudalosos del
mundo, superado por los ríos Amazonas y Congo (Tabla
3.1). Es importante resaltar que además de tener la segunda
descarga más alta de Suramérica, en términos de eiciencia
hídrica, muestra una descarga especíica equivalente a la
del Amazonas (0,033 m3/s.km2).
En relación a la carga de sedimentos, el Orinoco transporta hacia el océano alrededor de 150 millones de toneladas
de sedimentos por año con una tasa de denudación menor
que la del Amazonas pero mucho mayor que la del Congo
(Tabla 3.1).
Actualmente el curso de sus principales tributarios de origen andino es este-noreste, mientras que en los de origen
guayanés, el principal aluente, dibuja un gran arco, primero hacia el noroeste, luego hacia el oeste, hasta la triple conluencia con el Guaviare y el Atabapo, donde toma el nombre de Orinoco con un rumbo hacia el norte a lo largo de la
frontera entre Venezuela y Colombia, hasta la conluencia
con el rio Meta. En este lugar gira hacia el noreste hasta
la conluencia con el río Apure, y toma la dirección este-
Figura 3.2 Ruta de la expedición de Alexander von Humboldt
1800. Fuente: Helferich (2004).
53
DESCRIPCIÓN
DEL MEDIO NATURAL DE LA CUENCA DEL ORINOCO
J. S. Usma.
jar, que en ríos provenientes de la Cordillera Oriental en
Colombia sobre el río Duda, Güejar y Ariari. En Venezuela se destaca la sedimentación paleozoica de las vertientes
septentrionales del Escudo (Asociación Bellavista, Formación Mireles y Caparo entre otras); y paralelamente la presencia de eventos volcánicos formando la sienita feldespática de San José del Guaviare y el granito alcalino de El Baúl
en el Estado Cojedes.
do Tamatama, como un brazo del Alto Orinoco que luego
de pasar por varios raudales se convierte en tributario del
Río Negro en Brasil en la cuenca amazónica.
GEOLOGÍA
Marco geológico regional
Geocronológicamente la cuenca del río Orinoco se caracteriza inicialmente por las rocas ígneas intrusivas, metamóricas y sedimentarias correspondientes al Escudo Guayanés de edad precámbrica, el cual, junto con el Escudo de
Guaporé en Brasil, y separados por la paleozoica cuenca
sedimentaria amazónica, forman el cratón amazónico
(fragmento de la Pangea al norte de Suramérica). Tassinari
y Macambira (1999) subdividen esta gran unidad en seis
provincias a partir de los hallazgos de Teixeira et al. (1989)
y Tassinari (1996), los cuales para la cuenca orinoquense
destacan principalmente el núcleo Arcaico compartido entre Venezuela - Guyana y la provincia del Ventuari – Tapajós, perteneciente al Paleoproterozoico (1.95-1.8 Ga) y
compuesto principalmente por granitos calco-alcalinos,
gneises con granodiorita y cuarzodiorita, gabros y anibolitas de la serie Imataca, pertenecientes a la serie Pastora y a
la formación Roraima.
Como parte del Mesozoico se encuentran los sedimentos
de la paleocuenca de sedimentación cuyo límite meridional
hoy en día es la Cordillera central, junto con el borde occidental del Escudo Guayanés. Litológicamente las unidades
principales son la Formación Guadalupe y Formación Une,
caracterizadas por areniscas de grano medio, ocasionalmente grueso y ino, con alternancia de arcillolitas (IGAC
1999).
El Terciario se caracteriza por rocas sedimentarias de origen
luvial, y ambientes marinos con esporádicas inluencias lagunares marinas y transicionales entre llanuras deltaicas y
estuarios (Mayorga y Vargas 1995, Navarrete 1995). En Venezuela se caracterizan además por eventos metamóricos
presentes a lo largo de la Cordillera de la Costa. Las principales formaciones presentes son la Formación Barco, Guayabero, Losada, Mirador, Carbonera, León y San Fernando.
Más al occidente se encuentra la prolongación del Escudo,
denominado por Tassinari y Macambira (1999) como la
provincia de Río Negro-Juruena (1.8–1.55 Ga) con manifestaciónes en Colombia, Venezuela y Brasil. Estratigráicamente en Colombia está conformado por el complejo migmatítico del Mitú, grupo Tunui (formación Cinaruco en
Venezuela) y granito de Parguaza, el primero presente en
la mayor parte del departamento del Guainía, al oriente del
Guaviare y suroccidente del Vichada según Herrera (IGAC
1999), mientras que el granito de Parguaza está presente
a lado y lado del río Orinoco, desde la conluencia del río
Vichada hasta Puerto Carreño con aloramientos aislados
según Espriella et al. (1992), en el rio Meta y límites entre
los departamentos de Arauca y Casanare.
Por último el Cuaternario se aprecia a lo largo de depósitos aluviales del piedemonte andino y serranía de la Costa,
constituidos por bloques y cantos redondeados en una matriz arenosa; abanicos aluviales y terrazas aluviales desde
muy pocos centímetros hasta aproximadamente 60 cm.
(IGAC 1999).
En la igura 3.3 se muestra el mapa geológico de la cuenca.
Historia geológica del Orinoco
Previamente a la separación entre Suramérica y África, los
drenajes provenientes del Escudo Guayanés debieron tener
dirección hacia el Pacíico (Galvis et al. 2006), incluido el
Orinoco. Posteriormente la separación de los continentes
y el desplazamiento al occidente en el Cretáceo temprano
(Lundberg et al. 1998), produjeron la formación de una
zona de alta energía, hoy en día la zona subducción con la
placa de Nazca, generadora de eventos volcánicos y orogénicos formadores de la Cordillera central de Colombia. Estos cauces drenaban hacia la megacuenca de sedimentación
entre el Escudo Guayanés y esta cordillera emergida, desde
el Lago de Maracaibo hasta Bolivia (Hoorn 1993, Lundberg
et al. 1998, Albert et al. 2006).
Por otro lado, de edad precámbrica pero con génesis discutida por varios autores se encuentra la serranía de la Macarena (1.6 a 1.2 Ga), la cual hace parte de la cuenca alta del
río Duda, tributario del Guaviare en Colombia (Priem et al.
1989 en IGAC 1999).
Durante el Paleozoico y como resultado de la deposición de
rocas marinas intracratónicas principalmente en ambientes
poco profundos y continentales, se destaca el Grupo Güe-
54
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Figura 3.3 Mapa geológico de la cuenca del Orinoco.
Figura 3.4 Modelo paleogeográico del norte de Suramérica durante el Mioceno Medio (14 Ma años). Tomado de Wesselingh (2008).
55
DESCRIPCIÓN
DEL MEDIO NATURAL DE LA CUENCA DEL ORINOCO
J. S. Usma.
Durante este periodo el cauce del Orinoco tenía una dirección sur-norte con un delta en Urumaco (Estado Falcón)
al norte de Venezuela (Rod 1981, Díaz de Gamero 1996,
Marshall y Lundberg 1996). De acuerdo a Díaz de Gamero
(1996), el río proto-Orinoco, drenaba la Cordillera central
de Colombia y el Macizo Guayanés luía hacia el noroeste
de Falcón durante el Mioceno, y en el Mioceno medio tomó
el curso actual hacia el este hasta su desembocadura actual
en el Delta, la cual comenzó a depositarse en el Mioceno
tardío (Díaz de Gamero 1996). Una representación gráica tomada de Wesselingh (2008), nos permite visualizar la
máxima y mínima inluencia de las aguas en este periodo
(Figura 3.4).
del sistema montañoso de la costa norte de Venezuela,
mientras que el borde austral de la cuenca, en su mayor
parte, está dado por la divisoria de aguas entre los ríos Orinoco y Amazonas (Figura 3.5).
El río Orinoco en su migración hacia el este, parece haberse
encauzado en una zona de debilidad dominada por un fallamiento escalonado que forma el borde norte del Escudo.
Este fallamiento es el resultado de la compresión inducida
hacia el sureste cuando la placa del Caribe chocó oblicuamente con la placa de Suramérica, ocasionando lo que posiblemente fue la última reactivación tectónica a principios
del Cenozoico.
Montañas
Aunque para Colombia (Villota 1997) y Venezuela (Hubber
y Alarcón 1988), existen aproximaciones desde la clasiicación isiográica a nivel nacional, para Venezuela se incluyen elementos lorísticos y ecológicos en la subdivisión de
unidades, por lo cual no es equivalente a una clasiicación
isiográica del relieve de provincias y paisajes. Sin embargo, hay elementos comunes que nos permiten describir las
grandes unidades para la cuenca del río Orinoco:
•
•
•
•
Cordillera de los Andes
Cordillera de la Costa
Macizo Guayanés
Serranía de la Macarena
Piedemonte
•
•
A lo largo del cauce principal del río Orinoco actual, en
respuesta a las características de la red luvial que recoge
las aguas de la diversa supericie de su cuenca, se distinguen una alta diversidad de paisajes, geoformas y biotopos
ribereños y de las tierras irmes circundantes (Vila 1950,
Zinck 1977, Colonnello et al. 1986). En las tierras altas, los
lujos de materiales son unidireccionales con poco tiempo
de tránsito, mientras que en los ecosistemas de las tierras
bajas, las características del área de drenaje en conjunción
con la poca pendiente promedio de los paisajes luviales,
determinan un tiempo de tránsito de agua considerable y
procesos de intercambio laterales, de alta importancia biológica.
Piedemonte andino Cordillera Oriental y de Mérida
Sistema de colinas Cordillera de la Costa
Altiplanicies y supericies colinadas
•
•
Sistema de colinas del Escudo Guayanés
Penillanura del Casiquiare, Alto Orinoco, Vichada y
Guainía
Llanuras
•
•
•
•
Llanura inundable del Arauca, Casanare y Apure
Llanura alta (altillanura) no inundable Meta-Vichada
Planicie deltaica
Planicie estructural pericratónica
SUELOS
GEOMORFOLOGÍA
Las características geoquímicas de los cauces orinoquenses se relacionan con la litología, tipo de suelo y vegetación
dominante. Estas tres características altamente relacionadas junto con la ubicación en el paisaje y su geocronología
forman inalmente la base edáica a lo largo de la cuenca:
La cuenca del río Orinoco sintetiza las tres grandes estructuras geológicas que existen en la naturaleza: cordilleras de
plegamiento, escudos o cratones y megacuencas de sedimentación. Cada una de estas ha formado el relieve actual,
el cual posee características propias, que en conjunto le
otorgan una singular importancia como generador o sustento de una variedad de hábitats a lo largo de la cuenca.
a. Andes y piedemontes andinos. Suelos bien drenados
constituidos por sedimentos aluviales y coluviales del
Terciario de los Andes, generalmente de textura gruesa a ina. En piedemontes inclinados por movimientos
El borde meridional de la cuenca está formado por las vertientes andinas colombo-venezolanas; al norte las laderas
56
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Figura 3.5 Mapa geomorfológico de la cuenca Orinoco.
b. Tierras bajas y llanuras (materia aluvional - erosional). En llanuras aluviales los suelos son formados a
partir de sedimentos diluviales y coluviales, drenaje
moderadamente lento y texturas moderadamente gruesas a medias. Por ser suelos provenientes de materiales
aluviales están compuestos por materiales resistentes a
la fricción y/o arrastre como cuarzo, feldespatos y micas. Suelos clasiicados como luvisoles (Je, Jd) (Figura
3.6) provenientes de aportes luviales recientes; suelos
de baja evolución.
tectónicos recientes (Casanare, Arauca y Apure) se caracterizan por ser conglomerados de gruesos a inos y
niveles lodo-arenosos. Tiene como limitante el relieve,
el cual, facilita el escurrimiento difuso y concentrado, provocando erosión laminar o por socavamiento
(IGAC 1999).
En la Cordillera Oriental los suelos son cambisoles (Bh,
Be, Bd) (Figura 3.6) de una textura arenosa franca o
más gruesa a una profundidad de al menos 100 cm desde la supericie del suelo, o hasta un horizonte plíntico,
petroplíntico o sálico entre 50 y 100 cm desde la supericie del suelo. En la Cordillera de Mérida se presentan
los mismos tipos de suelos con transición a suelos luvisoles (Lf) y gleysoles (Gm) en el piedemonte, arcillosos
los primeros y los segundos caracterizados por una hidromorfía intensa por agua freática no profunda.
Las planicies bajas inundables están conformadas por
una variedad de geoformas desde terrazas altas, medias
y bajas, así como supericies ligeramente inclinadas,
con cimas planas, plano convexas, plano cóncavas y ligeramente onduladas, con drenajes moderados, lentos
o lento-encharcado, suelos de textura media a ina en
57
DESCRIPCIÓN
DEL MEDIO NATURAL DE LA CUENCA DEL ORINOCO
J. S. Usma.
a
b
c
d
e
Montañas
a.
b.
c.
d.
e.
f.
P. N. Tapo Caparo. Cordillera andina, Venezuela. Foto: A. Rial.
Auyántepui. Escudo Guayanés, Venezuela. Foto: J. Señaris.
Río Caura, Salto Para. Escudo Guayanés. Foto: A. Machado.
Cerros de Mavicure. Escudo Guayanés, Colombia. Foto: C. Lasso.
San Juan de Arama. Sierra de La Macarena. Foto: F. Castro.
Cordillera de la Costa, Venezuela. Foto: O. Lasso-Alcalá.
f
58
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
a
b
c
d
Piedemonte
a.
b.
c.
d.
e.
Piedemonte. Chameza, Colombia. Foto: A. Acosta.
Piedemonte rio Santo Domingo, Venezuela. Foto: A. Rial.
Piedemonte. P. N.Tapo Caparo, Venezuela. Foto: A. Rial.
Piedemonte. Casanare, Colombia. Foto: A. Diaz-Pulido.
Piedemonte. Paz de Ariporo, Colombia. Foto: A. Diaz-Pulido.
e
59
DESCRIPCIÓN
DEL MEDIO NATURAL DE LA CUENCA DEL ORINOCO
J. S. Usma.
a
b
c
d
e
Altiplanicies y supericies colinadas
a.
b.
c.
d.
e.
f.
f
Río Orinoco, Amanaven. Foto: C. Lasso.
Conluencia ríos Orinoco y Ventuari. Foto: C. Señaris.
Alto Orinoco, Venezuela. Foto: G. Romero.
Casuarito Vichada. Foto: F. Castro.
Alto Paragua, Venezuela. Foto: A. Rial.
Penillanura, Guainia. Foto: C. Suárez.
60
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
b
a
d
c
f
Llanuras
e
a.
b.
c.
d.
e.
f.
61
Altillanura. Puerto Gaitán, Meta. Foto: A. Diaz-Pulido.
Altillanura. Puerto Gaitán, Meta. Foto: F. Castro.
Esteros de Camaguán. Foto: A. Rial.
Caño típico del delta del Orinoco. Foto: M. Lentino.
Punta Bernal, delta del Orinoco. Foto: L. Alonso.
Río Bita. Puerto Carreño, Vichada. Foto: F. Castro.
DESCRIPCIÓN
DEL MEDIO NATURAL DE LA CUENCA DEL ORINOCO
J. S. Usma.
gran parte arcillosos. Clasiicados como acrisoles (Ap,
Ao) en el Arauca, Cinaruco, Casanare y gleysoles (Gd)
en la planicie inundable del Apure, con presencia de
suelos orgánicos - tipo histosoles (O) hacia las zonas
más pantanosas (Lipa y Morichales en Paz de Ariporo)
(Figura 3.6).
del Terciario Superior al Cuaternario, levantados antes
del Pleistoceno Superior (IGAC 1999), de drenajes moderados a rápidos, con texturas franco inas y franco
gruesas, limitadas por muy baja fertilidad natural, alta
concentración de aluminio y bajo contenido de carbón
orgánico. Son suelos clasiicados como ferrasoles (Fx,
Fo) comúnmente de color amarillo a pardo con horizonte ferrálico en el primer metro de profundidad (Figura 3.6).
Hacia las planicies de Casanare, Arauca y Apure, es
frecuente encontrar acumulación eólica supericial
formando mantos y dunas asociadas a sedimentos aluviales, que guardan la dirección del viento (NNE-SSO)
cubiertas hoy en día por una ina capa de herbáceas.
Suelos de tipo regosoles (Rd) sobre materiales blandos,
baja evolución (Figura 3.6).
c. El Escudo de Guayana (terrenos mayormente de
cuarcita, gneis y granitos). Presencia de suelos escasamente evolucionados, pobres en nutrientes y muy
ácidos. Drenaje dentríticos a paralelos, sub paralelos
y rectangulares (anulares localizados ocasionalmente),
presencia de erosión laminar ligera y socavamiento lateral en taludes y saltos entre estratos, texturas medias a
moderadamente gruesas limitados por rocas altamente
meteorizadas y acidez extremadamente alta. Clasiica-
En Colombia es necesario diferenciar la altiplanicie o
altillanuras presentes desde la margen derecha del río
Meta hasta las llanuras aluviales del río Vichada, Bita,
Tomo y Tuparro. Son suelos formados por sedimentos
Figura 3.6 Mapa de suelos de la cuenca del Orinoco. Fuente: Fischer et al. (2008).
62
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
CLIMA
dos genéricamente como ferrasoles (Fx, Fo) y presentes
en toda la Guayana a excepción de la cuenca del Caroní,
en donde los suelos característicos son nitisoles (Nd)
muy arcillosos, espesos, uniformes, rojos, bloquecitos
brillantes con límites suaves (Figura 3.6).
Tomando en cuenta la distribución de la precipitación, las
zonas más lluviosas de la cuenca están presentes en el piedemonte andino Meta-Cundinamarca con un promedio
anual de 4.300 mm. Le sigue el Escudo Guayanés con las
cuencas altas del Caura y Caroní-Paragua, con promedios
anuales cercanos a 3.800 mm. Por último, está el piedemonte andino los alrededores del río Arauca (3.300 mm).
d. Penillanuras bajas (erosional – deposicional) (Boadas 1983, Stallard 1985, Weibezahn 1990). En Venezuela presentes principalmente al norte del Escudo
Guayanés al noreste del Estado Bolívar y en el eje Casiquiare-Ventuari. En Colombia se extiende sobre el río
Inírida en continuación a la cuenca amazónica por el
río Vaupés (Figura 3.6).
De igual manera se observa claramente en la igura 3.3, la
inluencia caribeña con precipitaciones más bajas al norte
de la cuenca y las transiciones australes más lluviosas con el
Escudo Guayanés y la cuenca amazónica.
Los sólidos suspendidos y las sales disueltas en los ríos
provenientes de esas unidades relejan en forma general, el grado de denudación-erosión y de solución del
basamento litológico de las respectivas unidades.
Con respecto a la temperatura la zona más cálida se encuentra hacia la parte media de la cuenca en el corredor
Puerto Carreño – Tuparro, con temperaturas promedios
anuales de 28 oC; mientras que las zonas más frías se encuentran en la Cordillera de Mérida en Venezuela y Oriental en Colombia (Figura 3.7).
Por otra parte, los suelos formados en el recorrido de
los ríos procedentes de esas unidades, tienen características muy similares de acuerdo con los materiales parentales que les dieron origen. Por ser suelos evolucionados son moderadamente profundos a profundos, de
texturas medias en profundidad presentan alto contenido de arcilla y en ciertas áreas localizadas, hay buena
porosidad. Son suelos muy ácidos, con baja capacidad
de intercambio catiónico y alto contenido de aluminio
(Ferrasoles Fo-Fx). Se forman a partir de la sedimentación de materiales provenientes de relieves precámbricos sobre paleorelieves de baja pendiente generalmente
ígneo/metamóricos.
HIDROLOGÍA
Clasiicación y zoniicación: tipos de aguas
Siguiendo la clasiicación de Sioli (1965, 1975), en la cuenca
del Orinoco existen básicamente tres tipos de aguas, diferenciadas básicamente en una primera aproximación por
su color: blancas (turbias), claras más o menos transparentes y negras (color té).
Figura 3.7 Variación espacial de temperatura y precipitación. Fuente: WWF.
63
DESCRIPCIÓN
DEL MEDIO NATURAL DE LA CUENCA DEL ORINOCO
J. S. Usma.
Los ríos de aguas blancas son los más productivos y ricos en
nutrientes y electrolitos; tienen alta conductividad, su pH
es cercano al neutro (6,2-7,2) y deben su color o apariencia
turbia a la gran cantidad de sedimentos inorgánicos, arcillas ilitas y montmorillonitas que son transportadas desde
los Andes hasta las llanuras aluviales (Junk 1982, Lasso
2004).
Los ríos de aguas claras provienen de zonas más bien planas, cubiertas de bosque que sirve para atenuar el efecto
erosivo de la lluvia, que penetra entonces al suelo sin producir escurrimiento (Sioli 1965). Así, su color es transparente o verdoso y su hidroquímica depende de las características del suelo por el que discurre. Tienden a enturbiarse
en la estación de lluvias y su pH (4,5-7,8) es mayor que el
de aguas negras pero inferior al de las blancas (Lasso 2004).
Estos últimos tienen su origen en la Orinoquia guayanésa.
Transportan muy pocos detritos y sedimentos y por ello
tienen aguas transparentes y de un tono amarillo-verdoso,
su conductividad es baja y su pH es casi neutro. Son típicos
del Escudo Guayanés y la altillanura.
origen Precambrico, discurren sobre suelos arenosos sobre
los que se desarrollan bosques inundables y obtienen ese
nombre a causa de la gran cantidad de materia orgánica
en descomposición que llevan sus aguas provenientes de
suelos de tipos podosoles o histosoles; sus aguas son transparentes pero de un color oscuro parecido a la del té. Tienen una baja conductividad y un pH ácido debido al gran
número de ácidos solubles procedentes de la materia orgánica, especialmente ácidos fúlvicos y húmicos (Sioli 1975,
Lasso 2004). Aún cuando la tipología de las aguas de Sioli
(1975) ha sido empleada frecuentemente en la Orinoquia,
existe diicultad en su aplicación a ríos de otras regiones
biogeográicas y geológicas diferentes a las amazónicas, especialmente en el caso de las aguas negras, pues este tipo no
determina en si mismo una composición química especíica. Así Vegas-Villarrubia et al. (1988) indican diferencias
en la composición inorgánica entre ríos considerados de
aguas negras, y atribuyen esta variación al ambiente por el
que discurren. Un fenómeno adicional de mezcla de aguas
ocurre en las conluencias por balances de lujos o en las
planicies por inundación.
Los ríos de aguas negras, los cuales tienen su origen en
la Orinoquia guayanésa o también en las penillanuras de
La Tabla 3.2 muestra el listado de los principales tributarios
del río Orinoco, así como también su origen y procedencia.
Tabla 3.2 Principales tributarios del río Orinoco.
Origen
Andino
Procedencia
País
Nombre
Área (ha)
Cordillera de la Costa Central
Venezuela
Aguaro - Guariquito
1,145,727
Cordillera de la Costa Central
Venezuela
Guarico
2,224,555
Cordillera de la Costa Central
Venezuela
Manapire
1,072,668
Cordillera de la Costa Oriental
Venezuela
Caris
263,114
Cordillera de la Costa Oriental
Venezuela
Morichal Largo
670,800
Cordillera de la Costa Oriental
Venezuela
Pao
366,148
Cordillera de la Costa Oriental
Venezuela
Tigre
859,318
Cordillera de la Costa Oriental
Venezuela
Uracoa
236,996
Cordillera de la Costa Oriental
Venezuela
Zuata
779,320
Cordillera de la Costa Oriental
Venezuela
Claro
238,223
Cordillera de la Costa Oriental
Venezuela
Carapa
101,986
Cordillera de la Costa Oriental
Venezuela
Mapire
215,737
Cordillera de la Costa Oriental
Venezuela
Ature
61,222
Cordillera de la Costa Oriental
Venezuela
Cabrutica
227,395
Cordillera de la Costa Oriental
Venezuela
Cicapro
195,502
Cordillera de Mérida
Venezuela
Apure
5,666,237
64
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Origen
Andino
Escudo Guayanés
Estuarino
Planicie
Procedencia
País
Nombre
Área (ha)
Cordillera de Mérida - Cordillera
de la Costa Central
Venezuela
Portuguesa
5,899,324
Cordillera Oriental
Colombia-Venezuela
Arauca
3,632,825
Cordillera Oriental
Colombia
Guaviare
8,372,108
Cordillera Oriental
Colombia
Meta
10,830,440
Escudo Guayanés
Venezuela
Alto Orinoco
6,343,596
Escudo Guayanés
Venezuela
Aro
1,484,874
Escudo Guayanés
Venezuela
Caroní
3,824,812
Escudo Guayanés
Venezuela
Caroni-Paragua
5,456,264
Escudo Guayanés
Venezuela
Cataniapo
191,289
Escudo Guayanés
Venezuela
Caura
4,982,940
Escudo Guayanés
Venezuela
Cuao
700,360
Escudo Guayanés
Venezuela
Cuchivero-Guaniamo
1,762,285
Escudo Guayanés
Venezuela
Macuro - Acure
1,115,036
Escudo Guayanés
Venezuela
Parguaza
480,058
Escudo Guayanés
Venezuela
Sipapo
920,855
Escudo Guayanés
Venezuela
Suapure
1,234,043
Escudo Guayanés
Venezuela
Topocho
201,527
Escudo Guayanés
Venezuela
Ventuari
4,038,922
Escudo Guayanés
Venezuela
Vertiente izquierda
Orinoco Bajo
552,667
Escudo Guayanés
Venezuela
Pagüey-Pao
306,156
Escudo Guayanés
Venezuela
Villacoa
189,857
Escudo Guayanés
Venezuela
Vertiente derecha
Orinoco Bajo
552,667
Penillanura del Escudo
Colombia
Ajota
105,146
Penillanura del Escudo
Colombia-Venezuela
Atabapo
1,294,314
Penillanura del Escudo
Colombia
Inírida
5,350,986
Penillanura del Escudo
Venezuela
Zama
75,489
Sistema deltaico
Venezuela
Delta del Orinoco
1,885,757
Altillanura orinoquense
Colombia
Bita
862,742
Altillanura orinoquense
Colombia
Dagua - Mesetas
358,910
Altillanura orinoquense
Colombia
Mataven
906,104
Altillanura orinoquense
Colombia
Tomo
2,025,724
Altillanura orinoquense
Colombia
Tuparro
1,121,978
Altillanura orinoquense
Colombia
Vichada
2,591,376
Llanura inundable
Venezuela
Capanaparo
2,029,899
Llanura inundable
Venezuela
Cinaruco
1,218,407
Sistema deltaico
Venezuela
Viejo
146,845
65
DESCRIPCIÓN
DEL MEDIO NATURAL DE LA CUENCA DEL ORINOCO
J. S. Usma.
b
a
c
d
e
f
Ríos y tipos de aguas
a.
b.
c.
d.
e.
f.
Conluencia de los ríos Caparo (aguas blancas) y Aricagua, Venezuela. Foto: A. Rial.
Río Atabapo (aguas negras), frontera colombo-venezolana. Foto: C. Lasso.
Aluente del río Ventuari (aguas claras), Venezuela. Foto: J. C. Señaris.
Raudales alto Orinoco (aguas claras), Venezuela. Foto: J. C. Señaris.
Río Apure (aguas blancas), Venezuela. Foto: A. Barbarino.
Río Inírida (aguas negras), Colombia. Foto: C. Lasso.
66
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Figura 3.8 Principales tributarios o subcuencas del río Orinoco.
LAS GRANDES REGIONES DE LA
ORINOQUIA Y SUS
CORREDORES RIBEREÑOS
en términos de edad evolutiva es mucho más antigua que
todas las otras regiones. El último proceso sedimentario de
gran escala que experimentó la región fue la deposición y
metamorismo de areniscas del grupo Roraima de origen
luvio-deltaico, con inluencia marina que suprayace de
manera discordante sobre diversos basamentos ígneo-metamóricos. Se extiende desde el Cerro o tepui Roraima en
Venezuela al este hasta la Sierra La Macarena en Colombia,
al suroeste de la cuenca.
Con base a la información biofísica disponible hasta el momento y bajo un enfoque ecosistémico tanto de las ecorregiones terrestres como de los ambientes acuáticos, se reconocen diez grandes regiones incluyendo los corredores
ribereños (Figura 3.9).
El clima de la región presenta en líneas generales un gradiente de aumento de precipitación hacia el sur y sureste – suroeste (1.100 mm en Ciudad Bolívar 4.500 mm en
Alto Erebato) y hacia las altiplanicies (tepuyes) o montañas graníticas donde ocurren fenómenos de formación de
nieblas orográicas. Las temperaturas varían desde regíme-
La Orinoquia guayanesa
La Orinoquia guayanesa reviste una gran importancia pues
se encuentra en la Región Guayana, un basamento de rocas
cristalinas precámbricas (granitos, gneisses) profundamente erodado, que formó parte de las tierras gondwánicas y
67
DESCRIPCIÓN
DEL MEDIO NATURAL DE LA CUENCA DEL ORINOCO
J. S. Usma.
Figura 3.9 Mapa de las grandes regiones y corredores ribereños de la cuenca del río Orinoco.
Esta subregión cuenta con ríos como el Caroní y el Caura
de alta descarga media anual (Zinck 1977). Estos cauces se
inician en las mesetas y piedemontes de los tepuyes en altitudes de 2000-2800 m.s.n.m. y descienden normalmente
encajados, siguiendo líneas de fallamientos hasta terrenos
bajos de valles sedimentarios, donde pueden formar cauces meándricos y planicies de inundación intramontanas
para luego entrar de nuevo en zonas de control estructural
con valles encajados. La pendiente de estos cursos es así
muy variable, experimentando desde caídas libres de hasta
2100 m en el Churummerú (Salto Ángel) del río Caroní e
innumerables cascadas y cambios bruscos de nivel, donde
ocurren los rápidos o raudales.
nes macrotérmicos (28-36 °C) en las tierras más bajas de
piedemonte que bordean las altiplanicies y montañas, hasta
menores de 0 °C en las cumbres tepuyanas más altas como
el Roraima, Chimantá, Auyantepui, Jaua-Sariasariñama y
de los macizos graníticos como Sierra Maigualida, Parima
y Pakaraima.
De esta región drenan ríos caracterizados básicamente por
aguas oligotróicas con baja conductividad y baja cantidad
de sedimentos, que van desde el este en el Tepui Roraima
hasta el oeste, incluyendo sus estribaciones en las tierras de
la margen izquierda del Orinoco Medio hasta la Serranía
de La Macarena (Gansser 1974). Los ríos que conforman
las cuencas de drenaje de la región son: Río Grande, Caroní, Aro, Caura, Cuchivero, Suapure, Cataniapo, Samariapo,
Sipapo, Ventuari, Atabapo, Inírida y Guaviare en La Macarena.
La Orinoquia andina
Esta región comprende las estribaciones de los Andes tanto
en la Cordillera Oriental de Colombia como en su conti-
68
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
nuación en la Cordillera de Mérida en Venezuela. Durante
el período que va del Plioceno inferior al medio, ocurrió el
levantamiento inal de la Cordillera Oriental y quedó conformada la vertiente andina de la Orinoquia colombiana,
que presenta un mosaico de ambientes, desde las cumbres
nevadas y paramunas de las montañas, hasta el piedemonte
llanero (van der Hammen 1974).
cen los ríos Guaviare, Meta, Apure y Portuguesa. Algunos
de los aluentes más importantes que drenan al Meta son
los ríos Upía, Humea, Guayuriba y Casanare, y al Apure
los rios Uribante, Sarare, Santo Domingo y Masparro. En
su recorrido por las montañas andinas, estos ríos presentan
aguas transparentes, sus cauces acusan una pendiente pronunciada, lo que acelera la velocidad del escurrimiento y
les coniere un aspecto de torrentes, corriendo sobre lechos
pedregosos; las pendientes pueden llegar al 20%, en particular en las nacientes. Estos ríos tienen en consecuencia
alta capacidad de transporte de sedimentos y materiales de
considerable tamaño. Este acarreo es responsable, en último término, de los procesos erosivos y sedimentarios de
la planicie de inundación del Orinoco, y puede signiicar
entre 1000 y 1500 toneladas de partículas sólidas de variados tamaños, arenas y gravas hasta bloques, erosionadas
por cada km2 de cuenca (Zinck 1977). En este momento los
ríos cambian su apariencia a ríos de aguas blancas. Los procesos erosivos y de transporte de sedimentos inos ocurren
sin embargo en los piedemontes andinos.
El eje montañoso de la cordillera comienza al norte con la
Sierra Nevada del Cocuy, la parte más alta, con masas glaciares. Hacia el sur y con una altitud menor, se encuentran
los macizos paramunos de Chingaza y Sumapaz, cuyas cimas de 4.000 a 4.500 m.s.n.m. no permiten la conservación
de los nevados, aunque en sus escarpes se pueden observar
formas del modelado glaciar. Se origina en el nudo de Almaguer situado al SO del país, como un ramal de la Cordillera Central y cuyo recorrido general se orienta hacia el
NE hasta el macizo del Tamá o del Táchira en la frontera
con Venezuela, donde después de la depresión de Burbúa o
del Táchira se prolonga hacia el NE formando la Cordillera
de Mérida.
Orinoquia costera
Con activo metamorismo cuyo ciclo orogénico comenzó
en el Mioceno, el sistema montañoso de la Cordillera de
la Costa se extiende en el norte de Venezuela en dirección
oeste - este, alcanza aproximadamente 870 km de largo y
una anchura variable entre 10 y 80 km (Huber 1984). Al
oeste comienza en el Estado Yaracuy y culmina hacia el este
bordeando la porción central de la costa venezolana con el
Mar Caribe para luego reaparecer en la región septentrional
de la Isla de Trinidad. En el norte, este sistema montañoso
separa la región del Litoral Caribe, de las llanuras aluviales
de la cuenca del Orinoco zona mejor conocida como llanos
venezolanos cuya extensión es desplazada hacia el sur de la
cordillera. La Cordillera de la Costa inicia su proceso de realzamiento durante el último período de la Era Mesozoica o
Secundaria y es precisamente en el Cretáceo cuando se produce el levantamiento de, por lo menos, la serranía del Litoral de dicha Cordillera. Está constituida por rocas ígneas
y metamóricas, sin embargo, en la parte sur del sistema, en
la cadena del interior, aloran también rocas sedimentarias
formadas entre el Cretáceo y el Paleoceno. El tramo central
de la cadena del interior está formado por varios ejes montañosos, que coniguran numerosas ilas longitudinales, de
orientaciones diversas. Se trata de un relieve muy disectado
como consecuencia de la erosión. El pico más alto del ramal
del interior de la cordillera de la Costa, cabeceras del rio
Guárico es el Pico Platillón (1930 m.s.n.m.). Al sur de estas
formas montañosas principales, se encuentran unas formaciones calizas que originan montañas aisladas, conocidas
Después de estos páramos la cordillera pierde altitud y forma una depresión en La Uribe, para luego levantarse en la
Cuchilla de Los Picachos (3.800 m.s.n.m.), punto que marca el extremo sur de la vertiente andina de la Orinoquia.
Este sector de elevada pluviosidad, con valores cercanos a
5.000 mm de precipitación, es muy diferente del resto de la
vertiente, pues su formación geológica ocurrida en el Precámbrico, hace unos 1.200 millones de años, es tan antigua
como la de la sierra de La Macarena.
La altitud es el principal factor regulador de los cambios de
clima y de la organización espacial de las grandes formaciones vegetales de la vertiente andina, así como de la repartición de los tipos de suelos. De acuerdo con las observaciones de los investigadores Jean-Claude houret y Antoine
M. Cleef, entre otros, en la vertiente andina de la Orinoquia
se puede identiicar la siguiente zoniicación altitudinal:
•
•
•
•
Piso glaciar y periglaciar, de 5.350 a 4.800 m.s.n.m.
Alta montaña ecuatorial andina fría, de 4.800 a 3.200
m.s.n.m.
Media montaña ecuatorial andina húmeda, de 3.200 a
2.000 m.s.n.m.
Baja montaña ecuatorial andina cálida, de 2.000 a 500
m.s.n.m.
El rango altitudinal incluye desde los picos más altos (4000
m.s.n.m.) hasta aproximadamente los 200 m.s.n.m. Allí na-
69
DESCRIPCIÓN
DEL MEDIO NATURAL DE LA CUENCA DEL ORINOCO
J. S. Usma.
regionalmente como morros y entre los cuales destacan los
de San Juan (Estado Guárico), San Sebastián (Estado Aragua) y Macaira (Estado Guárico).
los llanos centro orientales (Estados Guárico, Anzoátegui
y Monagas). También se encuentran algunos aloramientos
en el sur del Estado Sucre y en el Estado Bolívar, inmediatamente al sur del río Orinoco. Está compuesta por gravas
y arenas de grano grueso, y lentes discontinuos de limolita y
arcilla. La Formación Mesa es producto de una sedimentación luvio deltáica y paludal, resultado de un extenso delta
que avanzaba hacia el este en la misma forma que avanza
actualmente el río Orinoco (González de Juana et al. 1980).
El mayor relieve de las cordilleras septentrionales aportaba
a la sedimentación gravas y conglomerados en ambientes
de abanicos aluviales cerca del piedemonte.
Estos morros están formados por rocas calizas, que se depositaron bajo las aguas que cubrían esta zona en el Cretáceo y el Eoceno. Las fuerzas tectónicas plegaron el área, el
calor y la presión metamorizaron las calizas y las hicieron
más resistentes que las rocas más próximas, las cuales fueron destruidas por la erosión.
Más hacia el sur, adosado a esta formación de morros, encontramos un paisaje caracterizado por pequeñas elevaciones que escasamente sobrepasan los 300 metros, constituidas por areniscas cubiertas por conglomerados, conocidos
como galeras, entre ellas se distinguen las Galeras de El Pao
y las de Ortiz.
Altillanura orinoquense
Es parte del plano no inundable por el cual luyen los ríos
que nacen en la planicie sedimentaria del Terciario-Cuaternario en Colombia. Los principales ríos son el Vichada,
Mataven, Tuparro, Tomo y Bita. Se ubican al oriente del
bloque que demarca la falla tectónica del río Meta. Geológicamente está conformada por materiales sedimentarios
acumulados en ambientes marinos y costeros, re-depositados al emerger la cordillera Oriental, donde ha sido sometida a procesos de intemperización y lavado profundo,
lo cual ha disminuido su composición mineralógica y en
consecuencia ha empobrecido sus suelos (Molano 1998).
Posee drenajes con dirección éste y sur y por lo tanto la Altillanura no pertenece únicamente a las sabanas del MetaOrinoco, sino que también integra el área transicional de
la Orinoquia y la Amazonia al sur y la transición con el
Escudo Guayanés al oriente.
Al oeste y al sur del macizo Oriental aparece una franja de estratos posteriores al Cretáceo que forman relieves
de escasa elevación, compuestos por esquistos arcillosos
y areniscas, con yacimientos ocasionales de carbón, como
ocurre en Naricual, con estos relieves termina la cadena del
interior y se inicia la depresión Central Llanera.
La Orinoquia llanera
Su evolución comienza a inales del Mioceno y entrada
del Pleistoceno, con los inmensos aportes de sedimentos
luvio-deltaicos provenientes de los ríos que drenaban las
regiones montañosas andinas, costeras y guayanésas, y que
inalmente es modelada durante los ciclos de transgresiones marinas y regresiones del Pleistoceno. Esta región está
conformada por los ríos que discurren por las planicies altas y bajas desde el piedemonte andino (alrededor de 200
m.s.n.m.) hasta la conluencia con el Orinoco, a menos de
100 m.s.n.m.. Comprende cursos que nacen en las mismas
planicies como el Capanaparo y el Cinaruco (planicies eólicas) (Iriondo 1997), pero en su mayor parte son ríos que
se originan en los Andes y que discurren por los Llanos
(por ejemplo los ríos Meta, Arauca, Apure y Portuguesa).
Estos cursos, inicialmente de aguas transparentes, presentan cada vez mas sedimentos inos que han ido recogiendo
por la erosión lateral de los terrenos, tornándose turbios
(aguas turbias o blancas). Cuando la pendiente disminuye,
la velocidad se reduce, por lo que el curso comienza a trazar
curvas y a formar meandros. Simultáneamente, y debido
a las constantes salidas de madre con deposición de sedimentos, va realzando su lecho sobre la llanura circundante,
lo que acentúa la inestabilidad del curso y facilita los cambios de cauce durante las crecidas anuales. La Formación
Mesa del Pleistoceno Temprano y Medio, se extiende por
Zona transicional Orinoco-Amazonas
De acuerdo con Molano (1998) esta región abarca una franja de extensos ecotonos entre sabanas y selvas al sur del río
Vichada, que comprende las cuencas de los ríos Uva, Guayabero, Ariari, Guaviare, Inírida y Papunaua. Los paisajes
integran geomorfológicamente un conjunto de altillanuras,
proyección de la Altillanura llanera hacia el sur. Al sur del
río Guaviare se encuentran todavía algunos segmentos de
Altillanura con vegetación de sabana. Un poco más al sur,
las supericies pliopleistocénicas aparecen más onduladas
y emergen dentro de ella formas colinares de edad paleozoica (Botero 1990). Las selvas alcanzan espacios signiicativos entre los interluvios así como a lo largo de las vegas
de los ríos. Son selvas de galería o de planicie aluvial muy
semejantes a las selvas amazónicas propiamente dichas; se
encuentran igualmente selvas ralas con pisos ocupados por
herbáceas y subarbustivas y sobresuelos de arenas blancas,
denominadas caatingas; inalmente se hallan selvas mucho
más localizadas sobre aloramientos rocosos tipo serranías,
colinas y montes islas, las cuales alcanzan una diferencia-
70
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
que desembocan por la margen derecha. En este tramo, la
zona de conluencia del Ventuari con el Orinoco conforma
un humedal de gran importancia constituyendo el primer
delta interno del Orinoco. Este corredor continua con las
desembocaduras por su margen izquierda, del AtabapoInírida que drenan tierras bajas de planicies y ríos oligotróicos de la región Guayana Sur y el río Guaviare, aluente
más caudaloso del Orinoco (8.000 m3/s), que nace en las
cumbres nevadas del Páramo de Sumapaz. Al incluir sus
innumerables meandros, es el tributario más largo (1.450
km) que drena una amplia supericie de la Orinoquia andina y sus piedemontes, la llanura amazónica al sur y los
llanos húmedos al norte. En el tramo de conluencias del
Orinoco, el Atabapo y Guaviare-Inírida se presentan lo que
Alexander von Humboldt llamara la Estrella Fluvial del Sur,
hoy conocida como Estrella Fluvial de Inírida. Siguen por
la margen izquierda del Orinoco Medio, los ríos Vichada,
Tuparro, Tomo y Bita, que nacen en la llanura seca y eólica.
Por la margen derecha están los ríos de la Orinoquia guayanesa, el Sipapo, Parguaza y Suapure.
ción isonómica en razón de la presencia de fragmentos del
Escudo Guayanés, compuestas por rocas re-metamorizadas con coberturas graníticas de escaso o nulo desarrollo
edáico y rigurosas condiciones ambientales.
Los corredores ribereños inundables del cauce
principal y sus aluentes
Los corredores ribereños pueden deinirse como las áreas
adyacentes a los cauces luviales cuyas características
medioambientales son inluenciadas por la dinámica hidrológica anual de los cauces y sus características hidrogeoquimicas, presentándose como característica principal
la presencia de paisajes de humedales.
Con una supericie total estimada en 97.000 km2, la planicie
aluvial del río Orinoco representa uno de los humedales
más importantes del Neotrópico (Amazonas 195.000 km2;
Paraguay 142.000 km2) (Hamilton y Lewis 1990). Del total
de tierras inundadas estacionalmente por el Orinoco y sus
tributarios, unos 70.000 km2 corresponden al delta interno
del río Apure; 20.009 km2 al delta costero (Delta Amacuro), 1.650 km2 al delta interno del Ventuari y 7.000 km2 a
la planicie inundable asociada a su canal principal (Cressa
et al. 1993).
Corredor ribereño del Bajo Orinoco
En los raudales de Atures comienza el Bajo Orinoco, donde
conluye el segundo río más caudaloso y que aporta la mayor cantidad de sedimentos al Orinoco, el Meta. Este tiene
sus cabeceras en la Orinoquia andina y sus piedemontes,
llanos secos y llanos eólicos; luego están los ríos Cinaruco
y Capanaparo que nacen en la llanura eólica y el Arauca
(Orinoquia andina y sus piedemontes y los llanos inundables bajos). Posteriormente está el río Apure (Orinoquia
andina y sus piedemontes, serranía del Interior, Cordillera
de la Costa Central, llanos centrales altos y llanos inundables bajos) y Guárico (serranía del Interior, Cordillera de la
Costa Central, llanos centrales altos y llanos inundables).
Entre las conluencias de los ríos Arauca y Apure se forma el gran humedal conocido como el delta interno del
Orinoco-Apure. Luego de este, los principales tributarios
desde aguas arriba son los ríos Manapire, Cuchivero, Zuata,
Caura, Aro y Caroní; de ellos, los ríos Manapire y Zuata se
hallan en la margen izquierda del Orinoco. Luego están los
aluentes del delta, entre ellos los que destacan el Tigre y
su aluente el Morichal Largo y el Uracoa, que desembocan
por la margen izquierda y occidental del delta, y los ríos
Toro, Aquire y Amacuro que lo hacen por la margen derecha y meridional del mismo. El Bajo Orinoco, a diferencia de cómo lo hace en los tramos superiores, discurre por
áreas de muy poca pendiente recibiendo grandes ríos de los
Andes y llanos venezolanos por su margen izquierda como
son el Meta, Capanaparo, Arauca y Apure y por su margen
derecha, los ríos del Escudo (Cuchivero, Caura y Caroní).
A lo largo del curso principal del Orinoco siguiendo las
clasiicaciones hidrológicas, deinimos los corredores ribereños de: a) Alto Orinoco, b) Orinoco Medio, c) Orinoco
Bajo y d) delta del Orinoco. En sus tramos medio y bajo, el
rio Orinoco transcurre en un valle deinido como un cajón
encerrado por ambos lados (Zinck 1980), formando una
planicie de inundación constituida por un ecosistema con
componentes y una dinámica física y biótica muy complejos (Colonnello et al. 1986).
Corredor ribereño del Alto Orinoco
Termina aguas arriba del raudal Los Guaharibos, drenando exclusivamente tierras de la Orinoquia Guayanésa sur,
como la cuenca del río Mavaca, el cual nace en la sierra
de Urturán, en la parte más meridional de Venezuela. En
cuanto a los aluentes y tributarios del Orinoco, los aluentes de la margen derecha, provenientes del Escudo, son los
más importantes en el Alto Orinoco. Otro hecho sobresaliente de esta sección del Orinoco es, sin duda alguna, que
a través del canal del Casiquiare se conectan las cuencas del
Orinoco y el Amazonas (Río Negro).
Corredor ribereño del Medio Orinoco
Comprende las áreas ribereñas desde el raudal Los Guaharibos con los ríos Ocamo, Padamo, Cunucunuma, Yagua y
Ventuari, drenando tierras de la Orinoquia guayanésa sur
71
DESCRIPCIÓN
DEL MEDIO NATURAL DE LA CUENCA DEL ORINOCO
J. S. Usma.
BIBLIOGRAFÍA
Corredor ribereño del delta del Orinoco
Tiene una supericie de 23.000 km2 que se va incrementando en varios km2 al año debido al aporte de sedimentos
generados aguas arriba, estimados en 150 millones de toneladas por año, a los que se suma una cantidad importante
de sedimentos provenientes de la cuenca amazónica y del
Esequibo, que llegan al delta a través de la corriente marina
de Guayana. Tiene más de 300 caños e innumerables islas
luviales. Entre los caños destacan Mánamo, Pedernales,
Capure, Cocuina, Tucupita, Macareo, Mariusa, Araguao,
Merejina y Río Grande, citados en el sentido de las agujas
del reloj, siendo más importantes los de Mánamo, Macareo
y Río Grande. Algunos caños no provienen del Orinoco
sino que nacen como ríos en las tierras deltaicas.
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Atardecer en Casanare. Foto: A. Navas.
LA CUENCA DEL ORINOCO:
SÍNTESIS TEMÁTICA Y CARTOGRÁFICA
F. Trujillo.
4.
BIODIVERSIDAD
FLORA Y VEGETACIÓN
Ángel Fernández, Reina Gonto, Anabel Rial B., Judith Rosales (Venezuela), Bibiana Salamanca, Mireya Córdoba, Hernando
García, Alma Ariza, Dairon Cárdenas, Jairo Chavarriaga, homas Walschburger (Colombia).
Figura 4.1. Regiones y subregiones biogeográicas: lora y
vegetación.
75
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Figura 4.2 Esfuerzo de muestreo:
lora y vegetación.
Figura 4.3 Nivel de conocimiento: lora y vegetación.
Figura 4.4 Vacíos de información: lora y vegetación.
76
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Figura 4.5 Riqueza de especies:
lora y vegetación.
Figura 4.6 Endemismos: lora y
vegetación.
Figura 4.7 Especies amenazadas:
lora y vegetación.
77
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Figura 4.8 Valor de uso: lora y
vegetación.
Figura 4.9 Procesos ecológicos:
lora y vegetación.
Figura 4.10 Áreas nominadas
para la conservación: lora y vegetación.
78
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Nieto.
INSECTOS
Claudia Alejandra Medina U., Fernando Fernández, M. Gonzalo Andrade-C.
Figura 4.11 Subregiones biogeográicas: insectos.
Figura 4.12 Esfuerzo de muestreo: escarabajos coprófagos.
79
INSECTOS:
ESCARABAJOS COPRÓFAGOS, HORMIGAS Y MARIPOSAS
G. Andrade.
Figura 4.13 Esfuerzo de muestreo: hormigas.
Figura 4.14 Esfuerzo de muestreo: mariposas.
Figura 4.15 Nivel de conocimiento: escarabajos coprófagos.
80
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Nieto.
Figura 4.16 Nivel de conocimiento: hormigas.
Figura 4.17 Nivel de conocimiento: mariposas.
Figura 4.18 Vacíos de información: escarabajos coprófagos.
81
INSECTOS:
ESCARABAJOS COPRÓFAGOS, HORMIGAS Y MARIPOSAS
G. Andrade.
Figura 4.19 Vacíos de información: hormigas.
Figura 4.20 Vacíos de información: mariposas.
Figura 4.21 Riqueza de especies:
escarabajos coprófagos.
82
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Nieto.
Figura 4.22 Riqueza de especies:
hormigas.
Figura 4.23 Riqueza de especies:
mariposas.
Figura 4.24 Endemismos: escarabajos coprófagos.
83
INSECTOS:
ESCARABAJOS COPRÓFAGOS, HORMIGAS Y MARIPOSAS
G. Andrade.
Figura 4.25 Endemismos: hormigas.
Figura 4.26 Procesos ecológicos:
escarabajos coprófagos.
Figura 4.27 Áreas nominadas
para la conservación: insectos.
84
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
PECES
Antonio Machado-Allison, Carlos A. Lasso, José S. Usma, Donald Taphorn, Gilberto Cortes, José I. Mojica, Hernando Ramírez-Gil, Rosa Elena Ajiaco, Ana Isabel Sanabria, Armando Ortega, Juan David Bogotá, Germán Galvis, Martha R. Campos.
Figura 4.28 Subregiones biogeográicas: peces.
Figura 4.29 Subcuencas hidrográicas: peces.
85
PECES
O. Lasso-Alcalá.
Figura 4.30 Esfuerzo de muestreo: peces.
Figura 4.31 Nivel de conocimiento: peces.
Figura 4.32 Vacíos de información: peces.
86
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
Figura 4.33 Riqueza de especies:
peces.
Figura 4.34 Endemismos: peces.
Figura 4.35 Especies amenazadas: peces.
87
PECES
O. Lasso-Alcalá.
Figura 4.36 Valor de uso: peces.
Figura 4.37 Procesos ecológicos:
peces.
Figura 4.38 Áreas nominadas
para la conservación: peces.
88
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
ANFIBIOS Y REPTILES
Andrés R. Acosta-Galvis, J. Celsa Señaris, Fernando Rojas-Runjaic, Hollman Miller Hurtado, John Lynch, Angela Suárez,
Santiago Castroviejo.
Figura 4.39 Subregiones biogeográicas: anibios y reptiles.
Figura 4.40 Esfuerzo de muestreo: anibios y reptiles.
89
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
Figura 4.41 Nivel de conocimiento: anibios y reptiles.
Figura 4.42 Vacíos de conocimiento: anibios y reptiles.
Figura 4.43 Riqueza de especies:
anibios.
90
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
Figura 4.44 Riqueza de especies:
reptiles.
Figura 4.45 Endemismos:
anibios.
Figura 4.46 Endemismos:
reptiles.
91
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
Figura 4.47 Especies amenazadas: anibios.
Figura 4.48 Especies amenazadas: reptiles.
Figura 4.49 Valor de uso: anibios.
92
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
Figura 4.50 Valor de uso: reptiles.
Figura 4.51 Áreas nominadas
para la conservación: anibios y
reptiles.
93
AVES
F. Trujillo.
AVES
Sebastián Restrepo-Calle, Miguel Lentino, Luis Germán Naranjo, William Bonilla, Gary Stiles, Juan David Amaya.
Figura 4.52 Subregiones biogeográicas: aves.
Figura 4.53 Esfuerzo de muestreo: aves.
94
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Figura 4.54 Nivel de conocimiento: aves.
Figura 4.55 Vacíos de información: aves.
Figura 4.56 Riqueza de especies:
aves.
95
AVES
F. Trujillo.
Figura 4.57 Endemismos: aves.
Figura 4.58 Especies amenazadas: aves.
Figura 4.59 Valor de uso: aves.
96
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Figura 4.60 Áreas de importancia
para procesos migratorios: aves.
Figura 4.61 Áreas nominadas
para la conservación: aves.
97
MAMÍFEROS
F. Trujillo.
MAMÍFEROS
Fernando Trujillo, Marisol Beltrán Gutiérrez, Angélica Diaz-Pulido, Arnaldo Ferrer Pérez, Esteban Payan Garrido, Diana
Morales, Fernando Castillo, Sonia Adamia, Eliana Tarazona, Laura Rodríguez.
Figura 4.62 Subregiones biogeográicas: mamíferos.
Figura 4.63 Esfuerzo de muestreo: mamíferos acuáticos.
98
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Figura 4.64 Esfuerzo de muestreo: mamíferos pequeños.
Figura 4.65 Esfuerzo de muestreo: mamíferos medianos y
grandes.
Figura 4.66 Nivel de conocimiento: mamíferos acuáticos.
99
MAMÍFEROS
F. Trujillo.
Figura 4.67 Nivel de conocimiento: mamíferos pequeños.
Figura 4.68 Nivel de conocimiento: mamíferos medianos y
grandes.
Figura 4.69 Vacíos de información: mamíferos acuáticos.
100
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Figura 4.70 Vacíos de información: mamíferos pequeños.
Figura 4.71 Vacíos de información: mamíferos medianos y
grandes.
Figura 4.72 Riqueza de especies:
mamíferos.
101
MAMÍFEROS
F. Trujillo.
Figura 4.73 Endemismos: mamíferos.
Figura 4.74 Especies amenazadas: mamíferos.
Figura 4.75 Valor de uso: mamíferos.
102
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Figura 4.76 Áreas nominadas
para la conservación: mamíferos.
103
BIODIVERSIDAD
LA CUENCA DEL ORINOCO: SÍNTESIS TEMÁTICA Y CARTOGRÁFICA
M. Lentino.
SÍNTESIS TEMÁTICA Y ÁREAS PRIORIZADAS PARA LA
CONSERVACIÓN
Figura 4.77. Áreas prioritarias para la conservación y uso sostenible de la biodiversidad . Cuenca binacional del río Orinoco.
Este capítulo fue elaborado con los aportes de todos los participantes que asistieron al taller que inalmente propusieron las
áreas prioritarias para la conservación. Los mapas deinitivos de las 19 áreas nominadas fueron realizados por: Carlos Sarmiento, Carlos Pedraza, Juliana Rodríguez, Claudia Fonseca, Cesar Suarez y Andrés Felipe Trujillo.
104
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Rial.
Figura 4.78 Alto río Meta.
105
BIODIVERSIDAD
LA CUENCA DEL ORINOCO: SÍNTESIS TEMÁTICA Y CARTOGRÁFICA
M. Lentino.
Figura 4.79 Alto río Guaviare.
106
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Rial.
Figura 4.80 Estrella Fluvial de Inírida.
107
BIODIVERSIDAD
LA CUENCA DEL ORINOCO: SÍNTESIS TEMÁTICA Y CARTOGRÁFICA
M. Lentino.
Figura 4.81 Corredor Bita - Meta - Orinoco.
108
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Rial.
Figura 4.82 Corredor Meta - Casanare.
109
BIODIVERSIDAD
LA CUENCA DEL ORINOCO: SÍNTESIS TEMÁTICA Y CARTOGRÁFICA
M. Lentino.
Figura 4.83 Cusiana (Maní - Tauramena)
110
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Rial.
Figura 4.84 Humedales de Casanare.
111
BIODIVERSIDAD
LA CUENCA DEL ORINOCO: SÍNTESIS TEMÁTICA Y CARTOGRÁFICA
M. Lentino.
Figura 4.85 Humedales de Arauca.
112
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Rial.
Figura 4.86 Río Negro (Estado Táchira).
113
BIODIVERSIDAD
LA CUENCA DEL ORINOCO: SÍNTESIS TEMÁTICA Y CARTOGRÁFICA
M. Lentino.
Figura 4.87 Sabanas inundables del río Apure.
114
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Rial.
Figura 4.88 Macizo de El Baúl.
115
BIODIVERSIDAD
LA CUENCA DEL ORINOCO: SÍNTESIS TEMÁTICA Y CARTOGRÁFICA
M. Lentino.
Figura 4.89 Piedemonte de Barinas.
116
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Rial.
Figura 4.90 Conluencia Caura - Orinoco.
117
BIODIVERSIDAD
LA CUENCA DEL ORINOCO: SÍNTESIS TEMÁTICA Y CARTOGRÁFICA
M. Lentino.
Figura 4.91 Isla de Mamo.
118
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Rial.
Figura 4.92 Corredor Bajo Orinoco - Delta sur.
119
BIODIVERSIDAD
LA CUENCA DEL ORINOCO: SÍNTESIS TEMÁTICA Y CARTOGRÁFICA
M. Lentino.
Figura 4.93 Sierra de Migualida - río Cuchivero.
120
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Rial.
Figura 4.94 Río Ventuari.
121
BIODIVERSIDAD
LA CUENCA DEL ORINOCO: SÍNTESIS TEMÁTICA Y CARTOGRÁFICA
M. Lentino.
Figura 4.95 Cuenca ríos Tomo y Vichada.
122
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Rial.
Figura 4.96 Corredor Medio Orinoco.
123
Catasetum sp. Casanare. Foto. A. Navas.
5.
FLORA Y
VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
A. Navas.
Ángel Fernández, Reina Gonto, Anabel Rial B. y Judith Rosales (Venezuela), Bibiana
Salamanca, Mireya Córdoba, Francisco Castro, Carolina Alcázar, Hernando García y
Alma Ariza (Colombia)
INTRODUCCIÓN
El río Orinoco tiene una longitud de 2.140 km y una supericie de drenaje de 1.014.797 km2 (Palacios 1998), de los
cuales 62,4 % están en Venezuela (644.423 km2) y 38,6 % en
Colombia (Weibezhan 1990, Domínguez 1998). Aún cuando existe abundante literatura sobre su lora y vegetación, la
información se encuentra dispersa, presenta diferentes escalas y su representación geográica no es homogénea, por
lo que el conocimiento del recurso lora en la Orinoquia
dista de ser completo.
aportando información útil para la investigación y los planes de conservación en esta región binacional.
El carácter vulnerable de la cobertura vegetal, principalmente ante los múltiples impactos de origen antrópico hace
que los datos se desactualicen rápida y constantemente. Por
otra parte, determinadas áreas geográicas han recibido
mayor atención que otras, siendo más conocidas aquellas
cercanas a centros poblados, con mayor facilidad de acceso, atractivo biológico e interés especíico para proyectos
de desarrollo o conservación. Así, mientras algunas subcuencas o paisajes de la gran cuenca orinoquense presentan un muy aceptable estado de conocimiento, otras son
casi o totalmente desconocidas para la ciencia, y no solo
en el complejo asunto que representa el funcionamiento de
sus ecosistemas, sino en el reconocimiento que deberíamos
tener de su riqueza vegetal.
En el ámbito de este país, destacan como referencia general
los mapas de vegetación del MARNR (1982, 1985) y Huber
y Alarcón (1988), ambos con aportes sustanciales e indispensables deiniciones para la comprensión de la vegetación de la cuenca. Actualmente en el marco del convenio
entre Conservación Internacional Venezuela, TNC y El
Instituto Botánico de Venezuela irmado en 2007, Otto Huber y Ernesto Medina están preparando respectivamente la
actualizacion del mapa de vegetación publicado en 1998 y
un manual que incluirá las regiones isiograicas, itogeográicas (incluyendo aspectos de paleoecología), así como
la vegetación natural y antrópica, que sin duda representará
una contribución al conocimiento.
A continuación se describen los antecedentes de estudio de
la lora y vegetación en la región Orinoquia de cada país,
Las regiones biogeográicas o bioregiones han sido deinidas por PDVSA (1992) y MARN (2000, 2001). Muy impor-
ANTECEDENTES DE ESTUDIOS
SOBRE FLORA Y VEGETACIÓN
EN VENEZUELA
125
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
yanesa, sin considerar las cuencas que drenan al río Amazonas o al Esequibo, da cuenta de una riqueza de 8.273 especies de plantas, 996 de ellas endémicas (anexo 1), lo que
indicaría que solo en la Orinoquia guayanesa venezolana,
se halla mas del 50% de la riqueza de plantas de Venezuela.
tante, aunque sólo para la región de la Guayana venezolana,
ha sido el proyecto multidisciplinarío llevado a cabo durante las décadas de los ochenta y noventa por CVG-Tecmín
(1987, 1989, 1991a, 1991b, 1991c, 1991d, 1991e), en el cual
se describieron y cartograiaron,-con base en la interpretación de imágenes de radar lateral, de satélite y control de
campo-, el clima, la geología, la geomorfología, los suelos,
la vegetación y la fauna de los estados Amazonas, Bolívar y
Delta Amacuro. En una visión semi detallada de la cuenca
hidrográica binacional, Michelangeli y Fernández (2000)
subdividieron la cuenca en cuatro regiones: Guayano-Orinoquense, Andino-Orinoquense, Planicie-Orinoquense
y Delta-Orinoquense, deinidas por hechos isiográicos y
ecológicos. Domínguez (1998) hizo lo mismo desde el lado
colombiano de la cuenca.
La Flora Vascular de los Llanos de Venezuela (Duno et al.
2007) compila para esta región, aspectos de lora y vegetación que incluye entre otros, la composición lorística de
los bosques (Aymard y Gonzáles 2007), las sabanas (Huber 2007), los morichales (Fernández 2007), la vegetación
acuática (Rial 2007), el análisis de la diversidad lorística de
esta región (Riina et al. 2007) y un valioso catálogo sistemático ilustrado. También resulta importante para el estudio
del recurso lora, la clásica subdivisión de los tipos de sabanas de los llanos de Venezuela de Ramia (1967). Gran parte de esta información se encuentra sintetizada en Huber
(1994), Berry et al. (1995), y Huber et al. (1998), Aguilera
et al. (2003).
Teniendo en cuenta que el acceso a los recursos naturales
debe suponer su previa observación, muestreo o veriicación en campo, y que el reconocimiento de estos en un
área geográica determinada, se relaciona con la escala de
estudio elegida, sabemos que áreas muy extensas evaluadas a pequeña escala, implicarían muestreos a largo plazo
y abundantes recursos inancieros para su ejecución. Sin
embargo, el empleo de sensores remotos, especialmente de
imágenes satelitales, ha permitido la evaluación de grandes
extensiones de terreno con menores campañas de campo,
en períodos de tiempo relativamente rápidos y con presupuestos comparativamente menores. Como ejemplo, dos
estudios del medio natural venezolano: Petróleos de Venezuela (1992) y Chacón-Moreno (1999), ambos representan
visiones diferentes del territorio, y propósitos también distintos, pero los dos implican un aumento en la magnitud y
en la calidad del conocimiento del medio natural evaluado.
Estas técnicas y otras más tradicionales, están presentes en
la síntesis que se presenta a continuación.
Otras monografías han aportado al conocimiento de la
vegetación acuática en Venezuela, destacando la importancia de los corredores ribereños a lo largo de la red luvial
que drena la Orinoquia desde sus nacientes hasta el Delta: las plantas acuáticas de Venezuela (Velásquez 1994) y
las plantas acuáticas de los llanos inundables de Venezuela
(Rial, 2009) cuya lista de especies se publica en el anexo 2
constituyen las únicas referencias de este tópico en el norte
de Suramérica. Por su parte, Colonello (1996) realizó un
inventario de 100 especies de plantas acuáticas en el Delta y
Rosales aporta en este documento un listado de 1837 especies registradas entre el corredor del alto al bajo Orinoco y
los aluentes de la Guayana venezolana (anexo 3).
Una contribución muy relevante al conocimiento de la lora
y la vegetación de áreas remotas y de gran importancia biológica en Venezuela, son los respectivos capítulos de los Boletines RAP, resultantes de las expediciones a la Guayana:
cuencas de los ríos Caura (Rosales et al. 2003), VentuariOrinoco (Rodríguez et al. 2006), Paragua (Fernández et al.
2008) y Ramal de Calderas en los Andes (Stergios y Niño
2010). Igual de importante resulta el estudio de la vegetación del Parque Nacional Canaima (Delgado et al. 2009) en
el libro sobre la biodiversidad de esta área protegida (30.000
km2 ) en la Guayana venezolana y la lista anotada de plantas
ribereñas del Caura (Knab-Vispo et al. 2003).
En cuanto a estudios lorísticos se reiere, los avances se
notan en el tiempo. El primer catálogo de la lora venezolana (Knuth 1926-1928) presentó 6.938 especies, 19 años más
tarde Pittier et al. (1945-1947) contaron 9.211 plantas diferentes en Venezuela y el más reciente inventario (Hokche et
al. 2008) ha presentado 15.820 especies nativas o naturalizadas en todo este territorio.
Por regiones, se ha publicado la lora paramuna (Vareschi
1970), la Flora de la Guayana Venezolana (Steyermark et al.
1995-1998, 1999-2005) y la Flora de los Llanos (Duno et al.
2007). La Flora de la Guayana Venezolana representa una
signiicativa contribución al conocimiento botánico, el uso
y la protección de los ecosistemas vegetales guayaneses; la
selección de especies incluidas solo en la Orinoquia gua-
Dos clasiicaciones climáticas se han ido desarrollando a
la par con los estudios de vegetación en Venezuela. Ewel
et al. (1976) determinaron la existencia de nueve zonas de
vida en la porción venezolana de la cuenca del Orinoco.
126
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Son pocos los estudios a escala regional sobre lora orinoquense (FAO 1966, Sarmiento 1994, Rangel 1998 y Quiñones 2004), donde probablemente las diicultades de orden
público han sido una gran limitante para la colección de
la lora (Vargas y Prieto 2004), especialmente la lora de la
región Andina en las subregiones biogeográicas de Andes
Altos y Andes piedemonte del lanco oriental de la cordillera Oriental.
Esta clasiicación climática, e indirectamente de las formaciones vegetales del país, ha sido de muy amplio uso.
Mientras Walter y Medina (1971) basados en climadiagramas relacionaron la precipitación mensual con la temperatura media mensual para observar de manera sintética,
los períodos de déicit o de exceso de lluvia a lo largo de
un lapso previamente escogido. Finalmente Huber y Riina
(1997) aportan 4500 términos itoecológicos útiles para el
consenso en la terminología cientíica sobre comunidades
vegetales de Suramérica, una obra de referencia que incluye
los aportes de Orlando Rangel y Petter Lowy en Colombia.
Una serie de estudios, en la cordillera oriental de los Andes,
han abordado de manera puntual aspectos de la lora de la
cuenca del Orinoco, como los desarrollados en el Parque
Nacional Chingaza (Madriñan et al. 2000), el Parque Nacional Sumapaz (Oschyra 1990, Rangel 1998, Camargo y
Salamanca 2000, Salamanca y Camargo 2000) y publicaciones ilustradas de Parques Nacionales Naturales de Colombia. Se cuenta además con una revisión de los estudios lorísticos realizados por diversos autores sobre los bosques de
niebla de esta cordillera (Armenteras et al. 2010), el catálogo ilustrado de las plantas de Cundinamarca (ICN 1976) y
los estudios ecológicos para la vegetación de páramo y bosque altoandino en cordillera oriental (Mora y Sturn 1995).
Otros estudios más exhaustivos y locales comprenden los
desarrollados por investigadores del Instituto SINCHI en la
zona de transición Orinoco-Amazónica y Amazónica, y en
la serranía de la Macarena (Barbosa 1990,1992a, Carvajal
y Murillo 2007), región destacada por diferentes botánicos
por su alta riqueza de plantas (Rangel et al. 1995, Stevenson
et al. 2000).
ANTECEDENTES DE ESTUDIOS
SOBRE FLORA Y VEGETACIÓN
EN COLOMBIA
En el territorio colombiano, desde el siglo XVIII se reportan
trabajos de exploración de la lora en la cuenca del Orinoco,
como los liderados por Francisco José de Caldas con particular interés en la distribución de las plantas cultivadas, y
la expedición botánica en la Nueva Granada dirigida por
José Celestino Mutis. Otros grandes naturalistas del siglo
XIX como Alexander von Humboldt y José Jerónimo Triana, generaron un gran aporte al conocimiento de la lora de
la cuenca del Orinoco en Colombia (para más información
ver Rangel y Santana 2004).
A partir de la revisión de Vargas y Prieto (2004) sobre la
lora colombiana, se iniere que el conocimiento de la lora de la cuenca del Orinoco durante el siglo XX tiene su
base en estudios y revisiones de escala nacional de familias
taxonómicas, como Asteraceae (Díaz-Piedrahita y Cuatrecasas 1999), Leguminoseae (Forero 2009), Leguminosae y
Mimosoidae (Forero y Romero 2009), con una sipnósis de
especies del género Mucura (Ruiz 2009), Euphorbiaceae
(Murillo 2004), las tribus Paniceae (Cañas 2001) y Bambusoidae (Londoño 1990). El trabajo de Galeano (1992)
es de especial interés por su aporte a la comprensión de la
distribución de las palmas y presencia de endemismos para
la región Orinoco-Amazónica, al igual que el trabajo de
Quiñónez (2001) quien realizó una revisión para la familia
Melastomataceae en la región. Gran parte de estos trabajos
han sido liderados por el Instituto de Ciencias Naturales de
la Universidad Nacional de Colombia (ICN), mediante numerosas exploraciones, revisiones taxonómicas de grupos
botánicos y descripción de especies de la lora colombiana
(Vargas y Prieto 2004).
Otros trabajos de ámbito local se han centrado en biomas
de tierras bajas, como los estudios sobre la lora en el Parque Nacional El Tuparro (Vincelli 1981, Barbosa 1992b,
Mendoza 2007, Villarreal-Leal 2007), en la altillanura (Rippstein et al. 2001, Carvajal et al. 2007, Castro y Salamanca
2010 en prep.), en los litobiomas (Parra, 2006) y en formaciones de la Guayana (Rudas et al. 2002, Cañas 2008).
Garibello (2000) realizó un estudio particular en bosques
de galería en la cuenca media del río Tomo (Vichada) donde describe la estructura y composición de la vegetación
leñosa del ecotono mediante su caracterización lorística y
isonómica y la variación de los atributos estructurales de la
vegetación ecotonal. Además incluyó la descripción de los
patrones de distribución y variación en la composición de
especies por la inluencia de variables ambientales abióticas
(calidad de drenaje, posición en la red hidrográica, posición en la península boscosa). De manera complementaria,
otras investigaciones han abordado temáticas ecológicas
como el funcionamiento de los ecosistemas de sabana (Sarmiento 1994, Cavelier et al. 1996, WWF- IAVH 2009).
127
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Los avances a escala nacional han permitido deinir grandes
unidades de vegetación y biomas para la Orinoquia (Hernández 1984, Hernández y Sánchez 1992). Especialmente
importantes, para la clasiicación de la vegetación de la Orinoquia, son los trabajos de Cuatrecasas (1958), Holdrige et
al. (1963), Salamanca (1984), van der Hammen y Rangel
(1997) y el trabajo del IGAC (1983) mediante una aproximación cartografía de los bosques en Colombia (IGAC,
1983). Con estos antecedentes, estudios más recientes se
han aproximado a una clasiicación de la cuenca por ecosistemas desde una perspectiva nacional (IAvH 1997, Etter
1997, 1998, IAvH y Ministerio del Medio Ambiente 1998) y
desde una perspectiva regional con la elaboración del mapa
de ecosistemas de la Orinoquia (Romero et al. 2004), liderado por el Instituto Alexander von Humboldt.
Andes de vertiente oriental de cordillera oriental son los
ecosistemas mejor documentados para la Cuenca. Sin embargo, aún estas áreas más atendidas siguen exhibiendo un
conocimiento muy fragmentado y con necesidades de estudios de lora con una visión más amplia que documenten
los patrones de riqueza desde lo local hasta lo regional.
REGIONES Y SUBREGIONES
BIOGEOGRÁFICAS
Siguiendo criterios lorísticos y de vegetación de la cuenca
del Orinoco, se diferenciaron ocho grandes regiones y 29
subregiones (Figura 5.1), andes altos, piedemonte andino,
cordillera de la costa-ramal del Interior, llanos, Amazonas,
Orinoco-Delta y guayanas norte y sur. Colombia presenta
exclusivamente tres de estas regiones biogeográicas : Andes altos, piedemonte andino y Amazonas (selva de transición Orinoco-Amazónica), las regiones de la cordillera de
la costa - ramal del interior y Orinoco-Delta están representadas solo en Venezuela, mientras que los llanos y la
Guayana sur son compartidas por ambos paises.
De acuerdo a esta revisión y la de trabajos biogeográicos sobre la Cuenca (Montes y Mazorra 1998), se puede
concluir que la lora de la Orinoquia colombiana ha sido
abordada principalmente a través de estudios de carácter
nacional para las familias más representativas de la lora colombiana, y a través de la caracterización de la lora en ámbitos locales. Las regiones biogeográicas menos estudiadas
son la altillanura y la transición Orinoco Amazónica. Los
Figura 5.1. Regiones y subregiones biogeográicas: lora y vegetación.
128
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Si bien en Colombia esta diferenciación de subregiones
responde más a una diferenciación por ecosistemas, en Venezuela la deinición de las subregiones responde criterios
lorísticos (itocenosis). En el anexo 4 se sintetiza el análisis
de las variables sobre el estado del conocimiento y biodiversidad en estas subregiones.
realizaron un análisis muy profundo del estado de conocimiento con detalle en cada una de las subregiones. Por este
motivo, los resultados se presentarán de manera fragmentada, donde al inicio de cada uno de los criterios se explica
la valoración global en Colombia, y luego la valoración detallada por región y subregiones en Venezuela.
NIVEL ALTO
ESTADO DEL CONOCIMIENTO
En Venezuela ha habido un esfuerzo de muestreo alto en
varias de las subregiones de la Guayana sur, Delta del Orinoco y los Llanos. Los expertos colombianos consideraron
que ninguna de las regiones y subregiones de la Orinoquia
colombiana pueden considerarse bajo esta categoría.
La evaluación del estado del conocimiento de la vegetación
de la cuenca, consideró tres variables en las 29 subregiones
o itocenosis: a) esfuerzo de muestreo, b) nivel de conocimiento y c) vacíos de información en las subregiones deinidas, empleándose para ello cuatro niveles (alto, medio,
bajo, muy bajo) que categorizan el grado de las variables en
cada subregión.
Venezuela
Región Guayana sur
Para este ejercicio, los expertos de la región de Colombia
hicieron una valoración global para cada uno de los criterios, sin entrar en detalles por criterio en cada una de las
regiones. Por el contrario, los especialistas de Venezuela
La subregión, FV7a, sabanas, bosques y arbustales de la
altiplanicie gran sabana está totalmente incluida en el
Parque Nacional Canaima. En ella, un área cuyo esfuerzo de muestreo puede considerarse adecuado, es el de la
Figura 5.2 Esfuerzo de muestreo: lora y vegetación.
129
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Bolívar, y los macizos Duida y Marahuaca situados más al
suroeste en el estado Amazonas.
Gran Sabana, aunque no en toda su extensión o en todos
sus ecosistemas vegetales. Así tenemos que la vegetación de
Pantepui, un concepto biogeográico deinido para ambientes guayaneses entre 1500 y 3000 m.s.n.m. (Mayr y Phelps
1955, 1967, Huber 1987), es bastante bien conocida para la
cadena de tepuyes limítrofes con la Zona en Reclamación
(Guyana Esequiba), que va desde Roraima tepui hasta la
Sierra de Lema, así como para otros tepuyes ubicados más
hacia el oeste, pero dentro de la Gran Sabana. En estos ambientes, incluso se ha estudiado el alto grado de endemismo y especiación vegetal evolucionado en alguno de ellos
(Steyermark 1986); mientras que las tierras intermedias,
incluyendo amplias áreas de bosque y sabana, han recibido
menos dedicación por parte de la ciencia que la vegetación
de las cimas. Entre los estudios más importantes destacan
desde el reporte de la primera exploración moderna a la
Gran Sabana (Aguerrevere et al. 1939) hasta el mas reciente (Delgado et al. 2009), pasando por varios de dinámica
entre bosques y sabanas (Fölster 1986, Hernández 1987
y Dezzeo 1994), o los de paleoecología tepuyana de Rull
(1991). Por otra parte, Hokche y Ramírez (2008), Ramírez (1993), Ramírez et al. (1988) han dedicado grandes
esfuerzos al entendimiento de los mecanismos de dispersión, polinización, sistemas reproductivos y biología loral
de los arbustales del norte de la Gran Sabana; en tanto que
estudios multidisciplinarios de inventario (clima, geología,
geomorfología, suelos y vegetación), fueron hechos por
CVG-Tecmín (1987), en el marco del Inventario de los Recursos de la Región Guayana que posteriormente han sido
actualizados por CVG-Edelca (2004) y Fernández y Gonto
(2002) para ciertas areas de la cuenca del río Caroní. Particularmente para el bajo Caroní se destacan los estudios de
CVG-Edelca desde las áreas de inluencia alrededor de la
gran represa del Guri hasta la desembocadura (Rosales et
al. 1993).
En cuanto a la Sierra de Maigualida, se llevaron a cabo
algunas colecciones botánicas en helicóptero a ciertos
sectores de este amplio sistema montañoso. Huber et al.
(1997) recabaron 470 números de colección sobre los 1500
m.s.n.m., a los que habría que añadir otros 218 registrados
por Ángel Fernández durante el inventario de CVG-Tecnín. Ningún otro estudio ecológico o de vegetación ha sido
hecho en Maigualida en altitudes mayores a 1000 m.s.n.m.,
exceptuando el conteo y medición de árboles en parcelas
conducido por Huber et al. (op. cit.). En los macizos Jaua,
Sarisariñama y Guanacoco, se han recolectado unos 1500
números botánicos (Huber et al. op. cit.), principalmente
por parte de J. Steyermark, quien produjo también las únicas descripciones de vegetación de esas cimas de arenisca,
(Steyermark y Maguire 1972 y Steyermark y Brewer-Carías
1976).
Región Orinoco-Delta
La subregión bosques y herbazales del Delta (FV9a) ha
sido muestreada con intensidad debido al especial interés
que suscita esta porción de la Orinoquia. Del siglo antepasado datan las colecciones en el bajo Orinoco de Rusby
(1896) y Rossi-Wilcox (1993) y de mediados del pasado,
los contínuos programas de investigación de la Fundación
La Salle de Ciencias Naturales, la Universidad Central de
Venezuela y el Ministerio del Ambiente. Las concesiones
para la explotación del palmito o palma manaca (Euterpe
oleracea), el decreto de Reserva de Biósfera para el área
del medio y bajo Delta, así como el reciente desarrollo de
los ricos campos petroleros deltanos, permitieron el registro de copiosa información de lora y vegetación en todos
los ambientes de este inmenso ecosistema deposicional,
CAPRODEL (1982), Canales (1985), CVG-Tecmín (1991),
Colonnello (1995), González (2003) y mas recientemente,
el capítulo en el boletín RAP Delta del Orinoco-Golfo de
Paria de Colonello (2004). Esta región cuenta además, con
varias iguras de protección como el Parque Nacional Mariusa y la mencionada Reserva de Biósfera Delta del Orinoco.
La subregión FV7b1, herbazales, arbustales y bosques
montanos de los tepuyes occidentales incluye a algunos
de los macizos de roca arenisca del estado Amazonas conocidos como tepuyes occidentales y que han recibido
cierta intensidad de muestreo, principalmente inventarios
botánicos y zoológicos. El conjunto formado por los cerros
Duida, Marahuaka y Huachamacari en el centro de este
Estado fueron estudiados por Brewer Carías (1976), Colonnello (1984), Michelangeli et al. (1988), CORPOVEN
(1984), Delascio y Steyermark (1989) y Michelangeli (1989,
2005). Por su parte, Steyermark y describieron los tipos de
vegetación y listaron las plantas recolectadas en el Parque
Nacional Jaua-Sarisariñama, concluyendo en la gran ainidad entre estos cerros de arenisca ubicados en el estado
Región Llanos
La subregión sabanas de llanos altos centrales, FV10b,
por su cercanía a centros poblados, a algunos de los mayores centros de investigación del país y por ser una zona
de importante aprovechamiento agrícola y pecuario, ha
recibido más atención que otras subregiones más alejadas
o de difícil acceso. Entre los esfuerzos de conocimien-
130
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
1990, Rangel 1998, Madriñan et al. 2000) y los páramos de
Santa Isabel, Chitaga y Tamá (Rangel 2000) han dejado una
serie de estudios que documentan la riqueza y endemismo
de la vegetación de estos ecosistemas. Gran parte de los estudios en la Serranía de la Macarena se han centrado en
describir la vegetación de los bosques altos de las cimas y
laderas (Barbosa 1990, 1992a, Rangel et al. 1995, Carvajal y
Murillo 2007) y los bosques bajos y medios de la Serranía
(Cárdenas et al. 1997).
to botánico y ecológico en la subregión cabe destacar los
inventarios que desde hace más de 40 años se vienen haciendo en las sabanas de la Estación Biológica de los Llanos (Blydenstein 1961, 1962, 1963, Aristeguieta 1966, Monasterío y Sarmiento 1968, Sarmiento y Monasterío 1971,
San José y Fariñas 1983, Fariñas y San José 1985, San José
et al. 1991); así como la caracterización de los ambientes
vegetales del Parque Nacional Aguaro-Guariquito de Montes et al. (1987), el corte ecológico del estado Guárico de
Sarmiento y Monasterío (1969) y Monasterío (1971), o la
clasiicación itosociológica de las sabanas de este sector
llanero de Susach (1989). Más recientemente, los estudios
de suelo y paisaje aportaron información sobre los tipos
de vegetación asociados a estos, y sobre la composición
lorística del área Berroterán (1988, 1998). También se estudiaron las particulares comunidades llamadas “congriales”
(Hernández 1999), dominadas por Acosmium y Caraipa en
los ambientes inundados. En el marco del proyecto GEF a
cargo de WWF y Fudena “Conservación y uso sustentable
de la biodiversidad en la ecorregión de los llanos” se estudió
la vegetación en los predios privados de esta región (Rial
2006) y se analizaron para el CYTED, algunos factores de
amenaza en esta región (Rial 2005).
Para Colombia, la región de los Andes piedemonte esta
conformada por el orobioma subandino, y las selvas húmedas (zonobioma húmedo tropical) del piedemonte Arauca
– Casanare, piedemonte del Meta, el piedemonte Ariari Guayabero en las estribaciones de la Serranía de la Macarena y el piedemonte amazónico, que de manera conjunta
conforman la unidad FV1c en el mapa de regiones (Figura
5.1). A esta zona corresponden los muestreos de bosques
hechos en el Sarare (Norte de Santander), en las zonas de
abanicos aluviales (Viña 1995). Para el departamento del
Meta, otros estudios de carácter local han descrito la vegetación, como los liderados por Rangel (1998) en el municipio de Acacias. Para la subregión de inluencia de la
Sierra de la Macarena, Cárdenas et al. (1997), mediante un
trabajo más de ámbito regional, se han descrito diferencias
en la composición de especies dominantes en los paisajes
aluviales de piedemonte y en las terrazas altas. Para los bosques del río Duda, Stevenson et al. (2000) destacan el alto
epíitismo y la abundancia de lianas y palmas en estos ecosistemas. En un estudio que adelanta el Instituto Alexander
von Humboldt con apoyo de ECOPETROL para los llanos
orientales de Colombia, se ha identiicado una alta diversidad de ecosistemas de bosques de piedemonte y sabanas
de piedemonte en el municipio de Tauramea (Casanare),
que se destacan por árboles de gran porte con inluencia
de los bosques andinos. En resultados preliminares (Castro
y Salamanca en prep.), han reportado 322 especies de lora
vascular y se espera incrementar el esfuerzo de muestreo
en esta zona mediante parcelas de 0.1 Ha en los bosques
remanentes (bosques subandinos y aluviales de la cuenca
del río Chitamena), como parte de las prioridades de conservación identiicadas en el mencionado proyecto.
Otro aspecto de suma importancia en el establecimiento de
la vegetación en los llanos es la presencia de corazas lateríticas en los suelos, localmente denominadas “arrecifes”. Su
distribución y efectos en las plantas fueron investigados entre otros, por Santamaría y Bonazzi (1963) y mencionados
por Schargel (2007), quien explicó su existencia como consecuencia del levantamiento del paisaje y la profundización
de la mesa de agua.
NIVEL MEDIO
Colombia
En Colombia, las dos regiones de inluencia andina (Andes
altos y Andes piedemonte) son probablemente las que han
presentado un mayor esfuerzo de muestreo. Los denominados Andes altos están conformados por las subregiones de
orobioma de páramo (FV5b), orobioma andino y altoandino del lanco oriental de la cordillera oriental (FV5a) y el
zonobioma húmedo tropical de la Serranía de la Macarena
(FV5c).
En términos generales, los trabajos descritos han sido exhaustivos pero de carácter local, lo que de alguna manera
permite tener un buen estado de conocimiento de biodiversidad de tipo alfa, pero no un análisis comparativo a nivel
regional que permita entender como se distribuye y estructura de manera comparativa la riqueza de especies dentro y
entre estas grandes regiones biogeográicas.
Una gran tradición de investigadores y estudios de vegetación de páramo y bosques altoandinos con énfasis en los
ecosistemas circundantes a Bogotá (Cleef 1981, Oschyra
131
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Venezuela
mosaceae, Fabaceae y Euphorbiaceae, en tanto que Ochoa
(1998) determinó los impactos que la explotación forestal
tiene en la composición y estructura de los bosques.
Región Andes piedemonte
En Venezuela, el área de bosques semicaducifolios del piedemonte andino medio, (FV1b), comprende el sector más
bajo de la cordillera andina, principalmente en los estados
Barinas y Portuguesa. Algunos estudios de composición
lorística y estructura se han realizado en estos ambientes
de mesas y colinas, entre ellos Cuello et al. (1989), en la
cuenca media del río Portuguesa en donde se registraron
471 especies de plantas en 600 ha de relictos boscosos y sabanas del borde entre piedemonte y llanura. Stergios y Niño
(2010) estudiaron la lora y la vegetación en el gradiente
altitudinal entre los 1100 y los 3400 m.s.n.n. incluyendo cafetales de sombra, como principal ecosistema agrícola del
Ramal de Calderas, registraron 477 especies, cuatro de ellas
nuevas para la ciencia, así como 254 extensiones de distribución para el área. La dinámica de los cambios de la cubierta vegetal y de la erosión en los alrededores de Guanare
también ha sido estudiada por Rengel et al. (1983).
Región Orinoco-Delta
Con presencia solo en Venezuela, la subregión FV9b de
bosques, arbustales y herbazales inundables del Corredor Bajo Orinoco contiene varíos tipos de vegetación, por
lo general todos inundables al menos en temporada de
aguas altas. La subregión Orinoco bajo, también ha sido
objeto de intensos muestreos botánicos desde las incursiones de los expedicionarios Loeling, Humboldt y Bonpland,
hasta los mas recientes -desde Caicara hasta el comienzo
del Delta Superíor- entre los que destacan los estudios de
Mapire, conluencia Caura-Orinoco, Corredor Orinoco,
Caicara (Rosales 1988, Colonnello 1990, Diaz y Rosales
2006, 2008, Rosales et al. 2008 y Diaz 2009). Díaz y Rosales
(2006) reportaron 319 especies de plantas en 200 km del
corredor bajo Orinoco entre Almacen y el Delta Superior
en los siguientes ambientes: herbazales y arbustales inundables asociados a barras arenosas de canal, arbustales
inundables en márgenes deposicionales y remansos, praderas de macróitas acuáticas, bosques inundables de alturas medias en cubetas o depresiones y bosques inundables
de alturas bajas a medias en diques o albardones y bancos
de islas y complejos de orillar. Similares patrones fueron
reportados por Díaz (2009) quien hizo un listado de 110
especies para el corredor en las inmediaciones de Caicara
del Orinoco. Cifras semejantes son reportadas para la conluencia del río Mapire en el Orinoco y del Caura a la altura
del aluente Sipao.
En la subregión FV1c, bosques siempreverdes del piedemonte andino sur, una parte del piedemonte contiene
bosques y sabanas que se prolongan hacia los parques nacionales Tamá y Tapo Caparo y hacia el área de inluencia
del sistema de embalses Uribante-Caparo. La composición
lorística de estos bosques submontanos es poco conocida.
Es posible que las listas de especies que Bono (1996) realizó en la porción tachirense de esta subregión, puedan ser
extendidas hasta los bosques del noreste, a pesar de que la
precipitación aumenta también en este sentido. Por otra
parte la evaluación y cuantiicación de la supericie del tapiz vegetal del área de inundación de uno de los embalses
del sistema Uribante-Caparo, produjo información sobre
algunas formaciones vegetales que fueron caracterizadas
muy sucintamente por López et al. (1999).
Región llanos
En Venezuela, los ambientes de la subregión sabanas de
llanos orientales (FV10c) han sido estudiados tanto desde la óptica ecológica, como lorística o de manejo (Pittier
1942, González 1986 y Dezzeo et al. 2008). Las sabanas de
este sector de los llanos son secas, pobres en nutrientes,
con suelos que clasiican principalmente como ultisoles y
sometidas a un fuerte régimen de lluvia-sequía (Berroterán 1988). Están dominadas por Trachypogon spicatus y
generalmente con coraza plintítica subsupericial (Schargel
2007), lo que diiculta la penetración de las raíces de los
árboles, del arado y por consiguiente de los cultivos. Son
característicos de esta zona los morichales abiertos o densos, en concordancia con la amplitud de los cauces, la etapa
evolutiva de la comunidad y la afectación humana (Fernández 2007) han sido estudiados además por Aristeguieta
(1968a), González Boscán (1986), Montes et al. (1987) y
Ponce et al. (2000).
Región Guayana norte
Esta región solo esta representada en Venezuela, en cuya
subregión FV6b, sabanas arbustivas orientales del norte
de la Guayana Ramia (1961) caracterizó las sabanas a escala regional; mientras que Díaz (2007) y Díaz y DelascioChitty (2007) elaboraron un catálogo de la itodiversidad
en los alrededores de Ciudad Bolívar, recopilando así información etnobotánica regional. En el borde noreste de esta
subregión, colindante con la subregión bosques y herbazales del Delta, se encuentra la porción más noroccidental de
la Reserva Forestal de Imataca. Guevara et al. (2006) señalaron que en ella crecen 860 especies de árboles, siendo
las familias más diversas Rubiaceae, Caesalpiniaceae, Mi-
132
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Región Cordillera de la Costa
dominadas por Paspalum pectinatum, sabanas hiperestacionales. Otros trabajos en esta región son las parcelas de
0,1 ha. para la subregión de sabanas de altillanura húmeda
(FV3a), con énfasis en bosques de piedemonte (Pérez 2005)
y en morichales (Caro 2008).
Solo presente en Venezuela, en la subregión FV11, áreas
especíicas de los bosques montanos y submontanos de la
Cordillera de la Costa han sido visitadas por botánicos y
ecólogos. Sus conclusiones y resultados pueden ser extrapolados a sectores similares de la cordillera, como es el caso
del inventario de lora y vegetación del cerro Platillón en el
estado Guárico (Meier 2005) en el cual se registraron 330
colecciones botánicas, a partir de las cuales se diferenciaron
seis tipos de vegetación y más de 250 especies de plantas,
de las cuales 174 fueron nuevos registros para este estado
llanero.
Venezuela
Región Andes Altos
En Venezuela, de los bosques, arbustales y páramos del
orobioma andino semihúmedo, subregión FV5a, existe
información de ambientes que han sido muestreados especíicamente. A pesar de que algunos estudios han implicado un alto nivel de esfuerzo (Baruch 1984), la mayor parte
de estas áreas, incluso biomas, pueden considerarse poco
exploradas. En el caso de las loras o catálogos a nivel de
entidad política o región biogeográica, el esfuerzo de recolección en el campo y la obtención de datos de herbario
han implicado un enorme esfuerzo. Aunque parte de esa
lora, como la de los páramos de Vareschi (1970), Ortega
et al. (1987), Ricardi et al. (1987, 1997), Bono (1996), Santos-Niño et al. (1997), Dorr et al. (2000), Cuello (2002) o
los catálogos de Briceño y Morillo (2002, 2006) cumplen
con el precepto de la restricción geográica, se espera que
la existencia de estos precisos estudios, motive e impulse
en el corto plazo la elaboración de la lora de los Andes venezolanos.
NIVEL BAJO
Colombia
Son diversas y numerosas las regiones que exhiben un nivel
de muestreo bajo en el territorio colombiano. El esfuerzo de
muestreo en los diferentes ecosistemas de los Andes altos
colombianos ha estado muy centrado en los departamentos
de Cundinamarca y Boyacá, pero ha sido bajo en otros departamentos con una representación alta de bosques andinos, altoandinos e incluso páramo. Algunos autores como
Salaman et al. (2002) han descrito la lora de los bosques de
niebla en el municipio de Medina (Cundinamarca), y Castaño (1991) la vegetación de los bosques nublados del Parque Nacional Picachos (municipio La Uribe) y del Parque
Nacional Sumapaz (municipio de San Luis de Cubarral) en
el departamento del Meta.
Región Andes-piedemonte
Esta subregión que corresponde a bosques semicaducifolios y arbustales xerofíticos del piedemonte andino norte, FV1a ha pasado casi desapercibida para los estudiosos
de la ciencia vegetal. Colinda con los bosques submontanos
de la subregión FV11 en donde Delascio (1994) y Meier
(2005) hallaron una mediana diversidad de plantas. En general, el relieve colinoso, los valles y los planos inclinados
de las mesetas de esta subregión se encuentran muy intervenidos por la quema, la ganadería y las actividades urbanas y periurbanas, quedando relictos de bosques originales
en el fondo de los valles y algunas cumbres, mientras que el
resto del área esta hoy día ocupado por sabanas.
Para la región amazonica de Colombia, los esfuerzos para
su conocimiento han sido más enfocados a la descripción
a nivel de paisaje de las diferentes formaciones vegetales
(Etter et al. 2001), con énfasis en los bosques densos y semidensos del complejo Vaupés y los de selvas del norte del
Guaviare (López et al. 1996). El informe sobre el estado
de la biodiversidad en Colombia: piedemonte, sabanas y
bosques asociados al norte del río Guaviare (Romero et al.
2009) presenta inventarios de lora actualizados y destaca
la falta de información en la Serranía de la Lindosa (Guaviare).
Región Llanos
Para la subregión de las sabanas inundables, FV2 se presenta una homogeneidad lorística generalizada en el caso
de las sabanas graminosas, con diferencias debidas a la permanencia del agua en el suelo, la posición isiográica y tipo
de suelo (Ramia 1977, Ramia y Ortiz 2006). Para San José et
al. (1998) la diversidad de las sabanas bien drenadas de esta
subregión está condicionada por la concentración de calcio
El estudio de Mendoza (2007) en el Parque Nacional Natural El Tuparro (Vichada) ha sido uno de los grAndes
aportes al conocimiento de la vegetación de la región de los
llanos en Colombia. Como parte de este trabajo, se realizaron inventarios en sabanas estacionales dominadas por Heteropogon contortus, sabanas estacionales en regeneración
133
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
De mucha mayor extensión es la Gran Sabana. Richard
Schomburgk en 1838 (Schomburgk 1840) y heodor
Koch-Grünberg en 1911 (Koch-Grünberg 1979) visitaron
y dieron a conocer sus observaciones de índole geográico,
botánico y etnográico en esta enorme extensión de la Guayana. Puede considerarse la de Aguerrevere et al. (1939) la
primera exploración cientíica, de la cual provienen unos
de los primeros datos geológicos, geomorfológicos, botánicos y de potencialidad de uso de sus terrenos, aunque
gran parte de la información haya resultado inexacta. Más
recientemente, los libros de la serie Scientia Guianae editados por Rosales y Huber (1996), Huber y Rosales (1997) y
Vispo y Knab-Vispo (2003) presentan un gran compendio
de estudios ecológicos y humanos de la cuenca del Caura,
inventarios lorísticos, ecología y etnoecología de bosques
de una de las cuencas más pristinas del mundo. Hacia el
este se encuentran los bosques limítrofes con la Guayana
Esequiba, que van desde el piso tropical hasta los bosques
montanos de la Gran Sabana y fueron inventariados lorística y estructuralmente por CVG-Edelca (2001) con ocasión de los estudios del tendido eléctrico a Brasil.
y carbono orgánico en el suelo, por el contenido de nitrógeno, la densidad aparente del suelo y por la disponibilidad
de agua. Estudios en estos ambientes han dado lugar a los
catálogos de la lora local. Entre ellos Rondeau (1989) y
Rial (2009) ambos en humedales, en tanto que Cuello et al.
(1989), Hernández y Guevara (1994), Stergios et al. (1998)
y Lozada et al. (2006) investigaron en bosques. Siguiendo
la escuela de Braun Blanquet, Castroviejo y López (1985) y
Galán de Mera et al. (2006) aportan sendos estudios itosociológicos para las sabanas del Frío en los llanos inundables
del estado Apure.
En el límite norte de la subregión FV3c, sabanas de altillanura seca eólica con la región de las sabanas inundables
en el estado Apure, Ramia (1977) reportó la fenología de
29 especies y la relacionó con los niveles de inundación,
de permanencia de agua en el suelo, el tipo de suelo y el
paisaje, coincidiendo con (Rial 2006) en que la distribución
de las especies de plantas está condicionada principalmente
por la profundidad de la inundación, seguida por el factor
suelo, el efecto del pastoreo aunque no fue medido se reconoce como importante también.
En Amazonas, hacia la cuenca baja del río Cataniapo se realizaron inventarios de las plantas con lores de los bosques
húmedos (Castillo 1992), dando como resultado listas de
especies, descripciones de tipos de vegetación y de decenas
de plantas nuevas para la ciencia, pese a lo cual los bosques
de tierra irme o de los interluvios, son aún desconocidos.
Región Guayana Sur
En la subregión FV7c, bosques húmedos de la Guayana
oriental los muestreos han confrontado las diicultades
propias del trabajo en áreas selváticas y las consecuencias
han sido en todos los casos de enorme trascendencia, dada
la complejidad de acceder y permanecer en dichas areas. Es
el caso de la expedición de Eugene André, quien remontó
el Caura a comienzos del siglo pasado con el in de llegar
al cerro Ameha (actual cerro Guanacoco), al cual le fue imposible ascender. Ya de regreso, portando una gran carga de
material colectado en las canoas, trambucó en los raudales
de Arichí (André 1964). El balance trágico de dicha expedición dejó varíos hombres muertos, la pérdida de una extraordinaria colección biológica y un largo paréntesis en el
conocimiento de gran parte de la cuenca del río Caura que
duró casi 35 años hasta que Llewelyn Williams, botánico
del Servicio Forestal de los Estados Unidos, inició la exploración del bajo y medio Caura, contratado por el Servicio
Botánico del Ministerío de Agricultura y Cría (Williams
1940, 1941, 1942).
Región llanos
Las sabanas de galeras, subregión FV10a, han tenido poca
atención por parte de botánicos y ecólogos vegetales a pesar de su interesante litología, compuesta por rocas sedimentarias que dan origen al relieve de galeras. Se trata de
ilas montañosas de unos 500 m s.n.m. que representan las
estribaciones suroccidentales de la Serranía del Interior.
Están cubiertas por sabanas, bosques de galería, bosques
caducifolios y matorrales que apenas han sido estudiadas
por Ramia y Delascio (1982) y Ramia (1993).
NIVEL MUY BAJO
Colombia
Dos de los inventarios puntuales en esta subregión son el
de Salas et al. (1997) en el río Tabaro, aluente del Nichare
y el de Bernardi (1957) en el río Apacará aluente del alto
río Caroní, en donde el autor en compañía de Ruíz Terán,
encontró 231 árboles > 37 cm. de DAP en 2,5 ha, con los
cuales calculó el volumen de madera en pie.
En Colombia la región de los Llanos y en particular las
sabanas altas del Vichada y las sabanas de la Guayana sur
entre los ríos Vichada e Inírida son las que presentan un
menor esfuerzo de muestreo.
134
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Venezuela
en prep.), de las catingas de la Esmeralda (Coomes y Grubb
1996) y la lora al sur de la Sierra de Maigualida en parcelas
de 1 ha hechas por Zent y Zent (2004).
Región llanos
La subregión sabanas de altillanura seca, FV3b, apenas
cuenta con algunas descripciones de suelos y paisajes (Comerma y Luque 1971) y descripciones puntuales de suelos y
vegetación (Schargel y Aymard 1993) con alguna referencia
al uso religioso del yopo (Anadenanthera peregrina) (David
1971).
Entre la escasa información obtenida en los bosques de la
subregión de sabanas inundables de arenas blancas Inírida-Atabapo, FV8, mencionamos el inventario de los tipos
de vegetación y la lora asociada de bosques de tierra irme
de Aymard et al. (1989) con ines de explotación comercial
de las poblaciones naturales de caucho (Hevea sp.) cercanas
a San Fernando de Atabapo a cargo de la Corporación Venezolana de Guayana. Igualmente se realizó una colección
de 110 especies del bosquecillo inundable desde el corredor
ribereño del río Temi hasta su conluencia con el Guasacavi
(Berry y Rosales en prep.).
Región Guayana norte
La subregión FV6a, sabanas arboladas occidentales del
norte de la Guayana, a pesar de la riqueza de su lora (Fernández en prensa) ha sido poco visitada. Boom (1990a) y
Gröger (2000) han reportado la diversidad de especies, el
primero en bosques tropóilos y sabanas en lo que consideró el límite entre la Guayana y los Llanos, mientras que
Gröger muestreó las comunidades de plantas que crecen
en las lajas (inselbergs) de la región. Una importante contribución es el inventario forestal exploratorio en una gran
extensión de bosques de la subregión (OTEHA 1971).
En la subregión FV12, bosques en áreas de aloramientos,
se han hecho algunos inventarios en los bosques ribereños
de los cauces bajos y medios de los ríos Cuao, Sipapo y Autana (Camaripano-Venero y Castillo 2003, Fedón y Castillo
2005, Avendaño y Castillo 2006). En ellos se ha caracterizado el estrato arbóreo, el arbustivo o el componente lianiforme desde un punto de vista lorístico y en sectores muy
localizados.
Región Guayana Sur
En la subregión FV7b2, herbazales, arbustales y bosques
montanos de los tepuyes orientales, se han podido estudiar algunas de sus cumbres. La cima del Auyán tepui (Steyermark 1967) o las laderas medias y superíores de Ptari
tepui, en este último caso no se halló ruta de acceso a la
cima (Steyermark 1966). Con las modernas expediciones
en helicóptero, Steyermark y Maguire (1984a) ascendieron
a las cumbres del Marutaní en el alto río Paragua. De singular relevancia es el estudio ecológico multidisciplinarío
del Chimatá tepui (Huber 1992) que lo convierte en el más
conocido y probablemente el que más interrogantes ha respondido a la ciencia.
Entre los pocos estudios de composición lorística y estructural que se han llevado a cabo en bosques húmedos del
alto Orinoco, (FV13) destaca el de Aymard (2000) en el
cual se reportaron 505 especies de plantas en tres tipos de
bosques de tierra irme, diferenciados por su composición
lorística y estructura. Al este, en la cuenca media y baja
de río Orinoquito, aluente del alto Orinoco, Fernández y
Gonto (en prep.) encontraron bosques no inundables de
20-30 m de altura y 60-90% de cobertura, y bosques inundables de 10-12 m de alto y 80 % de cobertura de copas.
En los conucos abandonados por los yanomami del lugar,
con más de 25 años de descanso se hallaron bosques secundaríos con 6-20 m de altura y coberturas de 20-70%. La
lista de plantas colectada en estos sectores alcanzó las 390
especies. Estos bosques limitan y gradan a los bosques de la
subregión FV7d.
Región Amazonas
En los bosques húmedos de Guayana occidental, FV7d
o tierras bajas de la Guayana (excluyendo a los bosques ribereños o corredores luviales), tal vez la gran extensión de
esta subregión haga parecer que los estudios llevados a cabo
hasta ahora no sean suicientes para explicar la riqueza y la
complejidad de sus ecosistemas vegetales. Si se compara,
en terminos relativos de supericie, la cantidad de incursiones y estudios realizados en estos bosques con las llevadas
a cabo en los tepuyes, queda claro que el esfuerzo dedicado
a las tierras bajas es muy bajo y geográicamente disperso.
Prueba de ello son los inventarios de Lasso et al. (2006) en
la cuenca del Ventuari, las listas de especies y tipos de vegetación de la cuenca del río Orinoquito (Fernández y Gonto
Región Orinoco-Delta
En los bosques, arbustales y herbazales inundables del
Corredor Medio Orinoco, subregión FV9c, Richard
Spruce colectó plantas en los bosques de ribera, desde La
Piedra de Cocui, en el sur del estado Amazonas hasta Maypures, donde pasó algún tiempo enfermo en el año 1854 y
de donde obtuvo una larga lista de plantas que acompaña
los relatos de su viaje (Spruce 1996). Aparte de este y otros
pocos viajeros, el esfuerzo por inventariar y publicar la lora
135
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
de este corredor, como se ve, ha sido muy bajo. La publicación más reciente (Parra 2006) se reiere al Vichada e incluye parte del corredor alrededor entre las conluencias de los
ríos Vichada y Meta.
NIVEL ALTO
La subregión FV9d o bosques, arbustales y herbazales
inundables del Corredor Alto Orinoco es menos conocida. Es posible que las comunidades vegetales ribereñas
sean muy parecidas a las halladas en los alrededores de San
Carlos de Río Negro o a las que están entre San Fernándo de Atabapo y La Esmeralda. En esta región las mayores
colecciones las ha emprendido Basil Stergios junto a otros
botánicos del Herbario de Guanare. Muchos otros colectores han pasado por estos bosques de ribera, muchos han
colectado desde la época en que Humboldt y Bonpland lo
hicieron, pero lamentablemente no han dejado registro escrito de sus hallazgos.
En concordancia con el esfuerzo de muestreo, para Colombia ninguna de las regiones evaluadas pueden ser catalogada con un nivel de conocimiento alto.
Colombia
Venezuela
Región llanos
Debido a que el alto esfuerzo de muestreo generalmente se
traduce en alto nivel de conocimiento, a la subregión sabanas de llanos altos centrales (FV10b) se le ha asignado
esta categoría dada la cantidad de estudios llevados a cabo
en la Estación Biológica de los Llanos, extrapolables a gran
parte de los llanos altos centrales. Fuera del área de inluencia de la Estación, ya a mediados del siglo pasado, Pittier
(1942), con base en sus exploraciones, caracterizó los tipos
de vegetación de la Mesa de Guanipa e hizo consideraciones acerca de sus relaciones itogeográicas. Los bosques
caducifolios, uno de esos tipos de vegetación, son típicos
NIVEL DE CONOCIMIENTO
Los niveles de conocimiento de la lora y vegetación se
muestran en la igura 5.3.
Figura 5.3 Nivel de conocimiento: lora y vegetación.
136
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
restal de Caparo. La lora de otro sector del piedemonte, La
Mesa de Cavacas, asiento de la Universidad Nacional Experimental de los Llanos es otro proyecto que está siendo
editado desde hace algunos años (Stergios 1984) e implica no sólo el estudio taxonómico de la itodiversidad del
área, sino también la deinición de los tipos de vegetación
presentes. Veillon (1997) analiza la estructura, la composición, la distribución diamétrica de las especies arbóreas y el
volumen de fustes para diferentes tipos de bosques de este
sector del piedemonte llanero.
de este sector del llano y fueron estudiados por Aristeguieta (1968b), mientras que las sabanas y la relación existente
entre el agua en el suelo, la isiografía y el tipo de vegetación, fueron caracterizadas por Ramia y Ortiz (2006). La
respuesta de las plantas del ambiente llanero -en cuanto a
su capacidad reproductiva- ante el efecto de las quemas,
fue preocupación de González (1967) y Lourido y Bastardo
(1986), estos últimos airmaron que el factor determinante
en la composición lorística, en los cambios en la diversidad
y la equidad de las especies es el fuego y al mismo tiempo
proponen que los criterios para clasiicar las sabanas de
la región deben ser lorísticos, ecológicos y edáicos; otro
proceso importante conocido es la variación de los tipos de
vegetación en función de los cambios en la topografía, que
para Ponce et al. (1994) es debida a cambios en el contenido
de arcilla del suelo, a la forma del relieve y a la disponibilidad de agua, todo medido en cinco tipos de vegetación
típicos de esta subregión.
El amplio conocimiento que se tiene en esta subregión
acerca de plantas con uso medicinal está expresado en Vera
y Pabón (1999) quienes señalan 114 especies identiicándose las dolencias contra las cuales se utilizan.
Más al sur, en la subregión FV1c, bosques siempreverdes
del piedemonte andino sur, el mayor grado de precipitación es propicio para los bosques de carácter siempreverde.
Existen detalladas descripciones de los tipos de vegetación,
listas de especies y análisis itogeográicos de esta subregión publicados en la Flora y Vegetación del estado Táchira
(Bono 1996). La existencia de cuatro paisajes ecológicos,
uno dominado por selvas altas, otro por sabanas húmedas,
otro por esteros y el último por sabanas húmedas en relieve de médanos fue reportada por Sarmiento et al. (1971b),
estos ocurren hacia el borde occidental del Estado Apure,
en el contacto con las primeras elevaciones del piedemonte.
Los autores discuten la génesis de las unidades de relieve,
los suelos y la vegetación.
En cuanto a ecología de comunidades en la subregión, Ramírez (2002) estudió la fenología reproductiva, las formas
de vida y la relación con el hábitat de 17 especies propias
de los ambientes vegetales típicos: sabanas, bosques, ecotonono bosque-sabana y vegetación secundaria. La cubierta
boscosa de la subregión tiene isonomía de bosques caducifolios a brevicaducifolios, con “matas de sabana”, bosques
de galería, o con árboles dispersos en la sabana (San José
y Fariñas 1983, Montes et al. 1987). La autoecología de
algunas especies propias de los chaparrales de las sabanas
también ha sido estudiada, como ejemplo, Foldats y Rutkis
(1975) analizaron la fenología y las tasas de transpiración
de Curatella americana y de Byrsonima crassifolia.
Región Guayana sur
El nivel de conocimiento de la subregión sabanas, bosques
y arbustales de la altiplanicie de Gran Sabana, FV7a, es
bastante aceptable, quizá por la atracción que la región ha
ejercido desde siempre. Al inicio de la década de los años
treinta del siglo pasado, la Comisión de Límites con Brasil
produjo un informe que no fue editado sino 10 años más
tarde (Vegas y Vegas 1944) pero que habia venido siendo
utilizado por funcionarios y viajeros que se dirigían a la
Gran Sabana. El informe es muy preciso en toponimia, hidrografía y otros datos de geografía física.
NIVEL MEDIO
Colombia
En Colombia, se considera que algunos de los ecosistemas
o subregiones de los andes altos pueden tener un nivel medio de conocimiento. Esta apreciación esta sustentada en
los diferentes estudios sobre la lora de páramo, subpáramo
y bosque altoandino de la Cordillera Oriental, en particular
para los departamentos de Cundinamarca y Boyacá.
Listas de árboles y estructura de algunos bosques montanos
se presentan en CVG-Edelca (2001). Mientras que Ramírez et al. (1988) analizan la estructura y composición de los
arbustales que crecen sobre los sustratos desarrollados a
partir de la roca arenisca de la Gran Sabana. En esta misma
región, las comunidades inundables de palmas dominadas
por la especie Mauritia lexuosa, conocidas en Venezuela
como morichales y ampliamente extendidas en la Gran Sa-
Venezuela
Región Andes-piedemonte
En los bosques semicaducifolios del piedemonte andino
medio, subregión FV1b, Finol (1976), realizó sus estudios
itosociológicos clásicos, principalmente en la Reserva Fo-
137
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
bana, donde alcanzan el punto máximo de su distribución
altitudinal, apenas cuentan con el estudio de Terán y Duno
(1988) en el que se caracterizó su isonomía y composición
de especies.
to Natural Cerro Platillón sabanas secundarias, bosques
nublados, arbustales, matorrales y herbazales sobre sustrato
rocoso. El resultado lorístico reportó 174 nuevos registros
para la lora del estado Guárico, en apenas 330 colecciones,
lo que demuestra el estado de desconocimiento de la lora
montana de este sector de la cuenca orinoquense.
Por otra parte, entre las evaluaciones del desarrollo versus
conservación, Demangeot (1977) hizo un llamado a la colonización estratégica de la Gran Sabana pero teniendo en
cuenta los riesgos de la sabanización por efecto del fuego.
NIVEL BAJO
RegiónOrinoco-Delta
Colombia
De acuerdo a los datos de la lora o del tipo de comunidades
vegetales de la subregión bosques, herbazales y arbustales
inundables del Corredor Bajo Orinoco, FV9b, se puede
considerar que de ella existe un nivel medio de conocimiento. Colonnello et al. (1986) caracterizaron las formaciones vegetales de los ambientes próximos al río Orinoco
en el sur de los estados Monagas y Anzoátegui, mientras
que Rosales et al. (1999), Rosales et al. (2001), Diaz y Rosales (2006), Dezzeo et al. (2008), Diaz y Rosales (2008) y
Diaz (2009) hicieron lo mismo en las riberas orinoqueñas
de los estados Anzoátegui, Bolívar y del bajo río Caura. Estos datos son fácilmente extrapolables a amplios sectores
vecinos que contienen los mismos tipos de vegetación.
En esta categoría se agrupan la gran mayoría de regiones y
subregiones de Colombia en cuanto al estado del conocimiento de la lora. Las subregiones del piedemonte de los
Andes y los bosques de la Serranía de la Macarena son quizás las regiones que cuentan con buenos trabajos de investigación, pero el carácter local de estos no permite entender
y documentar la riqueza y distribución de la lora en estos
ecosistemas.
Venezuela
Región Andes-piedemonte
Región llanos
la subregión FV1a, bosques semicaducifolios y arbustales
xerofíticos del piedemonte andino norte, se ha muestreado muy poco. Por la similitud en los datos de la vegetación
hallados por Delascio (1994) y Meier (2005) se podría sugerir una extrapolación de la vegetación a toda la subregión.
Las sabanas de llanos orientales, FV10c, contienen uno
de los ecosistemas más singulares de los llanos: el morichal.
González (1988) y Fernández (2007) presentan una caracterización de los morichales llaneros, listas de las especies
más comunes, así como datos acerca de su evolución, funcionamiento y distribución. En relación a otras formaciones, Dezzeo et al. (2008) trabajaron en bosques y sabanas
del borde sur entre los estados Anzoátegui y Monagas, estudiaron el mosaico de tipos de vegetación comunes en este
sector del llano, con énfasis en terrenos cercanos a los ríos.
Entre los tipos de cobertura vegetal diferenciaron dos tipos
de sabana, tres de bosque y morichales. Las comunidades
de moriche de esta subregión están afectadas por el fuego
y en ciertos sectores por los derrames petroleros. Las consecuencias de ambos impactos fueron evaluadas por Bevilacqua y González (1994), concluyendo que los derrames
no inducen cambios signiicativos en la estructura, organización y composición lorística del subsistema terrestre del
morichal. En cambio, comentan la acción combinada del
derrame y la quema como causas de la elevada mortalidad,
reducción en la diversidad de especies y cambios en la organización estructural de la comunidad.
Región Llanos
La subregión FV2, sabanas inundables, se reiere a grandes supericies cubiertas de agua que pierden su identidad
física durante buena parte del ciclo anual, debido a los
efectos de inundación, desborde de rios y caños y anegamiento por acumulación de aguas de lluvia (Rial 2009) en
el microrelieve de banco, bajío y estero deinido por Ramia.
Esta región constituye un gran humedal estacional de aguas
interiores (González Jiménez 2003). Los paisajes ecológicos fueron determinados por Sarmiento et al. (1971a) para
todos los llanos occidentales en función de las principales
características del medio físico y su expresión en las diferentes unidades vegetales. Igual hicieron Monasterio et al.
(1972) pero en el sur del estado Barinas. Grandes extensiones de estos llanos están cubiertas de bosques muy variados
en cuanto a estructura, composición lorística y ritmos fenológicos. A este respecto, Ortiz (1990) estudió la fenología
de 14 especies típicas de los bosques semidecíduos del estado Cojedes, relacionando sus fenofases con las principales
características ambientales.
Región cordillera de la Costa
En los bosques montanos y submontanos de la cordillera
de la Costa, FV11, Meier (2005) encontró en el Monumen-
138
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
una primera aproximación de la ecología, la composición
lorística y la fenología de esas mismas sabanas.
Bosques primaríos y secundarios de los sectores Canaguá y
Caimital en el estado Barinas, así como del río Guache en
el estado Portuguesa y de las Reservas Forestales Ticoporo
y Caparo, fueron estudiados por Veillon (1997), dando detallados valores dasonómicos, de composición lorísticos y
ecológicos, enmarcados en programas o estudios de explotación forestal.
Región Andes altos
En los bosques, arbustales y páramos del orobioma andino semihúmedo, subregión FV5a, el famoso morfólogo
alemán Goebel (1975) visitó y describió el comportamiento
y la expresión morfológica de algunas plantas paramunas
y la relación de esa expresión con las condiciones ambientales. Monasterio (1980b) deinió a grandes rasgos, las
formaciones vegetales del bioma páramo. En un resumen
moderno, Azócar y Fariñas (2003) presentan una síntesis
del ecosistema de páramo en Venezuela. En relación al
conocimiento de la biodiversidad, un primer estudio de
la lora de estas alturas fue hecha por Vareschi (1970). El
mismo autor (Vareschi 1959) fue también el primero en
esbozar las formaciones vegetales y lora de las montañas
de Guaramacal en el estado Trujillo (Ortega et al. 1987)
contribuyendo con un registro preliminar de más de 470
plantas superiores, que actualmente alcanza las 1227-1300
especies (Dorr et al. 2000, Cuello 2002). Las formaciones
vegetales de los páramos de Venezuela fueron analizadas
también por Monasterío (1980b) en el marco del estudio
ecológico del ambiente paramuno. En cuanto a valores de
itodiversidad, Kelly et al. (1994) contaron 219 plantas vasculares en 1,5 ha de bosque pluvial montano y concluyen
con datos de este muestreo, que las diferencias inter bosques montanos son mayores que aquellas entre bosques de
tierras bajas ubicados en distancias semejantes, de ahí su
alta diversidad. Finalmente Bono (1996) ha reportado 4068
especies de plantas para el estado Táchira.
La lora arbórea llanera tiene además una clave botánica
(Smith et al. 1996) hecha para caracteres vegetativos, lo que
resulta muy útil para botánicos del bosque seco, ya que en
estos ambientes, los ciclos reproductivos de las plantas están
asociados en general, a la períodicidad de las etapas secas
y húmedas, por lo que gran parte del año se hallan en fase
vegetativa. Álvarez et al. (2008) siguió los procedimientos
para el registro de información del manual metodológico
del proyecto multinacional y multidisciplinarío Tropidry,
sentando las bases para la implementación de un plan de
monitoreo a cinco años de la dinámica del bosque seco,
cuya problemática se ijó en Fajardo (2005). Por otra parte,
Stergios et al. (1998) estudiaron la diversidad de especies y
sus patrones de distribución en bosques de galería semicaducifolios. Rial (2000, 2004 a,b, 2007) presentó la distribución y el arreglo espacio-temporal de las plantas acuáticas
en humedales estacionales y permanentes. Delascio (1990)
reportó la composición y estructura de los morichales del
llano guariqueño, en tanto que Ortiz (1991) hizo lo mismo
para estas comunidades en el estado Cojedes. Ramiay Montes (1975) evaluaron la vegetación y uso de la tierra en un
sector del medio del Apure.
Poco se sabe de la subregión de las sabanas de altillanura
seca arenosa eólica, FV3c. formadas de suelos arenosos
cuyas partículas fueron depositadas por los vientos en períodos secos del Pleistoceno (Tricart 1975, Roa 1979). La
isonomía de las comunidades de la sabana y las relaciones
planta-suelo-agua no son totalmente comprendidas en estos ambientes tan particulares, aunque ya Ramia (1977) y
Rial (2006) mencionan en primer lugar al nivel de inundación y en segundo lugar a los suelos o el tipo de ambiente
como factores determinantes en la distribución de las especies vegetales en sabanas estacionalmente inundables.
Región Guayana norte
De la subregión sabanas arbustivas orientales del norte
de la Guayana, FV6b, se ha escrito muy poco en temas de
vegetación. Sin embargo, contamos con listas de plantas
de un área ocupada por la actividad humana en sectores
con bosque caducifolio y sabanas arbustivas elaboradas por
Elio Sanoja y Hernán Castellanos de la Universidad Nacional Experimental de Guayana. Los mosaicos de vegetación
alrededor de las represas del Caroni han sido ampliamente
estudiados por CVG-Edelca con la participación de Wilmer Diaz, Luz Delgado, Gabriel Picón y Valois Gonzales.
Díaz y Delascio (2007) inventariaron las plantas que crecen
en Ciudad Bolívar (capital del estado Bolivar) y sus alrededores, dando como resultado una sorprendente diversidad
que alcanza casi a las 900 especies.
Al Noreste y Noroeste de los Estados Cojedes y Guárico
respectivamente, la subregión FV10a, sabanas de galeras,
ocupa relieves ondulados y colinosos cubiertos por sabanas,
bosques caducifolios, matorrales y amplias áreas de pastoreo. Las relaciones vegetación-suelo en las sabanas de esta
subregión fueron estudiadas por Ramia (1993), en lo que
el autor denominó Paisaje de colinas y Paisaje de galeras
del Pao. Antes, Ramia y Delascio (1982) habían esbozado
Región Guayana sur
En la subregión FV7b1, herbazales, arbustales y bosques
montanos de los tepuyes occidentales, Hazen (1931)
139
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Región Guayana norte
identiicaron y describieron gran parte del material botánico de la expedición Tyler al cerro Duida. Algo más de
60 años después, Dezzeo y Huber (1995), deinieron tres
grandes tipos boscosos, clasiicados en subtipos estructurales y lorísticos, ubicados desde la base hasta el amplio
tope de esta altiplanicie. Reportaron aspectos estructurales,
en especial la dominancia de las especies en cada bosque.
Zent y Zent (2004) analizaron la composición y estructura
de algunos bosques de la Sierra de Maigualida, mediante la
disposición de cuatro parcelas de 1 ha que resultaron ser las
más diversas evaluadas en Venezuela. Steyermark (1975)
presentó los resultados de las exploraciones a la cumbre
del aislado cerro Autana, incluyendo varias especies nuevas para la ciencia; mientras que de los arbustales, comunidades vegetales típicas de las alturas intermedias sobre
sustratos de arenisca o granito, Huber (1989) sostiene que
debido a su complejidad lorística, no es posible por ahora,
conocer el número de especies que la componen y mucho
menos como funcionan ecológicamente.
De la subregión FV6a o sabanas arboladas occidentales
del norte de la Guayana, aunque fragmentado, se tiene algún conocimiento del uso etnobotánico. Están disponibles
por ejemplo extensas colecciones de Otto Huber -uno de
los pioneros en describir estas sabanas para el inventario de
sabanas al sur del Orinoco-. Boom (1990a) reconoció y diferenció, con base en la composición de especies, el ecotono
entre la lora llanera y la guayanesa en el noroccidente del
estado Bolívar, sector del Estado en el que Gröger (2000)
describió las formaciones boscosas y arbustivas particulares que crecen sobre y entre los aloramientos graníticos
(lajas) tan comunes en la región.
Región Guayana sur
La zona de tepuyes guayaneses, subregión FV7b2, herbazales, arbustales y bosques montanos de los tepuyes
orientales, es poco conocida, aunque algunas de sus cimas,
especialmente las del Chimanta, Auyán, Guaiquinima, Roraima y algunos tepuyes menores, han sido bastante bien
exploradas botánicamente. A este respecto, Lindorf (2006)
ofrece los resultados de la expedición multidisciplinaria
que la Universidad Central de Venezuela organizó en 1956
y que representa una gran contribución a la ciencia. En el
campo de la investigación palinológica, Rull (1991) estableció un primer esquema de la paleocomposición lorística y
paleoecología de los ambientes de la cima de algunos tepuyes y de la Gran Sabana mediante la recolección de polen
en turberas. Maguire (1970) predijo un 75% de endemismo
a nivel de especie en las cimas de los tepuyes, cifra que Steyermark (1979a) llevaría posteríormente a 63%.
NIVEL MUY BAJO
Colombia
En Colombia, la región Andes piedemonte requiere más
esfuerzo de muestreo para incrementar su nivel muy bajo
de conocimiento, en particular los ecosistemas de transición andino – subandino de piedemonte, muy fragmentados y muy poco estudiados. Los ecosistemas de sabanas del
Vichada son quizás los de nivel más bajo de conocimiento en Colombia, igual que la altillanura y sabanas eólicas
del Casanare, y la altillanura ondulada y zonoecotonos del
Meta, para los que se cuenta con el trabajo de Romero et
al. (2004).
En la subregión FV7c, bosques húmedos de la Guayana
oriental, Canales y Catalán (1981) evaluaron los efectos del
aprovechamiento selectivo de los bosques cerca de Puerto
Ayacucho sobre la composición, la estructura y la dinámica
poblacional. Por otra parte, Huber y Guánchez (1988) colectaron y caracterizaron los diferentes tipos de vegetación
boscosa presentes en el área de la mina de bauxita de Los
Pijiguaos, previo al inicio de la explotación a cielo abierto
del mineral en la mina. En otra importante area de esta subregión: la cuenca alta del río Paragua, la evaluación RAP
aportó una colección de 589 plantas y periles de vegetación de los principales ambientes asociados al cauce principal (Fernández et al. 2008), mientras que en la cuenca del
medio río Caura se registraron 399 especies (Rosales et al.
2003).
Venezuela
Región llanos
Las sabanas de altillanura seca o subregión FV3b, equivalen a las sabanas hiperestacionales y semiestacionales
de Sarmiento (1996), que aquí conforman mosaicos cuya
presencia tiene que ver con las formas de relieve. Este tipo
de sabana, ubicada en suelos originados de sedimentos eólicos dispuestos sobre texturas más inas, soporta contrastes
muy marcados entre la temporada seca y la de lluvias, lo
que condiciona la existencia de sabanas lisas, casi sin arbustos y con ausencia total de árboles, entremezcladas con
bosquetes y palmares, generalmente inundados, que crecen
en las vegas entre médanos.
Entre los estudios forestales llevados a cabo en esta subregión se destacan el de la Reserva Forestal La Paragua
(CVG-IPETO 1976), el del antiguo distrito Cedeño (OTE-
140
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
En la subregión bosques en áreas de aloramientos, FV12,
se conoce un inventario forestal con ines de explotación
(Catalán 1980) dentro de la Reserva Forestal del Sipapo en
el estado Amazonas. En la misma zona, pero dentro de los
bosques ribereños, además de descripciones de la lora y
estructura, Avendaño y Castillo (2006) aportan un catálogo
dendrológico de una sección importante de los bajos ríos
Cuao y Sipapo.
HA 1971) y el de carácter regional realizado a principios de
la década de los años 70 en los bosques del nororiente de
la Guayana, en donde se evaluó el potencial maderero con
ines de explotación y se establecieron los regímenes legales
de los lotes boscosos, su ubicación y las especies potencialmente aprovechables (ONU-FAO 1970). Algunos sectores
recibieron cierta atención, principalmente aquellos adyacentes a los ríos, que por más de 200 años fueron la única
vía de comunicación entre asentamientos y de penetración
para exploración y explotación de productos. A principios
del siglo XX, André (1964) fue uno de esos exploradores
luviales en los bosques del bajo y medio río Caura, que
casi medio siglo después visitaría Williams (1942). Para la
zona mas oriental de esta región y gracias a los estudios de
impacto ambiental de ley, se cuenta con valores de composición y estructura de los bosques siempreverdes a lo largo
de la línea de alta tensión que surte al norte de Brasil desde
la represa del Guri (CVG-Edelca 2001). Por otra parte, Rollet (1971) estudió la regeneración natural de los bosques
húmedos de esta subregión como parte de la prospección
forestal conducida por el Estado venezolano en la sierra de
Imataca.
Se ha escrito poco acerca de la relación entre la población
indígena local y la destrucción o conservación de su ambiente natural. Melnyk (1993) exploró en vínculo entre el
sedentarismo que va adquiriendo la etnia piaroa - estado
Amazonas- y la disminución en sus terrenos, de los recursos agrícolas y forestales y el aumento de los incendios de
vegetación.
En los bosques húmedos del alto Orinoco, subregión
FV13, ya para inicios de la década de los años 80 Huber
(1982) preparó un esqueña de las diferentes formaciones
vegetales del territorio Amazonas. Coomes y Grubb (1996),
y Aymard (2000) presentan la estructura y composicón lorística de un sector cercano a La Esmeralda en el alto Orinoco y aportan extensos listados de especies.
Región Amazonas
En la subregión FV7d, bosques húmedos de Guayana
occidental, la información a escala regional de tipo físico-natural (geología, geoformas, suelos y vegetación) se
encuentra en el Atlas del Inventario de Tierras (MARNRORSTOM 1988), presentada en imágenes de radar lateral
a escala 1:250.000. Sin embargo, las descripciones de los
tipos de formación vegetal deinidas y sus características
ecológicas son muy sucintas. Otra información disponible,
pero de carácter geográico y físico-económico, presenta
breves descripciones de los tipos de ambiente vegetal del
estado Amazonas (Boadas 1983). Por razones de logística,
tecnología y presupuesto, las zonas botánicamente más conocidas de esta subregión se ubican a ambos lados de los
principales ríos, pues ha sido a través de sus cursos que las
grandes y pequeñas exploraciones han podido penetrar en
lugares cada vez más lejanos (Huber y Wurdack 1984).
Región Orinoco-Delta
Pese al hecho de ser la entrada luvial de Venezuela desde
siglos atrás, el área representada por la subregión FV9a,
bosques y herbazales del Delta no despertó el interés cientíico sino hasta muy tarde en el siglo XX. Prueba de ello
es la expedición realizada a comienzos de los años 40 a la
región sur del departamento Antonio Díaz, cuyo principal
motivo fue la prospección de mineral bauxítico (López et
al. 1946). Aunque en dicha ocasión, se mencionaron también los potenciales agrícolas de la región, se hizo una descripción general de la lora y se listaron las especies maderables con usos locales, información que inalmente no fue
tomada en cuenta. Exploradores extranjeros sí mostraron
cierto interés en el Delta. Ya en el siglo XIX se organizaron
algunas expediciones como aquella en la que Rusby (1896)
estuvo involucrado y que fue organizada por he Orinoco
Company, cuyos motivos y detalles Dorr (1995) narra extensamente.
Las sabanas inundables de arenas blancas Inírida-Atabapo, subregión FV8, son bastante similares a las de la región
del río Negro y están sometidas a presiones antrópicas semejantes a las encontradas por Herrera et al. (1981) y Jordan (1989) quienes comentan el impacto de las actividades
humanas y sus efectos visibles en la alteración de los ciclos
de nutrientes, a partir del uso agrícola de subsistencia y la
quema asociada, en bosques de San Carlos de río Negro,
estado Amazonas.
Notas acerca de la distribución de los manglares en Venezuela, sus características, composición lorística, así como
algunas propiedades físico-mecánicas han sido publicadas
por Rodriguez (1984) quien hace mención al aprovechamiento industrial de este recurso especialmente en el Delta
del Orinoco.
141
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
VACÍOS DE INFORMACIÓN
La subregión FV9c, bosques, arbustales y herbazales
inundables del corredor medio Orinoco, está ocupada
principalmente por bosques y en menor medida por arbustales y herbazales, todos inundables. Un sector del río Sipapo fue estudiado por Camaripano-Venero y Castillo (2003).
En sabanas adyacentes al corredor medio del Orinoco, Bulla y Lourido (1980) determinaron valores ecológicos importantes para su comprensión y manejo: producción de
biomasa, descomposición y composición lorística. En otro
sentido, Conservation International (2003) dando un alerta
para su conservación, catalogó a la subregión como prioritaria debido a su riqueza y grado de endemismo.
En la Figura 5.4 se han señalado con las subregiones con
altos vacíos de información.
Colombia
Los vacíos de conocimiento de la lora en la cuenca del
Orinoco en Colombia parten de la deiciencia en los inventarios lorísticos desde una perspectiva regional, que permitan documentar que especies componen los diferentes
ecosistemas, como se distribuye la riqueza entre los diferentes ecosistemas y regiones, y a que factores ambientales,
ecológicos y evolutivos responden estas diferencias. Además de los estudios ya documentados a nivel de inventarios
lorísticos, existe un gran vacío de información en aspectos
ecológicos, de manejo y conservación de las especies de
plantas en la Orinoquia Colombiana. Algunos de los trabajos que han abordado algunos de estos enfoques son el
de Caro (2008) en el Meta y el del Instituto Alexander von
Humboldt (Prieto-Curz 2009) en las selvas de Mataven (Vichada).
La subregión FV9d, bosques, arbustales y herbazales
inundables del corredor alto Orinoco, también se cuenta
entre las regiones menos conocidas de la cuenca del gran
río. Se conoce algo de la composición y estructura de estos
bosques por las muestras botánicas que reposan en los herbarios, sin embargo no existe información publicada; excepto del sector Surumoni, del cual se tiene conocimiento
sobre aspectos ecológicos y lorísticos generados por las actividades de la grúa para estudios del bosque desde el dosel
(Hernández-Rosas 1999, 2000 y Nieder et al. 2000).
Figura 5.4 Vacíos de información: lora y vegetación.
142
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Venezuela
clima, la fauna, los suelos y las turberas, dando con ello un
gran impulso al conocimiento de estos ecosistemas de muy
difícil acceso y a primera vista frágiles. Grandes sectores del
Auyan tepui y del Güaiquinima tepui son conocidos desde
el punto de vista de su composición de especies, no así de la
ecología de sus comunidades vegetales. Otras cimas tepuyanas son muy poco conocidas.
NIVEL ALTO
Región Llanos
La subregión FV3b, sabanas de altillanura seca, es muy
singular por estar cubierta una gran parte de su extensión
por relieves de dunas fosilizadas, cuyas edades fueron estimadas entre 11,6 mil y 36 mil años (Vaz y García Miragaya
1989) y descritas por Roa (1979). Son ambientes lejanos y
sin el atractivo de los grandes bosques, quizás por lo cual
han recibido escasa atención. La escasa información de su
lora y tipos de cubierta vegetal incluye el trabajo de Schargel y Aymard (1993) quienes describieron la vegetación de
la planicie eólica limosa y Schargel (2007) que estudió esta
subregión y parte de la FV3c.
Cuando se obtiene información sobre un lugar desconocido, que se reconoce como un enorme vacio de información, los resultados representan un claro avance en el
conocimiento y por ende en la conservación de nuestro
patrimonio natural. Este ha sido el caso de diversas expediciones muy complejas en Venezuela, especíicamente en
esta subregión se logró la conquista de una cima tepuyana
que había sido inaccesible para los botánicos (Holst 1987).
Región Amazonas
Al igual que en la subregión anteríor, en las sabanas de altillanura seca arenosa eólica, FV3c, gran parte del paisaje
que la ocupa está cubierto por dunas, que Schargel (2007)
llama altiplanicie de Apure Meridional y planicie eólica con
médanos. Schargel y Aymard (1993) estudiaron sus suelos
y los tipos de vegetación asociados a ellos, comentando el
predominio de las sabanas abiertas y en menor grado los
bosques de galería y su emparentamiento, a nivel genérico,
con bosques de la Guayana. La subregión no ha recibido
suiciente atención botánica.
Dentro de la subregión bosques húmedos de Guayana occidental, FV7d, Hitchcock (1947) describió un sector de la
cuenca del río Ventuari y la región donde este desemboca
en el Orinoco, más tarde el río sería remontado por Cardona, Steyermark, Huber, Berry y Delascio pero no es sino
hasta la evaluación RAP (Lasso et al. 2006) en este excepcional delta interno, que se aportarían últiles periles de
vegetación y un listado de 510 especies de plantas (Rodriguez et al. 2006). En otro sector de la subregión Huber et al.
(1984) exploraron los bosques y sabanas de dos sectores de
la Sierra Parima e hicieron consideraciones sobre el origen
de las sabanas presentes en la región.
Región Guayana Norte
A lo largo de esta porción noroccidental del escudo guayanés llamada sabanas arboladas occidentales del norte
de la Guayana, subregión FV6a, son muy frecuentes los
domos graníticos, que según Boom (1990 a) Gröger y Barthlott (1996), y Gröger (2000) contienen una variada y especializada lora, bien sea por la presencia de comunidades
asociadas a los sustratos rocosos o por estar en el punto de
unión de la lora llanera y guayanesa (Fernández en prensa). En cuanto a lora y vegetación, falta mucho por conocer
en esta subregión.
Prueba de la extraordinaria importancia biológica de
esta subregión y del poco conocimiento que tenemos de
la mayor parte de sus ambientes vegetales, especialmente
de las sabanas amazónicas o de arenas blancas, ubicadas
principalmente en las planicies del bajo río Ventuari, es su
consideración como area prioritaria para la conservación,
(endemismos, presencia de fenómenos ecológicos o evolutivos y presencia de especies amenazadas) (Conservation
International 2003).
Región Guayana Sur
En los ambientes generados sobre las sabanas inundables
de arenas blancas Inírida-Atabapo, FV8, se encuentran
bosques y arbustales de muy diversa estructura y composición, muchos de los cuales crecen sobre un sustrato cuarzoso, pobre y ácido, ambiente único para muchas platas
(Romero 1993). Parte de la información generada por el
Proyecto Amazonas en San Carlos de Río Negro (Medina
et al. 1977, Brünig et al 1979 a, Brünig et al 1979b, Uhl y
Murphy 1981, Uhl 1982, Bongers et al 1985, Uhl et al. 1988,
Dezzeo et al 2000, Huber y Medina 2000, Klinge y Cuevas
Sobre las cimas de arenisca de la subregión FV7b2, herbazales, arbustales y bosques montanos de los tepuyes
orientales, Rull (1996) presentó su hipótesis acerca de la
paleosucesión de los tipos de vegetación en los tepuyes
Chimantá y Güaiquinima con base en los registros polínicos. Un completo estudio multidisciplinario tepuyano fue
conducido por un grupo de expertos sobre las cumbres
del extenso Chimantá (Huber 1992). Se estudiaron en él
las formaciones vegetales, la geología, la geomorfología, el
143
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
2000, Medina 2000) puede extrapolarse a esta subregión. Al
igual que el impacto sobre bosques y suelos por la agricultura debido a la tala y la quema, aspecto estudiado por Jordan (1989) en los alrededores de San Carlos de Río Negro.
También en esa región, pero en bosque de caatinga, Klinge
(1978) reportó escasa biomasa arbórea relacionada con la
baja estatura de los árboles y con la dominancia de especies
en las diferentes caatingas, desigualdad que relacionó con
gradientes topográicos e hidrológicos.
los estudios de Hernández-Rosas (1999, 2000) y Nieder et
al. (2000) quienes investigaron en los alrededores de Surumoni, cerca de La Esmeralda, pero con un continuo interés en estos ecosistemas por varias décadas. J. Rosales de
la Universidad Experimental de Guayana ha estudiado las
comunidades vegetales de esta subregión, cuyo carácter
inundable y su heterogeneidad de hábitats le coniere atributos de corredor vital, al ser refugio y espacio de dispersión para la gran riqueza de especies de las riberas del gran
río (Rosales et al. 1999).
En los bosques en áreas de aloramientos, FV12, los bosques y arbustales sobre inselbergs de granito, localmente
llamados lajas, recibieron la atención de Gröger y Barthlott
(1996) y Gröger (2000). Catalán (1980) hizo el inventario
de los bosques de la Reserva Forestal del Sipapo y Zent
(1995) de los bosques secundaríos del alto río Cuao. Conservación Internacional (2003) llama a esta subregión área
de inselbergs del Orinoco y sabanas de Platycarpum, resaltando la existencia de endemismos y procesos ecológicos
y evolutivos. Dichos trabajos abarcan apenas un pequeño
porcentaje de la supericie de esta subregión.
NIVEL MEDIO
Región Llanos
En las sabanas de galeras, FV10a, el sustrato geológico está
conformado por rocas sedimentarias cubiertas de sabanas,
chaparrales, bosques estacionales y bosquecitos en los relieves más deprimidos. En general y más al sur de los macizos rocosos, predominan colinas, altiplanicies y valles no
inundables (Berroterán 1985). En una amplia franja entre
San Carlos-El Baúl al oeste y Las Mercedes-Santa Rita al
este, Berroterán (1988) encontró 13 paisajes ecológicos y
tres mesoclimas. Los suelos más comunes fueron los Ultisoles, cubiertos principalmente por gramíneas, de las cuales fueron dominantes los géneros Trachypogon, Axonopus
y Paspalum.
Para la subregión bosques húmedos alto Orinoco, FV13,
Huber y Wurdack (1984) plasmaron en mapas los itinerarios y los puntos de colección de los expedicionarios y botánicos en el territorio Amazonas, dejando en claro que la inmensa atención la han recibido los grandes ríos y las cimas
tepuyanas, no así los interluvios y las tierras intermedias
en altitud. En tal sentido, Holsty Todzia (1990) analizaron
unos 1200 números, resultantes de la colección hecha por
Croizat durante la expedición franco venezolana recién en
1951, en la que se descubrieron las fuentes del Orinoco al
pie de un farrallón de 70 m de alto y a 1045 m s.n.m. (Vila
1952) y que sería reseñado por Anduze (1960), RísquezIribarren (1962) y Lichy (1978).
Comerma y Luque (1971) presentaron una evaluación de
los suelos y paisajes del estado Apure a escala 1:500.000,
ubicados en un pequeño sector de la subregión sabanas
inundables, FV2. evaluaron diez zonas piloto y aunque
abordaron el tema de la vegetación y la lora solo de manera general sus resultados son de gran importancia para el
entendimiento de las formaciones vegetales y su composición lorística. La gran supericie de esta subregión amerita
estudio pues quedan aún grandes sectores desconocidos.
Región Orinoco- Delta
El canal vegetal que representan los bosques, arbustales y
herbazales inundables del corredor medio Orinoco, subregión FV9c, ha sido visitado por todos los botánicos que
han navegado río arriba. Se ha colectado en esta subregión,
pero no se ha publicado su diversidad, a excepción de los
trabajos de Castillo (1995), Camaripano-Venero y Castillo
(2003) y Avendaño y Castillo (2006). A esta subregión pertenece en parte el área de inselbergs del Orinoco y sabanas
de Platycarpum (Conservation International 2003), reseñadas por su importancia dado el nivel de endemismo y
procesos ecológicos y evolutivos que allí ocurren.
Algunos de los mayores bosques productores de maderas
del país están en las reservas forestales de esta subregión.
Estos bosques, gran parte arrasados en los últimos años,
fueron estudiados por Veillon (1997) quien produjo listas
muy completas de las más importantes especies objeto de
manejo y aprovechamiento forestal. Las listas son útiles en
áreas de las reservas, pero limitadas sólo a la lora que ellas
contienen, quedando aun sin conocer la composición de
otros bosques de estas planicies. Algo de la problemática
de las reservas forestales ubicadas en esta subregión fue
presentado por González et al. (1988), Kammesheidt et al.
(2003) y Plonczak (2005).
De la subregión FV9d, bosques, arbustales y herbazales
inundables del corredor alto Orinoco, apenas conocemos
Las plantas acuáticas de los Llanos inundables han sido tratadas por Rial (2009), en un útil catálogo ilustrado y a lo
144
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
largo de una década en diversos estudios sobre dinámica
espacial y temporal de estas comunidades (Rial 1998, 1999
a, b, c, 2000, 2004 a, b, 2007).
la Formación Mesa, cuyos suelos contienen principalmente
texturas gruesas, conforman planos levemente inclinados
llamados mesas orientales y están localmente afectadas por
erosión regresiva que genera relieves de cárcavas (Zinck y
Urríola 1970). Los bosques secos cercanos al Orinoco fueron estudiados y caracterizados por Dezzeo et al. (2008 información que es extrapolable a gran parte de la cubierta
vegetal de la subregión. Igual sucede con la información
de los morichales caracterizados por Aristeguieta (1968a),
González (1987) y Fernández (2007).
En cuanto a la controversia del origen de las sabanas, se
han dado en Venezuela algunas ideas y puntos de vista, que
incluso comienzan con Humboldt (1841) y siguen con Lasser (1955) quien postula como factor preponderante para
el establecimiento de sabanas el evento de retirada de las
aguas deltaicas que una vez cubrieron parte de los llanos.
Otros factores son propuestos en publicaciones posteriores
(Tamayo 1972, Eden 1974b, Sarmiento 1983 y Eiten 1986).
En la subregión FV10b, sabanas de llanos altos centrales,
Aristeguieta (1966, 1968a, 1968b,) ha estudiado la lora y
las formaciones boscosas principales de este sector del llano, así como los morichales que ocurren en las sabanas.
Este último bioma y los humedales fueron caracterizados
por Blydenstein (1961, 1962, 1963), mientras que los aspectos isiográicos y los paisajes, como factores determinantes
de los tipos de vegetación han sido descritos por Berroterán (1988, 1985) y Ponce et al. (1994), estando la mayor
parte modelados sobre los sedimentos pleistocénicos de la
Formación Mesa, fechado su origen entre 0,5 y 2 millones
de años (Carbón et al. 1992). El estudio de las relaciones
entre bosques y sabanas en estos ambientes llaneros a consecuencia de la protección contra el fuego y el pastoreo es
de larga data, se destacan los trabajos de San José y Fariñas
(1983), Fariñas y San José (1985), San José (1991) y Silva et
al. (2001).
Región Andes-piedemonte
La subregión FV1a, bosques semicaducifolios y arbustales xerofíticos del piedemonte andino norte, contiene
los paisajes reportados por Berroterán en la subregión anterior. Dominan los bosques caducifolios, las sabanas y los
chaparrales. Ortiz (1990) estudió la fenología de estos bosques. En las sabanas las familias más importantes son -en
este orden-: Poacea, Fabacea, Cyperacea, Caesalpiniacea y
Rubiacea. En los chaparrales domina Curatella americana,
Byrsonima crassifolia, B. coccolobaefolia, Xylopia aromatica,
Cochlospermum vitifolium, Bowdichia virgilioides y Roupala
complicata (Ramia y Delascio 1982). Desde el punto de vista botánico, es poco lo que se ha escrito de esta subregión.
Región Andes Altos
En la subregión FV5a, llamada bosques, arbustales y páramos del orobioma andino semihúmedo, Vareschi (1959,
1970), realizó uno de los primeros trabajos de itoecología
de los páramos y la primera lora regional. Bono (1996) al
igual que Vareschi, también describe las formas de la vegetación paramera pero del estado Táchira, las cuales acompaña de un catálogo comentado. Alfredo Jahn (1931), hace
una amena descripción de la vegetación y del ambiente físico que la contiene en la alta montaña andina. Ricardi et al.
(1987, 1997) describen los sectores más altos de nuestros
páramos. En el campo de la itogeografía no es mucho lo que
se conoce, Faría (1978) estudió las ainidades geográicas de
las plantas superiores de los páramos. Sin embargo, la falta
de exploraciones en vastas regiones de nuestros páramos y
el poco conocimiento de los tipos de vegetación en los mismos no permitieron que esta haya sido una obra deinitiva.
La diversidad de ambientes ecológicos y la variación de las
formaciones vegetales paramunas han sido reportadas por
Monasterio (1980b) y Monasterio y Reyes (1980), mientras
que Walter y Medina (1969), establecieron los valores de
temperatura del suelo como base para la determinación de
los pisos climáticos superiores de los páramos. Relejo del
cúmulo de información que va sumándose en algunos sectores, como en caso del Parque Nacional Guaramacal, es
el documento sobre el estado de conservación del parque
La ecología y la biología de la polinización en comunidades
naturales de plantas de los llanos centrales fue sintetizada
por Ramírez (2008) en cuyo trabajo se analizan las relaciones entre los distintos tipos de polinizadores, la estructura
de la vegetación, las variaciones estacionales en las clases de
polinizadores y los solapamientos entre estos, en relación
con la fenología de las especies y las características estructurales de las comunidades vegetales.
Por otra parte, Fajardo et al. (2005) presentan un análisis de
la composición y distribución actual versus la distribución
potencial según las zonas de vida de Holdridge para los
bosques secos, señalando la diferencia entre una supericie
y la otra. A pesar de ello, sostienen que a pesar de la alta
intervención de los bosques secos en Venezuela, su alta resiliencia permitiría, con el debido manejo, su restauración y
conservación. Los bosques secos de esta subregión, en conjunto con los de las subregiones FV2, son posiblemente los
que muestran la diferencia más dramática.
La subregión de las sabanas de los llanos orientales,
FV10c, se ubica casi en su totalidad sobre los sedimentos de
145
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
nito o lajas, con una lora muy particular y adaptada a las
singulares condiciones de suelo, microclima, espacio y de
disponibilidad de agua, que incluye algunas especies endémicas (Gröger 2000, Gröger y Barthlott 1996).
(Muñoz et al. 2006) que incluye además un diagnóstico del
medio físico y biológico.
Región Guayana Sur
La subregión FV7c, bosques húmedos de la Guayana
oriental, representa una gran extensión boscosa que ha
recibido atención cientíica en un lugar o en otro y con
mayor o menor intensidad en su amplia supericie. Aunque tardíamente, algunos de los vacíos de información se
hanh cubierto a medida que la exploración geográica ha
ido progresando; de esta manera se avanzó signiicativamente cuando a mediados del siglo pasado se descubrieron
las fuentes del río Paragua (Montoya Lirola 1958). Algunos
estudios implican conclusiones válidas para grandes extensiones, como el publicado por Huber (1986) en el que se
deinen los tipos de formación vegetal de toda la cuenca
del río Caroní, o los múltiples estudios en la cuenca del río
Caura (Marín y Chaviel 1996, Rosales y Huber 1996, Huber y Rosales 1997, Castellanos 1998, Chernof et al. 2003,
Knab-Vispo et al. 1999, Vispo y Knab-Vispo 2003), la vegetación de la Gran Sabana (Delgado et al. 2009) y el estudió la biodiversidad de la cuenca del río Cucurital, aluente
del Caroní proyecto multidisciplinario e interinstitucional
conducido por la Fundacion la Salle de Ciencias Naturales
durante seis años. Otros estudios representan áreas geográicas más pequeñas y de diferentes condiciones ambientales, lo que hace que en muchos casos esas evaluaciones,
inventarios o caracterizaciones no sean de ningún modo
extrapolables. Es el caso de algunas zonas boscosas de la
Gran Sabana en las que se han encontrado las llamadas
“selvas de bejucos” o áreas en las que el bosque, por causas
aparentemente naturales, presenta una generalizada mortandad, llamada “dieback”, dando lugar a la invasión de
comunidades lianiformes o arbustivas, como sucede en el
alto río Urimán (Dezzeo et al. 1997) y otros sectores de la
Guayana (Fölster 1994 y Hernández 1997).
Región Cordillera Costa
De la subregión FV11, bosques montanos y submontanos de la cordillera de la Costa, aunque está cercana a
los más grandes centros de investigación botánica del país,
sólo contados sectores montañosos sido objeto de estudio
cientíico y siempre han resultado sorprendentes hallazgos,
como en el caso del cerro Platillón en que el más de la mitad de los 330 especímenes colectados en la cumbre (1930
m s.n.m) resultaron nuevos reportes para el estado Guárico, incluso se hallaron taxa desconocidos para esa cadena
montañosa (Meier 2005). En las estribaciones más occidentales de la cordilera se encuentra el cerro Azul, el de mayor
altura en el estado Cojedes (1350 m s.n.m.) Delascio (1994)
publicó un inventario de su lora reportando 242 especies
de plantas y ambientes vegetales muy amenazados.
Es motivo de atención la falta de información sobre la vegetación de otras zonas montañosas de esta subregión. Gran
parte de la vegetación original de estos ambientes ha desaparecido principalmente por efectos antrópicos, el bosque
que queda está fragmentado y generalmente empobrecido
en forma de relictos que no presentan ningun atractivo, ni
para investigadores, ni para entes inanciadores de la ciencia (Atarof 2003).
NIVEL BAJO
Región Andes-piedemonte
La composición lorística y la estructura de los bosques
semicaducifolios del piedemonte andino medio, FV1b y
de los llanos adyacentes es conocida solo en áreas de las reservas forestales, gracias a los inventarios y mediciones dasonómicas obtenidos de las prospecciones de Hernández
y Guevara (1994) o los estudios de Veillon (1997) y Finol
(1976, 1973) en diferentes bosques de la zona de vida “bosque seco tropical llanero” de los estados Barinas, Cojedes
y Portuguesa, gran parte de algunos bosques remanentes
de la subregión FV2 existen en la FV1b, siendo similar en
su composición lorística. Stergios (1984) presenta una
completa descripción del clima, la isiografía y los suelos
responsables de los tipos de vegetación de un sector del piedemonte en el estado Portuguesa
El desarrollo del programa hidroeléctrico del bajo río Caroní y concretamente en el área de la represa del Guri, ha
impulsado la implementación de estudios ecológicos, botánicos y de diversidad restringidos principalmente a la zona
de inluencia del vaso (Álvarez et al. 1986, Aymard et al.
1990).
Un pequeño sector de la Reserva Forestal Imataca drena
hacia el Orinoco, entre algunos de los estudios forestales
hechos, el de Villasana y Suárez de Giménez (1997), llena
en algo un gran vacío y trata la fenología de 16 especies
forestales de la reserva. Al norte y sur de Puerto Ayacucho,
esta región está salpicada de grandes aloramientos de gra-
En la subregión FV1c, bosques siempreverdes del piedemonte andino sur, la vegetación de este sector de la Orino-
146
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
En la subregión de los herbazales, arbustales y bosques
montanos de los tepuyes occidentales, FV7b1 y debido al
importante número de expediciones, las cumbres son bastante bien conocidas en su composición lorística pero no
en su estructura o funcionamiento. Algunas listas de plantas de estas expediciones datan de inicios del siglo pasado
(Gleason 1929, Hazen 1931). Steyermark (1979a, 1979b,
1986) aporta los resultados de sus expediciones a algunos
de los arbustales guayaneses, mientras que en el ámbito del
acervo etnoecológico Zent y Zent (2002b) exploraron el
amplio conocimiento etnobotánico que los jodi como habitantes del piso intermedio de la sierra de Maigualida tienen
de su entorno vegetal.
quia es bastante poco conocida. No están disponibles listados de lora ni descripciones de sus formaciones vegetales,
excepto las presentadas por Bono (1996) quien menciona
tres tipos de bosques estacionales en los piedemontes del
estado Táchira: Bosques tropóilos piedemontanos semidecíduos, bosques de galería semidecíduos y bosques tropóilos submontanos semidecíduos; además de sabanas y
vegetación higróila.
Región Guayana norte
Los sabanales de la subregión sabanas arbustivas orientales del norte de la Guayana, FV6b, que caracterizó Ramia
(1961) han sido poco investigadas en su lora y ecología.
Sin embargo, sabemos que están compuestas por un estrato
herbáceo dominado por Trachypogon y arbustos de los géneros Curatella, Byrsonima, Palicourea y Bowdichia conocidos localmente como chaparros.
Región Orinoco-Delta
González (2003) presentó una descripción de las formaciones vegetales y de los procesos ecológios, edafológicos
y geomorfológicos que condicionan su existencia y distribución en la subregión bosques y herbazales del Delta,
FV9a. En este estudio se deinen cinco tipos de comunidades vegetales: bosques de pantano, herbazal de pantano,
arbustales de pantano, sabanas inundables del Delta y manglares, cada una dividida en función de variables como la
dominancia de especies, la estructura o el tipo de sustrato.
Danielo (1976) realizó descripciones de los paisajes vegetales en función de la isiografía y de los suelos. Este trabajo
fue por mucho tiempo, la única fuente de consulta en relación a los tipos de formación vegetal de Delta.
Región Guayana sur
De la subregión sabanas, bosques y arbustales de la altiplanicie Gran Sabana, FV7a, Existe un completo, aunque
preliminar ensayo de la dinámica bosque-sabana sectorizado a las cuencas de los ríos Yuruaní y Kukenán (Dezzeo
1994, Hernández 1999). En cuanto a la controversia de si la
sabana está aumentando a costa del bosque, Dezzeo et al.
(2004), determinaron que es el fuego y no las condiciones
químicas o mineralógicas de los suelos el principal factor
de la degradación de bosque a sabana. Poco se conoce de
las interesantísimas comunidades de arbustales de las cimas de arenisca. Algunos datos de su composición, estructura, ecología y relaciones itogeográicas son discutidas
por Huber (1989) quien señala también los vacíos en el
conocimiento cientíico de este especial tipo de vegetación.
Igualmente se conoce poco de los tipos de comunidades
vegetales que pudieron existir durante el Holoceno y aún
antes, aunque sí se sabe por el registro polínico (Rull 1991,
1996) que las comunidades herbáceas tepuyanas tuvieron
respuestas poco signiicativas a los cambios climáticos del
pasado, así mismo, el récord de polen sugiere un continuo
desequilibrío entre clima y tipos de vegetación.
En las planicies deltaicas de Monagas colindantes con el
Delta del Orinoco, Lárez et al. (2007) tomaron muestras
de los bosques de inundación permanente, recopilaron
información de uso local y concluyeron sobre su ainidad
lorística con bosques de las tierras bajas inundables de la
Guayana. Otra faceta poco divulgada es la inter-relación de
los pobladores locales con el medio físico y biológico que
los circunda, desde la perspectiva y/o la inluencia del desarrollo petrolero fue publicada por Rafali y Coll (2000).
En la subregión bosques, arbustales y herbazales inundables del corredor bajo Orinoco, FV9b, Díaz y Rosales
(2006) analizan la lora de los ambientes ribereños inundables de los bosques del Orinoco entre Ciudad Bolívar y Los
Castillos de Guayana. Por otra parte, a pesar de la información aportada por Colonnello (1991, 1990), Colonnello et
al. (1986) y Dezzeo et al. (2008), sobre aspectos ecológicos
y de composición lorística de bosques, sabanas, herbazales
acuáticos y morichales del sur del estado Anzoátegui y Monagas, persisten amplios vacíos en el conocimiento de este
longitudinalmente extenso ecosistema.
En cuanto a especies raras o endémicas, Picón (1995) ha
señalado para la Gran Sabana 136 especies no endémicas
pero de rara ocurrencia y 310 especies estrictamente endémicas. No existen estos datos para otros sectores de la
subregión. Consideraciones más regionales y generales en
cuanto a endemismo se hallan en Berry y Riina (2005) y
Huber (1989).
147
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
NIVEL MUY BAJO
RIQUEZA DE ESPECIES
No existen subregiones de esta categoría en la Orinoquia
venezolana.
En la Figura 5.5 se incluye la riqueza de especies en cada
una de las subregiones de la cuenca del Orinoco, de acuerdo al conocimiento de los autores.
BIODIVERSIDAD
Colombia
El componente de biodiversidad fue abordado de manera
diferente en Colombia y Venezuela. Debido a que la información sobre lora en Colombia es escasa, dispersa y no
permite establecer valores coniables por regiones y subregiones, aspectos como riqueza, endemismo, especies amenazadas y especies con valor de uso fueron evaluadas globalmente, con una ponderación cuantitativa en una escala
de 1 a 5 como se expresa en los diferentes mapas. En este
sentido, el criterio experto manifestado en los mapas mediante la ponderación de estos aspectos fue fundamental
para la nominación de las áreas con interés para la conservación.
En Colombia, el Sistema de Información en Biodiversidad
(Salazar et al. 2010) contiene 718.000 registros de fauna y
lora a nivel nacional. En la Cuenca del Orinoco colombiana los registros de lora vascular y criptógamas que exclusivamente corresponden a esta, con una distribución por
departamento de 4.978 registros y 1.781 especies para Casanare, 2.250 registros y 1.047 especies para Arauca, 4.599
especies para el Meta y 6.471 registros con 1.689 especies
para el Vichada.
Otros departamentos que cubren parcialmente la cuenca
del Orinoco como Guainía con el municipio de Inírida
(2.378 registros y 1.022 especies), y el municipio de Cacahual (422 registros y 269 especies) fueron considerados. El
Guaviare que cubre parcialmente la cuenca del Orinoco
A continuación se explica cada criterio, en cada uno de los
países de manera separada:
Figura 5.5 Riqueza de especies: lora y vegetación.
148
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
con los municipios Miralores (64 registros y 59 especies),
municipio El Retorno (1.167 registros y 676 especies) y el
municipio de San José del Guaviare (4.304 registros y 1.659
especies), al igual que una porción muy pequeña del Vaupés con el municipio de Morichal (428 registros y 319 especies) también fueron considerados.
y Casanare), A. morrones (Guaviare y Meta). Y como se
menciono en la introducción, la revisión para la Orinoquia
de la familia Melastomataceae (Quiñones, 2000), reporta
38 géneros y 180 especies. En departamento del Vichada,
F. Castro ha elaborado un listado de la lora de esta región
(Anexo 5).
De igual manera fueron incluidos los registros de lora localizados en los departamentos cuyos municipios se ubican en la cordillera oriental y cuyos ríos drenan al Orinoco
como Boyacá1 (1.484 registros con 702 especies), Cundinamarca2 (593 y 320 especies), Santander del Norte3 (1.191
registros con 547), Santander4 (428 registros con 428 especies). Estos valores tienen un nivel de imprecisión determinado por la falta de coordenadas georeferenciadas para los
registros, y por lo tanto la delimitación sobre la cuenca fue
de carácter polítco por municipio.
Estos datos de riqueza distribuidos por departamento, apoyados por los valores ponderados por los especialistas (Figura 5.5), dan cuenta de una aproximación de la riqueza de
especies de plantas en la Orinoquia.
Venezuela
Los valores de diversidad diieren de un autor a otro y de
una época a otra en las distintas regiones de la cuenca del
Orinoco en Venezuela. Steyermark et al. (1995-1998, 19992005) reportaron en la Flora of the Venezuelan Guayana,
más de 9000 especies; Huber et al. (1998) estimaron 10.300
especies de plantas vasculares para esa región. Sin embargo,
Maguire (1970) y Steyermark (1977) habían pronosticado
entre más de 8.000 y 20.000-35.000, respectivamente, valores que resultaron muy sobre estimados para la lora nacional. La lora de Pantepui, es decir la región de las cumbres
guayanesas por encima de los 1500 m s.n.m. contiene según
Berry et al. (1995) 2.322 especies de 630 géneros. De este
total, 33 % es endémico de la región Pantepui. Los mismos
autores estimaron 1.270 especies endémicas locales, de las
cuales 815 son del estado Amazonas, 440 del estado Bolívar
y dos del estado Delta Amacuro. Los tipos de vegetación
han sido deinidos por Huber (1995, 2005).
Estas cifras pueden contrastarse con estudios lorísticos
para algunas regiones de la Orinoquia como el reciente trabajo sobre la lora de la estrella luvial del Inírida (Cárdenas
et al. 2009) con 833 especies de plantas vasculares correspondientes a 402 géneros y 123 familias, donde las más
diversas fueron Rubiaceae (66 especies), Melastomatacea
(52), Fabaceae (36), Euphorbiaceae (32), Cyperaceae (31)
y Apocynaceae (24). De la misma forma, las revisiones nacionales para algunas familias dan cuenta de la riqueza en
la cuenca. Para la familia Passiloraceae, de las 141 especies
reportadas a nivel nacional, 9 se distribuyen en la Orinoquia (Ocampo 2007). La familia Euphorbiaceae (Murillo,
2004) está representada en Colombia por 78 géneros y 390
especies, de las cuales 88 estan en la Orinoquia y son exclusivas de la región. Para la Tribu Paniceae (Poaceae: Panicoideae), Cañas (2001) reporta 244 especies para Colombia,
donde la Orinoquia es la segunda región con mayor número de especies (125), algunas endémicas como Axonopus
zuloagae (Vaupes, Guaviare y Amazonas), A pennellii (Meta
1
Municipios de Chiscas, Chita, Cubará, El Cocuy, Socha, Socotá,
Aquitania, Iza, Labranzagrande, Mengua Mongui, Pesca, Sogamoso, Tunja, Cucaita, Pajarito, Rodon, Samacá, Siachoque, Soracá, Tota, Campohermoso, Cinavita, Garagoa, la capilla, Miralorez, Pachavita, Páez, Tenza, Almeda Campohermoso, Guateque,
Guayatá, Macanal, San Luis de Galeno, Somondoco, Sutatenza,
Chivor, Cienaga, Jenezano, Nuevo Colón, Ramiriquí, San Eduardo, Ibaná, Turmequé.
2
Chocontá, Guasca, Cachetá, Manta, Sesquilé, Villapinzón,
Choachí, Fómeque, Gachalá, Gama, Junín, La Calera, Medina,
Paratebueno, Ubalá, Chipaque, Fosca, Guayabetal, Quetame,
Ubaque y Une.
3
Municipio de Tona.
4
Municipios de Herrán, Mutiscua, Pamplona, Pamplinita, Silos y
Toledo.
En cuanto a las loras regionales, la región llanera ya cuenta
con el catálogo de su lora (Duno et al. 2007), en el que
se cuentan 3.219 especies. Para los Andes se han estimado
7.500 taxa (Estrada, en Riina et al. (2007), en tanto que para
la cordillera de la Costa las estimaciones alcanzan a 4.500
(Meier, en Riina op. cit.), lo que concedería a la cuenca del
Orinoco en Venezuela, más de las tres cuartas partes de
la riqueza vegetal del país, cifra que en el Nuevo Catálogo
de la lora nacional asciende a 15.820 especies de plantas
(Hokche et al. 2008). Es relevante el listado de Sanoja et
al. (en preparación) quienes lograron contabilizar un total de 8.273 especies de la Flora de la Guayana entre las
subcuencas de la Orinoquia guayanesa venezolana. Otra
lora importante y particular es la de las plantas acuáticas
de Venezuela hecha por Velásquez (1994), y aunque regional, tienen relevancia las aproximadamente 250 especies
de plantas acuáticas que Rial (2009) estima para los llanos
inundables de la Orinoquia. Para esta región de los Llanos,
Riina et al. (2007) además de las 3.219 especies señaladas
149
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
anteriormente, reportaron la existencia de 190 familias,
1.117 géneros y 35 especies endémicas, siendo las familias
más diversas las Poaceae, Fabaceae, Cyperaceae, Rubiaceae
y Asteraceae. También anotaron la repartición de la riqueza
de especies entre las formaciones vegetales del llano: 30 %
crece en vegetación secundaria y matorrales, 20 % en sabanas, 16 % en vegetación acuática y humedales, 12 % en
vegetación ribereña no arbórea, igual porcentaje crece en
bosques, 7 % en morichales y 2 % en aloramientos rocosos.
Además de las loras o catálogos regionales, contamos con
algunos inventarios o lórulas para regiones de menor tamaño, que aunque incluidas en alguna de las grandes itoregiones ya mencionadas, permiten evaluar y comparar la
diversidad de un sector con otro, sean estos similares o muy
disímiles en sus características ambientales o biohistóricas.
Parte de la diversidad de plantas tóxicas ha sido estudiada
por Blohm (1962) quien presentó un total de 120 especies
con algún grado de toxicidad, acompañando la lista con
descripciones de cada planta, su distribución en el país,
condiciones de envenenamiento, síntomas y posible tratamiento.
especies de plantas en un área de 1,15 ha de bosque maduro nublado y uno sucesional adyacente ambos cercanos a
Mérida. Morillo y Briceño (2000) con 253 especies pertenecientes a 62 géneros en ambiente paramuno. Yánez (1998)
con 287 especies de plantas vasculares terrestres agrupadas
en 69 familias también en zona de páramo, bosque nublado
y la transición entre ambos, y Benítez (1997) quien registró
89 especies de 23 géneros de la familia Solanaceae para los
Andes venezolanos.
Región Guayana sur
Sabanas, bosques y arbustales de la altiplanicie Gran
Sabana, subregión FV7a. Gran parte de los ecosistemas
vegetales montanos y submontanos típicos de la Guayana
están representados en la Gran Sabana a una altitud entre
los 470 m s.n.m. (laguna de Canaima) y los 1500 m s.n.m.,
nivel altitudinal en el que comienza la provincia pantepui y
que en este estudio corresponde a la subregión herbazales,
arbustales y bosques montanos de los tepuyes orientales
(FV7b2). Este rango altitudinal junto a los diferentes tipos
de sustratos, determinan fundamentalmente la alta diversidad vegetal, tanto α como β y de asociaciones entre tipos
de vegetación que se observan en la Gran Sabana. Entre
las formaciones de plantas características destacan los herbazales graminosos, los de hoja ancha, los arbustales, los
bosques de tierra irme, de galería y los bosques montanos,
cuya composición lorística está más relacionada con los
bosques tepuyanos ubicados en el piso altitudinal superior.
Sin embargo, pese a la variabilidad de formas de vida y a la
diversidad de especies que todos los estudios botánicos le
atribuyen a la subregión, todavía no contamos con una lista
de plantas de la Gran Sabana, bien por el contrarío, aún
quedan amplias y remotas zonas por explorar.
NIVEL ALTO
Región Andes Altos
Los bosques, arbustales y páramos del orobioma andino semihúmedo, o subregión FV5a, contienen una alta
diversidad, según ha sido señalado en todos los inventarios, aunque ninguno de ellos comprende la totalidad de
la subregión, sino áreas o biomas particulares. El primer
inventario de la lora realizado fue el de Volkmar Vareschi
(1970), en el cual se contaron 428 especies de plantas superiores, 51 de pteridoitas y 62 de hongos, algas, líquenes
y brioitas. Sin embargo, la comunidad botánica nacional
coincide en que este inventario ha quedado desactualizado
y releja el conocimiento de los escosistemas de páramo
de los años cincuenta y sesenta del siglo pasado. Contamos
actualmente con el catálogo de las plantas con lores de los
páramos de Briceño y Morillo (2002, 2006), quienes registran la presencia de 78 familias con 267 géneros, 917 especies de dicotiledóneas y 520 especies de monocotiledóneas
contenidas en 17 familias y 123 géneros, todas autóctonas,
lo que representa un aumento de más de mil especies con
respecto a la lora de Vareschi hecha hace 40 años. Esta obra
bien podría ser la génesis de una nueva lora de esos ambientes montañosos.
En la subregión FV7b1, conocida como herbazales, arbustales y bosques montanos de los tepuyes occidentales,
Zent y Zent (2004) reportan los bosques más diversos de
Venezuela en sectores bajos de la sierra de Maigualida: 125182 especies de árboles con DAP > a 10 cm. medidos en
parcelas de 1 ha. Los arbustales tepuyanos de la región Guayana que ocupan relieves formados a partir de roca arenisca y poco suelo, o en lentes de profundas arenas blancas derivadas también de la arenisca, fueron reseñados por Huber
(1989), quien los ubica en esta subregión, desde los 1200 a
los 2400 m s.n.m.. Se les reconoce como diversos a partir
de las colecciones de Gleason (1931), Steyermark y Brewer
(1976), Huber (1986), y con gran número de especies endémicas por Steyermark y Maguire (1972), Steyermark (1986)
y Huber (1989), aunque no se ha publicado aún el listado
de sus especies. En Marahuaca Tillett y Steyermark (1982),
CORPOVEN (1984), Steyermark y Maguire (1984b) y Mi-
Por otra parte, los datos de riqueza local o por grupos han
sido contribuciones de varios autores. De los mas recientes
a los mas antiguos destacan: Schneider et al. (2003) con 411
150
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
botánica depositada en el Herbarío Nacional de Venezuela
(VEN), Rodríguez et al. (2008) reportan 7.309 muestras
botánicas efectuadas por 33 colectores. De ellas 155 son
colecciones Tipo. El total de esa colección pertenece a 159
familias, con 1913 especies. En la cuenca del río Cucurital, base occidental del macizo del Auyantepui, el proyecto
liderizado por Fundación la Salle de Ciencias Naturales,
estudió diversos transectos de bosque en el gradiente altitudinal de esta cuenca, Colonnello, Rial, Rodriguez y Fedón aportan en el informe inal, datos inéditos sobre composición, estructura y densidad de arboles (Señaris 2008).
Rodríguez y Colonnello (2009) publicaron 520 especies en
seis formaciones vegetales del sector mas alto de la cuenca.
chelangeli (1989) hallaron bosques, matorrales, vegetación
sobre roca, vegetación de áreas húmedas y pantanosas en
valles y depresiones de la altiplanicie, y vegetación en hábitats abiertos tipo sabana, registrando 275 especies de plantas. Michelangeli (2005) ofrece descripciones en sentido
amplio de los ambientes tepuyanos, lora, fauna, ecología y
otros tópicos bien ilustrados.
En la subregión de los herbazales, arbustales y bosques
montanos de los tepuyes, FV7b2, los estudios de diversidad de especies han demostrado la rica composición de
los ambientes tepuyanos, tanto en diversidad α como β. Incluso existen diferencias notables entre cimas o grupos de
cimas tepuyanas debidas a la altitud, sustrato, aislamiento,
tamaño de la cima y existencia efectiva de vías de acceso o
no con la vegetación de los pisos altitudinales inferiores.
En islas de vegetación sobre sustrato rocoso del Roraima
tepui, se encontró una fuerte relación entre el tamaño de las
islas y la diversidad. Otros factores importantes resultaron
ser el volumen del suelo y la disponibilidad de nutrientes
(Michelangeli 2000).
En el macizo granítico de Los Pijiguaos, Huber y Guánchez
(1988) describieron 11 tipos de vegetación mediante cuadratas y realizaron inventarios de vegetación en un sector
del área que luego sería ocupada en parte por la mina de
bauxita; en otras comunidades boscosas asociadas también
a grandes ambientes saxícolas, Gröger (1994) registró 166
especies en el domo granítico Monumento Natural Piedra
de la Tortuga, ubicado a 9 km al sur de Puerto Ayacucho.
En el marco de un proyecto multidisciplinarío que despejó numerosas incógnitas del medio biológico tepuyano y
luego de describir en detalle los siete tipos de vegetación
encontrados, Huber (1992) señala 289 especies de plantas superiores, provenientes principalmente de ambientes abiertos del Chimantá tepui. En otro inventario, un
censo rápido en el cerro Marutaní, Steyermark y Maguire (1984a), describieron varios ambientes: bosque enano
achaparrado, bosque alto cubierto de bríoitas y bosques
ribereños con una riqueza de 168 especies, 47 familias y 4
especies endémicas de este lugar remoto que no ha vuelto
a ser explorado.
Región Amazonas
La subregión de bosques húmedos de la Guayana occidental, o FV7d, también cubre una gran extensión y por ende
una gran heterogeneidad de hábitat. Aunque se le adjudica
una gran diversidad vegetal, el conocimiento botánico es
escaso. Los inventarios preliminares y locales disponibles
dan cuenta de 440 especies de plantas en un sector del río
Orinoquito (Fernández y Gonto, datos sin publicar), 505
en los alrededores de La Esmeralda (Aymard 2000), 510 en
el bajo río Ventuari (Rodriguez et al. 2006) y 187 en el valle
de Culebra, alto río Cunucunuma (Delascio 1992).
En la subregión sabanas inundables de arenas blancas
Inírida-Atabapo, FV8, no hay listas de lora. Sin embargo,
numerosos estudios señalan su alta diversidad y endemismo. Lleras (1997) incluye a esta área en la región del Alto
Río Negro, compartida con Colombia y Brasil, indicando
que la riqueza de especies de lora es extremadamente alta,
con más de 15.000 especies.
La subregión FV7c, o de los bosques húmedos de la Guayana oriental, es extensa, con sectores tan lejanos e inacesibles como diversos en hábitats y especies. Con zonas poco
o nada conocidas desde el punto de vista biológico, como
la cuenca del Apacará, en donde Bernardi (1957) halló 193
especies vegetales en 5 parcelas de 0,5 ha, de las cuales también anotó algunos usos por parte de los habitantes del área.
En el extremo noroccidental, concretamente en los alrededores de Puerto Ayacucho hallamos un area de concentración de endemismos conocida como ACE (Atures Centre
of Endemism) (Gröger y Barthlott 1996) del que se reportan, tan sólo en ambientes de aloramientos graníticos, 86
especies exclusivas de estos ambientes. Al sur de Puerto
Ayacucho se encuentra la cuenca del río Cataniapo Castillo
(1992) encontró 438 especies propias de los bosques húmedos. En la cuenca del río Caura y a partir de la colección
La subregión FV12, bosques en áreas de aloramientos
destaca por su alta diversidad y endemismos. Resaltan las
comunidades boscosas y arbustivas que crecen sobre o entre los domos graníticos o lajas, en donde se han encontrado 614 especies de plantas, de las cuales 86 están restringidas a esos ambientes rocosos en la Guayana (Gröger 1994,
2000, Gröger y Barthlott 1996). Camaripano-Venero y
Castillo (2003) contaron 614 especies de plantas superíores
en los bosques estacionalmente inundables del río Sipapo,
151
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
tales se desarrollaron sobre domos graníticos, cuyas características ambientales particulares dieron lugar a una lora
especializada y endémica. Gröger y Barthlott (1996) registraron 614 especies de plantas con lores y helechos (Gröger
2000). Los resultados preliminares del inventario de plantas
en sabanas y bosques tropóilos, así como en los hábitats
entre los ríos Aro y Maniapure (Gonto com. pers., datos
del Proyecto Biomedicinas del Bosque Tropical, IVIC), alcanzan las 879 especies; mientras que un poco más hacia
el oeste, Ruíz et al. (2007) han encontrado 218 especies en
parcelas situadas en bosques de la región de Los Pijiguaos.
mediante colecciones generales y parcelas de 0,1 ha paralelas al río. Fedón y Castillo (2005) listaron las plantas trepadoras presentes en los bosques ribereños de los ríos Cuao
y Sipapo, registrando 68 géneros y 109 especies; mientras
que Morales Rojas y Castillo Suárez (2005) estudiaron los
bosques siempreverdes de la conluencia de los ríos Cuao
y Sipapo e identiicaron 137 especies de árboles, 48%
pertenecientes a cinco familias (Euphorbiacea, Fabacea,
Caesalpiniacea, Chrysobalanacea y Mirtacea). Por su parte,
Avendaño y Castillo (2006), estudiaron los arbustos de las
comunidades boscosas ribereñas de la conluencia del río
Cuao en el Sipapo y de este en el Orinoco, reportaron 74
especies de arbustos, de los cuales cinco son endémicos del
estado Amazonas. Las familias dominantes en número de
especies fueron Rubiacea y Melastomatácea, representando
el 51% de las especies registradas.
Región Orinoco Delta
En los ambientes ribereños de los bosques, arbustales y
herbazales inundables del Corredor Medio Orinoco, subregión FV9c, a pesar de haber sido relativamente bien colectados, hay poca evidencia de esas colecciones, excepción
hecha por Camaripano-Venero y Castillo (2003), Fedón y
Castillo (2005), Morales y Castillo (2005), Avendaño y Castillo (2006), quienes inventariaron los diferentes hábitats y
formas de vida presentes en las cuencas bajas de los ríos
Sipapo, Cuao y Autana, dando como resultado 614 especies
de árboles, 74 de arbustos y 109 de trepadoras.
En la subregión bosques húmedos del alto Orinoco,
FV13, Aymard (2000) mediante inventarios ecológicos en
parcelas de 0,5 ha halló 505 especies correspondientes a 266
géneros en 72 familias, pertenecientes a tres tipos boscosos
de tierra irme cercanos a La Esmeralda y reportó además
una alta diversidad β entre los tres bosques. Unos 200 km.
aguas arriba del río Orinoco, casi en sus cabeceras, Fernández y Gonto (datos sin publicar) contaron 440 especies
autóctonas en un sector del bajo y medio río Orinoquito y
describieron seis tipos de bosques en el sector.
Algunos bosques de la subregión FV9d, bosques, arbustales y herbazales inundables del Corredor Alto Orinoco,
se conocen como caatingas o bosques que soportan una
fuerte inundación estacional de aguas negras (sensu Sioli
1965), crecen sobre suelos oligotróicos de arenas blancas
y están dominados por pocas especies. En bosques de este
tipo Coomes y Grubb (1996) encontraron 87 especies de
plantas en caatingas altas y 78 en caatingas bajas, en tanto que Aymard (2000) registró 505 especies en bosques no
inundables, siendo las familias más diversas, Rubiaceae,
Melastomataceae, Fabaceae y Piperaceae.
Región Orinoco- Delta
En los bosques y herbazales del Delta, FV9a Colonnello
(1996) indicó la existencia de 100 especies de plantas en 23
puntos de estudio incluyendo todos los ambientes acuáticos, diferenciados en lénticos y lóticos. Colonnello (2004)
determinó las especies arbóreas dominantes en cada sector
del delta: superíor, medio y bajo. Igualmente hizo para las
comunidades estrictamente ribereñas y para las hierbas de
cubetas y lagunas interiores.
Región Cordillera de la Costa
Se ha mencionado que los bosques montanos y submontanos de la cordillera de la Costa, subregión FV11, son
medianamente diversos, pues en ellos conluyen formaciones vegetales típicas de pisos altitudinales intermedios de
las cordilleras andina y costera, con elementos de bosque
y sabana tropóilos de los llanos. Pero desde hace muchos
años, los ecosistemas de esta subregión están sometidos a
intensas presiones por el avance del proceso de sabanización generado por la quema anual y la deforestación. Este
hecho ya ha sido alertado por Delascio (1994) y Meier
(2005), quienes pese a haber encontrado 242 y 250 especies
de plantas superiores en pequeños sectores del Cerro Azul,
estado Cojedes y cerro Platillón, estado Guárico, comentan
la gran devastación a que están sometidos estos ambientes
NIVEL MEDIO
Región andes-piedemonte
En los bosques semicaducifolios del piedemonte andino
medio, FV1b, Cuello et al. (1989) realizaron inventarios
lorísticos y descripciones de los tipos de vegetación en
bosques con diferentes grados de alteración de la cuenca
medio del río Portuguesa, aportando un listado de 461 especies vegetales de bosque y sabana.
Región Guayana norte
En la subregión sabanas arboladas occidentales del norte
de la Guayana, FV6a, las comunidades de bosques y arbus-
152
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
los árboles a partir de 2,5 cm. la diversidad fue mayor, pues
se encontró una especie diferente cada 4,43 árboles, mientras que en las mediciones a partir de 10 cm., de cada 9,7
árboles solo una especie fue diferente.
montanos y submontanos, con la consecuente pérdida de
diversidad y aceleración de los procesos erosivos.
NIVEL BAJO
En el humedal del estado Apure, Castroviejo y López (1985)
en su estudio fotosociológico de la sabana listan 327 especies, 208 géneros y 81 familias de plantas leñosas, arbustivas
y herbaceas. Galán de Mera et al. (2006) también estudian
la riqueza de especies y de asociaciones itosociológicas
en bosques y arbustales, arbustales ribereños, pastizales,
comunidades helofíticas, pleustohelóitos, pleustóitos e
hidróitos e hidróilas. Rial (2009) redeine el concepto de
planta acuática, considerando las ecofases e incluye en su
catálogo 197 especies principalmente herbáceas, pertenecientes a 122 géneros y 56 familias, con predominio en un
30% de poaceas y ciperaceas.
Región Andes-piedemonte
En la subregión bosques semicaducifolios y arbustales xerofíticos del piedemonte andino norte, FV1a, no se han
producido lórulas locales ni listados de plantas. Sólo existen las listas que Ramia (1993) publicó sobre los paisajes
de montaña y de colina en su estudio sobre la ecología de
las sabanas del estado Cojedes. En ambos casos reporta la
existencia de más de cien especies entre hierbas, arbustos
y arbolitos.
La subregión bosques siempreverdes del piedemonte
andino sur, FV1c es otra de las subregiones de la cuenca
venezolana del Orinoco que ha recibido poca atención botánica, pues aunque se sabe de colecciones realizadas allí,
no se han publicado los datos lorísticos. Solo López et al.
(1999) señalan la existencia de algunas plantas en el área
al ser inundada por la represa Uribante-Caparo, y Bono
(1996) en su catálogo, además de las extensas y detalladas
descripciones de la vegetación del estado Táchira, ofrece
listas de especies vegetales por tipo de formación y piso altitudinal que dan cuenta de 415 epecies en bosques, 160 en
sabanas y 13 especies de condición higróila.
No hemos encontrado listas de diversidad de plantas de
la subregión sabanas de altillanura seca arenosa eólica,
FV3c, a pesar que se han llevado a cabo en ella, algunas
caracterizaciones de la relación entre las formaciones vegetales y los suelos (Schargel y Aymard 1993), o de la fenología de algunas especies de este sector del llano y el tipo e
intensidad de la inundación, suelos y paisaje (Ramia 1977).
Región Guayana norte
Los bosques de los alrededores de Upata pertenecientes a
la subregión sabanas arbustivas orientales del norte de
la Guayana, FV6b, albergan 85 especies de árboles/ha con
diámetros a la altura del pecho > 20 cm, incluyendo tres
especies de palmas (Veillon 1997). Hay que resaltar que los
bosques referidos, según menciona el autor no son bosques
primarios, sino afectados y reducidos en mayor o menor
grado por la quema, la extracción de productos forestales
ocasionales y el pastoreo.
Región Llanos
La subregión FV2, sabanas inundables es muy extensa y
heterogénea. En cuanto a los bosques, hay que resaltar la
pérdida de especies forestales de alto valor económico ocurrida en la extinta Reserva Forestal de Turén en donde, de
acuerdo a Sánchez (1991) “se encontraban importantes poblaciones de caobas y cedros” y quien concluye en su análisis que la ocupación desordenada del territorío y la acción
del estado a favor del desarrollo agrícola y en menoscabo
del forestal y ambiental, han sido los responsables de su
destrucción. Otra forma de explicar la pérdida de riqueza forestal se muestra en la evaluación de la desaparición
de la cobertura forestal en la Reserva Forestal de Ticoporo,
realizada por Pozzobon y Osorío (2002) quienes demuestran mediante imágenes satelitales, los cambios sufridos
en la cubierta boscosa a lo largo de 38 años, pasando de
171.171,5 ha. en 1963 a 39.740,8 ha. en 2001, es decir una
alarmante disminución del 77%.
Región Orinoco-Delta
En los bosques, arbustales y herbazales inundables del
Corredor Bajo Orinoco, subregión FV9b, la evaluación
preliminar de la diversidad de plantas de los bosques ribereños de la Reserva de Fauna Silvestre y Zona Protectora de
la Tortuga Arrau muestra la existencia de 50 especies de árboles con DAP > 10 cm en transecciones perpendiculares
al río. Los tipos de vegetación encontrados fueron: bosques
ribereños estacionalmente inundables, sabanas arboladas,
bosques bajos, vegetación herbácea sobre lajas y vegetación
herbácea sobre islas de arena (Delgado y Madriz 2007). En
los alrededores de Cabruta y Caicara, en ambas márgenes
del río Orinoco, Díaz (2009) diferenció ocho tipos de vegetación y 110 especies agrupadas en 49 familias de plantas
En diferentes bosques de galería del estado Portuguesa
Stergios et al. (1998) encontraron 115 especies de árboles
contados en parcelas y transecciones, y medidos entre DAP
> 2,5 > 10 cm. En aquellas parcelas en las que se midieron
153
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
superiores. Un nivel similar de riqueza se reportó en los
bosques del río (Rosales 1989), mientras que en las márgenes de los 200 km. al inal del bajo Orinoco su cifra aumenta hasta las 319 especies (Díaz y Rosales 2006).
del Parque Nacional Aguaro Guariquito; en tanto que en
el estudio de suelos y vegetación en dos toposecuencias
cercanas a Calabozo, estado Guárico, Montes y San José
(1995) observaron 515 especies, de las cuales, 243 crecen
en el bosque estacional de galería, siendo este el ambiente
más diverso, mientras que en los palmares estacionalmente inundados de Copernicia tectorum apenas se reportaron
79 especies. Ponce et al. (1994) encontraron 59 especies de
plantas a lo largo de una toposecuencia de 900 m., otros
reportes de lora de estas sabanas poco diversas aparecen en
Susach (1989) y Blydenstein (1961, 1962, 1963).
Región Llanos
La vegetación de la subregión sabanas de galeras, FV10a,
no diiere en mucho de aquella en subregiones circundantes: sabanas, bosques tropóilos, matorrales, palmares y
bosques de galería. Berroterán (1985,1988) reportó 95 especies de plantas en parcelas dispuestas en estos ambientes,
33 de las cuales son gramíneas. Ramia (1993, 1997) catalogó casi un centenar de especies en sus transecciones sobre
paisaje de colinas y en paisaje de galeras El Pao.
ESPECIES ENDÉMICAS
En la subregión FV10c, sabanas de llanos orientales se
han hecho colecciones botánicas como parte de los estudios
de impacto ambiental para la industria petrolera, pero las
listas no han sido publicadas. Algunas compilaciones de la
itodiversidad local provienen del trabajo de Pittier (1942)
quien describió los tipos de vegetación de la Mesa de Guanipa y de los llanos del sur de Anzoátegui, las descripciones
están acompañadas de listas de especies para cada sector o
formación, que en su momento fueron denominadas: sabana de saetas, sabanas anegadizas, morichales, morichales
secos, matas, vertiente al norte, río Cari y Pariaguán.
En la Figura 5.6 se muestra un mapa con el nivel de concentración de endemismos en cada una de las subregiones de
la cuenca del Orinoco.
Colombia
En Colombia el análisis de las especies endémicas se realizó en función de las especies con algún grado de amenaza.
En este contexto, la familia Chrysobalanaceae con el mayor
número de especies amenazadas en la región de la Orinoquía colombiana cuenta con tres especies endémicas: Hirtella adenophora, Hirtella maguirei y Hirtella vesiculosa y tan
solo H. maguerei ha sido reportada en un área protegida
(Serranía de la Macarena).
NIVEL MUY BAJO
Región Llanos
A pesar del interés botánico y ecológico que tienen las sabanas de altillanura seca, subregión FV3b, no contamos
con ninguna lista de plantas típicas de sus comunidades
vegetales. Sólo se conoce, por los testimonios escritos de
botánicos y ecólogos vegetales, que son poco diversas y que
en ellas hay algo de inluencia de la lora guayanesa. La de
Aristeguieta (1968 a), es la primera referencia acerca de la
composición de los morichales al norte del Orinoco, concretamente en la subregión FV10b, sabanas de altos llanos
centrales, en donde se totaliza para la época 193 especies
diferentes. En los sabanales próximos al Orinoco en el sur
del estado Anzoátegui, Dezzeo et al. (2008) reportaron baja
diversidad (56 especies de plantas con DAP ≥ 5 cm), pocas
de ellas con Índice de Importancia alto en determinados
ambientes típicos de esta subregión. Por ejemplo, en el bosque ribereño encontraron 21 especies entre hierbas y árboles, en el bosque semidecíduo 48, en el morichal 39, mientras que en las sabanas arbustivas densas y en las arbustivas
ralas encontraron 19 y 11, respectivamente. Otra lista de
plantas proviene de Montes et al. (1987) con 378 especies
En cuanto a aspectos geográicos y de distribución, del total
de especies aquí reportadas, el 35% son especies endémicas
de Colombia, mientras que el porcentaje restante son taxa
que además de estar en Colombia, se extienden más allá
de la región del escudo Guayánaes compartido por Colombia y Venezuela, a otros países con distribución andina y
Caribe (anexo 6). De las especies endémicas o con área de
distribución muy restringida, más del 75% se ubican en una
categoría de riesgo VU y NT.
Por otro lado, a nivel de país, el porcentaje de especies que
sólo pertenece a la Orinoquía colombiana corresponde
al 35% del total (26 especies) mientras que la proporción
restante está compartida con otras regiones de Colombia.
Diez especies son exclusivas de Colombia y de la Orinoquía
colombiana, siendo el departamento del Meta el territorio
con más endemismos y especies bajo alguna categoría de
riesgo (Tabla 5.1).
154
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Figura 5.6 Endemismos: lora y vegetación.
Tabla 5.1 Especies endémicas y exclusivas de la Orinoquía colombiana.
Familia
Especie
Categoría
Criterio
Distribución
global
Depto.
Chrysobalanaceae
Hirtella maguirei
CR
B1ab(i,ii,iii)
COL
Meta
360
490
Lecythidaceae
Eschweilera cabrerana
EN
B1ab(iii)
COL
Meta
500
1900
Acanthaceae
Aphelandra schieferae
VU
COL
Meta
300
900
Espeletia tapirophila
VU
D2
COL
Meta
3000
3400
Libanothamnus tamanus
VU
D2
COL
Arauca
3300
3460
Hirtella adenophora
VU
D2
COL
Meta
850
1000
Hirtella vesiculosa
VU
D2
BRA?, COL
Guainía
0
1000
Orquidaceae
Restrepia metae
VU
D2, B1abiii
COL
Meta
0
550
Zamiaceae
Zamia melanorrhachis
LC
COL
Meta
0
1300
Asteraceae
Diplostephium fosbergii
NT
COL
Meta
3200
3300
Asteraceae
Chrysobalanaceae
155
Altura (m)
(Mín, Máx)
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Venezuela
ro de endemismos (99 especies) valor relacionado con su
amplia supericie, su gran desnivel entre base y topes y sus
numerosos hábitats. Para Conservation Intenational (2003)
la Gran Sabana se destaca como zona de importancia para
la lora debido a su alto grado de endemismo, especies amenazadas y ocurrencia de procesos ecológicos y evolutivos.
NIVEL ALTO
Región Guayana sur
Los ecosistemas tepuyanos de las subregiones, FV7b1, herbazales, arbustales y bosques montanos de los tepuyes
occidentales, y, FV7b2, herbazales, arbustales y bosques
montanos de los tepuyes orientales, fueron señalados
como áreas de importancia debido a su nivel de endemismo, a su riqueza y a la existencia de procesos ecológicos y
evolutivos (Conservation International 2003). Se sabe que
el número de especies endémicas aumenta, en el caso de las
cimas tepuyanas, en función del área del cerro, la diversidad de hábitats y la distancia a otros cerros (Steyermark y
Maguire 1984b). Hasta 1984(b), Steyermark y Maguire habían reportado en las cimas del Marahuaca tepui 17 plantas
endémicas de unas 140 especies, obtenidas de las primeras
659 colecciones botánicas hechas en la región. Steyermark
(1986, 1979a, 1979b) con una abundante información producto de sus años de exploración de la Guayana, determinó
los niveles de endemismo a nivel genérico, las relaciones
entre las plantas guayanesas endémicas y la existencia de
los refugios pleistocénicos, además de la especiación y el
endemismo en los tepuyes.
La porción más occidental de la subregión FV7c, bosques húmedos de la Guayana oriental, ocupa o alcanza
el noroeste del estado Amazonas. Parte de esta zona está
comprendida en el “Atures refuge” (Steyermark 1982), que
equivale al ACE (Atures centre of endemism) (Gröger y
Barthlott 1996) y representa un punto importante de endemismo entre las provincias itogeográicas de los Llanos
y de la Guayana central. 35 especies han sido consideradas endémicas de los ambientes de lajas o inselbergs, según
Gröger (1994), quien señala a los aloramientos graníticos
como portadores de un alto porcentaje de elementos ecoendémicos, o lo que es lo mismo, especies que pueden tener
una amplia distribución geográica, pero que están restringidas a hábitats muy particulares, tanto así que, citando
a Huber y Frame (1989) considera a estos aloramientos
como uno de los cinco centros de endemismo más importantes de Venezuela.
Región Amazonas
Existen pocas referencias bibliograicas sobre el grado de
endemismo de la subregión bosques húmedos de la Guayana occidental, FV7d. Sin embargo, suele citarse como
medianamente endémica debido a la extensión de sus ambientes con suelos de arenas blancas y alta precipitación.
Por ejemplo, las sabanas y bosques que rodean al cerro Yapacana albergan 24 especies exclusivas de ese sector de las
tierras bajas amazónicas (Berry et al. 1995).
NIVEL MEDIO
Región Andes altos
En los bosques, arbustales y páramos del orobioma andino semihúmedo, subregión FV5a, Briceño y Morillo
(2002, 2006), catalogaron 68 especies de monocotiledóneas
endémicas y 319 de dicotiledóneas para los páramos venezolanos; en tanto que Morillo y Briceño (2000) determinaron que una de las más importantes familias del ambiente
páramo, Asteraceae, incluye 62 especies endémicas. Kelly
et al. (1994) reportaron 219 taxa en 1,5 ha, señalando que
el 44% de la lora encontrada está restringida al norte de
Colombia y Venezuela y el 25% es endémica de Venezuela.
El mayor porcentaje de endemismos en la subregión sabanas inundables de arenas blancas Inírida-Atabapo, o
FV8, está asociado a los ecosistemas pobres en nutrientes
sobre arenas blancas, con baja capacidad de retención de
agua y cationes. Berry et al. (1995) anotaron 22 especies
endémicas para la cuenca del río Atabapo.
Región Guayana sur
En la subregión sabanas, bosques y arbustales de la altiplanicie Gran Sabana, o unidad FV7a, Picon (1995) estimó 310 especies estrictamente endémicas del área de la
Gran Sabana. Berry et al. (1995) señaña 2.322 taxa presentes en la lora de Pantepui, de las cuales 766 (33 %) son endémicas de la provincia de Pantepui; pero si se determina el
nivel de endemismo especíico de la Guayana venezolana, la
cifra asciende a 1.088 (47%). Berry (op cit) mencionan que
Chimantá es el tepui de esta subregión con el mayor núme-
Para los bosques en áreas de aloramientos, subregión
FV12, Conservación Internacional (2003) ha señalado la
importancia biológica de las cuencas de los ríos Cuao y Sipapo, con base en su riqueza y endemicidad vegetal y llama
la atención acerca del bajo nivel de conocimiento cientíico
y la alta necesidad de inventarios biológicos.
No existen datos del nivel de endemismo en los bosques
húmedos del alto Orinoco, subregión FV13. Sin embargo
156
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
se presupone que aún tratándose de bosques de tierras bajas, por la multiplicidad de ambientes edáicos, de paisajes
y de valores de precipitación el endemismo ha de ser de
carácter medio.
No se ha producido una lista concreta de plantas endémicas
de la subregión bosques siempreverdes del piedemonte
andino sur, FV1c, no obstante, disponemos de la enumeración de endemismos de Bono (1996): 81 taxa provenientes
de los niveles basimontanos y montanos del estado Táchira,
aunque algunas especies de esa lista pertenecen también a
las vertientes que drenan al Lago de Maracaibo y no al Orinoco. Steyermark en el reporte sobre el estado de conservación de los bosques húmedos de Venezuela (Sierra Club y
Consejo de Bienestar Rural 1976), señaló entre los bosques
que requieren protección, aquellos que cubren las faldas
surorientales de esta subregión debido al endemismo que
se ha desarrollado en ellos. Son bosques que crecen sobre
areniscas y que están emparentados con la lora de la cordillera oriental colombiana.
NIVEL BAJO
Región Orinoco-Delta
Solo dos plantas con lores son endémicas estrictas de la subregión bosques y herbazales del Delta, FV9a según Berry
et al. (1995).
Región Llanos
De las sabanas de llanos altos centrales, subregión FV10b,
concretamente del Parque Nacional Aguaro-Guariquito
provienen las endémicas Calyptrocarya montesii, Calyptrocarya delascioi, Borreria aristeguietana, Selaginella albomarginata, Rhynchospora papillosa y Stilpnopappus pittieri,
según el catálogo de las plantas de los Llanos (Duno et al.
(2007). Por otra parte, Riina et al. (2007) mencionan la presencia de 11 especies endémicas en la subregión (estados
Anzoátegui y Guárico).
Región Llanos
La subregión llanos inundables, o FV2, ocupa una amplia
supericie en los llanos venezolanos. Su condición climática
biestacional y espectro ecológico es uniforme en relación
a otras subregiones y su origen geológico es reciente, por
lo cual su nivel de diversidad vegetal y endemismo es bajo.
Aunque de pocas localidades, se conocen cuatro especies
exclusivas del estado Portuguesa y dos de Barinas (Duno
et al. 2007), entre ellas el perhuétano Mouriri barinensis,
de madera valiosa y actualmente en peligro de extinción
(Llamozas et al. 2003).
Región Cordillera Costa
Del sector cordillerano de los bosques montanos y submontanos de la Cordillera de la Costa, subregión FV11
no se conocen listados de plantas endémicas. En el extremo
oeste de la subregión, Steyermark (Sierra Club y Consejo de
Bienestar Rural 1976) reconoció la importancia biológica
de los extensos bosques nublados al sur de Humocaro Alto
y Terepaima, en los que concurren las loras de las cordilleras andina y de la Costa, con numerosas plantas endémicas
como Psychotria manareana, P. terepaimensis, Hofmannia
larensis, Talauma dodecandra, Simira myriantha y una rara
especie del género Tapirira, además de muchas otras que
encuentran aquí el límite oriental de su distribución.
Las subregiones sabanas de altillanura seca, FV3b, y las
sabanas de altillanura seca arenosa eólica, FV3c, ocupan
parte del estado Apure, lugar de donde provienen 19 especies de plantas endémicas, lo que hace que este sea el Estado
con mayor grado de endemismo del conjunto de los Estados llaneros en Venezuela (Duno et al. 2007).
Apenas se tiene conocimiento de tres especies endémicas
en la subregión sabanas de galeras, FV10a y que comparten los Estados llaneros Guárico y Portuguesa (Duno
et al. 2007), estas son: Habenaria unellezii, Borreria aristeguietaeana y Matelea aristeguietae; mientras que en la de
sabanas de llanos orientales, subregión FV10c, casi toda
incluída en el estado Monagas, se reportan cuatro endemismos: Hymenocallis bolivariana, Tanaecium apiculatum,
Phoradendron pachystachyum y Eríopidium strictum.
NIVEL MUY BAJO
Región Andes-piedemonte
No se conocen reportes de especies endémicas de la subregión bosques semicaducifolios y arbustales xerofíticos
del piedemonte andino norte, FV1a.
Región Guayana norte
La subregión bosques semicaducifolios del piedemonte
andino medio, FV1b está cubierta en gran parte por bosques montanos y submontanos que contienen, según Steyermark (Sierra Club y Consejo de Bienestar Rural 1976)
bosques ricos y diversiicados, con especies raras y endémicas, como Gettarda bernardii y Palicourea canaguensis.
El endemismo de las sabanas arboladas occidentales del
norte de la Guayana, subregión FV6a, es considerado muy
bajo debido a que sus comunidades vegetales más extensas,
sabanas y bosques tropóilos, están constituidas por especies de amplia distribución propias de los llanos y de las
tierras bajas de la Guayana. Sin embargo, en los ambientes
157
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
ESPECIES AMENAZADAS
sobre los domos o lajas graníticas que ocurren por toda su
supericie se ha desarrollado una lora particular, cuyo grado de endemismo ronda el 24% (145 especies) del total de
su lora conocida, que alcanza a 614 especies.
En la Figura 5.7 se encuentran cada una de las biorregiones
clasiicada según el número de especies en alguna categoría
de amenaza.
Ningún reporte de endemismo proviene de la subregión
sabanas arbustivas orientales del norte de la Guayana,
FV6b.
Colombia
De aproximadamente 1000 especies que han sido clasiicadas hasta el momento en algún grado de vulnerabilidad o
riesgo de amenaza en Colombia (según listas y libros rojos
del Instituto Alexander von Humboldt), cerca del 7.5% (75
especies) se encuentra en la región de la Orinoquía (ver
anexo 6), región que comprende desde las estribaciones de
la Cordillera Oriental de los Andes y su prolongación en
Venezuela, hasta la planicie de los Llanos en un conjunto de
mesetas y enclaves edáicos, en los departamentos de Arauca, Casanare, Meta, Vichada, Guainía, Guaviare y parte de
Vaupés.
Región Delta Orinoco
Tampoco se conocen listas de especies endémicas de la subregión bosques, arbustales y herbazales inundables del
Corredor Bajo Orinoco, FV9b.
Una parte de la subregión FV9c, bosques, arbustales y
herbazales inundables del Corredor Medio Orinoco, es
parte del “Atures refuge” o el “Atures centre of endemism”
(ACE) de Gröger y Barthlott (1996) quienes encontraron
86 especies endémicas en estos ambientes rocosos, de las
614 que ocurren naturalmente en los inselbergs o lajas.
Figura 5.7 Especies amenazadas: lora y vegetación.
158
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Del total de especies registradas, tres están bajo la categoría
CR (4.05%): Espeletia oswaldiana (CR, B1 ab (iii))5, Hirtella
maguirei (CR, B1 ab (i,ii,iii)) y Aniba perutilis (CR, A2cd).
Estas tres especies son exclusivas para Colombia, con una
distribución típicamente andina, y tan solo H. maguirei tiene una distribución restringida al pie de monte de la cordillera Oriental (Meta, municipio de Mesetas), entre los 300 y
500 m.s.n.m. Las dos especies de árboles (H. maquirei y A.
perutilis) están en categoría CR, son especies de importancia maderable, por lo cual además de las amenazas comunes de hábitat, sus poblaciones han disminuido por el uso
de la madera.
un futuro cercano de no implementarse medidas para su
conservación.
Con un total de 13 especies, la familia Chrysobalanaceae,
resulta ser la familia con el mayor número de especies
amenazadas en la región, donde Hirtella maguirei (CR),
Parinari pachyphylla (EN), Hirtella adenophora, Hirtella
vesiculosa, Licania lasseri y Licania silvae (VU) son las especies con poblaciones más amenazadas. En general, Las
Chrysobalanaceae son una familia de árboles y arbustos,
de distribución tropical y subtropical, donde la mayoría de
sus especies preiere los bosques de tierras bajas, de suelos
bien drenados y pantanosos. Sin embargo, las especies de
los géneros Licania, Couepia y Parinari son con frecuencia
miembros del dosel (Prance y White 1998). Para Colombia
se han reportado 5 géneros y un total de 121 especies, cuyas
amenazas principales son la tala, la deforestación, la conversión de tierras para agricultura o ganadería (en menor
grado para urbanización) y en algunos casos la sobreexplotación maderera (Calderón et al. 2002).
Los taxa en categoría VU, representan el 20% (15 especies),
lo que indica que estos taxa enfrentan un moderado riesgo
de extinción o deterioro poblacional a mediano plazo, en
gran medida por la reducción en el tamaño de la población y en el rango de distribución geográica (UICN, 2001).
Cerca del 37% (28 especies) de las especies evaluadas están
en una categoría NT (Figura 5.8), indicando que este gran
porcentaje de especies podrían estar amenazadas (VU) en
5
En cuanto a la importancia en función del número de especies amenazadas, las familias con mayor riesgo son Chrysobalanaceae, Asteraceae, Palmae y Orchidaceae (Figura 5.9).
Recomendación de acciones para su conservación asociada a la
evaluación de riesgo en los libros rojos.
Figura 5.8 Distribución porcentual de las especies amenazadas de la Orinoquía colombiana según categorías de riesgo de la UICN
(CR, En peligro Crítico; EN, En peligro; VU, Vulnerable; NT, Casi Amenazado; LC Preocupación Menor; NE, No evaluado, pero con
datos de reducción y peligro de poblaciones a nivel regional).
159
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Figura 5.9 Familias de plantas con el mayor número de especies en categorías de amenaza en la región de la Orinoquía.
Figura 5.10 Formas de vida con la mayor proporción de especies bajo alguna categoría de riesgo.
160
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
también de la forma de vida de las especies en cuestión.
La categoría CR está asociada a especies con forma de vida
arbustiva y herbácea que presentan distribuciones geográicas restringidas y endémicas para Colombia, con una representatividad del 100% de las especies evaluadas en este
reporte. También se hace evidente una asociación entre esta
categoría con la ausencia de las especies en áreas bajo conservación (66.67% de las especies CR no están en este tipo
de áreas). Igualmente es relevante la asociación entre las
especies vulnerables y casi amenazadas (NT) con la ausencia de estas especies en iguras de protección in situ (53% y
95% respectivamente del total de cada categoría) además de
ser especies que son exclusivas de la región Orinoquía (40%
(NT); 53% (VU)) y de Colombia (83% (NT); 77% (VU)).
Las Asteraceae están representadas por 10 especies, entre
frailejones y otros arbustos de zonas altoandinas y paramunas, que se ubican principalmente en las zonas por encima de los 3000 m.s.n.m. de la cuenca del Orinoco, en los
departamentos de Meta, Arauca y Casanare, en los límites
con Boyacá y Cundinamarca. Espeletia oswaldiana (CR), E.
cabrerensis, E. tapirophila y Libanothamnus tamanus (VU)
son especies endémicas y muy amenazadas de la parte alta
de la gran cuenca. Para Palmae y Orchidaceae se reportan
9 especies con algún grado de amenaza. Orquídeas como
Masdevallia discolor, Cattleya schroederae y Restrepia metae
son las más vulnerables (bajo la categoría VU), con distribución restringida.
De estas 26 especies, seis (Hirtella vesiculosa, Licania lasseri
(VU); Acioa schultesii, Leopoldinia piassaba (NT); Bowdichia virgilioides y Dypterix odorata (NE)), son especies que
además de estar presentes en Colombia, se distribuyen en
otros países de la región, como Brasil, Venezuela, Surinam
y Las Guayanas.
La categoría EN aparece a especies de árboles (63%) y palmas (25%), presentes en áreas protegidas (75%), pero que
no son necesariamente endémicas ni exclusivas de la región
de la Orinoquía. Por esta razón, muy seguramente el estado
de peligro de las poblaciones de estas especies no se debe a
su protección ni a su área de distribución, pues la mayoría
está protegida y no es endémica, sino al uso, que para este
reporte no fue tenido en cuenta porque la información no
es suiciente para el total de las especies reportadas. Sin embargo es muy posible por los antecedentes del país, que estas
especies en la Orinoquía estén en peligro por disminución
poblacional debido a la tala por uso maderable. Las especies bajo la categoría NE, fueron reportadas aquí debido a
consenso de expertos en la región Orinoquía en talleres regionales del proyecto ECOPETROL-IAvH (2010), y para el
caso es una categoría no evaluada que está representada por
especies no exclusivas del país, ni de la Orinoquía, así mismo tampoco son endémicas y no están reportadas en CITES, pero sus poblaciones están siendo diezmadas a nivel
local por su uso y la fragmentación del hábitat. La categoría
de riesgo LC está asociada a especies epíitas (43%), y en
protección por CITES (72%), sin embargo es una categoría
cuyas especies están fuera de áreas de protegidas (100%).
En relación a la distribución altitudinal, 68% del total de
especies reportadas para la Orinoquía presenta una distribución probable inferior a los 1000 m.s.n.m., es decir que
la mayoría de las especies en algún grado de vulnerabilidad
en la región se localiza en zonas de tierras bajas.
Por otro lado, los árboles son la forma de vida más amenazada en la región de la Orinoquía, cerca de 49% de las
especies bajo un riesgo de amenaza son árboles. Estos son
seguidos por los arbustos, epíitas y palmas (Figura 5.10).
Por otro lado, con el in de identiicar asociaciones funcionales entre la categoría de riesgo y los distintos rasgos de
distribución geográica, conservación in situ, y forma de
vida, se realizó un análisis de contingencia con las categorías de riesgo como criterio de clasiicación utilizando el
estadístico Chi-cuadrado (Infostat 2010) y un Análisis de
Correspondencia Multiple ACM (Infostat 2010), un tipo de
análisis multivariado que permite visualizar las asociaciones entre variables de tipo categórico, y que gráicamente
muestra un biplot donde se representa la asociación entre
las variables, en este caso los rasgos con respecto a las categorías de riesgo.
De esta manera con este análisis, es posible airmar la relevancia de realizar a nivel regional la revisión in situ del
estado actual de las especies bajo categorías como NT o LC,
cuyos atributos especiales de distribución y forma de vida
son de alto riesgo, como es el caso de los endemismos y los
rasgos de crecimiento relacionados con arbustos y hierbas,
de especies que al momento no están en planes de manejo,
ni en áreas protegidas, ni bajo algún aspecto legal de protección en la región de la Orinoquía colombiana, ya que su
cambio de categoría a en peligro y en peligro crítico puede
ser inminente, de acuerdo a los patrones encontrados en
estos análisis, sin adicionar el caso de uso.
De acuerdo a los resultados de este análisis, el estado de
riesgo de las especies de la Orinoquía está asociado a rasgos de distribución geográica, como la exclusividad para
el país, y el endemismo o restricción de área de distribución, además de la presencia o no de áreas protegidas en
el rango de acción de las especies amenazadas, así como
161
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Venezuela
Hymenaea courbaril L.
A continuación se listan las especies de plantas superiores
de la cuenca venezolana del río Orinoco incluidas en alguna categoría de amenaza: CR en peligro crítico; EP en
peligro; VU vulnerable (UICN 1994), según datos del Libro
rojo de la lora venezolana (Llamozas et al. 2003).
Jacaranda orinocensis Sandwith
NIVEL ALTO
Pachira quinata (Jacq.) W.S. Anderson
VU
Mauritia lexuosa L.f.
Myrocarpus venezuelensis Rudd
EP
Ocotea cymbarum Kunth
Peltogyne loribunda (H.B.K.) Pittier
Región Andes altos
VU
Pereskia guamacho F.A.C. Weber
Subregión bosques, arbustales y páramos del orobioma
andino semihúmedo FV5a.
Uladendron codesuri Marc.-Berti
EP
Vitex capitata Vahl
VU
Bejaria tachirensis A.C. Sm.
Subregión bosques, arbustales y herbazales inundables
del Corredor Medio Orinoco, FV9c.
Dicksonia sellowiana (Presl) Hook.
Equisetum giganteum L.
Cochlidium pumilum L.E. Bishop
VU
Acacallis cyanea Lindl.
VU
Plagiogyria semicordata (C. Presl) H. Christ
Catasetum bergoldianum Foldats
Retrophyllum rospigliosii (Pilg.) C.N. Page
Catasetum gomezii G. Romero y Carnevali
Saurauia oroquensis Soejarto
Catasetum longifolium Lindl.
VU
Catasetum pileatum Rchb.f.
EP
Catasetum tapiriceps Rchb. f.
VU
Cattleya lawrenciana Rchb.f.
CR
Cattleya violacea (Kunth) Rolfe
VU
Coryanthes cataniapoensis G. Romero y Carnevali
EP
Coryanthes pegiae G. Romero
CR
Drosera cendeensis Tamayo y Croizat
EP
Geranium jahnii Standl.
Gustavia macarenensis Philipson subsp. paucisperma S.A.
Mori
VU
Talauma venezuelensis G. Lozano
EP
Prestoea acuminata (Willd.) H.E. Moore var. acuminata
VU
Acineta cryptodonta Rchb. f.
Ceroxylon vogelianum (Engel) H. Wendl.
Couma utilis (Mart.) Müll.
EP
Desmoncus polyacanthos Mart. var. polyacanthos
Región Delta Orinoco
Ecclinusa parvilora Pennington
Subregión bosques, arbustales y herbazales inundables
del Corredor Bajo Orinoco, o FV9b.
Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb.
Desmoncus polyacanthos Mart. var. polyacanthos
Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb.
EP
Epidendrum stamfordianum Bateman
Galeandra devoniana R.H. Schomb. ex Lindl.
VU
Galeandra macroplecta G. Romero y Warford
Couma utilis (Mart.) Müll.
Cycnoches chlorochilon Klotzsch
VU
Enterolobium schomburgkii Benth.
Albizia barinensis Cárdenas
Brassia macrostachya Lindl.
EP
EP
Hydrochorea marginata (Benth.) R.C. Barneby y Grimes
var. scheryi R.C. Barneby y Grimes
VU
Hymenaea courbaril L.
162
VU
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Jacaranda orinocensis Sandwith
VU
Pterocarpus acapulcensis Rose
Lessingianthus morilloi (V.M. Badillo) H. Rob.
CR
Roystonea oleracea (Jacq.) O.F. Cook var. oleracea
Samanea saman (Jacq.) Merrill
Mauritia lexuosa L.f.
Merremia maypurensis Hallier f.
Ocotea cymbarum Kunth
VU
Sabal mauritiiformis (H. Karst.) Griseb. Ex H. Wendl.
Mandevilla steyermarkii Woodson
Swietenia macrophylla King
VU
CR
Trichilia maynasiana C. DC. subsp. maynasiana
Vitex capitata Vahl
Ouratea chafanjonii (van Tieghem) Sastre
VU
Wettinia praemorsa (Willd.) Wess. Boer
Pitcairnia pruinosa H.B.K.
Schomburgkia heidii Carnevali
Sparattosperma leucanthum (Vell.) K. Schum.
Vitex capitata Vahl
Subregión bosques Semicaducifolios del piedemonte Andino Medio, FV1b.
EP
VU
Albizia barinensis Cárdenas
VU
Anguloa hohenlohii Morren
EP
Bactris setulosa H. Karst.
NIVEL MEDIO
Banisteríopsis acapulcensis (Rose) Small var. llanensis B.
Gates
Región Andes-piedemonte
Subregión bosques semicaducifolios y arbustales xerofíticos del piedemonte andino norte, FV1a.
Carramboa trujullensis (Cuatrec.) Cuatrec.
Cattleya mossiae Hook.
Albizia barinensis Cárdenas
Centrolobium paraense Tul.
Albizia niopoides (Spruce ex. Benth.) Burkart var. niopoides
Encyclia cordigera (H.B.K.) Dressler
Caesalpinia granadillo Pittier
VU
Enterolobium schomburgkii Benth.
Epidendrum leucochilum Lindl.
Cedrela odorata L.
Epidendrum stamfordianum Bateman
Centrolobium paraense Tul.
Drosera cendeensis Tamayo y Croizat
Geonoma undulata Klotzsch
VU
EP
Guzmania monostachya (L.) Rusby ex Mez.
Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb.
Habenaria unellezii Foldats
Enterolobium schomburgkii Benth.
Myrospermum frutescens Jacq.
Euterpe precatoria Mart. var. longevaginata (Mart.) Henderson
Ormosia macrocalyx Ducke
EP
Pereskia guamacho F.A.C. Weber
Geonoma interrupta (Ruiz y Pav.) Mart. var. interrupta
Hymenaea courbaril L.
EP
Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb.
VU
Carapa guianensis Aubl.
Cycnoches chlorochilon Klotzsch
VU
VU
Pterocarpus acapulcensis Rose
VU
Hyospathe elegans Mart.
Roystonea oleracea (Jacq.) O.F. Cook var. oleracea
Marsdenia condensilora S.F. Blake
Sabal mauritiiformis (H. Karst.) Griseb. ex H. Wendl.
Pachira quinata (Jacq.) W.S. Anderson
Samanea saman (Jacq.) Merrill
Pseudosamanea guachapele (Kunth) Harms.
Socratea exorrhiza (Mart.) H. Wendl.
163
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Stenomeria decalepis Turcz.
VU
Paphinia cristata (Lindl.) Lindl.
Swietenia macrophylla King
CR
Peltogyne loribunda (H.B.K.) Pittier
Syagrus sancona H. Karst.
Tabebuia rosea (Bertol.) DC.
Vitex capitata Vahl
Phragmipedium klotzschianum (Rchb.f.) Rolfe
Phragmipedium lindleyanum (Lindl.) Rolfe
VU
Phragmipedium lindleyanum (Lindl.) Rolfe var. kaieteurum
Wettinia praemorsa (Willd.) Wess. Boer
(N.E. Br.) Rchb.f. ex Pitzer
Subregión bosques siempreverdes del piedemonte andino sur, subregión FV1c.
Aiphanes aculeata Willd.
Enterolobium schomburgkii Benth
Myrocarpus venezuelensis Rudd
Peristeria violacea (Josst) Foldats
Pseudosamanea guachapele (Kunth) Harms
Samanea saman (Jacq.) Merrill
Piper sabanaense Yunck.
Piper tamayoanum Steyerm.
Valeriana scandens L. var. subcordata C.A. Muell.
EP
Cattleya jenmanii Rolfe
Zygosepalum angustilabium (C. Schwienf.) Garay
VU
Región Delta Orinoco
Subregión bosques y herbazales del Delta, FV9a.
Carapa guianensis Aubl.
Cedrela issilis Vell.
VU
Desmoncus polyacanthos Mart. var. polyacanthos
CR
Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb.
Erisma uncinatum Warb.
VU
Euterpe oleracea Mart.
Coryanthes rutkisii Foldats
Cycnoches chlorochilon Klotzsch
Guzmania monostachya (L.) Rusby ex Mez.
EP
Mauritia lexuosa L.
Desmoncus polyacanthos Mart. var. polyacanthos
Epidendrum stamfordianum Bateman
Ocotea cymbarum Kunth
VU
Paphinia cristata (Lindl.) Lindl.
Hyospathe elegans Mart.
Jasarum steyermarkii G.S. Bunting
Parahancornia fasciculata (Poir.) Benoist
EP
Peltogyne loribunda (H.B.K.) Pittier
Mauritia lexuosa L.f.
Mormodes buccinator Lindl.
Socratea exorrhiza (Mart.) H. Wendl.
VU
Tabebuia rosea (Bertol.) DC.
Navia arida L.B. Sm. y Steyerm.
Navia tentaculata B. Holst
VU
Cedrela odorata L.
Cattleya violacea (Kunth) Rolfe
Coryanthes feildingii Lindl.
VU
Virola surinamensis Warb.
Caryocar nuciferum L.
Cattleya lawrenciana Rchb.f.
CR
Stanhopea grandilora (Lodd.) Lindl.
Subregión sabanas, bosques y arbustales de la altiplanicie
Gran Sabana, FV7a.
Catasetum longifolium Lindl.
VU
Sobralia oliva-estevae Carnevali y I. Ramírez
VU
Región Guayana sur
Brassia macrostachya Lindl.
VU
Virola surinamensis Warb.
EP
Vitex capitata Vahl
164
VU
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Región Cordillera Costa
Epidendrum stamfordianum Bateman
Subregión bosques montanos y submontanos de la Cordillera de la Costa, subregión FV11.
Caesalpinia granadillo Pittier
Caesalpinia mollis (H.B.K.) Spreng.
Cattleya mossiae Hook.
Euterpe precatoria Mart. var. longevaginata (Mart.) Henderson
Forsteronia apurensis Markgraf
VU
EP
Geonoma undata Klotzsch
Habenaria unellezii Foldats
Hyospathe elegans Mart.
Jacaranda orinocensis Sandwith
VU
Samanea saman (Jacq.) Merrill
Mauritia lexuosa L.F.
Schlimia alpina Rchb. f. y Warsz.
Mouriri barinensis (Morley) Morley
Tabebuia rosea (Bertol.) DC.
Ocotea cymbarum Kunth
Wettinia praemorsa (Willd.) Wess. Boer
Ormosia macrocalyx Ducke
EP
VU
Pereskia guamacho F.A.C. Weber
VU
Región Llanos
Peristeria elata Hook.
Subregión de las sabanas inundables, FV2.
Peristeria violacea (Josst) Foldats
EP
Pitcairnia pruinosa H.B.K.
Aiphanes aculeata Willd.
Pterocarpus acapulcensis Rose
VU
Pseudosamanea guachapele (Kunth) Harms.
Albizia niopoides (Spruce ex. Benth.) Burkart var. niopoides
Roystonea oleracea (Jacq.) O.F. Cook var. oleracea
EP
Sabal mauritiiformis (H. Karst.) Griseb. ex H. Wendl.
Cattleya violacea (Kunth) Rolfe
VU
Samanea saman (Jacq.) Merrill
Cedrela issilis Vell.
Socratea exorrhiza (Mart.) H. Wendl.
VU
Stenomeria decalepis Turcz.
Centrolobium paraense Tul.
Swietenia macrophylla King
Coccoloba llewelynii R.A. Howard
Cycnoches chlorochilon Klotzsch
VU
Pachira quinata (Jacq.) W.S. Anderson
NIVEL BAJO
Cedrela odorata L.
EP
Hymenaea courbaril L.
Pachira quinata (Jacq.) W.S. Alverson
Catasetum pileatum Rchb. f.
VU
Gustavia macarenensis Philipson subsp. paucisperma S.A.
Mori
Hymenaea courbaril L.
Albizia barinensis Cárdenas
EP
Geofroea spinosa Jacq.
Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb.
Prestoea acuminata (Willd.) H.E. Moore var. acuminata
VU
CR
Syagrus sancona H. Karst.
EP
Tabebuia rosea (Bertol.) DC.
Encyclia cordigera (H.B.K.) Dressler
Tabebuia orinocensis (Sandwith) A.H. Gentry
Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb.
VU
Trichilia maynasiana C. DC. subsp. maynasiana
VU
Enterolobium schomburgkii Benth.
Trigonia bracteata Lleras
EP
Epidendrum leucochilum Lindl.
Vitex capitata Vahl
VU
165
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Subregión sabanas de altillanura seca arenosa eólica,
FV3c.
Ocotea calophylla Mez
Peltogyne loribunda (H.B.K.) Pittier
Catasetum tapiriceps Rchb. f.
Pseudosamanea guachapele (Kunth) Harms.
Cattleya violacea (Kunth) Rolfe
Roystonea oleracea (Jacq.) O.F. Cook var. oleracea
Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb.
Virola surinamensis Warb.
Hymenaea courbaril L.
Vitex capitata Vahl
VU
Jacaranda orinocensis Sandwith
Región Guayana norte
Mauritia lexuosa L. f.
Subregión sabanas arboladas occidentales del norte de la
Guayana, FV6a.
VU
Ocotea cymbarum Kunth
Pitcairnia pruinosa H.B.K.
Cedrela issilis Vell.
Pseudosamanea guachapele (Kunth) Harms
Couma utilis (Mart.) Müll.
Samanea saman (Jacq.) Merrill
Socratea exorrhiza (Mart.) H. Wendl.
Desmoncus polyacanthos Mart. var. polyacanthos
Tabebuia orinocensis (Sandwith) A.H. Gentry
Echeandia bolivarensis Cruden
Subregión sabanas de galeras, FV10a.
EP
Enterolobium schomburgkii Benth.
Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb.
Caesalpinia granadillo Pittier
VU
Mauritia lexuosa L.f.
Centrolobium paraense Tul.
Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb.
Mauritia lexuosa L.f.
VU
Cycnoches loddigesii Lindl.
VU
Pereskia guamacho F.A.C. Weber
Pseudosamanea guachapele (Kunth) Harms.
Myroxylon balsamum (L.) Harms
EP
Ocotea cymbarum Kunth
VU
Philodendron dunstervilleorum G.S. Bunting
CR
Pitcairnia pruinosa H.B.K.
VU
Samanea saman (Jacq.) Merrill
Región Guayana sur
Vitex capitata Vahl
Subregión herbazales, arbustales y bosques montanos de
los tepuyes occidentales, FV7b1.
Subregión FV10c, sabanas de los llanos orientales.
Acacallis cyanea Lindl.
Albizia barinensis Cárdenas
Brassia forgetiana Hort. ex Gard.
Coccoloba llewelynii R.A. Howard
Desmoncus polyacanthos Mart. var. polyacanthos
Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb.
Euterpe oleracea Mart.
Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb.
VU
VU
Erisma uncinatum Warb.
Euterpe precatoria Mart. var. longevaginata (Mart.) Henderson
Hyospathe elegans Mart.
Hymenaea courbaril L.f.
Mauritia lexuosa L.
Mauritia lexuosa L.f.
Peltogyne loribunda (H.B.K.) Pittier
166
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Subregión sabanas inundables de arenas blancas IníridaAtabapo, FV8.
Caesalpinia granadillo Pittier
Carapa guianensis Aubl.
Aniba ferruginea Kubitzki
Brassia macrostachya Lindl.
Catasetum longifolium Lindl.
Catasetum pileatum Rchb.f.
Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb.
CR
Geofroea spinosa Jacq.
VU
Hymenaea courbaril L.f.
Mauritia lexuosa L.f.
EP
Catasetum tapiriceps Rchb.f.
Myrospermum frutescens Jacq.
Couma utilis (Mart.) Müll.
Pereskia guamacho F.A.C. Weber
Desmoncus polyacanthos Mart. var. polyacanthos
Pterocarpus acapulcensis Rose
Erisma uncinatum Warm.
VU
Samanea saman (Jacq.) Merrill
Vitex capitata Vahl
Galeandra devoniana R.H. Schomb. ex Lindl.
Leopoldinia piassaba Wallace
Región Guayana norte
Mandevilla steyermarkii Woodson
Subregión sabanas arbustivas orientales del norte de la
Guayana, FV6b.
Mauritia lexuosa L.f.
Mormodes vernixium Rchb.f.
Albizia niopoides (Spruce ex. Benth.) Burkart var. niopoides
Ocotea cymbarum Kunth
Alexa imperatricis (R.H. Schomb.) Baill.
Pentamerista neotropica Maguire
Carapa guianensis Aubl.
Scuticaria steelei (Hook) lindl.
Stanhopea candida Barb. Rodr.
Cedrela odorata L.
VU
Cycnoches loddigesii Lindl.
Stanhopea grandilora (Lodd.) Lindl.
Desmoncus polyacanthos Mart. var. polyacanthos
Telipogon croesus Rchb.f.
Enterolobium schomburgkii Benth.
Virola surinamensis Warb.
Warreopsis colorata (Linden y Rchb.f.) Garay
Lonchocarpus dipteroneurus Pittier
Zygosepalum lindeniae (Rolfe) Garay y Dunsterv.
Mauritia lexuosa L.
VU
Myrospermum frutescens Jacq.
NIVEL MUY BAJO
Ocotea cymbarum Kunth
Región Llanos
Pereskia guamacho F.A.C. Weber
Subregión sabanas de altillanura seca, FV3b, ninguna
planta se ha reportado amenazada.
Phragmipedium lindleyanum (Lindl.) Rolfe var. kaieteurum
(N.E. Br.) Rchb.f. ex Pitzer
Subregión sabanas de llanos altos centrales, FV10b.
Pterocarpus acapulcensis Rose
Albizia barinensis Cárdenas
VU
Stanhopea grandilora (Lodd.) Lindl.
Albizia niopoides (Spruce ex. Benth.) Burkart var. niopoides
Banisteríopsis acapulcensis (Rose) Small var. llanensis B.
Gates
167
Swartzia piarensis R.S. Cowan
EP
Vitex capitata Vahl
VU
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Región Guayana sur
Brassia forgetiana Hort. ex Gard.
Subregión herbazales, arbustales y bosques montanos de
los tepuyes orientales, FV7b2.
Acacallis cyanea Lindl.
VU
Bonnetia ptariensis Steyerm.
CR
Couma utilis (Mart.) Müll.
Desmoncus polyacanthos Mart. var. polyacanthos
Erisma uncinatum Warb.
Brassica macrostachya Lindl.
Guatteria liesneri Johnson y Murray
Carapa guianensis Aubl.
Mauritia lexuosa L.f.
VU
Navia saxicola L.B. Sm.
Desmoncus polyacanthos Mart. var. polyacanthos
VU
Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb.
Peltogyne loribunda (H.B.K.) Pittier
Erisma uncinatum Warb.
Pentamerista neotropica Maguire
Hyospathe elegans Mart.
Peperomia maypurensis H.B.K.
Lueddemannia pescatorei (Lindl.) Linden y Rchb.f.
Mauritia lexuosa L.Ff.
EP
Tepuyanthus yapacanensis Maguire y Steyerm.
VU
Subregión bosques en áreas de aloramientos, FV12.
Peltogyne loribunda (H.B.K.) Pittier
Acacallis cyanea Lindl.
Subregión bosques húmedos de la Guayana oriental,
FV7c.
Bonnetia ptariensis Steyerm.
VU
Brassica macrostachya Lindl.
Cattleya lawrenciana Rchb.f.
CR
CR
Couma utilis (Mart.) Müll.
Brassica macrostachya Lindl.
VU
Desmoncus polyacanthos Mart. var. polyacanthos
Centrolobium paraense Tul.
Desmoncus polyacanthos Mart. var. polyacanthos
Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb.
Hyospathe elegans Mart.
CR
Ecclinusa parvilora Pennington
EP
Galeandra devoniana R.H. Schomb. ex Lindl.
VU
Hydrochorea marginata (Benth.) R.C. Barneby y Grimes
VU
Mauritia lexuosa L.f.
Peltogyne loribunda (H.B.K.) Pittier
var. scheryi R.C. Barneby y Grimes
VU
Lessingianthus morilloi (V.M. Badillo) H. Rob.
CR
Mauritia lexuosa L.f.
Sabal mauritiiformis (H. Karst.) Griseb. ex H. Wendl.
Merremia maypurensis Hallier f.
Stanhopea grandilora (Lodd.) Lindl.
VU
Navia arida L.B. SM. y Steyerm.
Tabebuia donnell-smithii Rose
Ouratea chafanjonii (van Tieghem) Sastre
Subregión bosques húmedos de la Guayana oriental,
FV7d.
Schomburgkiana heidii Carnevali
EP
Stanhopea grandilora (Lodd.) Lindl.
Tabebuia orinocensis (Sandwith) A.H. Gentry
Acacallis cyanea Lindl.
VU
Tabebuia pilosa A.H. Gentry
Brassia macrostachya Lindl.
168
VU
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
VALOR DE USO
Subregión bosques húmedos del alto Orinoco, FV13.
Acacallis cyanea Lindl.
VU
En la Figura 5.11 se muestran las ponderaciones por valor
de uso de las especies en cada una de la subregiones.
EP
Colombia
Catasetum merchae G. Romero
Catasetum pileatum Rchb.f.
Cattleya violacea (Kunth) Rolfe
Trabajos como los de Pérez Arbeláez (1956) y García Barriga (1974, 1975) han documentado de manera profusa la
lora útil de Colombia. Sin embargo, son pocos los trabajos
que han tenido un énfasis en la lora con valor de uso para
la Orinoquia colombiana. Algunos trabajos compartidos
entre Venezuela y Colombia (Pitier, 1942) han abordado los
usos de la lora en la cuenca del Orinco. Ortiz (sin fecha),
presenta 77 especies de plantas con uso compartido por las
etnias Sikuani y Cuibas en Venezuela y Colombia, todas con
aplicaciones medicinales. Sobresalen por el número de especies (entre paréntesis) las Criptogamas (4), Acanthaceae
(1), Anacardiaceae (1e), Annonaceae (1), Apocynaceae (3),
Araceae (2), Palmae (1), Aristolochiae (1), Asteraceae (11),
Bignonaceae (2), Burseraceae (2), Cactaceae (1), Cyperaceae (4), Dilleniaceae (1), Euphorbiaceae (3), Gentianaceae (1), Guttiferae (1), Leguminosae (5), Loganiaceae (1),
Malpigaceae (2), Marantaceae (1), Melastomataceae (2),
Monimiaceae (1), Moraceae (1), Musaseae (1), Myristicaceae (1), Myrtaceae (2), Orchidaceae (1), Passiloraceae (1),
Pytolaccaceae (1), Piperaceae (1), Polygalaceae (1), Rubiaceae (3), Sapindaceae (3), Scrophulariceae (1), Solanaceae
(2), Sterculiaceae (1), Turneraceae (3), Verbenaceae (1) y
Zingiberaceae (1).
Desmoncus polyacanthos Mart. var. polyacanthos
Guzmania monostachya (L.) Rusby ex Mez.
Hyospathe elegans Mart.
VU
Mauritia lexuosa L.f.
Paphinia lindeniana Rchb.f.
Stanhopea candida Barb. Rodr.
Stanhopea grandilora (Lodd.) Lindl.
Región Delta Orinoco
Subregións bosques, arbustales y herbazales inundables
del Corredor Alto Orinoco, FV9d.
Brassia macrostachya Lindl.
VU
Catasetum longifolium Lindl.
Catasetum pileatum Rchb.f.
EP
Catasetum tapiriceps Rchb.f.
En Colombia en esta misma subregión (FV3c), en las inmediaciones de la Estación biológica Bachaqueros y el
Resguardo de la nueva Esperanza del Tomo (municipio de
la Primavera, departamento del Vichada), las principales
especies para entresaca por uso de la madera en los bosques de galería son lormorado (Erisma uncinatum), pavito
(Jacaranda copaia), avichure (Couma macrocarpa), caraño
(cf.Protium) y simarú (Simarouba sp). De estas espcies, el
lormorado (E. uncinatum) y el avichure (C. macrocarpa) son
especies con una gran demanda por la calidad de su madera
en toda la región de la Orinoquia donde aún estan presentes.
La comunidad colona en general aprovecha el loramarillo
(Tadebuia sp), pavito (Jacaranda copaia), aceite (Copaifera
oicinalis) y majagüillo (Guatteria sp), además de las especies
ya mencionadas, como maderas especiales para vigas de techo o “madera de viento” (Salamanca, en prep.). Para la elaboración de cercos y corrales en incas llaneras de la altillanura del Vicahda, usan madera de corazón (duramen grueso y
resistente), como guatero (Sclerolobium sp.), congrio (indet),
Cattleya violacea (Kunth) Rolfe
Couma utilis (Mart.) Müll.
Desmoncus polyacanthos Mart. var. polyacanthos
Galeandra devoniana R.H. Schomb. ex Lindl.
Leopoldinia piassaba Wallace
Mandevilla steyermarkii Woodson
VU
Mauritia lexuosa L.f.
Ocotea cymbarum Kunth
Ouratea chafanjonii (van Tieghem) Sastre
Virola surinamensis Warb.
Vitex capitata Vahl
Zygosepalum lindeniae (Rolfe) Garay y Dunsterv.
169
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Figura 5.11 Valor de uso: lora y vegetación.
cañaistula (Cassia grandis), laurel (Ocotea sp), indio desnudo (Capirona sp), cachicamo (Callophyllum lucidum), yopo
(Anadenanthera peregrina) y saladillo (Caraipa llanorum)
(Salamanca, en prep.), especies de bosques de galería y bosques inundables. En cuanto al recurso dendroenergético, las
comuniades indígenas Sicuani y colonos de la altillanura en
el Vichada, usan generalmente el chaparro manteco (Byrsonima crassifolia), o se dispone de los desperdicios de madera
aserrada para construcción de viviendas o de cercos
genas Sicuani. Son fuente de ibras, madera, lechas y puyas,
las cuales son fabricadas con varas de ojuajua (Ischnosiphon
aruma), el arco con corteza de seje (Oenocarpus bataua) o
araco (Socratea exorrhiza), ante la disminución local del cumare (Astrocarium vulgaris) (Salamanca, en prep.).
Venezuela
El principal uso de las plantas se reiere a ines alimenticios
y medicinales. Fernández et al. (1998) presenta un diagnóstico nacional de usos y aprovechamiento sustentable de
las especies en el marco de la Propuesta Nacional de la Diversidad Biológica. Vele et al. (1999) analizan las propiedades y acciones medicinales conocidas de 1.384 especies de
plantas y establece cuatro niveles funcionales de usuarios:
comunidad, industria, academia e investigación.
en cuanto al uso de diversas familias de plantas, Velázquez
et al. (1995) estudió las Lamiaceae y señala 31 especies (22,8
%) de las existentes en el país con algún uso etnobotánico.
Staufer (1999) estudió las palmas: las especies y zonas geográicas de donde provienen, algunos usos conocidos, así
como las tendencias de los estudios etnobotánicos de este
Las comunidades indígenas Sikuani, con construcciones más
rudimentarias, utiliza preferencialmente árboles de bosques
secundarios y palmas, donde la vivienda tradicional es construida con vigas de tortolito (Didimopanax morototoni) o
malageto (Xylopia aromatica); paredes con chuapo que es la
corteza extendida del araco (Socratea exorrhiza), la manaca
(Euterpe precatoria). El techo con hojas de palma de moriche (Mauritia lexuosa), cuya hoja es cortada en luna menguante y se deja secar durante varios días. ¨Para cubrir un
techo de una vivienda de tres por cuatro metros cuadrados,
se requiere una cantidad aproximada de novecientas (900)
hojas. En general, las palmas son muy utilizadas por los indí-
170
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
grupo de plantas en Venezuela. Las capparaceas también
han sido evaluadas en su uso, Ruíz Zapata (1999) señaló su
importancia en el ámbito medicinal, ornamental, comestible, de sombra, maderable, así como aspectos de tóxicidad
y condición de maleza. Leal (s.f.) y Melnyk (1995) hicieron
recomendaciones sobre los beneicios de cultivar a mayor
escala más de 130 especies, algunas de ellas silvestres autóctonas y exitosamente explotadas, productoras de frutas
o especias, y de otras que podrían ensayarse, aprovechando
las condiciones ecológicas favorables para su desarrollo y
aprovechamiento.
(2003) y Montilla (1991), en relación con el chiquichique
(Leopoldinia paissaba), la madera liviana del palo de boya
(especies del género Malouetia), el palo de boya negro
(Heteropetalum brasiliense) y el mamure (Heteropsis spp.),
productos que son extraídos por pobladores del lugar y comercializados local y regionalmente. Guánchez (1999) hace
relación a ciertas especies locales con usos comunes como
plantas mágicas. Se ha señalado (Conservation International 2003) que el uso sin control está disminuyendo la disponibilidad de algunos de estos recursos.
Región Orinoco Delta
En los bosques y herbazales del Delta, FV9a, GómezBeloz y Rivero (1999) investigaron la etnobotánica y el
manejo de los conucos por parte de la la etnia warao. Wilbert (1996) enumera una lista de plantas indicando los diferentes usos dados por los mismos pobladores del Delta
del Orinoco. Una de las plantas más importantes para los
warao por su versatilidad es la Mauritia lexuosa o moriche,
no sólo por ser materia prima de ibras, alimento, medicina
y material para vivienda (Schweizer 2000), sino porque incluso la distribución geográica de estas comunidades vegetales en el Delta del Orinoco ha condicionado la ubicación
de los asentamientos humanos de dicha etnia (Heinen et al.
1994-1996), aun cuando Wilbert (1994) sostiene que es la
palma Manicaria saccifera la reponsable de esta ubicación
de los asentamientos permanentes de la población warao
en el Delta. Por otra parte Rondón Rangel (2002) señala la
utilización de dos especies de barbasco en el área del Delta del Orinoco y Conservation International (2003) y CAPRODEL (1982) han reportado la extracción del palmito,
Euterpe oleracea en los bosques de pantano del delta por
parte de pobladores locales y empresas instaladas en concesiones otorgadas por el estado venezolano.
En cuanto a la condición de malezas de algunas plantas, el
daño que generan en las actividades productivas del hombre y sus formas de combate, Medrano (s.f.), Pacheco y Pérez (1989) presentan una lista de especies de plantas reconocidas como tal en la cuenca orinoquense, principalmente
en los llanos. Gonto y Fernández (en prensa), analizando la
cualidad de las especies de la familia Cyperaceae en Venezuela, como malezas e invasoras, determinaron el número
de especies con esa cualidad por Estado, disgregadas en las
categorías: maleza agrícola, urbana e invasora. Una muy
interesante crónica acerca del curare, su acción, su preparación, sus agentes químicos activos, las especies de plantas
usadas como materia prima, así como las étnias y regiones
de Venezuela donde se le utiliza fue presentada por Rondón
Rangel (2001-2002).
NIVEL ALTO
Región Andes-piedemonte
De la subregión bosques siempreverdes del piedemonte
andino sur, FV1c, si bien se ha escrito muy poco acerca del
uso de plantas por parte de los pobladores locales. Bolívar
(2009) y Vera (1994) publicaron listas bastante completas
de especies medicinales utilizadas en el estado Táchira,
en tanto que González et al. (1999), aportan interesantes
resultados de los estudios de itoquímica sobre 33 plantas
nativas e introducidas en la región.
De la subregión bosques, arbustales y herbazales inundables del Corredor Bajo Orinoco, FV9b, Ortega (1994), a
casi 350 años del descubrimiento del río Apure, reporta las
especies y los usos que daban los pobladores de esta región
del Orinoco, del Apure y del Santo Domingo y que describiera Fray Jacinto de Carvajal. El autor ubicó in situ las
plantas mencionadas en la obra de Carvajal y obtuvo información etnobotánica por parte de los pobladores actuales
de la región mencionada en el libro.
Región Guayana sur
En la subregión de las sabanas inundables de arenas blancas Inírida-Atabapo, FV8, el uso de plantas por parte de
los pobladores locales es intenso. Entre ellas las palmas, el
onoto, los barbascos, las ibras de lianas y cortezas de árboles, las hojas de palmas y hierbas para techar viviendas, los
frutos de recolección, las gomas, resinas, etc. Sin embargo,
no hemos encontrado publicaciones que traten el tema en
la subregión, excepto aquellas que hacen mención especíica sobre plantas útiles, como Conservation International
De la subregión bosques, arbustales y herbazales inundables del Corredor Medio Orinoco, FV9c, Eden (1974 a)
ha dado a conocer el uso itinerante que los habitantes de las
etnias piaroa y guahibo hacen de los recursos del bosque.
Algunas especies de barbasco utilizadas para pescar, principalmente por parte de la población indígena, se reportan
171
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
en Rondón Rangel (2002). Un registro de los usos, partes
de la planta y etnias que comercializan palmas en los mercados de Puerto Ayacucho se muestra en Narváez Cordova
y Staufer (1999), allí se comenta la utilización de frutos y
hojas de nueve especies de palmas por parte de banivas, curripacos, guahibos y piaroas.
de plantas empleadas como barbasco por la población llanera de esta subregión, en tanto que Méndez et al. (1997)
ofrecen los recursos etnobotánicos de la región de El Baúl,
ubicada un poco más al sur y contínua a las sabanas de galeras en el estado Cojedes.
Región Andes altos
En la subregión bosques, arbustales y páramos del orobioma andino semihúmedo, FV5a, algunos usos de las
plantas que componen las comunidades vegetales de la
alta montaña han sido publicados por Briceño y De Robert
(2006), en ambientes altamente impactados por la actividad humana en la Sierra Nevada merideña; mientras que
López Zent (1993) describe la relación utilitaria y cognitiva
que los pobladores del páramo mantienen con las plantas
de su entorno. Un inventario de algunas plantas útiles para
la salud de los pobladores citadinos fué hecha por Carmona
et al. (2008), citando usos, nombres vulgares y cientíicos
de 26 especies comunes de la ciudad de Mérida. González
et al. (s.f.) presentaron una lista de 42 plantas aromáticas
autóctonas e introducidas en el estado Táchira, incluyendo
nombres cientíicos y comunes, usos locales, propiedades
medicinales, antibacterianas y algunos métodos de extracción. Un dato interesante aparece en el documento de Robert y Monasterio (1995) además de tratar la forma de vida
de la “gente del trigo”, aporta una lista de plantas indicadoras de suelos fértiles y otra de plantas que indican baja
fertilidad, datos que son usados como guía agroecológica e
inluyen en la decisión de sembrar o dejar la tierra por más
tiempo en barbecho.
Los pobladores locales hacen uso medicinal del aceite de
seje, Oenocarpus bacaba y O. bataua (Conservation International 2003), el producto se comercia localmente, aunque
una pequeña parte llega a algunas ciudades del centro del
país. Otros productos no maderables del bosque que son
aprovechados en la subregión y comercializados formalmente en mercados fuera de la región son las ibras del mamure, especies del género Heteropsis y maderas del palo de
boya, Malouetia tamaquarina, ambas especies acusan ya,
signos de sobreexplotación.
NIVEL MEDIO
Región Andes-piedemonte
En la subregión FV1a, bosques semicaducifolios y arbustales xerofíticos del piedemonte andino norte, Delascio
(1978) reporta 82 especies de uso etnobotánico en el estado Cojedes, que ocupa una gran parte de esta subregión.
En su estudio el autor señala la descripción botánica de la
planta, su distribución, indicaciones para su uso y su forma
de preparación por parte de los pobladores locales.
Una lista muy completa de plantas medicinales del llano
venezolano y que también contiene plantas de la subregión
bosques semicaducifolios del piedemonte andino medio,
FV1b, fue producida por Ocaña (1998), en ella se citan 119
especies de plantas, sus usos y descripciones botánicas.
Región Guayana sur
En la amplia y heterogenea subregión FV7c o bosques
húmedos de la Guayana oriental y como resultado de los
estudios de inventario forestal promovidos en los años 60,
MAC-FAO (1965) elaboró una larga lista de los árboles obtenidos en el inventario forestal de una supericie de 1100
ha, con sus correspondientes nombres cientíicos y el tipo
de bosque al que pertenecía cada uno. En el campo de la etnobotánica indígena, Silva Monterrey (1997) lista el uso de
28 plantas por parte de la población ye’kwana habitante de
la cuenca del río Caura, con indicaciones de la preparación,
consumo con ines rituales y prohibiciones. Vispo y KnabVispo (2003) presentaron un amplio registro de 975 plantas
con sus usos locales y comentarios sobre las interacciones
planta-animal del área cubierta por el corredor del bajo y
medio río Caura. Algunos de estos sectores ya habían sido
descritos y algunas de esas especies comentadas también
por Williams (1940, 1941), quien recorrió por encargo del
Ministerío de Agricultura y Cría sectores poco explorados
del estado Bolívar y del entonces Territorío Federal Amazo-
Región Llanos
En la subregión FV3c, sabanas de altillanura seca arenosa
eólica, Balick (1979) reporta el uso que la etnia guahibo
hace de las palmas que crecen en bosques y sabanas. 11 de
13 especies de palmas son aprovechadas por los pobladores
indígenas de esta subregión. No tienen uso Desmoncus sp.
y Astrocaryum cf. mumbaca. Rondón Rangel (2002) mencionan una especie de planta que es usada por la población
nativa de la zona para “embarbascar” los peces.
Algunas de las plantas útiles de las sabanas de galeras, subregión FV10a, han sido recopiladas por Delascio (1978)
y presentadas en una lista que incluye datos de su distribución, descripción, forma de uso y modo de aplicación.
Igualmente, Rondón Rangel (2002) menciona dos especies
172
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
nas. Castillo (1995) recopiló información de 21 árboles con
uso medicinal utilizados por los piaroa de la cuenca del río
Cataniapo y Rondón Rangel (2002) reportó la existencia de
cinco especies de barbasco utilizadas por la población rural
e indígena en estas tierras bajas.
los llanos de Colombia y Venezuela. Balick (1979) reporta
el uso local de 11 especies de palmas de las que obtienen
ibras, alimento, aceite y utensilios para la pesca y construcción. Rondón Rangel (2002) menciona una especie de barbasco utilizada en este sector del llano, en tanto que Gragson (1995) señala los usos que los pumé (yaruro) dan a la
palma Mauritia lexuosa, indicando que el más importante
es su empleo en el techado de viviendas.
Muy importante para la economía rural local y muy apetecida por la industria perfumera francesa, es la sarrapia
(Dipteryx odorata) de cuya semilla se obtiene la cumarina,
extraída y semiprocesada de los frutos recogidos en los
bosques de los bajos ríos Caura y Cuchivero aunque el área
de explotación llega hasta los ríos Maniapure y Parguaza
hacia el oeste. Cerca de la población de Jabillal en el bajo
río Caura existe una plantación importante de sarrapia. El
producto se comercializa para uso en el país, aunque la mayor parte de la producción se exporta (Conservation International 2003).
En la subregión FV10b o sabanas de los altos llanos centrales, Delascio (1989) registró 61 especies de plantas con
valor de uso por parte de la población kariña del sur del
estado Anzoátegui, siendo la mayor parte de ellas, usadas
como medicina, seguidas por las alimenticias, artesanales,
para la construcción y rituales mágico-religiosos. Hacen
uso también de los morichales, mediante la recolección de
frutos y ibras, además, se sirven del hábitat del moriche
para sembrar conucos mediante elaborados sistemas de diques y drenajes (Denevan y Schewerin 1978), con los que
hacen disminuir la inundación propia de los morichales,
pero sin llegar al desecamiento de los suelos. El mayor número de especies utilizadas en Venezuela para pescar embarbascando el agua proviene de esta subregión, según
Rondón Rangel (2002) seis especies vegetales son utilizadas
con este in.
NIVEL BAJO
Región Llanos
En la subregión de las sabanas inundables, FV2, Rial
(2009) comenta el uso por parte de la fauna local de plantas
acuáticas, así como su valor nutricional, medicinal, ornamental o condicion de maleza. Ocaña (1998) reporta el uso
de 119 plantas medicinales utilizadas en el llano señalando su nombre cientíico, descripción botánica y los usos
terapéuticos que se les atribuyen. Ramia (1958) recopiló
información de la etnia yaruro, pobladores tradicionales
de estas sabanas. Metzger y Morey (1983) y Mitrani (1988)
trabajaron con los guahibo y yaruro, habitantes de la zona
del medio río Capanaparo, para reconocer el uso y conocimiento de 57 especies de plantas silvestres y 16 cultivadas,
así como el hecho de su progresiva desaparición en el medio
natural. Cato (1971) muestra frecuencia de uso, forma de
preparación y los síntomas asociados al consumo del yopo
Anadenanthera peregrina con ines mágico-religiosos y de
fortalecimiento de las relaciones sociales entre los cuivaguahibo. Rondón Rangel (2002) comenta el muy arraigado
uso de tres especies de barbasco para pescar. Fernández et
al. (2006) estimaron el valor económico-ambiental que el
Bosque Experimental “El Caimital” tiene para los pobladores de la región en términos de los servicios ambientales
que presta, como conservación de la biodiversidad, de los
suelos y de las aguas. Torres et al. (1987) reportan la respuesta agrológica de las especies vegetales de las sabanas
hiperestacionales, con énfasis en las especies forrajeras luego de la modulación con diques que almacenan y regulan la
lámina de inundación.
Región Guayana Norte
En la subregión FV6a, o sabanas arboladas occidentales
del norte de la Guayana, Boom (1990b) comenta sobre el
intenso uso de plantas por parte de la etnia panare con ines
alimenticios, medicinales, mágico-religioso, para utensilios
y especialmente para elaboración de artesanías que se venden en los mercados locales y a los turistas.
En las sabanas arbustivas orientales del norte de la Guayana, FV6b, en los bosques del lado occidental de la sierra
de Imataca, Díaz (2007) ha reportado la existencia de 51
plantas de uso etnobotánico, la mayor parte de ellas con
usos medicinales para los pobladores criollos de asentamientos campesinos. Veillon (1997) estudió parcelas de 2
ha y registró especies maderables en el conjunto que compone los bosques de los alrededores de Upata. En este pueblo se encuentra una unidad de procesamiento de la cumarina extraída de la sarrapia (Dipteryx odorata), proveniente
de los sarrapiales del bajo río Caura (Conservation International 2003) y que es comercializada en Ciudad Guayana.
Región Amazonas
En los bosques húmedos de la Guayana occidental, subregión FV7d, Fuentes (1980) recopiló una larga lista de las
plantas usadas por los yanomami del alto Orinoco. Tam-
La sabana de altillanura seca, subregión FV3b, es asiento
de parte de la población guahibo que vive en este sector de
173
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Región Orinoco Delta
bién entre los yanomami, Smole (1989) analizó los usos y
las técnicas de aprovechamiento que esta etnia hace de las
plantas, tanto silvestres como cultivadas en la Sierra Parima. Un sector de la cuenca alta del río Manapiare fue area
de inventario para investigadores del Instituto Venezolano
de Investigaciones Cientíicas, dando como resultado una
lista de 145 plantas con importantes propiedades medicinales, algunas de ellas utilizadas por parte de la población
indígena de esa región (Fernández et al. 1999, Michelangeli
et al. 1999, Muñoz et al. 1999). En la región del valle de Culebra, alto río Cunucunuma, Delascio (1992) investigó los
tipos de vegetación catalogando 125 plantas útiles para la
población local, siendo las palmas las más utilizadas, mientras que Guánchez (1999) hace una lista de las plantas de
uso más común en el Amazonas venezolano.
Los bosques, arbustales y herbazales inundables del Corredor Alto Orinoco, subregión FV9d, comprenden una
franja de terreno surcado por un sector del río en el cual
habitan varias etnias indígenas. Entre los usos que hacen
de los recursos vegetales, Rondón Rangel (2002) reportó la utilización de cinco plantas para embarbascar peces,
en tanto que Conservation International (2003) menciona
aprovechamiento de plantas como Leopoldinia piassaba (ibras), Jessenia (Oenocarpus) bataua y O. bacaba para aceites
y alimento.
Región Cordillera Costa
La subregión de los bosques montanos y submontanos de
la Cordillera de la Costa, FV11, está ubicada hacia el sector más poblado del país, cerca de los centros industriales
y de desarrollo económico, por lo que la población rural y
el consiguiente uso local de las plantas se ha ido perdiendo. No fue posible encontrar reportes de uso del recurso
vegetal más allá de la tala de ciertas especies arbóreas para
maderas, construcción local de viviendas y estantillos para
cercas, o de arbustos leñosos como fuente de energía para
cocinar. Rondón Rangel (2002) señala el uso de una especie
conocida como barbasco para pescar.
En el área de la subregión FV12, bosques en áreas de aloramientos, Catalán (1980) listó las especies arbóreas con
valor económico en la Reserva Forestal del Sipapo. Según
Conservation International (2003) en la subregión los pobladores locales usan frecuentemente dos especies, Leopoldinia piassaba para extraer ibras de chiquichique, y la
palma Oenocarpus spp. para extraer aceite de seje, ambos
productos de esta explotación llegan hasta los mercados de
Puerto Ayacucho.
NIVEL MUY BAJO
En la subregión bosques húmedos del alto Orinoco, FV13,
Fuentes (1980) ha dado a conocer las plantas que usan comúnmente los yanomami del alto río Orinoco. Además de
una larga lista de especies y usos, evidencia la relación de
los yanomami con el mundo vegetal silvestre mediante las
técnicas que utilizan para la identiicación de las plantas basadas en su aspecto externo o morfología, la forma de nombrarlas, basada en características morfológicas o similitud
con animales y hechos culturales como el humor. También
muestra las categorías funcionales con que discriminan al
entorno vegetal en: árbol, liana, palma, hongo, hierba y helecho.
Región Llanos
La subregión sabanas de llanos orientales, FV10c, ha sido
colonizada desde hace unos 70 años por la actividad petrolera, con el consecuente desarraigo e inmigración de nuevos pobladores a la zona. Esta nueva forma de vida puede
haber relegado el uso tradicional de las plantas. No se encontraron reportes al respecto, aunque entre los pobladores
de la etnia kariña y los asentamientos rurales, con menos
acceso a los bienes, alimentos y medicinas, persiste el uso
tradicional de plantas silvestres o cultivadas.
Región Guayana sur
Otro reporte del área habitada por los yanomami proviene
de Boom y Moestl (1990), quienes organizaron los datos etnobotánicos que José María Cruxent recabó durante la expedición que descubriría las fuentes del Orinoco en 1951.
Fernández y Gonto (datos sin publicar) presentan una extensa lista de las especies silvestres y cultivadas, aprovechadas por los yanomami del alto río Orinoco. Acerca de la
sobrexplotación de recursos silvestres es importante mencionar el uso de las ibras peciolares de Leopoldinia piassaba
por la población local, uso que comienza a afectar a el estado natural del recurso (Conservation International 2003).
En la subregión FV7a o sabanas, bosques y arbustales de
la altiplanicie Gran Sabana, Hernández et al. (1994) recopilaron los nombres y usos de plantas por parte de la etnia
pemón en la Gran Sabana y encontraron que de 218 especies reconocidas, 119 son plantas útiles, lo cual evidencia
un alto grado de uso y conocimiento del recurso por parte
de los indígenas de esta subregión. En un área más particular como el sector Canaima, Michelangeli et al. (s.f.) registraron el uso, formas de preparación y nombres pemones
de 55 plantas de esa área tan visitada por turistas debido a
sus atractivos naturales. Conservation International (2003)
174
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
ha reportado el uso de Ischnosiphon obliquus, una hierba
de la familia Marantaceae típica de ambientes húmedos. La
población local obtiene de ella la ibra con la que confeccionan objetos de cestería, que suelen venderse a los turistas en la región y ocasionalmente son comercializados en
Ciudad Bolívar y Caracas. Lamentablemente la sobrexplotación del recurso está afectando las poblaciones naturales
de esta planta.
bosque. Tanto las poblaciones jodi del alto río Cuao, como
los de la Maigualida ocupan el límite altitudinal inferior de
esta subregión. Por encima de esa franja no se han hallado
asentamientos humanos.
En los herbazales, arbustales y bosques montanos de los
tepuyes orientales, subregión FV7b2, la ausencia de población hace que se desconozcan los usos de las especies vegetales. Algunos usos tradicionales de plantas están referidos
a la subregión de la Gran Sabana.
Debido fundamentalmente a la baja densidad de población
en las regiones más altas de la Guayana, sólo se conoce el
uso que dan los indigenas a las plantas de algunos sectores,
como ocurre en la subregión FV7b1, herbazales, arbustales y bosques montanos de los tepuyes occidentales. En el
alto río Cuao del estado Amazonas, Zent (1995) identiicó
el manejo y utilización que los piaroa hacen de los bosques
secundarios y discriminó los usos que hacen de sus plantas, añadiendo que 43 de ellas se cultivan en este tipo de
bosque. Se señala también que el sistema de explotación es
de muy bajo impacto e intensidad. En la Sierra de Maigualida, Zent y Zent (2002a) encontraron que los pobladores
indígenas de la etnia jodi del Amazonas venezolano, actúan
como dispersores naturales de las especies vegetales del
PROCESOS ECOLÓGICOS Y/O
EVOLUTIVOS RELEVANTES
Se consideraron cinco procesos ecológicos vinculados al
funcionamiento de la vegetación en los diferentes ecosistemas de la Orinoquia: captación de agua (CA), captura de
carbono (CC), regulación de acuíferos (RA), regulación de
sedimentos (RS), metabolismo de humedales (MH) y refugios para la protección de especies de valor económico y
cultural (PE).
Figura 5.12 Procesos ecológicos: lora y vegetación.
175
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Región de Llanos
Cada proceso fue caliicado de 1 a 5, donde 1 es el valor de
menor importancia y 5 el de máxima importancia en cada
una de las regiones y subregiones analizadas. De acuerdo
a la valoración, ninguno obtuvo una caliicación baja (1) o
muy baja (2).
Obtuvo el valor 4. Particularmente la subregión de sabanas
de altillanura seca arenosa eólica (FV3c) por los procesos
de regulación de acuíferos y funciones de los humedales.
Región Delta del rio Orinoco
En esta región fueron ponderados con un valor de 4 las subregiones de bosques y herbazales del Delta (FV9a), bosques, arbustales y herbazales inundables del Corredor
bajo Orinoco (FV9b) y bosques, arbustales y herbazales
inundables del Corredor Medio Orinoco (FV9c) por el
proceso de captación de carbono y funciones de humedales.
NIVEL ALTO
Región Andes piedemonte
En esta región se dio un valor de 5 a las subregiones de
bosques semicaducifolios del piedemonte andino medio
(FV1b), bosques siempreverdes del piedemonte andino
sur (FV1c) por el proceso de captación de agua y regulación de sedimentos que en ellas tiene lugar.
NIVEL MEDIO
Región Amazonas
Región de Llanos
En esta región se dio un valor de 5 a la subregión bosque de
transición amazónica (FV4) por el proceso de captación
de carbono y refugio de especies.
Esta región fue ponderada con un valor de 5, en particular las subregiones de bosques, arbustales y páramos del
orobioma andino semihúmedo (FV5a), bosques siempreverdes del piedemonte andino sur (FV5b), y bosques,
arbustales y páramos del orobioma andino Serrranía de
la Macarena (FV5c) por el proceso de captación de agua.
La región biogeográica de Llanos en su totalidad (Colombia y Venezuela) fue ponderada con el valor 3 por su
importancia en los procesos ecológicos vinculados. Las subregiones de sabanas de galeras (FV10a), llanos altos centrales (FV10b) y llanos orientales (FV10c) cumplen funciones de regulación de acuíferos, mientras que las sabanas
inundables (FV2) albergan los humedales y el conjunto de
sus funciones. Las sabanas de altillanura húmeda (FV3a)
y las sabanas de altillanuras secas (FV3b) son relevantes
tanto para la regulación de acuíferos como el conjunto de
funciones de los humedales.
Región Cordillera de la Costa
Región de Guayana
Región Andes Altos
La región de Guayana norte fue ponderada con el valor 3.
Las subregiones de sabanas arboladas occidentales del
norte de la Guayana (FV6a) y las de sabanas arbustivas
orientales del norte de la Guayana (FV6b) cumplen procesos de regulación de acuíferos.
La región de la Cordillera de la Costa fue ponderada con un
valor de 4. La subregión de bosques montanos y submontanos de la Cordillera (FV11) fue asociada al proceso de
captación de agua.
Región Guayana sur
Región del Delta Orinoco
La región de Guayana sur obtuvo un valor de 4. La subregion de bosques en áreas de aloramientos (FV12) fue
vinculada al proceso de captación de carbono, y la subregión de bosques húmedos de alto Orinoco (FV13) a los
procesos de captación de agua y refugio de especies. Las
subregiones de herbazales, arbustales y bosques montanos de los tepuyes occidentales (FV7b2) y los herbazales,
arbustales y bosques montanos de los tepuyes orientales
(FV7b1) al procesos de captación de agua y carbono.
La región de Delta Orinoco obtuvo el valor 3, por su importancia para el conjunto de funciones de los humedales y la
captación de carbono.
Otros procesos y funciones ecológicas de la vegetación no
ponderados y de interés por su vínculo con la población
humana tienen que ver con la domesticación de especies
silvestres y la selección genética de sus mejores características. De igual manera, algunos ecosistemas andinos han
sido relevantes por la oferta de sus recursos lorísticos comestibles, maderables y medicinales. En este sentido, Armenteras et al. (2007) en alusión a la importancia de los
bosques de niebla, airman que “estos ecosistemas cumplen
un papel importante como bancos de germoplasma para
agricultura debido a que son el hábitat de parientes silves-
Región Andes pidemonte
Obtuvo el valor 4, determinado por el papel de los bosques
semicaducifolios y arbustales xerofíticos del piedemonte
andino norte (FV1a) en procesos ecológicos de regulación
de agua y regulación de sedimentos.
176
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
deinidas, los aspectos generales conocidos sobre lora y
vegetación y tomando en cuenta que la pérdida de biodiversidad vegetal e integridad ecosistémica que se registra
en estas áreas de la cuenca, supera el nivel de conocimiento
que de ellas se tiene actualmente, se deinieron nueve áreas
con prioridad de conservación (Tabla 5.2).
tres de importantes especies cultivadas con ines comerciales y de subsistencia. Por otra parte, las funciones relacionadas con la oferta de hábitat para la fauna son de particular
importancia en ecosistemas boscosos, no solo por la oferta
a diferentes especies de animales, sino por su interrelación
en funciones de dispersión de semillas y facilitación del
mecanismo de regeneración de los bosques.
De acuerdo a los resultado de ponderación de los criterios
para la selección de estas áreas, tanto la Estrella Fluvial del
Inírida Atabapo (p16), la Isla de Mamo (p18) y la conluencia Caura – Orinoco (p17) su importancia estuvo asociada
a la riqueza de especies con valor de uso. Por el elevado
número de especies amenazadas, resaltan la conluencia
Caura – Orinoco (p17), la Isla de Mamo (p18) y el Ramal
de Calderas (p11). La estrella luvial del Atabapo – Inárida
(p16) fue valorada por su relevancia en riqueza de especies
(ver Tabla 5.3).
NOMINACIÓN DE ÁREAS
IMPORTANTES PARA LA
CONSERVACIÓN
Considerando el análisis anterior sobre estado del conocimiento y la biodiversidad de las regiones y subregiones
Tabla 5.2 Áreas nominadas para la conservación de la biodiversidad de lora y su delimitación geográica. Nominación basada en los
siguientes atributos: riqueza, endemismos, especies amenazadas, especies con valor de uso y procesos ecológicos.
Código
Área Nominada
pl1
Ramal de Calderas
pl2
pl3
Sabanas inundables de Orocué
Llanos
inundables
pl4
Sabanas inundables de Apure-Arauca
La desembocadura del Apure en el Orinoco hasta los esteros de Camaguan. Al este Bruzual y en Colombia al sur con el río Ele limitando con
áreas petroleras y resguardos indígenas.
pl6
Estrella luvial del Atabapo-Inírida
pl8
pl9
Desde Cravo Sur hasta y con el municipio de Orocué.
Paz de Ariporo en la sdesembocadura del río Casanare (sabanas inundables).
Cuenca del río Tomo-Vichada
Corredor bajo
Orinoco Delta sur
Ramal de Calderas, ríos Burate, Aracay, Boconó, Santo Domingo,
entre las áreas protegidas Sierra Nevada, La Culata, Guaramacal y el
Monumento Natural Niquitao, Güirigay. Zonas protectoras de los ríos
Boconó, Tucupido, La Yuca y Masparro. Aproximadamente 550 km2,
entre 500-3000 m.s.n.m.
Parque la Hermosa
pl5
pl7
Hitos geográicos para su delimitación
Cuenca alta y media del río Tomo- Cuenca del río Vichada.
Cuenca baja del río Inírida desde los cerros de Mavicure y cuenca del
río Atabapo. En la parte norte margen derecha del caño Jota (Vichada).
Conluencia Caura-Orinoco
Río Caura entre desembocadura del río Mato hasta la conluencia con
el Orinoco, 5 km de lado y lado. En el Orinoco bajo del río Zuata,
aguas arriba del río Mapira.
Isla de Mamo
Río Orinoco, sus planicies inundables y su zona de inluencia (2 a 5 km
en ambas márgenes). Ambas abajo de Ciudad Bolívar hasta segundo
puente del Orinoco - Pie Orinoquía.
Corredor Orinoco medio
Planicies inundables a ambas márgenes del Orinoco desde Puerto Páez
- Puerto Carreño, hasta San Fernando de Atabapo - Amanavel.
177
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Tabla 5.3 Caliicación de los atributos de las áreas nominadas para la conservación de la lora y vegetación en la cuenca del Orinoco.
Código
Área Nominada
Riqueza
Endemismo
Especies
amenazadas
Especies con
valor de uso
Procesos
ecológicos
pl1
Ramal de Calderas
3
1
3
3
3
pl2
Sabanas inundables de Orocué
2
1
2
2
2
pl3
Parque la Hermosa
2
1
2
2
2
pl4
Sabanas inundables de Apure-Arauca
2
1
2
2
2
pl5
Cuenca del río Tomo-Vichada
2
1
2
3
3
pl6
Estrella luvial del Atabapo-Inírida
4
3
2
4
4
pl7
Conluencia Caura-Orinoco
2
1
4
4
3
pl8
Isla de Mamo
2
1
4
4
3
pl9
Corredor Orinoco medio
3
2
1
2
2
Llanos inundables
Ramal de Calderas (pl1)
(FV2) Sabanas inundables
(FV1b) Bosques semicaducifolios del piedemonte andino medio
Área del tercer humedal más grande de Suramérica y de
los más importantes del mundo. Constituye un continuo
de sabanas inundables en Colombia y Venezuela. Los llanos inundables de Apure-Arauca, incluyendo los esteros de
Camaguán (en el límite con el Edo. Guárico), las sabanas
de Orocué en el Cravo sur o el Parque La Hermosa en las
sabanas del Casanare en Colombia. La intensa actividad
agropecuaria y la alteración del régimen hidrológico, afectan actualmente la integridad de este ecosistema vital para
la Orinoquia. Las comunidades vegetales naturales están
siendo sustituidas por especies introducidas y ya se han reportado 46 especies de su lora, amenazadas de extinción
(1CR, 7EP, 37 VU).
En la vertiente llanera de la Cordillera de Mérida, el Ramal
de Caldera limita al norte por el valle del río Burate que lo
separa de la Sierra de Trujillo, hacia el NE por la sección
transversal del valle del río Boconó que lo diferencia del
Ramal del Rosario y al SO por el abra del río Santo Domingo en la Mitisús (Represa José Antonio Páez) que lo separa
de la Sierra Nevada. Se eleva desde el curso principal del río
Santo Domingo en el Cerro La Camacha (3000 m), Páramo
del Volcán (3840 m), Pico El Güirigay (3869 m), Páramo
Bartolo (3400 m), Pico Calderas (3580 m), páramos Ortiz
y Castillejo (3500 m) y Pico Peñas Blancas (3363 m). Las
aguas del Ramal de Calderas drenan hacia la red del río
Santo Domingo (Castaño et al. 2010). Presenta la típica secuencia de unidades ecológicas descrita por Atarof y Sarmiento (2003) para las vertientes húmedas que inicia en las
selvas submontanas (500-1000 m), selvas semicaducifolias
(1000-1800 m) y nubladas (1800-3000) hasta los páramos
(> 3000 m). Es una de las zonas más pobladas de la cuenca.
Representa un corredor natural boscoso de unos 550 km2
altamente amenazadas por la creciente actividad agropecuaria andina. El Ramal de Calderas representa un área
de especial interés, entre las nacientes de los ríos Burate,
Aracay, Boconó y Santo Domingo y las áreas de potencial
hidráulico de Guanare, Boconó, Tucupido, La Yuca y Masparro. Ha sido escasamente estudiada (Rial et al. 2010) y su
lora cuenta ya con 29 especies de plantas amenazadas de
extinción (1CR, 2EP, 26VU).
Sabanas inundables de Orocué (pl2)
De acuerdo a las subregiones biogeográicas deinidas, las
sabanas inundables de Orocué hacen parte de la subregión
sabanas inundables (FV2) en los Llanos de Colombia. Su
caliicación esta basada por riqueza de especies y por la
presencia de especies amenazadas. El proceso ecológico
más relevante tiene relación con el metabolismo de los humedales.
Parque La Hermosa (pl3)
El Parque La Hermosa se localiza en la región Llanos,
subregión Sabanas inundables (FV2). Abarca el municipio
de Paz de Ariporo hasta la desembocadura del río Casanare
(sabanas inundables) en Colombia. Su caliicación esta ba-
178
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Atlántico, esta región incluye la zona de inluencia del norte de Imataca y constituye uno de los mayores humedales
de Suramérica. Conformada por una extensa red hidrográica esta franja longitudinal al río Orinoco representa un
corredor de vegetación único e imprescindible en la cuenca
por la variedad de ecosistemas vegetales y la presencia de
centros especíicos de endemismo de la lora orinoquense. Hacen parte de este corredor los diversos ambientes del
delta del Orinoco, como son la conluencia Caura – Orinoco (pl7), la Isla de Mamo (pl8) y el corredor Orinoco
Medio (pl9), áreas que de manera individual fueron nominadas para su conservación.
sada en su riqueza de especies y en la presencia de especies
amenazadas. El proceso ecológico de mayor importancia
está representado por el conjunto de funciones de los humedales.
Sabanas inundables de Apure – Arauca (pl4)
Las sabanas inundables de Apure-Arauca, de acuerdo a las
subregiones biogeográicas deinidas, se localizan en la
subregión sabanas inundables (FV2) de la región llanos. Su
caliicación esta basada en su riqueza de especies y presencia de especies amenazadas. El proceso ecológico de importancia en esta región está representado por el conjunto de
funciones de los humedales.
Conluencia Caura – Orinoco (pl7)
Se extiende desde el río Caura entre la desembocadura del
río Mato hasta la conluencia con el Orinoco, 5 km de lado
y lado. Hacen parte de esta área las subregiones bosques,
arbustales y herbazales inundables del Corredor bajo Orinoco (FV9b), las sabanas arboladas occidentales del norte
de la Guayana (FV6a) y las sabanas arbustivas orientales
del norte de la Guayana (FV6b). Su caliicación para la nominación se basó en la riqueza de especies y en las presiones sobre las especies amenazadas. Los procesos ecológicos
más importantes de estos ecosistemas son la captación de
carbono y metabolismo de los humedales.
Cuenca del río Tomo – Vichada (pl5)
De acuerdo a las subregiones biogeográicas deinidas, la
Cuenca del Río Tomo-Vichada se ubica en la región Llanos,
subregiones Sabanas de Altillanura seca (FV3b) y Sabanas
de Altillanura seca arenosa eólica (FV3c). Abarca la cuenca
del río Tomo y la cuenca del río Vichada. Su caliicación
esta basada en la riqueza de especies y en las particularidades del uso local de la biodiversidad y su importancia
biogeográica.
Desde un punto de vista biogeográico, en esta región se
conjugan lo muy antiguo y lo más reciente en términos
geológicos (Villareal 2007). De los primeros persisten geoformas residuales labradas en rocas muy antiguas (precámbrico) pertenecientes al Escudo Guayanes; de los segundos,
aún se conservan modelados eólicos (medanos y coberturas
de arenas del pleistoceno) como testimonio de condiciones
secas marcadas relacionadas con los periodos glaciales que
imperaron en la Orinoquia en el pasado reciente (pleistoceno). Todavía más recientes son los modelados aluviales
actuales (holoceno) asociados a la dinámica luvial de los
ríos Tomo y Orinoco.
Isla de Mamo (pl8)
Corresponde a las planicies inundables y zona de inluencia
del río Orinoco, 2 a 5 km de ancho en ambas márgenes.
Hacen parte de esta área los bosques, arbustales y herbazales inundables del corredor bajo Orinoco (FV9b) y parte
de la región de Guayana Norte, con la subregión sabanas
arbustivas orientales del norte de la Guayana (FV6b). Su
caliicación para la nominación se basó por las especies
amenazadas, el valor de uso de las especies de plantas. Los
procesos ecológicos más importantes de estos ecosistemas
son la captación de carbono y el metabolismo de los humedales.
Estrella luvial del Atabapo - Inírida (pl6)
Sabanas inundables de la cuenca baja del río Inírida desde
el cerro Mavicure y la cuenca del río Atabapo. Singulares
ecosistemas vegetales al sur del Orinoco, prácticamente
desconocidos, potencialmente ricos en especies vegetales,
muchas de ellas endémicas. Se conoce su alto valor de uso y
un alto número de ellas amenazadas de extinción: 22 (1CR,
1EP, 20VU).
Corredor Orinoco medio (pl9)
Encierra las planicies inundables a ambas márgenes del
Orinoco desde Puerto Páez- Puerto Carreño hasta San
Fernando de Atabapo – Amanavel. Se extiende entre la
región del Delta del río Orinoco en las subregiones bosques, arbustales y herbazales inundables del Corredor Medio Orinoco (FV9c), los bosques, arbustales y herbazales
inundables del Corredor alto Orinoco (FV9d) y parte de
la subregión bosques, arbustales y herbazales inundables
del Corredor bajo Orinoco (FV9b). Su caliicación para la
nominación se basó en la riqueza de especies, la presión en
la región sobre las especies amenazadas, el valor de uso de
Corredor bajo Orinoco – Delta sur
Bosques, arbustales y herbazales inundables del corredor
Orinoco. Desde la isla que marca el inicio del delta superior
del río Orinoco hasta su desembocadura en el océano
179
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
las plantas, y por los endemismos (nivel medio). Los procesos ecológicos más importantes de estos ecosistemas son la
captación de carbono y el metabolismo de los humedales.
junto al grado de vulnerabilidad o resistencia del ambiente,
determinan el grado de afectación de la biodiversidad en su
composición, estructura y función.
Finalmente y para ines de un completo análisis de la situación, mencionamos que en área venezolana de la cuenca
del Orinoco existen 21 Parques Nacionales (Weidmann et
al. 2003), 13 Monumentos Naturales, 1 Reserva de Fauna
Silvestre, 1 Refugio de Fauna Silvestre (Instituto Geográico
de Venezuela Simón Bolívar s.f.), además de dos Reservas
de Biósfera, que cubren una gran supericie del área total de
la cuenca en Venezuela.
Este análisis consideró una serie de actividades antrópicas o eventos naturales que amenazan el buen estado de la
vegetación en la cuenca. El nivel de afectación en las diferentes regiones varía de acuerdo a múltiples factores, entre
los cuales consideramos la densidad poblacional, el tipo de
economía predominante, las explotaciones especíicas de
recursos o la ocurrencia de eventos naturales catastróicos.
Ramal de Calderas- Piedemonte andino
La región andina posee una alta densidad poblacional, es
decir una alta presión humana en su competencia por el
espacio y sus recursos.
ANÁLISIS PRELIMINAR DE
AMENAZAS EN LAS ÁREAS
NOMINADAS
La deforestación, la extracción selectiva de especies maderables y la actividad agropecuaria afectan tanto a las
reservas forestales (Centeno 1995) como a la singular franja de bosques semicaducifolios del piedemonte de Barinas
en Venezuela. El cultivo de café, en una de sus más devas-
Las actividades del ser humano modiican el medio ambiente. La relación entre la magnitud, duración, irreversibilidad y probabilidad de ocurrencia de estas actividades,
Figura 5.13 Áreas nominadas para la conservación: lora y vegetación.
180
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
tadoras modalidades (cultivo bajo sol) está sustituyendo
este tipo de bosque por cultivos y suelos erosionados, en
el mejor de los casos (cultivo bajo sombra) si bien es útil a
la economía local y es la mejor alternativa para la conservacion de la biodiversidad (Rial en prensa), altera la composición y estructura de estos bosques andinos llevándolos
a su mínima expresión en esta región (Rial et al. 2010). En
esta práctica de cultivo tradicional, se suelen sustituir los
arboles nativos del dosel por especies no nativas, de rápido
crecimiento pero de mayor propensión a infecciones patógenas (Niño et al. en prensa). También se altera la estructura boscosa al sustituir las especies vegetales del estrato
medio por las plantas de café u otras comestibles (Niño et
al. op. cit).
En el caso de H. rufa (yaragüá, brasilera) compite junto con
el resto de pastos introducidos, con especies nativas de gramíneas y ciperáceas (Leersia hexandra y Eleocharis elegans,
entre otras) que son consideradas por los ganaderos como
malezas. Otras plantas acuáticas (Cleome spinosa, Echinodorus paniculatus, Hydrolea spinosa, halia geniculata) de
gran importancia ecológica, también son consideradas
como malezas y por ende erradicadas. A pesar de esto suelen proliferar, manteniéndose con ello un cierto grado de
diversidad génetica y ecológica original de estas sabanas.
Del mismo modo, muchas comunidades vegetales de los
humedales han sido transformadas en arrozales (monocultivos), ínimamente productivos y que han alterado deinitivamente la biodiversidad lorística de estos ecosistemas.
La proliferación de vías de comunicación, la construcción de represas e hidroeléctricas y la contaminación por
agroquímicos son también un problema que nace en esta
región y se extiende a las planicies llaneras (Rial 2005). La
amenaza del cambio climático global se ha hecho evidente
en esta región de la cuenca, a través de la proliferación del
hongo patógeno Batrachochytrium dendrobatidis y sus nocivos efectos sobre ciertas poblaciones de anibios locales
(Sanchez 2008).
Por su parte, la construccion de diques suele causar diversos efectos, el mas importante es la alteración del régimen hídrico en los humedales y la proliferación de ciertas especies vegetales (que se transforman en maleza) en
detrimento de otras, lo que reduce la diversidad vegetal
acuática y altera la estructura natural de las comunidades
(Rial 2004, 2006 b, Rial et al. en este documento,). Las quemas recurrentes, si bien son un factor cultural polémico
en cuanto a su naturaleza y efectos, puede constituirse en
una amenaza, tanto como la tala, si se toma en cuenta que
ciertas areas de sabana podrían estar ocupadas por bosque
en ausencia de perturbaciones (Vila 1965, Rial 2006). La
contaminación por fertilizantes y la demanda de agua de
los cultivos amenazas el estado natural de los ecosistemas
acuáticos, morichales y otras comunidades acuáticas, que
deben competir por la calidad y cantidad de agua disponibles (Rial 2006).
Según Ojasti (2001) Venezuela cuenta con 5,5 millones de
hectáreas de pastos exóticos sembrados principalmente en
áreas deforestadas. Ocho especies se consideran invasoras
y al menos cuatro: Cynodon dactylon, Hyparrhenia rufa,
Melinis minutilora y Pennisetum clandestinum reemplazan
gramíneas nativas (Vareschi 1968, Baruch et al. 1989, Bilbao y Medina 1990).
Las obras de infraestructura previstas en el gran proyecto
de gobierno del eje Orinoco-Apure determinan el nuevo
curso y lujo de las aguas en diversos tramos del principal
aluente del Orinoco en el lado Venezolano, lo que sin duda
afecta los ecosistemas vegetales sometidos directa o indirectamente al regimen de inundación.
Llanos inundables
Si bien en esta región la densidad poblacional es baja, las
actividades antrópicas ejercen una fuerte presión sobre los
ecosistemas vegetales naturales.
La actividad agropecuaria altera tanto el régimen hidrológico de la sabana como la composición y estructura de las
comunidades vegetales. Los bosques de galería suelen ser
talados hasta sus niveles mínimos permitidos para aumentar la supericie de pastoreo.
Cuenca del Río Tomo - Vichada
El mosaico de ecosistemas que componen esta área natural de gran valor para la conservación, están expuestas a
una serie de factores antrópicos, asociados con el manejo
de quemas en sabanas naturales para la ganadería extensiva, y la deforestación asociada a la expansión de la frontera
agrícola y los cultivos ilícitos en los ecosistemas boscosos.
Dentro de esta región, se encuentra el Parque Nacional Natural El Tuparro, el cual por sus características isiográicas hace parte del borde occidental del Escudo Guayanés
La introducción de pastos ha sustituido en gran parte de
esta región a los pastos nativos. Cenchrus ciliaris, Cynodon
dactylon, Digitaria decumbens, Panicum maximum, Pennisetum purpureum, P. clandestinum, Urochloa mutica, Melinis minutilora e Hyparrhenia rufa, son gramíneas invasoras introducidas sin control en Venezuela (Giraldo 2001).
181
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
BIBLIOGRAFÍA
(Villareal-Leal y Maldonado 2007). De acuerdo a Mendoza
(2007), para los ecosistemas de sabanas en este parque se
evidencian los efectos tanto de las quemas de origen natural
y de origen antrópico, como los asociados a la expansión de
grandes monocultivos de especies forestales que alternan
de manera signiicativa la composición y funcionamiento
de estos ecosistemas naturales.
Colombia
•
Estrella luvial Atabapo - Inírida
En el lado Venezolano las actividades antrópicas son por
ahora, de menor impacto. La densidad de población es
inferíor a 0,5 hab/km2 y sus actividades son de subsitencia mayoritariamente. Debido a la prohibición de ley que
regula la explotacion minera, esta actividad ocurre de
manera ilegal y creciente como resultado del lujo minero de Colombia y Brasil. Resaltamos sin embargo que esta
actividad minera es creciente y tiene efectos devastadores
sobre la cobertura vegetal. Lasso et al. (2006) alertaron de
la presencia de tres minas ilegales cercanas al P.N. Yapacana
y la consecuente contaminación mercurial de las aguas. Por
otra parte, la minería del oro ilgeal suele ser tan destructiva que amenazaría la disponibilidad para las comunidades
indígenas, de mas de una veintena de especies de lora cuyo
uso ha sido reportado por Rodriguez et al. (2006).
•
•
•
•
•
En el lado colombiano de esta región amazónica, y según el
plan de Acción Trienal del Gobierno de Colombia (20072009) y el Informe del Instituto Colombiano de Bienestar
familiar (2008), se llevan a cabo intensas explotaciones forestales, mineras auríferas y actividades agropecuarias,
en algunos casos de carácter extensivo y de poco rendimiento.
•
•
•
Corredor bajo Orinoco – Delta sur
•
Por ser el eje de mayor doblamiento del norte de la Guayana
Venezolana y además centro del eje de desarrollo Orinoco
Apure, este corredor presenta altísimos niveles de amenaza
a su biodiversidad y funciones ecológicas básicas (amortiguación de sedimentos y contaminantes difusos, procesamiento orgánico de contaminantes en sus humedales y
hábitat para especies de fauna acuática y terrestre). El desarrollo de la faja petrolífera del Orinoco implicará un mayor poblamiento del eje con el concomitante incremento en
la producción de aguas servidas e industriales que ya son
evidentes en los centros poblados e industriales de Ciudad
Guayana y Ciudad Bolívar. Por otra parte el dragado del
Orinoco y las explotaciones de arena, implican una fuerte
amenaza para todos los componentes de la biodiversidad
de esta importante región de la cuenca.
•
•
•
•
182
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BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
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FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
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Bosque inundable, alto Orinoco. Foto: M. Lentino.
Manglares, delta del Orinoco. Foto: L. Alonso.
Fabaceae, río Caura, Venezuela. Foto: A. Fernández.
Morichales, Guayana, Venezuela. Foto: A. Fernández.
Podostemaceae. Río Inírida. Foto: C. Lasso.
Cassia moschata (cañafístolo), Llanos de Vzla. Foto: A. Fernández.
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194
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
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Páramo, Andes venezolanos. Foto: A. Fernández.
Herbazales inundables, delta Orinoco. Foto: J. C. Señaris.
Hymenaea sp. Casanare. Foto: A. Navas.
Siparuna guianensis. Guayana, Venezuela. Foto: A. Fernández.
Bunchosia sp. Casanare. Foto: A. Navas.
Renealmia sp. Piedemonte andino, Venezuela. Foto: A. Fernández.
Hormigas arrieras. Foto: F. Nieto.
6.
INSECTOS:
ESCARABAJOS COPRÓFAGOS,
HORMIGAS Y MARIPOSAS
F. Nieto.
Claudia Alejandra Medina U., Fernando Fernández, M. Gonzalo Andrade-C.
INTRODUCCIÓN
Los insectos han existido en la tierra por más de 400 millones de años, después de haber sobrevivido a las masivas
extinciones del Pérmico y el Cretácico (Grimaldi y Engel
2005). Insectos y artrópodos en general han sido los organismos vivientes más exitosos (Edgecombe 2010) y junto
con otros grupos de invertebrados constituyen más de tres
partes de la diversidad total del planeta (Brusca y Brusca
2005). Los insectos son un componente importante en el
funcionamiento de los ecosistemas y a pesar de su importancia siguen siendo el grupo taxonómico con más vacíos
de información (Foottit y Adler 2009). Aunque la región
neotropical es muy rica en insectos, su conocimiento es
muy desigual, con algunas áreas o países mejor estudiados
que otros.
completos sobre la riqueza de los insectos de la Orinoquia
Colombiana; sólo se conocen algunas cifras en estudios aislados en algunos grupos de insectos; en hormigas (Fernández y Schneider 1989, Medina 1994, 1995, Fernández 2001,
Cortéz y León 2003, Vélez y Pulido-Barrios 2005), coleópteros (Amezquita et al. 1999, Castellanos y Escobar 1999,
Escobar 2000, Noriega 2002), lepidópteros, (Andrade 2002,
Fraija y Fajardo 2006) y en otros grupos de insectos se han
realizado algunos trabajos de grado como en Díptera (Niño
2003), Isóptera (Galvis et al.1979) y una guía fotográica
muy general de los insectos de los Llanos (Uribe 1995).
Tres grupos de insectos fueron usados en el ejercicio de
identiicación de áreas prioritarias para la conservación de
la biodiversidad en la Orinoquia colombiana. Son precisamente los tres grupos de insectos que han sido usados como
grupos focales en el programa de inventarios del Instituto
Humboldt. Particularmente en la Orinoquía, el IAvH realizó expediciones a dos zonas importantes como son el PNN
El Tuparro (Villarreal-Leal y Maldonado-Ocampo 2007) y
la Selva de Matavén (Villarreal-Leal et al. 2009), en estas
dos zonas se realizaron caracterizaciones de escarabajos
coprófagos, hormigas y mariposas. En el taller binacional
se conto con la información de estos tres grupos de insectos. Desafortunadamente, no se contó con la participación
En Colombia se han estudiado aceptablemente algunos
grupos (e.g. Ephemeroptera, Plecoptera, Mantodea, hysanoptera, Coleoptera, Himenóptera, Lepidóptera y Díptera), pero en algunos grupos se carece de catálogos, claves,
monografías y estudios regionales comprensivos para entender la estructura y dinámica de las faunas regionales.
Estudios especíicos sobre los insectos de la región de la
Orinoquia son muy pocos y comparado con otras regiones, los insectos de la Orinoquia colombiana han sido poco
estudiados (Morales y Medina 2010). No se tienen datos
197
INSECTOS:
ESCARABAJOS COPRÓFAGOS, HORMIGAS Y MARIPOSAS
G. Andrade.
Región IN1- Piedemonte llanero
de especialistas del lado venezolano, razón por la cual el
documento sólo muestra resultados para la porción colombiana de la cuenca. Para escarabajos coprófagos, hormigas
y mariposas se seleccionaron subregiones biogeográicas,
fueron evaluados aspectos del estado del nivel de conocimiento, diversidad y se deinieron áreas prioritarias para la
conservación de este grupo en particular, de acuerdo a los
lineamientos y la metodología expuesta en el taller.
Esta subregión está localizada en el piedemonte andino, es
el punto de encuentro de ecosistemas con inluencia andina, amazónica y orinoquense. Abarca la cuenca del río
Duda, la Sierra de La Macarena, una de las formaciones
montañosas más antiguas de Colombia con rocas que datan
del Precámbrico, y el río Guayabero, que hace parte de la
ruta luvial del Orinoco. Esta subregión presenta bosques
húmedos de tierra irme e inundable, vegetación herbácea
de sabana amazónica y playas arenosas como las que se ubican en las márgenes del río Duda (Hirabuki 1990).
SUBREGIONES
BIOGEOGRÁFICAS
Región IN2 - Corredor Estrella Fluvial – El Tuparro: sabanas y bosques de la penillanura GuainíaVaupés, incluyendo el Parque Nacional Natural
(PNN) El Tuparro y la Selva de Matavén
Las regiones geográicas para insectos se deinieron en el
taller a partir del mapa de vegetación. Para cada grupo
escogido de insectos se seleccionaron distintos tipos de
cobertura vegetal; así las subregiones abarcan una representación amplia de los diferentes tipos de paisajes de la
Orinoquia. Las subregiones inalmente seleccionadas son
el resultado de la fusión de las sub-áreas escogidas para los
tres grupos de insectos (Figura 6.1).
Esta subregión se ubica en el departamento del Vichada.
Abarca extensas sabanas surcadas por ríos raudalosos, pequeños caños, bosques inundables, morichales y playas.
Una de las características de esta subregión es su compleja
geomorfología donde se combinan rocas antiguas aines
Figura 6.1 Subregiones biogeográicas: insectos.
198
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Nieto.
al Escudo Guayanés con sedimentos aluviales y eólicos de
origen más recientes (Holoceno) como los descritos para
el PNN El Tuparro (Villareal-Leal y Maldonado-Ocampo
2007). Esta subregión incluye en la parte sur las formaciones boscosas de la Selva de Matavén, caracterizada por
selvas y sabanas que conforman una transición entre las
grandes selvas de la Amazonía y las extensas sabanas de la
Orinoquia, con bosques de tierra irme, inundables y sobre
aloramientos rocosos.
Matavén, donde se hicieron muestreos completos de este
grupo de insectos (Quintero et al. 2007, Higuera-Díaz y
Ospina-Correa 2009). Se tienen registros de escarabajos
coprófagos de muestreos que se han realizado en otros sitios como el Parque Nacional Natural Tinigua (Castellanos
y Escobar 1999, Medina y Pulido 2010), RNN Nukak en el
Guaviare (Escobar 2000), bosques de vega y zona agrícola
en el Meta (Amezquita et al. 1999). El esfuerzo de muestreo
ha sido medio en la subregión IN2 e IN4, bajo en la subregión IN1 y muy bajo en la subregión IN3 (Figura 6.2).
Región IN3 - Sabanas inundables
Hormigas
Comprendida principalmente por sabana natural cubierta
de asociaciones de herbáceas y plantas leñosas, con franjas de bosque ribereño y esteros, que pueden permanecer
inundados la mayor parte del año. Esta subregión está localizada en las planicies del nororiente del departamento del
Meta y Arauca.
El esfuerzo de muestreo para hormigas ha sido medio en
la subregión IN3, bajo en IN2 e IN4 y muy bajo en la IN3
(Figura 6.3). En el resto de la Orinoquia no se cuenta con
información de este grupo.
Lozano et al. (2008) realizan el único estudio biogeográico amplio y riguroso del país a partir de la información
de distribución de hormigas cazadoras (grupos Poneroide
excepto Agroecomyrmecinae y Ectatomminoide). Estos
autores parten de unos 9.000 registros de distribución de
170 especies de hormigas de las subfamilias de los complejos Poneroide y Ectatomminoide (en general estos grupos
equivalen a la subfamilia Ponerinae en el sentido amplio,
antes de Bolton (2003). La información, incluyendo altura,
se contrastó con 372 cuadrículas de medio grado (55 x 55
km) y ecosistemas según el mapa de Etter (1998). Después
del 70% de similitud se separan las subregiones de Colombia en bloques (p.e. la Costa Atlántica, el Chocó Biogeográico o la Región Andina). Los llanos y la Amazonía se agrupan (67% de especies compartidas), y la región del Orinoco
se subdivide en eco-regiones como bosques secos Apure /
Villavicencio (subgrupo 4), el resto del Orinoco (subgrupo
5) en bosques húmedos.
Región IN4 - Bosques húmedos - Reserva Nacional Natural Nukak
Región localizada en el Guaviare entre los ríos Guaviare e
Inírida. Incluye cerros de baja elevación, últimos relictos
del Escudo Guayanés. Zona cubierta principalmente de
bosques de tierra irme e inundable.
Estado del conocimiento
El estado del conocimiento incluye la evaluación del esfuerzo de muestreo, nivel de conocimiento y vacíos de información. El estado de conocimiento más alto se presenta
en mariposas, donde tanto el esfuerzo de muestreo como
el nivel de conocimiento están en un nivel medio – alto en
tres de las cuatro regiones. Los vacíos de información son
evidentes para los tres grupos de insectos.
Esfuerzo de muestreo (EM)
El nivel de esfuerzo de muestreo de los tres grupos de insectos seleccionados se caliicó cualitativamente para las subregiones en las categorías de alto, medio, bajo y muy bajo,
con base en el criterio de los muestreos que se conocen para
estos grupos en la zona. El EM fue catalogado como alto
para hormigas y mariposas en las subregiones IN1 e IN3.
La región IN2 ha tenido un esfuerzo de muestreo catalogado como medio para los tres grupos de insectos evaluados
y la región IN4 entre bajo y muy bajo.
No existe ningún estudio que compare o evalúe la fauna de
hormigas del país o de una región amplia, como el Chocó
Biogeográico o la Orinoquia. Existen inventarios regionales (algunos no publicados) los cuales en general no se
pueden comparar debido a las diferencias en técnicas de
colección y separación de especies. Grupos de especies en
géneros como Camponotus, Pheidole, Crematogaster o Solenopsis permanecen sin revisiones recientes, o si existen,
la diicultad de identiicar las especies es alto (e.g. género
Pheidole, Wilson 2003).
Escarabajos coprófagos
El anexo 7 lista las 95 especies de hormigas coleccionadas
en la región de La Curía, noreste de la RNN La Macarena (Meta) y las 158 especies coleccionadas en la región de
Caño Cocuy, RNN Nukak (Guaviare). En el primer caso los
El esfuerzo de muestreo de escarabajos coprófagos no ha
sido alto en ningún sitio de la Orinoquia Colombiana. Los
muestreos más representativos corresponden a las caracterizaciones del IAvH en el PNN El Tuparro y la Selva de
199
INSECTOS:
ESCARABAJOS COPRÓFAGOS, HORMIGAS Y MARIPOSAS
G. Andrade.
Figura 6.2 Esfuerzo de muestreo: escarabajos coprófagos.
Figura 6.3 Esfuerzo de muestreo: hormigas.
200
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Nieto.
Mariposas
métodos de colección son principalmente manuales (Fernández y Schneider 1989) y en el segundo mixtos; colección manual más trampas dirigidas a estrato de hojarasca
(Fernández 2001). Por esta razón no se puede hacer ningún tipo de comparación detallada; además hay material
de varios géneros sin identiicación. Más o menos la mitad de taxones son compartidos, pero las ausencias a uno
u otro lado pueden deberse a sesgos en la colección. En los
bosques de galería de La Sierra de la Macarena y la RNN
Nukak hay más especies de hormigas que en las sabanas y
arenales adyacentes. Esto se debe, en parte, a la mayor oferta de lugares de nidiicación que ofrece un bosque.
El esfuerzo de muestreo en mariposas es alto en las áreas
IN1 e IN3, medio para la IN2, y muy bajo para la subregión
In4 (Figura 6.4). Esto obedece a que desde tiempo atrás se
han hecho diferentes colectas de proyectos de investigación, que se adelantan desde el Instituto de Ciencias Naturales en el piedemonte llanero y las sabanas inundables de
Arauca. En los bosques húmedos, mini- tepuyes y R.N.N.
Nukak se ha colectado muy poco.
Nivel de conocimiento
Escarabajos coprófagos
El nivel de conocimiento de escarabajos coprófagos en general es consecuente con el esfuerzo de muestreo realizado
en las subregiones seleccionadas. En ninguna de las subregiones el nivel de conocimiento es alto. Para la subregión
IN3 el nivel de conocimiento es medio. En esta subregión
están los muestreos realizados en el P.N.N. El Tuparro y la
Selva de Matavén, que en conjunto aportan un considera-
Se han coleccionado hormigas de otras partes de la cuenca
del Orinoco, pero los muestreos no han sido tan intensos o
el material no ha sido apropiadamente estudiado. La fauna
de hormigas de localidades en Guainía y Vichada tienden
a ser más pobres que las de bosques de galería o “matas de
monte” de lugares como Meta o el sur de Vichada.
Figura 6.4 Esfuerzo de muestreo: mariposas.
201
INSECTOS:
ESCARABAJOS COPRÓFAGOS, HORMIGAS Y MARIPOSAS
G. Andrade.
ble número de registros de este grupo de insectos. Para la
región IN1 e IN4 el nivel de conocimiento es bajo y para la
región IN4 el nivel es muy bajo (Figura 6.5). En esta última
subregión se tienen registros de algunos muestreos aislados
(Amezquita et al. 1999), pero no se tienen muestreos sistemáticos en esta zona.
con el esfuerzo de muestreo realizado en las subregiones
seleccionadas, alto en las subregiones IN1 e IN3 y medio
y muy bajo en las IN2 e IN4 (Figura 6.7). Se tiene un estimativo de más de 800 especies de mariposas para estas
subregiones. De la caracterización del P.N.N. El Tuparro se
registran 145 especies de mariposas con una mayor representación de mariposas de la familia Nymphalidae (Quintero et al. 2007). En la selva de Matavén un total de 198
especies de mariposas fueron colectadas, de estas el 15% es
de distribución amazónica y 6% son exclusivas del escudo
Guayanés (Higuera-Díaz y Ospina-Correa 2009).
Hormigas
El nivel de conocimiento en hormigas es bajo en las subregiones IN1, IN2 e IN4 y muy bajo en la región IN3
(Figura 6.6). No existen estimativos sobre el tamaño de la
fauna de hormigas de la cuenca del Orinoco en Colombia
o Venezuela, aunque se pueden estimar en más de 700 el
número de especies en esta región (F. Fernández obs. pers.).
Buena parte de las especies de los sitios coleccionados se
encuentran en varios de los paisajes de la Orinoquia, incluyendo zonas de piedemonte, laderas de la Sierra y cuchillas
del Güejar.
Vacíos de información
Escarabajos coprófagos
Los vacíos de información en escarabajos coprófagos en las
subregiones seleccionadas han sido catalogados como altos
en la región IN3 y bajos en el resto de las regiones (Figura
6.8).
Mariposas
Hormigas
El nivel de conocimiento de las mariposas (Lepidoptera:
Hesperoidea y Papilionoidea) en general es consecuente
En las subregiones IN1, IN2 e IN4 los vacios de información son bajos, y para la región IN3 los vacios son medio
Figura 6.5 Nivel de conocimiento: escarabajos coprófagos.
202
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Nieto.
Figura 6.6 Nivel de conocimiento: hormigas.
Figura 6.7 Nivel de conocimiento: mariposas.
203
INSECTOS:
ESCARABAJOS COPRÓFAGOS, HORMIGAS Y MARIPOSAS
G. Andrade.
Figura 6.8 Vacíos de información: escarabajos coprófagos.
Mariposas
(Figura 6.9). Excepto las listas del Noreste de La Macarena
y RNN Nukak, no hay inventarios intensivos para la cuenca
del Orinoco, ni para Colombia ni para Venezuela. Tampoco
existe información sobre diversidad entre estratos (en un
bosque), entre ecosistemas (e.g. bosques de galería, matas
de monte, sabanas, arenales, sierra), ni altitudinales (en el
caso de La Macarena, piedemonte o tepuyes). Por estas razones, no hay información iable sobre acciones de seguimiento o propuestas de conservación en las faunas locales.
El vacío de información también es consecuente con el
esfuerzo de muestreo y el conocimiento del grupo (Figura 6.10), ya que la subregión In4 bosques húmedos, minitepuyes – RNN Nukak, es la región en donde el vacío de
información es muy alto, lo cual hace que se convierta en
un área importante para priorizar muestreos de este grupo.
La región IN2 tiene un valor medio y las regiones IN1 e
IN3 muy bajo.
204
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Nieto.
Figura 6.9 Vacíos de información: hormigas.
Figura 6.10 Vacíos de información: mariposas.
205
INSECTOS:
ESCARABAJOS COPRÓFAGOS, HORMIGAS Y MARIPOSAS
G. Andrade.
BIODIVERSIDAD
encuentra distribuidas en la región Orinoco; es el caso de
Canthon (47%) Ontherus (55%) y Eurysternus (55%).
Riqueza de especies
Hormigas
Escarabajos coprófagos
La riqueza de especies de hormigas es alta para las subregiones IN1 e IN4, media para la subregión IN2 y muy bajo
para la subregión IN3 (Figura 6.12). En la Reserva de la
Macarena (subregión IN1) y RNN Nukak (subregión IN4)
la riqueza de especies es de 95 y 158 especies respectivamente (ver anexo 7). Desafortunadamente estos listados
son preliminares pues no se tienen todas las especies identiicadas a nivel especíico. Morales-Castaño y Medina
(2010) basados en la revisión de la colección entomológica
del IAvH registran 53 especies de hormigas de 23 tribus que
corresponden principalmente a registros de los muestreos
en PNN El Tuparro y la Selva de Matavén.
La riqueza de especies es alta en la región IN1, media en
IN2 e IN4 y muy bajo en la subregión IN3 (Figura 6.11).
Se han registrado 105 especies de escarabajos coprófagos
para la Orinoquia colombiana, de las cuales 25 son nuevos
registros según el listado de especies de Colombia, aportando así un 35% de las especies de todo el país (Medina y
Pulido 2010). Otras regiones de Colombia han tenido un
mayor esfuerzo de muestreo y han sido mejor estudiadas
en su fauna de escarabajos coprófagos, como la zona del eje
cafetero (Cultid et al. 2008). Sin embargo, la región de la
Orinoquía presenta un número alto de especies comparado
con el bajo esfuerzo de muestreo y los vacíos de información que hay en general en toda la región.
Mariposas
La riqueza de mariposas es alta para la subregión IN1, media para IN2 e IN3 y muy baja para IN4 (Figura 6.13). Colombia posee 3274 especies de mariposas, el 45% de las
especies del neotropico (Brown 1987). Para la región de la
Es importante resaltar que para algunos géneros de escarabajos coprófagos el número de especies es representativamente alto, en algunos casos más del 45% de las especies se
Figura 6.11 Riqueza de especies: escarabajos coprófagos.
206
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Nieto.
Figura 6.12 Riqueza de especies: hormigas.
Figura 6.13 Riqueza de especies: mariposas.
207
INSECTOS:
ESCARABAJOS COPRÓFAGOS, HORMIGAS Y MARIPOSAS
G. Andrade.
Hormigas
Orinoquia, Andrade (2002) registra de manera preliminar,
158 especies con base en lo depositado únicamente en la
colección del Instituto de Ciencias Naturales de la Universidad Nacional de Colombia.
El nivel de endemismos fue catalogado como muy alto en
la subregión IN1 y muy bajo en el resto de las subregiones (Figura 6.15). En La Macarena la especie Ectatomma
opaciventre parece ser una de las pocas “especialistas” de
zona abierta o de sabana, especie no encontrada en la RNN
Nukak. Algunas especies de Camponotus, Crematogaster y
Pheidole también parecen restringirse a las zonas abiertas o
de arenales, pero ante la imposibilidad de obtener nombres
especíicos no puede estimarse el alcance de la restricción
de área ni compararla en la cuenca o incluso el norte de
Sudamérica.
Endemismos
Escarabajos coprófagos
Como se ha mencionado antes el estado del conocimiento
de este grupo de insectos para la Orinoquia es bajo, por lo
que es prematuro reconocer el nivel de endemismo. Para
algunas especies se sabe que su distribución en Colombia
es exclusiva de la región Orinoco, como Scatonomus insignis, Pseudocanthon perplexus, Pseudocanthon xanthurus,
Sulcophanaeus faunus y Sulcophanaeus leander, además de
algunas especies de Canthon y Scybalocanthon, que hasta
ahora se conocen solo de la región Orinoco. Se estableció
como muy alto el nivel de endemismo en la subregión IN4
y medio en la región IN1 (Figura 6.14) pero estos datos están sesgados debido a que no se conoce bien las especies de
otras regiones.
Mariposas
El número de especies de mariposas endémicas en Colombia se calcula en 350, pero aun no se sabe el número
exacto y la distribución de cada una de estas especies. Para
la selva de Matavén se registran tres especies conocidas
como endémicas de Colombia (Euselasia candaria, Mesene
hyale y Oenomaus cyanovenata), Adelpha plesaure, Cyrenia
Figura 6.14 Endemismos: escarabajos coprófagos.
208
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Nieto.
Figura 6.15 Endemismos: hormigas.
hasta el momento. No hay evidencia de uso de hembras de
hormigas Atta como alimento, como si son usadas en otras
regiones de Colombia principalmente en Santander.
martia, Eunica tatila e Hyphilaria parthenis, son especies
poco representadas en colecciones y además presentan una
baja abundancia en campo (Higuera-Díaz y Ospina-Correa
2009). Hace falta realizar trabajos en biogeografía que nos
permitan estudiar de una manera coniable los endemismos en mariposas y se podría repetir esto para la mayoría
de las especies de insectos de la fauna Colombiana.
Para mariposas de la selva de Matavén Higuera-Díaz y
Ospina-Correa (2009) presentan una lista de las especies
de mariposas con importancia económica compilada según
Guevara (2004) y Fagua et al. (2003), con la idea que la comunidad indígena pudiera considerar un proyecto de cría
sostenible de mariposas, pero aun no se implementan estos
proyectos.
Especies amenazadas
El conocimiento de especies amenazadas para insectos es
aún preliminar, aunque recientemente se publicó el libro
rojo de invertebrados terrestres de Colombia (Amat et al.
2007), pero en este libro no se registran datos de insectos
de la Orinoquia, posiblemente por los vacíos de información que hay en esta área. Sin embargo, es posible que con
más estudios de los insectos de la Orinoquia se reconozcan
especies en categorías de vulnerables o amenazadas.
Procesos ecológicos y/o evolutivos relevantes
Escarabajos coprófagos
Especies del género Sulcophanaeus, especíicamente S.
leander y S. faunus están directamente asociadas con sabanas y playas. Estas especies no se encuentran asociadas
a bosques de tierra irme o inundable. Particularmente S.
leander se ha registrado para las sabanas de Venezuela y
se encuentra en la Orinoquia colombiana (Edmonds 1972,
2000). Esta especie se encuentra asociada a excremento de
Especies con valor de uso
No aplica para insectos, pues no se tiene información concreta sobre el uso de especies de estos grupos de insectos
209
INSECTOS:
ESCARABAJOS COPRÓFAGOS, HORMIGAS Y MARIPOSAS
G. Andrade.
Figura 6.16 Procesos ecológicos: escarabajos coprófagos.
chigüiro (Hydrochaeris hydrochaeris), de cocodrilo (Crocodylus intermedius) y de tapir (Tapirus terrestris) (Noriega
2002). Sulcophanaeus leander presenta un patrón de nidiicación particular con galerías tubulares correspondiente al
patrón II para escarabajos cavadores, asociado y especiico
de playas arenosas (Noriega 2002). Sulcophanaeus faunus
es un escarabajo de tamaño mediano a grande (3,5 a 4,5
cm); se tiene un solo registro de la especie en Colombia,
coleccionada en red de niebla para aves en el PNN Tinigua
y no en trampas para escarabajos (M. Álvarez, com. pers.).
Es posible que esta especie tenga una asociación o hábito
especial dentro de este ecosistema y debe ser estudiada en
más detalle.
(especies de Canthon) asociadas al excremento de varias
especies de monos entre las que se encuentran Alouatta paliatta y Lagotrix lagothricha. Según Castellanos y Escobar
(1999) el 37% de las especies de escarabajos coprófagos de
este parque son atraídos al excremento de primates.
Hormigas
Las regiones muestreadas (noreste de La Macarena y RNN
Nukak) no presentan explícitamente importancia como refugios o corredores bióticos para las hormigas. Los ecosistemas representados no son exclusivos y por lo tanto probablemente no poseen elementos únicos o relictuales. Por
otra parte la propuesta de “refugios” (como los refugios del
Pleistoceno), ya no goza de la importancia y atención del
pasado. La gran mayoría de clados de insectos son mucho
más viejos que procesos como glaciaciones o refugios: e.g.
la hormiga conga (Paraponera) se conoce desde el Mioceno, hace más de 15 millones de años. En las selvas y sabanas
del Orinoco, así como en otras partes, las hormigas en general poseen una función clave en la estructura y dinámica
de los ecosistemas, como herbívoras, fungívoras, depredadoras generalistas y especializadas, dispersoras de semillas,
Se le ha dado un valor alto a los procesos ecológicos con
escarabajos en la subregión IN1 (Figura 6.16) porque varias
especies presentan asociaciones estrechas con el tipo de excremento y su proceso de nidiicación, como es el descrito
anteriormente para S. leander en las playas del río Duda
en la Serranía de La Macarena. Igualmente en esta zona,
especíicamente en el PNN Tinigua se han registrado especies de escarabajos coprófagos, principalmente rodadores
210
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Nieto.
Un área de potencial importancia es la cuenca del río Duda
(IN1). Esta región presenta amplias áreas de bosque primario, aparente alta riqueza de vertebrados y abundancia de
estratos (desde hojarasca hasta epiitas) que seguramente
posee ricas comunidades de hormigas, mariposas y otros
grupos de insectos. Teniendo en cuenta las hormigas, son
prioritarias para conservación zonas conocidas por su riqueza y altos niveles de endemismos como la cuenca del
río Duda (IN1), así como los piedemontes de la Cordillera
Oriental (lanco oriental) y la Sierra de La Macarena (lanco
occidental), incluidas en las áreas IN1 e IN2. Igualmente
los bosques de galería de los ríos Guayabero y Guaviare que
además son importantes en la conservación de especies
poco colectadas y con procesos ecológicos importantes de
escarabajos coprófagos y mariposas.
alimento para otros animales, y objeto de asociaciones con
plantas y animales (Rico-Gray y Oliveira 2007, Lach et al.
2010).
NOMINACIÓN DE ÁREAS
IMPORTANTES PARA LA
CONSERVACIÓN DE LOS
INSECTOS
Se seleccionaron nueve áreas como prioritarias para la conservación (Tabla 6.1, Figura 6.17), de escarabajos coprófagos, hormigas y mariposas. Esta selección incluyó áreas por
su importancia de acuerdo al tipo de hábitat, endemismos,
como también áreas con vacíos de información o donde se
sabe preliminarmente de la alta riqueza de especies en estos grupos que merece ser preservada. No se incluyó en la
selección, especies con valor de uso y especies amenazadas,
por no tener información sobre estos dos aspectos.
Se seleccionó además como áreas prioritarias el alto Guaviare (IN2) y el alto río Meta (IN3). Otras áreas nominadas
están localizadas en el corredor medio del Orinoco (IN8);
incluyen la cuenca del río Tomo y Vichada (IN7) y hacia el
sur la Estrella Fluvial del Inírida (IN9).
Figura 6.17 Áreas nominadas para la conservación: insectos.
211
INSECTOS:
ESCARABAJOS COPRÓFAGOS, HORMIGAS Y MARIPOSAS
G. Andrade.
Tabla 6.1 Áreas nominadas para el grupo insectos.
Código
Descripción
Sub-región
IN1
Cuenca del río Duda
IN2
Serranía de la Macarena y Alto río Guaviare
IN3
Alto río Meta
IN4
Yopal
IN5
Sabanas inundables y morichales de Casanare
IN6
Ríos Meta y Casanare
IN7
Interluvio ríos Tomo y Vichada
IN8
Corredor medio Orinoco, incluyendo sector Oriental del PNN El Tuparro y Matavén
IN9
Estrella luvial de Inírida
Piedemonte Llanero
Sabanas inundables
Corredor Estrella
luvial
Las amenazas para escarabajos coprófagos, además de las
mencionadas anteriormente, están dadas principalmente
por la trasformación de hábitat producto de la deforestación, que afecta las poblaciones naturales de vertebrados
que suplen de alimento a estos escarabajos. Los escarabajos
coprófagos han mostrado ser muy sensibles a la fragmentación de los hábitats. Se conocen ejemplos de disminución
de especies por perdida de áreas de bosque (Klein 1989,
Quintero y Roslin 2005).
En las llanuras de Arauca y Casanare se seleccionaron varias áreas que son importantes principalmente en la conservación de mariposas debido a la riqueza de especies que
existen en estas zonas en donde encuentran diversidad de
recursos alimenticios IN4, IN5 e IN6). Se sabe además, que
las mariposas muestran una alta especiicidad a unidades
de vegetación particulares, encontrándose grupos de familias asociados a tipos especíicos de vegetación (Fagua et
al. 1999) Así mismo, en condiciones bajas de altitud se encuentran una alta diversidad de especies de mariposas debido a condiciones de alta radiación solar la cual hace que
las especies puedan estar libando las lores o inlorescencias
de las plantas de las cuales se alimentan.
Las hormigas son sensibles a cambios en la estructura de
los estratos de nidiicación (temperatura, lujo de energía)
(Ríos-Casanova y Bestelmeyer 2008). El estrato más rico
en especies, el de la hojarasca, es sensible de desaparición
por la tala de bosques o extracción selectiva de madera. Las
prácticas de tala y uso de áreas para cultivos ilícitos están
causando disminución de áreas de nidiicación y por lo tanto afecta la presencia de colonias y poblaciones.
AMENAZAS, OPORTUNIDADES
Y RECOMENDACIONES PARA
LA CONSERVACIÓN DE LAS
ÁREAS NOMINADAS
Las mariposas son altamente sensibles a la perdida de hábitat de las plantas nutricias de sus orugas, lo cual hace que
las hembras que son las encargadas de colocar los huevos
en las plantas nutricias no tengan espacios suicientes de
hábitats para perpetuar la especie.
En todos los grupos biológicos las amenazas están dadas
por los proyectos de desarrollo que se han incrementado
en la región de la Orinoquia. Estas amenazas que fueron
ampliamente discutidas en el taller binacional están dadas
principalmente por la explotación de hidrocarburos, construcción de hidroeléctricas, deforestación, contaminación
de las aguas, expansión de monocultivos y cultivos ilícitos,
entre otras. Para insectos no se realizó la evaluación en detalle por cada categoría de amenaza por falta de información especíica. Sin embargo, incluimos una relexión sobre
el tema de manera descriptiva.
Para hormigas, la carencia de listas rigurosas de especies
en diferentes localidades de la gran cuenca del Orinoco
impide hacer valoraciones en riqueza, endemismos y recambios de fauna. El “impedimento taxonómico”, esto es,
la imposibilidad de identiicar apropiadamente especies en
varios grupos de hormigas se ha ido solucionando gradualmente, pues grupos de especialistas trabajan activamente
en revisiones y monografías de grupos clave como Phei-
212
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Nieto.
BIBLIOGRAFÍA
dole, Camponotus o Solenopsis. De los más de 100 géneros
de la región Neotropical existe imposibilidad de identiicación en pocos, como Azteca, Hypoponera, Myrmelachista
o Nylanderia. Algunos de estos son arborícolas, y normalmente no entran en los estudios de diversidad de hormigas
que se basan en muestreos de hojarasca. Hacia el futuro se
puede obtener información muy ina para poder comparar
las diferentes subregiones (o cualquier otra unidad de comparación, como cuadrículas de 1º de lado) y la cuenca con
otras regiones geográicas en Sudamérica.
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Como se señaló arriba, las faunas de hormigas parecen ser
más ricas hacia el sureste de la cuenca del Orinoco en Colombia, regiones con más zonas de bosque húmedo, y regiones con mayor contraste topográico, como el piedemonte
llanero o las estribaciones de la Sierra de La Macarena. Al
parecer uno de los factores claves que limitan la diversidad
local en las hormigas es la disponibilidad de sitios de nidiicación. Esto hace que un bosque con diferentes estratos,
desde las copas de los árboles hasta la hojarasca, ofrecerán
más especies (y número de colonias) que bosques con árboles esparcidos o de menos porte, o sabanas u otro tipo de
claros. Por otra parte, estudios en otras regiones sugieren
que las hormigas son más ricas en especies por encima de
los 800 y debajo de los 1500 m.s.n.m. (Lozano et al. 2008).
Esto hace que gran parte del área de los llanos orientales
de Colombia queden con faunas menos ricas, al estar por
debajo de la cota de los 800 m.s.n.m.
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Para grupos de vertebrados y plantas los muestreos y estudios de lora y fauna en la región de la Orinoquia permiten
un acercamiento para la evaluación, predicción y recomendaciones de áreas prioritarias de conservación, basados en
datos relativamente concretos. Por el contrario, en insectos los vacíos de información no permiten una evaluación
tan exhaustiva de los aspectos si abordados con los otros
grupos de fauna y lora. No solo se necesita de expediciones y muestreos más detallados de los diferentes grupos de
insectos en diferentes áreas de la Orinoquia, sino que es
importante reforzar el trabajo de depuración taxonómica
en todos los grupos, además de una exhaustiva búsqueda
y organización de los registros de insectos en ésta área. La
curación, identiicación y digitalización de buena parte del
material de escarabajos coprófagos, hormigas, y mariposas
que reposa en las colecciones biológicas del Instituto Humboldt y otras colecciones del país pueden ofrecer información valiosa para una mejor valoración de la composición
de la entomofauna orinoquense.
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F. Nieto.
a
b
d
c
f
e
a.
b.
c.
d.
e.
f.
Oruga de lepidóptero. Foto: C. Plata.
Caligo sp. Foto: O. Mahecha.
Oruga. Foto: C. Plata.
Oxysternon festivum. Foto: F. Nieto.
Phoebis sp. Foto: F. Nieto.
Marpesia sp. Foto: C. Plata.
215
Leporinus yophorus (juveniles). Foto: Hernando Ramírez.
7.
PECES
F. Trujillo.
Antonio Machado-Allison, Carlos A. Lasso, José S. Usma, Paula Sánchez-Duarte,
Oscar M. Lasso-Alcalá
INTRODUCCIÓN
La región neotropical aún contiene cientos de miles de
kilómetros cuadrados de áreas prístinas de bosque y sistemas acuáticos asociados. Gran cantidad de esta región
se encuentra en Brasil, Bolivia, Colombia, Guyana, Perú
y Venezuela. Dichos países albergan la mayor diversidad
de especies, biomasa vegetal, ecosistemas naturales y agua
dulce del planeta. Sin embargo, hoy día el aumento de la demanda mundial de consumo e incremento demográico de
las poblaciones humanas, están acelerando la explotación
de lo que en un momento fue la mayor reserva de alimento,
minerales, belleza escénica, energía y biogenética del mundo (SISGRIL 1990, Bucher et al. 1993, Chernof y Willink
1999, Machado-Allison 1999, Machado-Allison et al. 1999,
2000).
aprovechamiento sostenible, ademeas de la evaluación de
las amenazas que actualmente enfrenta la Orinoquia. Esto
adquiere mayor relevancia hoy día, si se considera que Suramérica contiene el reservorio de agua potable más grande
del mundo y un recurso pesquero estratégico a nivel global
(AquaRAP 1996, Gleick 1998-1999, Chernof et al. 2003a,
Lasso 2005, Machado-Allison 2005, Señaris et al. 2008).
Esfuerzos particulares por estudiar los ecosistemas acuáticos de la cuenca Orinoco con propósitos de manejo
sostenible han sido desarrollados en el sector venezolano
por Machado-Allison (1994), Taphorn (2001) y MachadoAllison et al. (2002). Además, los estudios promovidos por
universidades nacionales y fundaciones y los liderados por
el programa AquaRAP (Field Museum de Chicago, Conservación Internacional y Fundación La Salle de Ciencias
Naturales), han permitido el conocimiento de áreas especiales para la conservación como el sistema Aguaro-Guariquito (Machado-Allison y Moreno 1993a), la cuenca del río
Caura (Chernof et al. 2003a, Rodríguez y Taphorn 2003),
el delta del Orinoco (Ponte et al. 1999, Lasso et al. 2004b,
2009a), los ríos Paragua (Señaris et al. 2008), Ventuari (Lasso et al. 2006, Montaña et al. 2006), Apure (Taphorn 1992,
Lasso 2004), Pao y Caris (Machado-Allison 1987b) y Atabapo (Royero et al. 1992).
Actualmente, se conocen cerca de un millar de especies de
peces continentales en la cuenca del río Orinoco, ampliamente distribuidos y ocupando una gran diversidad de ambientes acuáticos que incluyen cauces principales de ríos de
aguas blancas, claras y negras, caños, madreviejas, lagos y
lagunas de rebalse, sabanas y bosques inundados, y biotopos frágiles y especiales como los morichales (Marrero et
al. 1997, Lasso et al. 2003a-b, 2004a-b, Machado-Allison
2005).
El reconocimiento de la riqueza íctica de la cuenca Orinoco está aportando elementos para su conservación y
217
PECES
O. Lasso-Alcalá.
En el sector colombiano se destacan los registros pioneros de Eigenmann (1914, 1919, 1921, 1922), Myers (1930),
Cala (1977, 1991a, 1991b) y Arboleda y Castro (1982). Posteriormente ha sido fundamental el conocimiento aportado
por las Universidades, ONG (Fundaciones Omacha, Puerto Rastrojo, WWF) y los Institutos de Ciencias Naturales
y Alexander von Humboldt para toda la cuenca (Lasso et
al. 2004a, Maldonado-Ocampo 2004); la conluencia de
los ríos Guaviare, Inírida, Atabapo y Orinoco (Lasso et al.
2009b), los ríos del piedemonte del departamento de Casanare (Urbano-Bonilla et al. 2009) y las subcuencas de los
ríos Guaviare (Dahl 1960, 1961); Meta (Castro y Sánchez
1994, Galvis et al. 1989, Maldonado-Ocampo 2000, 2001);
Bita (Ortega-Lara 2005); Tomo (Maldonado-Ocampo et al.
2006, Maldonado-Ocampo y Bogotá-Gregory 2007); Arauca (Salazar y Uribe 1996, Lacambra y Pinilla 2004) e Inírida
(Miller et al. 2009).
Figura 7.1 Subregiones biogeográicas: peces (modiicado de Lasso et al. 2004a).
SUBREGIONES
BIOGEOGRÁFICAS
Estas mismas subregiones corresponderían a las subregiones de los crustáceos decápodos de la Orinoquia colombiana (Campos com. pers.) y a las de la Orinoquia venezolana
(Lasso obs. pers.). Partiendo de estas subregiones se deinieron también las subcuencas de la Orinoquia (Figura 7.2),
las cuales representan una unidad de trabajo natural para
los análisis posteriores.
Deinición de las subregiones biogeográicas
Utilizando la nueva información disponible (2004-2009)
e integrando los resultados del primer taller binacional
(Lasso et al. 2004a), se ratiica con mayor rigurosidad la determinación de las 18 subregiones biogeográicas para los
peces, 15 de ellas bien deinidas y tres (identiicadas como
vacío 1, 2, 3) con poca información disponible (Figura 7.1).
Los criterios más importantes además de la delimitación
natural generada por las cuencas o subcuencas, fue la altura
sobre el nivel de mar, la tipiicación de las aguas, los tipos
218
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
Figura 7.2 Subcuencas hidrográicas: peces.
y la estructura de los suelos y fondos. De esta manera se
pueden limitar por ejemplo las planicies de inundación, zonas ritrónicas o rápidos (en ríos montañosos o cabeceras) y
tipos de aguas: negras, claras y blancas.
Tipos de aguas
Blancas, claras andinas (transparentes) y negras andinas
(teñidas por pizarras). Los ríos de esta región poseen en
general aguas ricas en nutrientes, pues se originan en las
areniscas de la Formación Guadalupe (Cretáceo superior),
dándole a sus aguas el color claro característico. Al erosionar las pizarras de origen marino que subyacen estas areniscas (Formación Guaduas y Caqueza), se cargan de nutrientes y adquieren un color casi negro a causa del material
en suspensión proveniente de las pizarras.
A continuación se describen cada una de las subregiones
ictiogeográicas de la Orinoquia.
A0. Andina
Límites, red de drenaje y cotas altitudinales
Corresponde al área delimitada por la divisoria de aguas de
la Cordillera Oriental en Colombia y de Mérida en Venezuela, desde las nacientes de los ríos en las partes altas de
la Cordillera hasta una cota de altura aproximada de 500
m.s.n.m. Se extiende desde las cabeceras del río Duda y
Guayabero en Colombia hasta el Yacambú en Venezuela.
Incluye ríos que nacen a alturas considerables en la Cordillera Oriental como el Guaitiquía, Cusiana, Casanare,
Guayuriba, Upía, Santo Domingo y Guanare, que cortan la
cordillera que bordea los Llanos (ríos antecedentes).
Geología
Principalmente depósitos sedimentarios resultantes de la
compresión y plegamiento de la Cordillera Oriental existente desde el Mioceno medio a superior. Su litología se caracteriza por cimas arenosas de la Formación Guadalupe.
Subyacente a éstas se encuentran formaciones de pizarras
muy erosionables (Formación Guaduas y Caqueza). Presencia menor de subcordilleras con rocas sedimentarias del
paleozoico muy erosionables.
219
PECES
O. Lasso-Alcalá.
de selva o bosque, los cuales han sido talados en la región
de Villavicencio y están en proceso de deforestación en el
Sarare. Incluye ríos de piedemonte andino, conformado
por un relieve colinoso, altiplanos estructurales y pequeñas
llanuras aluviales. En Villavicencio se extiende a unos 30
km de la cordillera y forma muchas anastomosis, con agua
clara y abundante vegetación acuática arraigada.
Fisiografía y principales ambientes acuáticos
Relieve abrupto de montaña con fuertes pendientes. El
peril longitudinal de los cauces acusa una pendiente pronunciada, acelerándose así la velocidad de escurrimiento
y dándole a los ríos un aspecto de torrente corriendo por
lechos pedregosos (Zinck 1977). Alta capacidad de arrastre
y transporte de sedimentos. Los ríos corren por cañones
angostos; una vez que cortan la subcordillera del Macizo de
Quetama de rocas paleozoicas en levantamiento muy activo, reciben de nuevo aluentes (quebradas de aguas claras)
más pobres en nutrientes (ríos consecuentes). Presencia de
turba y pantanos. Incluye toda la región de páramos andinos. En éstos pueden encontrarse pequeñas lagunas altoandinas sin ictiofauna autóctona.
El estudio de Urbano-Bonilla et al. (2009) en los ríos del
piedemonte de Casanare registró una riqueza de 169 especies de peces, de las cuales 36 son nuevos registros para la
cuenca Orinoco y la subcuenca del río Meta, demostrando
la alta representatividad de la ictiofauna de la Orinoquia
aportada por la zona del piedemonte (Urbano-Bonilla et al.
2009).
A1. Abanicos de ríos trenzados del piedemonte andino
Límites, red de drenaje y cotas de altura
Delimitado al sur por la Serranía de La Macarena. Es una
franja a lo largo del piedemonte de la Cordillera Oriental
que limita con los llanos a una altura que varía entre 150
y 500 m, desde el río Guayabero en Colombia hasta el río
Cojedes en Venezuela, incluyendo ríos en su parte media y
alta, que son de importancia por contribuir con gran contenido de nutrientes y sedimentos a los llanos inundables.
Este es el caso de el río Upía, Cusiana, Cravo Sur, Pauto,
Ariporo, Casanare, Arauca, Santo Domingo, Guanare,
Guarico, Paya, Orituco y aluentes del Portuguesa.
A2a1. Llanos bajos inundables de Colombia y Venezuela
Tipos de aguas
Blancas, ricas en nutrientes y sedimentos en suspensión.
Ocasionalmente claras pero de origen andino.
Tipos de aguas
Predominan las aguas claras de origen pluvial y de desborde de ríos y caños. Son aguas muy cargadas de sedimentos
y poco transparentes, aunque, también hay aguas blancas
pero en menor proporción. Estos Llanos tienen poca altura
sobre el nivel del mar y durante el período de lluvias las
áreas planas de sabana son inundadas tanto por la acumulación de agua proveniente de las lluvias, como por el represamiento de ellas y la subida de las aguas de los grandes ríos
como el Apure, Arauca y Orinoco. La inundación ocurre
a lo largo de miles de kilómetros cuadrados en Colombia
y Venezuela. Durante el período de sequía (diciembre a
marzo) estas áreas inundadas se aíslan del cauce principal y
eventualmente muchas de poca profundidad se secan.
Límites, red de drenaje y cotas de altura
Los Llanos bajos inundables que comparten Colombia y
Venezuela están incluidos en las cuencas de los ríos Arauca y Apure. Limita al norte con la franja del piedemonte
andino, los abanicos aluviales y el río Guariquito y la zona
especial del río Aguaro en Venezuela; al sur limita donde
terminan los cantos rodados (Serranía de La Macarena).
Corresponde a la llanura inundable del río Meta, Casanare
y Arauca, Apure y Portuguesa. En Colombia correspondería a la depresión de Casanare y Arauca.
Geología
Transición entre los Llanos Orientales y la Cordillera
Oriental (zona subandina). Constituye una franja deformada, con excelentes trampas petrolíferas. Su litología está
compuesta por sedimentos del Terciario, areniscas, lutitas,
cuarzoarenitas y arcillolitas.
Fisiografía y principales ambientes acuáticos
Al abrirse a la llanura aluvial, los ríos antecedentes de la región andina depositan todo el material arrastrado y forman
extensos abanicos y cauces trenzados, básicamente de cantos rodados y arena. Los ríos y arroyos que nacen en estos
abanicos (muy anchos, poco profundos y divagantes), son
de aguas más pobres y claras que la de los ríos antecedentes
a los que desembocan en los enclaves más húmedos, como
el arreglo que forman la Sierra de La Macarena con la Cordillera Oriental o el que constituye el Macizo de Santander
y la Sierra del Cocuy en la cuenca alta del río Arauca (Complejo Sarare-Saravena). Estos abanicos estaban cubiertos
Geología
Cuaternario. Corresponde a la región extra-andina o Llanos Orientales (Mojica 1996). El sustrato es sedimentario y
proviene de depósitos aluviales conformados por areniscas
y lutitas acumulado por ríos de alta energía y gran capacidad de carga del lecho (IGAC 1999). En esta subregión
los sedimentos provenientes del Escudo Guayanés cubrían
todos los Llanos actuales y se extendían hasta la falla del
220
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
borde llanero. Fueron recubiertos en el Eoceno por una
coraza laterítica actualmente subdividida por una falla de
rumbo noreste, por la cual, corre el río Meta y que corta
estos sedimentos en dos bloques, uno al sur, levantado y
transformado por la erosión en un lomerío de alturas uniformes (ver más adelante la Subregión A4 llamada Altillanura o Serranía Llanera), y otro bloque extendido del Meta
hacia el norte, con hundimiento más pronunciado hacia el
oriente. Este último correspondería a esta subregión A2a,
donde la coraza laterítica Eocena se encuentra cubierta por
sedimentos provenientes de Los Andes, del tipo francoarenoso, resultado en buena parte de la erosión de la formación Guadalupe del Cretácico superior que recubre la
cordillera.
poca velocidad y se forman numerosos meandros. Predominan cuerpos de agua estacionales derivados del desborde de ríos andinos y la acumulación en planos inundables
cóncavos, dando origen a esteros y morichales de sabana.
Poseen una ciclicidad climática marcada por un período de
lluvias (junio-noviembre) y un período seco (diciembremayo). Los cuerpos acuáticos presentes incluyen ríos, caños, lagunas profundas, esteros (lagunas o sabanas inundadas) y bosques de galería inundables, todos, regulados por
una dinámica o lujo hídrico biestacional. En estas áreas
se produce igualmente un intercambio cíclico de material
(López-Hernández et al. 1986a-b), muy importante para el
desarrollo de una gran variedad de organismos acuáticos
(Figura 7.3).
Fisiografía y principales ambientes acuáticos
Planicies bajas inundables sobre terrazas aluviales, en algunos casos con inluencia eólica. La topografía de este sector
es casi completamente plana y anegadiza, pues los ríos que
bajan de la cordillera arrastran muchos sedimentos y forman loess o médanos de dos o más metros por encima de
la llanura adyacente, la cual desborda en el período de lluvias. La pendiente de estos ríos de llanura es generalmente
ínima. Como consecuencia de esto el lujo de agua tiene
El ambiente acuático durante el período lluvioso se encuentra dominado y altamente protegido por la presencia de
una gran variedad y densidad de plantas acuáticas lotantes
y arraigadas tales como: Eichornia crassipes, Paspallum repens, Oxycarum cubense, Ludwigia helmintorriza, Ludwigia
sediodes, Salvinia auriculata, Hymenachne amplexicaulis y
algunas especies de Eleocharis. Tales plantas son utilizadas
generalmente por larvas y juveniles de peces como refugio,
protección o fuente de alimentos.
Figura 7.3 Ciclos de nutrientes y elementos lorísticos y faunísticos en los llanos inundables. Modiicado de Machado-Allison (2005).
221
PECES
O. Lasso-Alcalá.
Es en este período se produce un incremento explosivo en
las poblaciones de los organismos acuáticos, incluyendo
ito y zooplancton, larvas de insectos acuáticos (Odonata,
Trichoptera, Plecoptera, Diptera, Coleoptera y Ephemeroptera), así como crustáceos (Macrobrachium spp.), los cuales forman parte de una compleja dieta natural de muchas
especies de peces. Por todas estas razones, estas áreas de
lagunas marginales permanentes y/o sabanas inundables
periódicas (esteros) a lo largo de los principales aluentes
del río Orinoco, han sido consideradas como áreas “nursery” o de importancia biológica para numerosas especies
de peces de aguas continentales (Tabla 7.1), muchas de ellas
de importancia económica y pesquera (Lasso 2005, Lowe
-McConnell 1987, Machado-Allison 1987b, 1990, 1992,
1994, Mago-Leccia 1970, 1978, Marrero 2000, Winemiller
1989a-b, 1990).
Tabla 7.1 Especies de peces más comunes que utilizan las áreas inundadas de sabanas o esteros y lagunas para completar su desarrollo. (*) Denota importancia comercial.
Acestrocephalus sp
Astyanax metae
Astyanax bimaculatus
Charax apurensis
Cheirodon spp.
Colossoma macropomum *
Ctenobrycon spilurus
Hemigrammus spp.
Markiana geayi
Moenkhausia dichroura
Moenkhausia lepidura
Mylossoma aureum *
Mylossoma duriventre *
Paragoniates alburnus
Piaractus brachypomus *
Pristella maxillaris
Pristobrycon calmoni
Pristobrycon striolatus
Pygocentrus cariba *
Roeboides ainis
Serrasalmus irritans
Serrasalmus medinai
Serrasalmus rhombeus
Tetragonopterus argenteus
Triportheus orinocensis
Triportheus venezuelensis
Xenagoniates bondi
Leporinus friderici
Schizodon scotorhabdotus
Prochilodus mariae *
Semaprochilodus laticeps *
Curimata abramoides
Curimata cerasina *
Steindachnerina argentea
Hydrolicus tatauaia *
Hydrolycus armatus *
Hoplias malabaricus *
Mikrogeophagus ramirezi
Pyrrhulina brevis
Ageneiosus magoi
Entomocorus benjamini
Entomocorus gameroi
Trachelyopterus galeatus
Pseudodoras niger *
Apistogramma hoignei
Callichthys callichthys
Hoplosternum littorale *
Agamyxis albomaculatus
Brachyplatystoma ilamentosum *
Brachyplatystoma juruense *
Brachyplatystoma rousseauxi *
Brachyplatystoma vaillanti *
Brachyplatystoma platynema *
Callophysus macropterus *
Hemisorubim platyrhinchus *
Leiarius marmoratus *
Megalonema platycephalum *
Pimelodella spp.
Pseudopimelodus apurensis *
Zungaro zungaro*
Phractocephalus hemiliopterus *
Pseudoplatystoma metaense*
Pseudoplatystoma orinocoense*
Rhamdia quelen
Sorubimichthys planiceps *
Hypostomus amnophilus
Liposarcus multiradiatus *
Loricaria cataphracta
Loricariichthys brunneus
Pseudohemiodon laticeps
Adontosternarchus sachsi
Adontosternarchus devenanzi
222
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
Apteronotus albifrons
Gymnotus carapo
Rhamphichthys apurensis
Eigenmania macrops
Eigenmania virescens
Rabdolichops troscheli
Sternopygus macrurus
Astronotus sp
Cichlasoma orinocense
Chaetobranchus lavescens
Durante el período de sequía, la reducción drástica en el nivel de las aguas en el canal o cauce principal de los ríos, drena las sabanas inundadas, los esteros y las lagunas, eliminando miles de kilómetros cuadrados de hábitat acuático.
El espejo de agua queda limitado a pequeñas áreas profundas, aisladas y rodeadas por inmensas áreas secas de sabana.
Los cuerpos de agua presentes como pozos o lagunas, están
caracterizados por tener altas temperaturas (30 a 38 oC) y
pH neutro (7.0-7.2). Estos factores, en conjunción con la
carencia de circulación de agua, eliminan el poco oxígeno
disuelto, resultando en condiciones anóxicas generalizadas.
Estas áreas también se caracterizan por abundante material
límico en suspensión y poca transparencia (menos de 10
cm, Secchi) a la penetración de luz. Las condiciones abióticas se combinan para producir cambios en la abundancia y diversidad orgánica en el ecosistema. Así, bajo estas
condiciones extremas se produce una eliminación de gran
cantidad de elementos de biota. Algunas algas ilamentosas
invaden áreas poco profundas y los elementos faunísticos
pasan en general a una etapa de dormancia (estivación).
Pocas especies de peces pueden soportar estas condiciones
y sobreviven gracias al desarrollo de mecanismos respiratorios que les permiten tomar aire atmosférico como ha sido
evidenciado en las guabinas (Hoplias malabaricus), curitos
(Hoplosternum littorale), corronchos (Liposarcus multiradiatus) y la anguila de río (Synbranchus marmoratus).
palmente pedregosos al norte haciéndose más profundos y
con abundante sedimentos hacia el sur.
Geología
Depósitos recientes sedimentarios de la Formación Mesa
del Pleistoceno inferior, correspondientes a grava y arena.
Se caracterizan por una zona de mezcla de suelos arenoarcillosos con aloramientos rocosos sedimentarios principalmente hacia el norte. Los ríos generalmente drenan el
piedemonte andino y la Serranía del Interior en dirección
norte-noroeste hacia el sur-sureste.
Fisiografía y principales ambientes acuáticos
Correspondiente a la planicie denudacional y disectada
del piedemonte sur de la Cordillera de la Costa, cruzada
por varios valles de ríos menores. Sabanas arenosas, ríos
de aguas blancas y algunos morichales. Estas zonas medias
son igualmente dominadas por un ciclo climático conformado por dos estaciones: una de lluvias y otra seca. Durante las lluvias y la crecida de los ríos, numerosas especies de
peces realizan migraciones o “ribasones” para cumplir con
parte de su ciclo reproductivo. Ejemplo de estas especies
son: coporos (Prochilodus mariae), cachamas (Colossoma
macropomum), morocotos (Piaractus brachyppomus), palometas (Mylossoma duriventre), caribes (Pygocentrus cariba) y algunos bagres de la familia Pimelodidae (Pimelodus
spp., Leiarius spp, Pseudoplatystoma spp.) las cuales son
año a año observadas en los principales ríos de la región
como el Uribante, Caparo, Masparro y Portuguesa (Machado-Allison 2005). Los huevos, larvas y juveniles penetran
en lagunas de rebalse en el área de “esteros” (por ejemplo el
Estero de Chiriguare) o son arrastrados hacia las zonas más
bajas de las sabanas inundadas donde completan su ciclo
de crecimiento. Durante la sequía, los peces están restringidos a lagunas marginales profundas, al canal principal
de los ríos o migran hacia las aguas bajas de los grandes
ríos. En el período seco es aprovechado para la captura de
estas especies desde el punto de vista comercial. En el pasado estos ríos discurrían entre zonas boscosas bajas con
una exuberante formación de bosques de galería. Hoy día,
estos ríos se encuentran altamente impactados debido al represamiento de sus aguas en las cabeceras, la deforestación,
A2ab. Llanos centrales no inundables de Venezuela
Límites, red de drenaje y cotas de altura
Esta es una amplia región comprendida entre los bajos llanos inundables de los estados Apure, Barinas, Portuguesa y
Guárico y los ríos trenzados del piedemonte andino en Venezuela. Sus límites se extienden desde la divisoria de aguas
de la cuenca del río Orinoco al nororiente, incluyendo las
cuencas de los ríos Zuata, Pao, Caris y parte alta del río Tigre, entre 350 y 10 metros de altura en la desembocadura
con el Orinoco.
Tipos de aguas
Predominan aguas blancas y en algunas ocasiones aguas
claras. Los ríos son principalmente de aguas blancas, con
abundante sedimento en suspensión, con fondos princi-
223
PECES
O. Lasso-Alcalá.
Por otro lado, asociado a estos ambientes se encuentran
exuberantes bosques inundables que poseen gran importancia en la alimentación y protección de la fauna íctica
(Castro-Lima 2009, Gosttberger 1978, Goulding 1980,
1983, Machado-Allison 1982, 2005). Castro-Lima (2009)
anota que semillas, hojas, frutos y lores de 219 especies de
plantas del bosque inundable y de tierra irme son consumidas por 82 especies de peces. Este recurso está agrupado
en 43 familias, siendo las más importantes: Arecaceae con
23 especies, Euphorbiaceae (22), Burseraceae y Moraceae
(14), Myrtaceae (12), Cecropiaceae (9), Chrysobalanaceae
(8), Myristicaceae (7). Especies de los géneros Ficus, Cecropia, Protium, Inga, Hevea, Mabea, Bactris, Alchornea,
Hirtella, Virola, y Psidium incluyen a la mayoría de plantas
consumidas. Las especies de peces que utilizan este recurso, están incluidas en las familias Anostomidae (Leporinus
spp.) Characidae, (Brycon spp., Colossoma macropomum,
Chalceus macrolepidotus, Metynnis spp., Mylossoma spp.,
Myleus spp., Piaractus brachypomus, Pristobrycon spp., Triportheus spp.); Doradidae (Pterodoras spp., Oxidoras spp.);
Auchenipteridae (Auchenipterichthys sp., Trachelyopterus
galeatus, Trachelyopterichthys anduzei, Trachycorystes
trachycorystes) y Pimelodidae (Leiarius spp., Pimelodus,
Phractocephalus y Rhamdia). Estos hallazgos demuestran la
importancia del bosque en la alimentación de los peces y la
acción de estos en la dispersión y germinación de las semillas consumidas. Esta asociación biológica es sumamente
importante para la vida de la comunidad asociada a los cauces principales de los grandes ríos de la Orinoquia.
el aumento de la frontera agrícola y altos niveles de contaminación urbana, agrícola e industrial (Machado-Allison
2005, Winemiller et al. 1996). Una nueva amenaza se cierne
sobre estos ambientes acuáticos y es la exploración y explotación petrolera en Venezuela.
A3a. Vegas de grandes ríos con aguas blancas y planicies
de inundación
Límites, red de drenaje y cotas de altura
Incluye el cauce principal del río Orinoco desde los raudales de Atures hasta el ápice del delta del Orinoco, así como
las planicies de inundación del propio Orinoco y de los ríos
Guaviare, Ariari, Meta, Guayabero, Apure, Arauca y Portuguesa.
Tipos de aguas
Blancas
Geología
Conformada por depósitos cuaternarios cuyos sedimentos
provienen de la Cordillera Oriental (Plioceno y Pleistoceno) y el Escudo Guayanés (Precámbrico), en donde predominan las arcillas, lodo y arenas.
Fisiografía y principales ambientes acuáticos
Planos inundables actuales del río Orinoco, Guaviare, Meta
y Apure; planicies eólicas inundables del río Apure. Ambientes acuáticos inundables estacionales propios de los
meses de lluvia como esteros, lagunas temporales y permanentes. Las márgenes de los grandes ríos como el Arauca,
Apure, Guaviare, Atabapo, Inírida, Ventuari, y el propio
Orinoco presentan lagos y lagunas de rebalse muchas de
ellas permanentes (Colonnello et al. 1986). Estas lagunas
presentan un lujo anual proveniente principalmente por la
entrada y salida de aguas durante los proceso climáticos de
lluvia y sequía. Dependiendo del área, estas lagunas poseen
características limnológicas diferentes, pero todas ellas son
altamente productivas y permiten el asentamiento de una
comunidad íctica importante (Lasso et al. 2006, Rodríguez
y Lewis 1994, 1997). Por ejemplo la sapoara (Semaprochilodus laticeps) se desarrolla en las lagunas cercanas a Ciudad
Bolívar (bajo Orinoco) y miles de ellas salen con propósitos reproductivos durante la subida de aguas, momento en
que es aprovechado para la pesca comercial. Muchos lagos
y lagunas marginales son asiento también de una actividad
pesquera deportiva, sobre todo las que poseen aguas transparentes. La pesca de pavones y payaras son una actividad
turística atrayente aún incipiente pero que potencialmente
tiene futuro en la Orinoquía, principalmente en el Orinoco
medio y alto.
A3b. Río Orinoco desde la Estrella Fluvial de Inírida
(conluencia de los ríos Inírida, Guaviare, Atabapo y
Alto Orinoco), hasta el raudal de Atures
Límites, red de drenaje y cotas de altura
Desde la estrella luvial formada por la conluencia de los
ríos Inírida, Guaviare, Atabapo y alto Orinoco, hasta el raudal de Atures.
Tipos de aguas
Mezcla de aguas claras, blancas y negras. Predominan las
claras y negras. El complejo de humedales de la Estrella
Fluvial Inírida (EFI) está situado en la zona transicional
Orinoco-Amazonas, denominada así, pues sus bosques
inundables pertenecen al bioma amazónico, mientras que
sus diversos ecosistemas hidrológicos, con diferentes tipos
de aguas blancas, negras y claras forman parte de la cuenca
del río Orinoco.
Geología
Alora el granito de Parguaza con una edad promedio de
1.500 millones de años, asociado al sector occidental del
224
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
Escudo de Guyana en este sector de la cuenca. Está conformado por un monzogranito biótico-anibolítico, con presencia de feldespato (IGAC 1999).
Tipos de aguas
Fundamentalmente claras.
Geología
Relictos del batolito de Parguaza y metasedimentos provenientes del escudo, puede aparecer bauxita. El Escudo Guayanés sobrepasa el cauce principal actual del río Orinoco
y se extiende hacia la orilla colombiana en forma de cuña
hacia el sur, a partir de Puerto Carreño.
Fisiografía y principales ambientes acuáticos
Plano inundable del río Orinoco, caracterizado por generar
ambientes estacionales de acuerdo con la dinámica hídrica del río. Los raudales de Atures y Maipures presentan un
desnivel de 31 m sobre el río Orinoco en cercanías de Puerto Ayacucho (Zinck 1977).
Fisiografía y principales ambientes acuáticos
Aunque el paisaje es similar al de la Subregión de la Altillanura (A4), la capa sedimentaria de esta subregión (A5) es
mucho más delgada y recubre los granitos del Escudo, que
aloran en muchos sitios en forma de domo o lajas. Terrazas
altas de llanuras aluviales y planos de inundación, lo cual
genera ambientes estacionarios acuáticos boscosos, arbóreos o herbáceos. Ríos de aguas claras, con lagunas inundables hacia las partes bajas. Ocasionalmente morichales
aislados. Hay también ríos y quebradas de aguas negras,
tipo guayanés, muy pobres en nutrientes. En Colombia,
los ecosistemas de los ríos Vichada, Bita, Tuparro y Tomo
han sido recientemente caracterizados por el Instituto von
Humboldt, Parques Nacionales, Fundación Omacha, Fundación Puerto Rastrojo y WWF, registrando 229 especies
de peces (Maldonado-Ocampo y Bogotá-Gregory 2007),
174 especies de aves (Umaña et al. 2007), 828 morfoespecies de plantas (Mendoza 2007).
En el complejo de humedales de la EFI se han registrado
los siguientes datos de biodiversidad: 903 especies de lora,
de las cuales dos son vulnerables; 470 especies de peces, el
50% de la ictiofauna de toda la cuenca Orinoco, incluyendo
11 migratorias comerciales con algún grado de amenaza en
Colombia (Lasso et al. 2009b); 324 especies de aves que incluyen 22 migratorias boreales y tres australes y una especie
vulnerable en Colombia; 200 especies de mamíferos (ocho
con alguna categoría de amenaza); 40 especies de anibios y
60 de reptiles (Usma et al. 2009a).
A4. Altillanura
Límites, red de drenaje y cotas de altura
Cuencas de los ríos, Bita, Tomo, Tuparro, Alto Vichada,
Manacacias, Yucao, Cinaruco y Capanaparo. Su altura varía
entre 50 y 200 metros.
Tipos de aguas
Claras pobres en nutrientes.
A6. Tierras bajas adyacentes al Escudo de Guayana
Límites, red de drenaje y cotas de altura
Piedemonte Guayanés, limitando con los planos inundables del río Orinoco, parte baja del río Caroní, valles del río
Caura, Cuchivero, Parguaza, Ventuari, alto Orinoco, Atabapo e Inírida. Altitudinalmente desde los 20 hasta los 100 m
aproximadamente. En Venezuela los ríos del Escudo adoptan una disposición radial, orientada hacia el gran arco que
forma el río Orinoco al contornear el Escudo a lo largo del
límite entre este y los llanos (Zinck 1977).
Geología
Cobertura arenosa al borde y encima del Escudo Guayanés,
conformada por cuarzoarenitas con presencia ocasional de
estratos arcillosos. Sedimentos del Escudo de Guayana antiguo y erosionado, llanura sedimentaria y lomeríos con
sedimentos eólicos. El sustrato característico es la coraza
laterítica del Eoceno cubierta con arenas eólicas.
Fisiografía y principales ambientes acuáticos
Altillanura y llanura eólica de las cuencas de los ríos Cinaruco, Capanaparo, Vichada, Tomo y Bita, conformada por
terrazas estructurales, valles estrechos y mantos eólicos.
Ríos de aguas claras, con pequeñas planicies inundables
asociadas a los cauces principales. Sabanas inundables parcial y temporalmente. Ocasionalmente morichales.
Tipos de aguas
Negras y claras.
Geología
Aloramientos graníticos de la formación Parguaza, inselberg. El sustrato predominante son corazas lateríticas con
arenas eólicas, fertilidad del suelo muy baja. En Colombia
está caracterizado por el complejo migmatítico del Mitú,
compuesto por granitoides y neises de origen ígneo y metamórico.
A5. Sabana llanera con aloramiento del Escudo Guayanés
Límites, red de drenaje y cotas de altura
Parte baja de los ríos Vichada, Tomo, Bita, Tuparro, Dagua,
Cinaruco; conluencia con el río Orinoco.
225
PECES
O. Lasso-Alcalá.
parte, para el río Paragua principal aluente del río Caroní
se registran 150 especies (Lasso et al. 2003 b, 2008), mientras que para la Gran Sabana y Parque Nacional Canaima
hacia las cabeceras de la cuenca se reconocen 119 especies,
pero con un elevado nivel de endemismo, el mayor de la
Orinoquia (Lasso 1989, Lasso et al. 2009c).
Fisiografía y principales ambientes acuáticos
En el sur las cuencas del Inírida y Atabapo están caracterizadas por una llanura ondulada con planos cóncavos
- convexos. Hacia el piedemonte del Macizo Guayanés se
presentan grandes pendientes con relieve ondulado, terrazas estructurales en los valles de los ríos Ventuari, Caura,
Cuchivero y Parguaza. Presencia de bosques inundables y
ríos de aguas negras y claras.
A8. Delta del Orinoco
Límites, red de drenaje y cotas de altura
Incluye la zona deltaica de tierras bajas desde el Brazo
Grande hasta la cuenca del río Tigre. Se excluyen los ríos
que drenan de la Serranía de Imataca en el sur y que forman
parte de la región (A6). Desde el punto de vista ictiogeográico el delta del río Orinoco pertenece a la región Guayana y se abre al Mar Caribe a través del Golfo de Paria y
al Océano Atlántico con una supericie estimada de 40.200
km2, de los cuales el propio abanico deltaico ocupa 18.810
km2 (Ponte et al. 1999). Por otro lado, el Delta puede subdividirse en regiones. Así, Canales (1985), considerando la
altura sobre el nivel del mar y la inluencia de las mareas,
propone una división del abanico deltaico del río Orinoco
en tres regiones: alto (delta superior), medio (delta medio)
y bajo (delta inferior). Además, el río Orinoco, después de
recorrer unos 2.000 km a la altura del Puerto de Barrancas
y a 50 km de la desembocadura, se bifurca en dos grandes
ramales. A partir de allí, el lujo principal es acarreado por
el río Orinoco a través del Río Grande, de curso oeste-este,
y vacía sus aguas en el Océano Atlántico por su desembocadura llamada Boca Grande. El lujo residual es transportado principalmente por los caños Manamo y Macareo, que
son dos grandes cauces que llevan sus aguas hacia el norte
y el noroeste, respectivamente.
El río Caura fue estudiado por Machado-Allison et al.
(2002) y Lasso et al. (2003 b) quienes listan cerca de 400 especies y la conluencia del Orinoco con el Ventuari fue caracterizada por Montaña et al. (2006) y Lasso et al. (2006)
que identiicaron 470 especies.
A7. Tierras altas del Escudo Guyanés (mayormente desconocidas) GAP
Límites, red de drenaje y cotas de altura
Incluye las cabeceras de los ríos que drenan el Escudo: Caroní, Caura, Ventuari y ríos del alto Orinoco que nacen o
discurren por las mesetas de areniscas o tepuyes. Alturas
máximas hasta de 2.600 m.
Tipos de aguas
Claras y negras.
Geología
Rocas del basamento proterozoico ígneo-metamórico,
presencia esporádica de sedimentos.
Fisiografía y principales ambientes acuáticos
A grandes rasgos, el Escudo de Guayana se presenta como
una gran pirámide, de la cual bajan los ríos en forma divergente y por resaltos sucesivos desde las mesetas de los tepuyes, situadas a 2.500 - 2.800 m.s.n.m. hasta terrenos más
bajos con no más de 100 – 200 m.s.n.m. de altura (Zinck
1977), donde se encuentran con sectores de ríos correspondientes a la subregión anterior (A6). Relieve de montaña,
presencia de grandes tepuyes, colinas y lomerío estructural.
Los ambientes acuáticos se restringen a ríos de aguas negras y claras del Escudo. Son frecuentes los ríos de montaña
(tepuyes) que discurren sobre lechos rocosos, con numerosas secciones de rápidos y cambios topográicos abruptos (saltos, raudales, cascadas), que limitan la distribución
de la ictiofauna. También hay quebradas y ríos boscosos
de aguas claras y negras, ocasionalmente ríos de morichal
pero de porte pequeño.
Tipos de aguas
Claras, blancas y negras, que pueden mezclarse en función
de la estacionalidad climática. Como indicamos anteriormente las aguas del delta del Orinoco son de origen mixto
(luvial y marino) y de acuerdo a la cercanía con la boca
tendrán una mayor inluencia de uno u otro componente,
inluenciado también por el ciclo de mareas. Aguas predominantemente salobres.
Geología
Sedimentos inos, arcillas, provenientes de la carga sedimentaria del río Orinoco (Pleistoceno).
Fisiografía y principales ambientes acuáticos
Planicies inundables y esteros, muchos herbazales, bosque
de pantano y manglares. Fuerte inluencia de las mareas y
la cuña salina.
Toda cuenca del Caroní ha sido estudiada extensivamente
por Lasso et al. (2004 a) que señalan 257 especies. Por otra
226
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
Las aguas correspondientes al Delta Superior albergan una
ictiofauna principalmente conformada por peces continentales primarios y algunos elementos estuarinos, mientras
que el Delta Inferior incluye menor número de especies
dulceacuícolas y un alto porcentaje de elementos marinos y
estuarinos. Para esta región se reconocen 438 especies (Lasso et al. 2009a).
Ojasti 1987, Nakamura 2000 y Antonio y Lasso 2003) y en
forma integral por Marrero et al. (1997). Todos estos autores demuestran no solamente la importancia biológica
(alimentaria y refugio) para la fauna acuática y terrestre
que estos sistemas poseen, sino la importancia utilitaria
para beneicio humano. Esta incluye el agua limpia de alta
calidad para el consumo doméstico, plantas que sirven
para la obtención de ibra y fabricación de techos, muebles, cestería y chinchorros, frutos comestibles tanto para
el hombre como para los animales domésticos y silvestres,
y sitios de gran belleza escénica que le aportan medios de
esparcimiento. Marrero et al. (1997) muestran datos de investigaciones en morichales del oriente de Venezuela que
indican que 57% del material consumido por los peces
(principalmente artrópodos, frutas y semillas) proviene del
ecosistema terrestre (origen alóctono) (Figura 7.4). Se ha
demostrado en numerosos trabajos anteriormente citados,
la importancia de los bosques riparios de galería y los morichales en aporte de material alimentario para las especies
acuáticas. Todo lo anterior nos permite sugerir que estos
ecosistemas deben ser protegidos dado su riqueza biológica, su fragilidad estructural y su utilización humana y silvestre (Andrade y Machado-Allison 2009).
Zonas especiales (ZE)
Son áreas que sobresalen de las demás unidades por presentar singularidades tanto ictiológicas como geofísicas.
Pueden ser consideradas como islas ictiogeográicas.
ZE1. Zona Especial Complejo ríos Aguaro-Guariquito,
Llanos del Estado Guárico
Límites, red de drenaje y cotas altitudinales
Cuenca del río Aguaro en Venezuela, limitando entre los
llanos bajos inundables de Venezuela y los no inundables.
Su rango altitudinal se encuentra entre 5 y 100 m.s.n.m. El
área corresponde al Parque Nacional Aguaro-Guariquito.
En él se ubican varios ecosistemas acuáticos que incluyen
ríos, morichales, planicies, sabanas y bosques inundables
y lagunas de rebalse, que constituyen por sus características ecológicas, ecosistemas singulares de alta diversidad
faunística y lorística así como de importancia para la vida
silvestre y humana. Son albergue de especies de la lora y
fauna que requieren de estos espacios para completar sus
ciclos reproductivos. Son también refugio y fuente de especies de importancia económica (local o regional), las cuales
forman parte de la dieta de las poblaciones ribereñas (González 1986, Ojasti 1987, Marrero et al. 1997, Machado-Allison 2005).
Tomando en cuenta lo anteriormente planteado, son importantes los estudios de línea base para conocer el estatus
(diversidad y riqueza) y su potencial importancia económica y social. Los inventarios (número de especies) forman la
base inicial de tales estudios y consecuentemente proveen
de la información necesaria utilizable en futuros proyectos
de manejo adecuado de los recursos y su protección (González 1986, Machado-Allison et al. 1987, Machado-Allison
2005).
Tipos de aguas
Claras, de manantial o provenientes del lavado de las sabanas y morichales.
ZE2. Zona Especial Caño Guaritico, Llanos de Apure
Límites, red de drenaje y cotas de altura
Ubicada en el área central de la llanura aluvial del río Apure, correspondiente al Caño Guaritico y sus aluentes: caños
Caicara, Maporal y Balsa. Su rango altitudinal varía entre
50 y 80 m.s.n.m.
Geología
Planicie aluvial compuesta por arena, limo y arcilla del Oligoceno y Holoceno (Cuaternario).
Tipos de aguas
Claras, provenientes del lavado de las sabanas.
Fisiografía y principales ambientes acuáticos
Planicie diluvial en la parte alta de la cuenca del río Aguaro
y planicie aluvial con médanos en la parte baja. Presencia
principalmente de ambientes acuáticos permanentes restringidos a los canales de agua principales y áreas de inundación estacional en sus vegas y diques. Morichales y ríos
de aguas claras. Estos son importantes cuerpos de agua que
han sido parcialmente investigados en Venezuela (MagoLeccia 1978, Pérez-Hernández 1983, González 1986, 1987,
Machado-Allison et al. 1987, Machado-Allison 1987a,
Geología. Cuaternario reciente, Holoceno, compuesto por
sedimentos no consolidados arcillas y limos.
Fisiografía y principales ambientes acuáticos. Planicie
eólica con presencia de médanos mayor al 50% y llanura
aluvial inundable con bajos. Ambientes acuáticos de aguas
claras permanentes e inundables estacionalmente. Caños,
bajíos y esteros. Bosque de galería inundable. Lasso (2004)
227
PECES
O. Lasso-Alcalá.
Figura 7.4 Peril esquemático de un morichal indicando la frecuencia de aparición de los recursos alimenticios más importantes
utilizados por los peces. Nótese la importancia (57%) del material proveniente del ecosistema terrestre. Tomado de Marrero et al.
(1997).
por un lado de los alisios con el Sarare y por otro con La
Macarena. Abanicos aluviales de piedemonte con relieve
colinado estructural, ríos de alta energía y gran carga de
lecho.
aporta una descripción completa de esta zona especial donde registra 190 especies de peces.
ZE3. Zona Especial río Nula (enclave Selvático SarareSaravena)
V. Vacíos
Límites, red de drenaje y cotas de altura
Franja del piedemonte andino entre los 200 y 1.000
m.s.n.m., perteneciente al río Nula. Limita al norte con el
río Uribante y al sur con el río Arauca.
Lugares en donde no hay información ictiológica o ésta es
insuiciente.
V1. Piedemonte del río Arauca entre los Parques Nacionales Naturales de Tama y Cocuy
Tipos de aguas
Claras, blancas y negras.
Límites, red de drenaje y cotas de altura
Franja del piedemonte andino entre los 200 y 1.000 m de
altura que incluye los ríos Ele, Cravo Norte, Banadia y San
Miguel.
Geología
Bloques y cantos redondos pertenecientes al Mioceno tardío, al Plioceno de la formación Guayabo Superior y gravas
limoarenosas del abanico aluvial del piedemonte.
Tipos de aguas
Blancas.
Fisiografía y principales ambientes acuáticos
Ríos y abanicos trenzados. Estos sistemas son más heterogéneos que los ríos de abanicos anteriores, puesto que
provienen del macizo metamórico de Santander y Cocuy.
Aquí lo que cambia realmente es el paisaje más selvático (la
precipitación es cercana a los 5.000 mm), debido al choque
Geología
Areniscas con intercalaciones de arcillositas, conglomerados y localmente piroclastitas, de edad Neogeno y depósitos sedimentarios aluviales del piedemonte, arena, arcilla
y limo.
228
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
Fisiografía y principales ambientes acuáticos
Relieve montañoso estructural denudativo, quebrado y
abrupto, con divisorias estrechas, laderas subramiicadas
y piedemonte coluvio aluvial y pequeños valles aluviales.
Ríos de aguas claras con importante presencia de macróitas.
Fisiografía y principales ambientes acuáticos
Piedemonte tectonizado, con relieve colinoso y altiplanos
estructurales. Presencia de ríos de aguas blancas con gran
contenido de sedimentos.
V2. Complejo de aluentes de los ríos de la parte alta del
Inírida y el área entre los ríos Vichada y Guaviare
Límites, red de drenaje y cotas de altura
Bosques densos de tierras bajas en transición con los bosques húmedos de la cuenca del Amazonas, entre los ríos
Vichada, Guaviare e Inírida.
ESTADO DEL CONOCIMIENTO
En la cuenca del Orinoco se han realizado estudios de alcance muy amplio, que se han divulgado a través de numerosas revistas cientíicas o libros. Trabajos sobre diversidad,
ecología, reproducción y desarrollo, salud y factores que
afectan la dinámica de poblaciones, pesquerías, conservación y uso sostenible, forman parte del acervo histórico que poseemos (ver entre otros Machado-Allison 2006).
Siguiendo la metodología propuesta, el equipo produjo la
información que se muestra a continuación. En esta se destaca una cierta heterogeneidad en cuanto a la información
disponible en las diferentes cuencas. En el apartado anterior ya se citaron las referencias bibliograicas más relevantes sobres prospecciones ictiológicas en el área.
Tipos de aguas
Negras, claras y blancas provenientes del piedemonte andino.
Geología
Areniscas de color blanco, rojo y violeta, pertenecientes al
Terciario arenoso de la Amazonía. Sedimentación asociada
al Mioceno tardío hasta el Plioceno, por acción de ríos provenientes del Escudo Guayanés.
Fisiografía y principales ambientes acuáticos
Supericies pleniplanizadas (ligeramente onduladas, extensas y homogéneas), con presencia moderada de lomas
largas subredondeadas de cimas medias (IGAC 1999). Recientemente Miller et al. (2009) realizaron un muestreo
preliminar de los peces del río Papunahua (cuenca alta del
río Inírida) y registraron 86 especies de las cuales 32 eran
nuevos registros para la cuenca Inírida elevando su riqueza
a 312 especies. Entre las especies registradas se encuentran
dos en peligro (Pseudoplatystoma orinocoense y Zungaro
zungaro) y 12 especies migratorias registradas para Colombia por Usma et al. (2009b).
Esfuerzo de muestreo
Con respecto a este parámetro el resultado de la consulta y la documentación disponible indican que existen tres
grupos de cuencas (Figura 7.5). Las cuencas se enumeran
desde p1 hasta p28:
a. Cuencas con valores medios a altos (valores 3 a 4):
cuencas de los ríos Apure (p1), Meta (p2), Cinaruco
(p5), Inírida (bajo) (p10-1), Cataniapo (p15), Caura
(p19), Caroní (p21), Delta del Orinoco (p22), Morichal
Largo (p23), Caris (p24), Pao (p25), Zuata (p26), Manapire (p27) y Aguaro-Guariquito (p28).
b. Cuencas con valores bajos (valor 2): cuencas de los ríos
Arauca (p3), Capanaparo (p4), Tomo (p7), Guaviare
(p9), Atabapo (p11), Ventuari (p13), Suapure (p17) y
Aro (p20).
c. Cuencas con valores muy bajos (valor 1): cuencas de
los ríos Bita (p6), Vichada (p8), Inírida (alto) (p10-2),
alto Orinoco (p12), Sipapo-Cuao (p14), Parguaza (p16)
y Cuchivero (p18).
V3. Serranía y piedemonte de La Macarena
Límites, red de drenaje y cotas de altura
Área que comprende la serranía de La Macarena y zonas
aledañas desde los 300 a los 2.800 m.s.n.m.; incluye las
cuencas de los ríos Guayabero, Lozada, Santo Domingo y
Duda.
Tipos de aguas
Claras.
Geología
Comprende rocas metamóricas (facies granulito y anibolita) del macizo de Garzón y el Precámbrico de La Macarena. Rocas sedimentarias del Terciario pertenecientes a la
formación Pebas de composición lutítica acumuladas por el
bloqueo del drenaje proveniente del escudo y por el levantamiento de los Andes.
Como conclusión de este apartado, se observa que hay un
gran número de subcuencas que están mediana o altamente
muestreadas y con colecciones depositadas en varios museos públicos y privados que lo respalden. Sin embargo, se
recomienda la necesidad de realizar esfuerzos prioritarios
229
PECES
O. Lasso-Alcalá.
Figura 7.5 Esfuerzo de muestreo: peces.
en aquellos sistemas con valores bajos y muy bajos, para
tener un mayor conocimiento de la ictiofauna presente en
esas subcuencas del río Orinoco.
Bita (p6), Vichada (p8), Inírida (alto) (p10-2), Alto Orinoco (p12), Sipapo-Cuao (p14), Parguaza (p16) y Cuchivero
(p18), Pao (p25) y Zuata (p26), muestran valores muy bajos
(1).
Nivel de conocimiento
Este parámetro está asociado al anterior dado que se supone que a mayor esfuerzo se debe tener un mayor conocimiento. Sin embargo, esto no es necesariamente correcto ya
que puede haber sistemas con un alto esfuerzo de muestreo,
pero con poco trabajo desarrollado en las colecciones o viceversa. Se reconocen los siguientes grupos (Figura 7.6):
Al igual que el parámetro anterior, existe buen conocimiento en más del 50% de las subcuencas. Esfuerzos son necesarios en aquellos sistemas en los cuales se determinó que
el nivel de conocimiento es bajo o muy bajo. Estos están
localizados principalmente en el Escudo de Guayana y sur
de Colombia y Venezuela.
Cuencas con medio a alto esfuerzo de muestreo (valores 3
a 4): cuencas de los ríos Apure (p1), Meta (p2), Cinaruco
(p5), Inírida (bajo) (p10-1), Cataniapo (p15), Caura (p19),
Aro (p20), Caroní (p21), delta del Orinoco (p22) y AguaroGuariquito (p28).
Vacíos de información
Las cuencas de los ríos Arauca (p3), Capanaparo (p4),
Tomo (p7), Guaviare (p9), Atabapo (p11), Ventuari (p13),
Suapure (p17), Morichal Largo (p23), Caris (p24), Manapire (p27), muestran valores bajos (2) de conocimiento.
Los ríos Apure (p1), Cataniapo (p15), Caura (p19) y Aguaro-Guariquito (p28) mostraron valores muy bajos de vacíos
de información. A pesar de este resultado debemos indicar
que existe todavía mucha información necesaria principal-
Este aspecto incluye además de la información taxonómica, la información bio-ecológica de los componentes de la
ictiofauna en las subcuencas y su manejo (pesquerías). Se
reconocen cuatro grupos (Figura 7.7).
230
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
Figura 7.6 Nivel de conocimiento: peces.
Figura 7.7 Vacíos de información: peces.
231
PECES
O. Lasso-Alcalá.
mente referente a la dinámica de las comunidades, historias
de vida de las especies, enfermedades y otros aspectos que
deinirían la salud del sistema en forma integral Ejemplos
de trabajos realizados en estos ecosistemas se encuentran:
Lasso (2004), Machado-Allison (1990, 1992, 1994, 2005),
Winemiller (1989b, 1990) (dinámica ecológica, comunidades, historias de vida, relaciones tróicas, impactos en
la cuenca del Apure); Andrade y Machado-Allison (2009),
Machado-Allison et al. (1993b) (estructura, hábitos alimentarios, diversidad en peces del Aguaro-Guariquito);
Nakamura (2000), Machado-Allison et al. (1999, 2002),
Lasso et al. (2003b) (diversidad, estructura, hábitos y conservación en peces del río Caura).
Las cuencas de los ríos Meta (p2), Arauca (p.3), Capanaparo (p4), Cinaruco (p5), Bita (p6), Tomo (p7), Vichada
(p8), Inírida (alto) (p10-2), Inírida (bajo) (p10-1), Atabapo
(p11), Alto Orinoco (p12), Ventuari (p13), Sipapo-Cuao
(p14), Cataniapo (p15), Parguaza (p16), Suapure (p17),
Cuchivero (p18), Aro (p20), Caroní (p21), Morichal Largo (p23), Pao (p25) y Zuata (p26), indican niveles de vacío
medio a alto (valores 3 a 4). Esto indica que hay que hacer
esfuerzos enormes por estudiar estos sistemas y conocer
ecológicamente el comportamiento de los mismos. Sin embargo, hay cierta información producida que podría servir
de guía para futuras investigaciones como por ejemplo: el
inventario de peces en el río Atabapo (Royero et al. 1992),
los peces y crustáceos del Ventuari y alto Orinoco (Lasso
et al. 2006), río Ventuari (Montaña et al. 2006), peces del
río Morichal Largo (Antonio 1989, Antonio y Lasso 2003).
El delta del Orinoco (p22), ríos Caris (p24) y Manapire
(p27), muestran vacíos de información bajos principalmente debido a la falta de conocimiento ecológico. Los
trabajos realizados están dirigidos principalmente hacia la
determinación del valor de la biodiversidad, conservación
y el uso por comunidades indígenas (Ponte et al. 1999, Ortaz et al. 2007, Lasso et al. 2004a-b, 2008).
En la Tabla 7.2 se listan los valores de esfuerzo de muestreo,
nivel de conocimiento y vacíos de información para las diferentes subcuencas/subregiones.
Tabla 7.2 Valores de esfuerzo de muestreo, nivel de conocimiento y vacíos de información para las diferentes subcuencas/subregiones de la cuenca Orinoco.
Código subregión
Subcuencas
Esfuerzo de
muestreo
Nivel de
conocimiento
Vacíos de
información
p1
Apure
4
4
1
p2
Meta
3
3
3
p3
Arauca
2
2
4
p4
Capanaparo
2
2
4
p5
Cinaruco
3
3
3
p6
Bita
1
1
4
p7
Tomo
2
2
4
p8
Vichada
1
1
4
p9
Guaviare
2
2
4
p10-1
Inírida - Baja
3
3
3
p10-2
Inírida - Alta
1
1
4
p11
Atabapo
2
2
4
p12
Alto Orinoco
1
1
4
p13
Ventuari
2
2
3
p14
Sipapo-Cuao
1
1
4
p15
Cataniapo
4
4
1
p16
Parguaza
1
1
4
p17
Suapure
2
2
3
p18
Cuchivero
1
1
4
232
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
Código subregión
Subcuencas
Esfuerzo de
muestreo
Nivel de
conocimiento
Vacíos de
información
p19
Caura
4
3
1
p20
Aro
2
3
3
p21
Caroní
3
3
3
p22
Delta Orinoco
3
3
2
p23
Morichal Largo
4
2
3
p24
Caris
4
2
2
p25
Pao
3
1
4
p26
Zuata
3
1
4
p27
Manapire
4
2
2
p28
Aguaro-Guariquito
4
3
1
BIODIVERSIDAD
de especies con valor de uso (consumo y ornamental). Los
valores determinados y los umbrales de clasiicación se encuentran resumidos en la Tabla 7.3. Debeindicarse que la
aproximación ha sido modesta al objeto de no sobreestimar
los parámetros evaluados. La Tabla 7.4 muestra los resultados del ejercicio.
Diferentes aspectos se estudiaron bajo este apartado. Entre estos se encuentran la riqueza de especies, número de
endemismos, número de especies amenazadas, número
Tabla 7.3 Umbral de clasiicación e intervalo del número de especies para cada uno de los parámetros identiicados a nivel de biodiversidad de la cuenca Orinoco.
Umbral de caliicación
Número de especies
Alto
>300
Medio
200 - 300
Bajo
100 - 200
Muy bajo
<100
Umbral de caliicación
Número de especies
Alto
>15
Medio
10 - 15
Bajo
5 - 10
Muy bajo
<5
Umbral de caliicación
Número de especies
Alto
>10
Medio
7 - 10
Bajo
3-6
Muy bajo
<3
Riqueza
Número de endemismos
Número de especies amenazadas
233
PECES
O. Lasso-Alcalá.
Umbral de caliicación
Número de especies
Alto
>100
Medio
50 - 99
Bajo
25 - 49
Muy bajo
<25
Especies con valor de uso
Tabla 7.4 Valores de riqueza, endemismos, especies amenazadas, especies con valor de uso y procesos ecológicos de las diferentes
subcuencas/subregiones de la cuenca Orinoco.
Código subregión
Subcuenca
Riqueza
Endemismo
Especies
amenazadas
Especies con
valor de uso
Procesos
ecológicos
p1
Apure
4
3
4
4
3
p2
Meta
4
3
4
4
3
p3
Arauca
2
2
4
2
3
p4
Capanaparo
3
1
1
1
2
p5
Cinaruco
3
1
2
2
2
p6
Bita
2
1
1
2
2
p7
Tomo
3
1
1
1
1
p8
Vichada
1
1
1
1
1
p9
Guaviare
3
3
4
3
4
p10-1
Inírida - Baja
3
2
1
3
3
p10-2
Inírida - Alta
3
2
1
3
3
p11
Atabapo
3
1
1
1
1
p12
Alto Orinoco
3
2
2
3
2
p13
Ventuari
4
2
3
4
4
p14
Sipapo -Cuao
1
1
2
1
1
p15
Cataniapo
2
1
2
1
1
2
1
2
1
1
4
2
4
3
4
p16
Parguaza
p17
Suapure
p18
Cuchivero
p19
Caura
p20
Aro
2
1
1
1
1
p21
Caroní
3
4
2
1
2
p22
Delta Orinoco
4
1
2
4
4
p23
Morichal Largo
2
1
1
2
2
p24
Caris
1
1
1
2
1
p25
Pao
1
1
p26
Zuata
1
1
1
1
1
1
p27
Manapire
2
1
1
1
1
p28
Aguaro-Guariquito
4
1
2
3
3
234
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
Riqueza de especies
a. Cuencas de los ríos Apure (p1), Meta (p2), Capanaparo
(p4), Cinaruco (p5), Tomo (p7), Guaviare (p9), Inírida
(bajo) (p10-1), Inírida (alto) (p10-2), Atabapo (p11),
Alto Orinoco (p12), Ventuari (p13), Caura (p19), Caroní (p21), delta del Orinoco (p22), Aguaro-Guariquito
(p28). Todas con una valor medio a alto de riqueza de
Con respecto a los valores obtenidos para este parámetro
como resultado de la consulta y la documentación disponible, se pueden clasiicar las regiones en tres grupos. Para
ello se partió del listado de Lasso et al. (2004a), el cual fue
actualizado (Figura 7.8).
Figura 7.8 Riqueza de especies: peces.
Endemismos
especies (valores 3 a 4) y más de 200 especies reconocidas en cada una de ellas.
Con relación a los valores obtenidos para este parámetro
como resultado de la consulta y la documentación disponible podemos clasiicar las regiones en tres grupos (Figura
7.9).
b. Cuencas de los ríos Arauca (p3), Bita (p6), Cataniapo
(p15), Suapure (p17), Aro (p20), Morichal Largo (p23),
Manapire (p27). Todas con valores bajos de riqueza (2)
y con 100 a 200 especies reconocidas.
a. Cuencas de los ríos Apure (p1), Meta (p2), Guaviare
(p9), Caroní (p21), indican un nivel medio a alto de
endemismos (valores 3 a 4). Con 10 ó más especies endémicas reconocidas.
c. Cuencas de los ríos Vichada (p8), Sipapo-Cuao (p14),
Caris (p24), Pao (p25). Con una riqueza relativamente
muy baja (1) (menos de 100 especies registradas).
b. Cuencas de los ríos Arauca (p3), Inírida (bajo) (p101), Inírida (alto) (p10-2), alto Orinoco (p12), Ventuari
(p13) y Caura (p19), indican valores bajos de endemismos (2). Con 5 a 10 especies endémicas reconocidas.
Para los ríos Parguaza (p16), Cuchivero (p18) y Zuata
(p26), no se pudieron obtener valores coniables.
235
PECES
O. Lasso-Alcalá.
Figura 7.9 Endemismos: peces.
c. Cuencas de los ríos Capanaparo (p4), Cinaruco (p5),
Bita (p6), Tomo (p7), Vichada (p8), Atabapo (p11), Sipapo-Cuao (p14), Cataniapo (p15), Suapure (p17), Aro
(p20), delta del Orinoco (p22), Morichal Largo (p23),
Caris (p24), Pao (p25), Manapire (p27) y Aguaro-Guariquito (p28). Todas muestran pocos endemismos, con
menos de cinco especies registradas bajo esta categoría.
subcuencas. La Orinoquia colombiana es la segunda región
con mayor riqueza de peces en Colombia (658 especies);
es decir, que cerca del 46% de las 1.435 especies dulceacuícolas de Colombia se distribuyen en esta área. De este total, 56 son especies endémicas (Maldonado-Ocampo et al.
2008). Para toda la cuenca se reconocen hasta el momento
181 especies endémicas (Lasso datos no publicados), con
patrones de distribución muy interesantes y precisos en algunos casos a nivel de subcuencas y en otros restringidos a
las cabeceras de los aluentes.
Para los ríos Parguaza (p16), Cuchivero (p18) y Zuata (p26),
no hay información. En la Tabla 7.5 se lista las especies
de peces endémicas de la Orinoquía y su distribución por
236
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
Tabla 7.5 Lista de las especies de peces endémicas de la Orinoquía y su distribución por subcuencas (basado en Lasso, datos no
publicados).
Especie
Autor y año
Subcuencas
Orden Characiformes
Familia Anostomidae
Anostomus ternetzi
Fernández-Yépez, 1950
Orinoco
Leporinus boehlkei
Garavello, 1988
Meta
Leporinus orthomaculatus
Garavello, 2000
Alto Orinoco y Caura
Pseudanos winterbottomi
Sidlauskas y Menedes Dos Santos,
2008
Casiquiare, Mavaca, Ventuari, Atabapo, Cinaruco y Capanaparo
Schizodon scotorhabdotus
Sidlauskas, Garavello y Sellen, 2007
Meta, Arauca, Apure, Guaviare, Alto Orinoco, Capanaparo, Caura
y Caroní
Apareiodon gransabana
Starnes y Schindler, 1993
Caroní
Apareiodon orinocensis
Bonilla, Machado-Allison, et al., 1999
Caura
Bryconamericus cristiani
Roman-Valencia, 1999
Meta
Bryconamericus loisae
Géry 1964
Meta
Bryconamericus singularis
Román-Valencia, Taphorn y Ruiz 2008
Cinaruco
Brycon polylepis
Moscó 1988
Cataniapo
Bryconops colanegra
Chernof y Machado-Allison 1999
Caroní
Bryconops collettei
Chernof y Machado-Allison 2005
Caura
Bryconops giacopinni
(Fernández-Yépez, 1950)
Alto Orinoco
Bryconops humeralis
Machado-Allison, Chernof y Buckup,
1996
Alto Orinoco
Bryconops imitator
Chernof, Machado-Allison et al, 2002
Caura
Bryconops magoi
Chernof y Machado-Allison 2005
Orinoco
Bryconops disruptus
Machado-Allison y Chernof, 1997
Río Negro
Bryconops vibex
Machado-Allison, Chernof y Buckup,
1996
Alto Orinoco
Ceratobranchia joanae
Chernof y Machado-Allison, 1990
Orinoco
Creagrutus atratus
Vari y Harold 2001
Meta
Creagrutus calai
Vari y Harold 2001
Meta
Creagrutus veruina
Vari y Harold 2001
Cataniapo
Creagrutus xiphos
Vari y Harold 2002
Caura
Charax metae
Eigenmann, 1922
Meta y Arauca
Familia Parodontidae
Familia Characidae
237
PECES
O. Lasso-Alcalá.
Especie
Autor y año
Subcuencas
Hemigrammus taphorni
Benine y Lopes 2007
Caura
Hyphessobrycon
albolineatum
Fernández-Yépez 1951
Caroní
Hyphessobrycon diancistrus
Weitzman 1977
Cataniapo
Hyphessobrycon hildae
Fernández-Yépez 1950
Caroní
Meta
Hyphessobrycon saizi
Moenkhausia eigenmanni
Géry 1964
Meta y Arauca
Moenkhausia metae
Eigenmann, 1922
Meta, Arauca y Cataniapo
Ptychocharax rhyacophila
Weitzman, Fink, Machado-Allison y
Royero 1994
Casiquiare
Meta
Schultzites axelrodi
Vari, 1986
Río Negro
Vari, Castro y
Rarendon, 1995
Orinoco
Amnocryptocharax elegans
Weitzman y
Kanazawa, 1976
Orinoco
Amnocryptocharax minutus
Buckup, 1993
Orinoco
Elacocharax pulcher
Myers, 1927
Orinoco
Melanocharacidium
dispiloma
Buckup, 1993
Caura
Melanocharacidium
pectorale
Buckup, 1993
Caura
Vari, 1995
Orinoco
Curimata cerasina
Vari
Orinoco
Curimata incompta
Vari, 1984
Orinoco
Curimatella inmmaculata
Fernández-Yépez
Orinoco
Cyphocharax festivus
Vari, 1992
Orinoco
Cyphocharax oenas
Vari, 1992
Orinoco
Steindachnerina pupula
Vari, 1991
Orinoco
Toledo-Piza, Menezes y Santos, 1999
Orinoco
Serrabrycon magoi
Familia Chilodontidae
Caenotropus
mestomorgmatus
Familia Crenuchidae
Familia Ctenolucidae
Boulengerella xyrekes
Familia Curimatidae
Familia Cynodontidae
Hydrolicus tatauaia
238
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
Especie
Autor y año
Subcuencas
Familia Serrasalmidae
Prystobrycon calmoni
(Steindachner, 1908)
Orinoco
Prystobrycon careospinus
Fink y Machado-Allison, 1992
Atabapo
Prystobrycon maculipinnis
Fink y Machado-Allison, 1992
Casiquiare
Pygocentrus cariba
(Humboldt, 1821)
Orinoco
Serrasalmus altuvei
Ramírez, 1965
Orinoco
Serrasalmus irritans
Peters, 1877
Orinoco
Serrasalmus medinai
Ramírez, 1965
Orinoco
Lebiasina provenzanoi
Ardila 1999
Caroní
Lebiasina taphorni
Ardila 2004
Caura
Lebiasina uruyensis
Fernández-Yépez 1967
Caroní
Lebiasina yuruaniensis
Ardila 2000
Caroní
Prochilodus mariae
Eigenmann, 1922
Orinoco
Semaprochilodus laticeps
(Steindachner, 1879)
Orinoco
Acanthobunocephalus nicoi
Friel 2005
Casiquiare y Siapa
Pseudobunocephalus lundbergi
Friel 2008
Caura
Entomocorus gameroi
Mago-Leccia, 1983
Orinoco
Tatia musaica
Royero, 1992
Orinoco
Denticetopsis royeroi
Ferraris 1996
Río Negro
Denticetopsis sauli
Ferraris 1997
Río Negro
Denticetopsis praecox
(Ferraris y Brown 1991)
Río Negro
Helogenes uruyensis
Fernández-Yépez 1967
Caroní
Ituglanis guayaberensis
(Dahl 1960)
Guaviare
Ituglanis metae
(Eigenmann 1917)
Meta y Guaviare
Schultzichthys gracilis
Dahl 1960
Guaviare
Trichomycterus migrans
(Dahl 1960)
Guaviare
Familia Lebiasinidae
Familia Prochilodontidae
Orden Siluriformes
Familia Aspredinidae
Familia Auchenipteridae
Familia Cetopsidae
Familia Trichomycteridae
239
PECES
O. Lasso-Alcalá.
Especie
Autor y año
Subcuencas
Trichomycterus celsae
Lasso y Provenzano 2002
Caroní
Trichomycterus dorsostriatus
(Eigenmann 1917)
Meta
Trichomycterus lewi
Lasso y Provenzano 2002
Caroní
Trichomycterus venulosus
(Steindachner 1915)
Alto Orinoco
Orinocodoras eigenmanni
Myers, 1927
Orinoco
Pterodoras angeli
Fernández-Yépez
Orinoco
Rhinodoras gallagheri
Sabaj, Taphorn y Castillo 2008
Capanaparo
Castro 1987
Meta
Acestridium colombiensis
Retzer 2005
Guaviare
Acestridium dichromum
Retzer, Nico y
Provenzano 1999
Sipapo
Apistoloricaria listrorhinos
Nijssen y Isbrücker 1988
Meta
Cordylancistrus torbesensis
(Schultz 1944)
Apure
Chaetostoma vasquezi
Lasso y Provenzano 1997
Caura y Caroní
Dekeyseria niveata
(La Monte 1929)
Alto Orinoco
Dolichancistrus fuesslii
(Steindachner, 1911)
Alto Orinoco
Dolichancistrus pediculatus
(Eigenmann, 1918)
Meta y Guaviare
Exastilithoxus imbriatus
(Steindchaner 1915)
Caroní
Farlowella colombiensis
Retzer y Page 1997
Meta
Harttia merevari
Provenzano R., Machado-Allison,
Chernof, Willink y Petry, 2005
Caura
Hypancistrus contradens
Armbruster, Lujan y Taphorn 2007
Ventuari
Hypancistrus debilittera
Armbruster, Lujan y Taphorn 2007
Atabapo
Hypancistrus furunculus
Armbruster, Lujan y Taphorn 2007
Ventuari y Atabapo
Hypancistrus lunaorum
Armbruster, Lujan y Taphorn 2007
Ventuari
Hypostomus hemicochliodon
Armbruster 2003
Río Negro, Casiquiare, Siapa, Alto Orinoco y Cataniapo
Hypostomus rhantos
Armbruster, Tansey y Lujan 2007
Casiquiare, Alto Orinoco y Ventuari
Hypostomus sculpodon
Armbruster 2003
Río Negro, Casiquiare y Atabapo
Lasiancistrus schomburgkii
(Günther 1864)
Mavaca
Lasiancistrus tentaculatus
Armbruster 2005
Mavaca, Cinacuro y Caura
Familia Doradidae
Familia Callichthyidae
Corydoras esperanzae
Familia Loricariidae
240
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
Especie
Autor y año
Subcuencas
Lithogenes wahari
Schaefer y
Provenzano 2008
Cuao
Lithoxus jantjae
Lujan 2008
Ventuari
Neblinichthys pilosus
Ferraris, Isbrücker y Nijssen 1986
Río Negro
Neblinichthys roraima
Provenzano, Lasso y Ponte 1995
Caroní
Parotocinclus polyochrus
Schaefer y
Provenzano 1988
Casiquiare
Pseudancistrus coquenani
(Steindachner 1915)
Caroní
Pseudancistrus orinoco
(Isbrücker, Nijssen y Cala 1988)
Orinoco
Pseudancistrus pectegenitor
Lujan, Armbruster y Sabaj 2007
Casiquiare, Alto Orinoco, Mavaca y Ventuari
Pseudancistrus reus
Armbruster y
Taphorn 2008
Caroní
Pseudancistrus sidereus
Armbruster 2004
Río Negro, Casiquiare y Siapa
Pseudancistrus yekuana
Lujan, Armbruster y Sabaj 2007
Ventuari
Pseudolithoxus nicoi
(Armsbruster y
Provenzano 2000)
Río Negro y Casiquiare
Brachyglanis magoi
Fernández-Yépez 1967
Caroní
Chasmocranus chimantanus
Inger 1956
Caroní
Chasmocranus rosae
Eigenmann, 1922
Meta, Apure y Cinacuro
Imparinis microps
Eigenmann y Fisher 1916
Meta
Nemuroglanis mariai
(Schultz 1944)
Meta y Guaviare
Phenacorhamdia macarenensis
Dahl 1961
Guaviare
Pimelodella igueroai
Dahl 1961
Guaviare
Pimelodella metae
Eigenmann 1917
Meta
Pimelodella pallida
Dahl 1961
Guaviare
Pimelodella provenzanoi
DoNascimiento y Milani 2008
Alto Orinoco, Cinacuro y Caura
Megalonema orixanthum
Lundberg y Dahdul 2008
Casiquiare y Alto Orinoco
Pimelodus garciabarrigai
Dahl 1961
Guaviare
Pseudoplatystoma metaense
Buitrago-Suárez y Burr 2007
Orinoco
Pseudoplatystoma
orinocoense
Buitrago-Suárez y Burr 2007
Orinoco
Kner 1858
Meta, Arauca, Apure y Caura
Familia Heptapteridae
Familia Pimelodidae
Familia Auchenipteridae
Centromochlus megalops
241
PECES
O. Lasso-Alcalá.
Especie
Autor y año
Subcuencas
Pseudepapterus gracilis
Ferraris y Vari 2000
Caura
Tetranematichthys wallacei
Vari y Ferraris 2006
Capanaparo y Caura
Adontosternarchus devenanzi
Mago-Leccia, Lundberg y Baskin,
1985
Apure y Orinoco
Apteronotus apurensis
Fernández-Yépez, 1968
Apure
Apteronotus galvisi
de Santana, Maldonado-Ocampo y
Crampton 2007
Meta
Apteronotus macrostomus
(Fowler 1943)
Meta
Compsaraia compsus
(Mago-Leccia, 1994)
Meta, Apure, Río Negro y Orinoco
Sternarchella orthos
Mago-Leccia, 1994
Orinoco
Sternarchorhynchus gnomus
de Santana y Taphorn 2006
Caroní
Sternarchorhynchus marreroi
de Santana y Vari, 2010
Orinoco
Sternarchorhynchus roseni
Mago-Leccia, 1994
Orinoco
Sternarchorhynchus yepezi
de Santana y Vari, 2010
Orinoco
Rhabdolichops caviceps
(Fernández-Yépez, 1968)
Orinoco
Rhabdolichops eastwardi
Lundberg y Mago-Leccia, 1986
Orinoco
Rhabdolichops electrogramus
Lundberg y Mago-Leccia, 1986
Orinoco
Rhabdolichops zareti
Lundberg y Mago-Leccia, 1986
Orinoco
Gymnotus pedanopterus
Mago-Leccia, 1994
Alto Orinoco
Gymnotus stenoleucus
Mago-Leccia, 1994
Alto Orinoco y Caroní
Brachyhypopomus diazi
Fernández-Yépez, 1972
Orinoco
Hypoygus neblinae
Mago-Leccia, 1994
Alto Orinoco
Microsternarchus bilineatus
Fernández-Yépez, 1968
Orinoco
Steatogenys duidae
(La Monte, 1929)
Alto Orinoco
Rivulus altivelis
Huber 1992
Guaviare
Rivulus caurae
Radda 2004
Caura
Rivulus corpulentus
homerson y Taphorn 1993
Meta y Guaviare
Orden Gymnotiformes
Familia Apteronotidae
Familia Eigenmanniidae
Familia Gymnotidae
Familia Hypopomidae
Orden Cyprinodontiformes
Familia Rivulidae
242
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
Especie
Autor y año
Subcuencas
Rivulus gransabanae
Lasso, Taphorn y homerson 1992
Caroní
Rivulus lyricauda
homerson, Berkenkamp y Taphorn
1991
Caroní
Rivulus sape
Lasso-Alcalá, Taphorn, Lasso y LeónMata 2006
Caroní
Rivulus tessellatus
Huber, 1992
Meta
Aequidens chimantanus
Inger 1956
Caura
Apistogramma alacrina
Kullander 2004
Guaviare
Apistogramma iniridae
Kullander 1979
Atabapo
Apistogramma viejita
Kullander 1979
Meta
Biotecus dicentrarchus
Kullander 1989
Orinoco
Biotodoma wavrini
(Gosse, 1983)
Casiquiare y Atabapo
Cichla intermedia
Machado-Allison, 1973
Río Negro, Siapa, Cinaruco, Capanaparo y Caura
Cichla nigromaculata
Jardine, 1843
Río Negro, Casiquiare y Alto Orinoco
Cichla orinocensis
Humboldt, 1821
Orinoco
Cichlasoma orinocense
Kullander, 1983
Orinoco
Crenicichla zebrina
Montaña, López-Fenández y Taphorn
2008
Ventuari
Dicrossus gladicauda
Schindler y Staeck 2008
Atabapo
Geophagus gottwaldi
Schindler y Staeck 2006
Alto Orinoco, Atabapo y Sipapo
Geophagus grammepareius
Kullander, Royero y Taphorn, 1992
Caroní
Geophagus taeniopareius
Kullander, Royero y Taphorn, 1992
Alto Orinoco
Guianacara stergiosi
López-Fernández, Taphorn y Kullander 2006
Caroní
Laetacara fulvipinnis
Staeck y Schindler 2007
Río Negro, Casiquiare, Alto Orinoco y Ventuari
Mesonauta egregius
Kullander y Silfvergrip 1991
Meta. Arauca. Apure, Bita, Guaviare, Ventuari, Cinaruco, Capanaparo, Caura y Caroní
Mikrogeophagus ramirezi
(Myers y Harry, 1948)
Meta, Arauca y Apure
Pterophyllum altum
Heckel, 1840
Alto Orinoco y Atabapo
Uaru fernandezyepezi
Stawikowski, 1990
Atabapo
Achirus novoae
Cervigón 1982
Orinoco
Apionichthys sauli
Ramos 2003
Meta
Orden Perciformes
Familia Cichlidae
Orden Pleuronectiformes
Familia Achiridae
243
PECES
O. Lasso-Alcalá.
Especies amenazadas
bución por subcuencas. Para Colombia 12 especies tienen
algún grado de amenaza: una en peligro crítico, siete en
peligro, tres vulnerables y una casi amenazada (Mojica et
al. 2002). Para Venezuela se listan 16 especies donde sólo
tres son vulnerables, diez están casi amenazadas, dos en
preocupación menor y una con datos insuicientes (Lasso
2008).
En este caso también se clasiicaron las regiones en tres grupos (Figura 7.10).
a. Cuencas de los ríos Apure (p1), Meta (p2), Arauca (p3),
Guaviare (p9), Ventuari (p13) y Caura (p19), indican
un valor medio a alto de especies amenazadas (valores
3 a 4). Con 10 o más especies amenazadas reconocidas.
b. Cuencas de los ríos Cinaruco (p5), alto Orinoco (p12),
Sipapo-Cuao (p14), Cataniapo (p15), Suapure (p17),
delta del Orinoco (p22), Caroní (p21) y Aguaro-Guariquito (p28), indican valores bajos de categorías de especies en amenaza (2). Con 5 a 10 especies reconocidas.
c. Cuencas de los ríos Capanaparo (p4), Bita (p6), Tomo
(p7), Vichada (p8), Inírida (bajo) (p10-1), Inírida (alto)
(p10-2), Atabapo (p11), Aro (p20), Morichal Largo
(p23), Caris (p24), Pao (p25), Zuata (p26) y Manapire
(p27), muestran muy pocas especies amenazadas (con
menos de cinco registradas).
Especies con valor de uso
Con respecto a los valores de uso, obtenidos para los peces
de consumo y ornamentales, se pueden clasiicar las regiones en cuatro grupos (Figura 7.11).
a. Cuencas de los ríos Apure (p1), Meta (p2), Ventuari
(p13) y delta del Orinoco (p22), que indican un valor
alto de especies utilizadas por las comunidades (autoconsumo) o con valor comercial u ornamental (valor
4). Incluye 100 o más especies reconocidas.
b. Cuencas de los ríos Guaviare (p9), Inírida (bajo) (p101), Inírida (alto) (p10-2), alto Orinoco (p12), Caura
(p19) y Aguaro-Guariquito (p28), indican valores medios (3). Con 50 a 100 especies reconocidas.
Para los ríos Parguaza (p16), Cuchivero (p18) no se pudieron obtener valores coniables. En la Tabla 7.6 se lista las
especies de peces amenazadas de la Orinoquía y su distri-
Figura 7.10 Especies amenazadas: peces.
244
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
Tabla 7.6 Lista las especies de peces amenazadas de la Orinoquía y su distribución por subcuencas. Fuente: Lasso (2008), Mojica et
al. (2002)
Nombre Común
Nombre cientíico
Categoría
Colombia
Venezuela
Cuencas
Arawana azul, Arawana,
Aroana
Osteoglossum ferreirai
En peligro
Cachama negra, cherna,
cachama
Colossoma macropomun
Casi
amenazada
Surapire
Mylesinus schomburgki
Palometa
Mylossoma aureum
Morocoto
Piaractus brachypomus
Valentón, plumita
Brachyplatystoma ilamentosum
En peligro
(A1d, A2d)
Dorado
Brachyplatystoma lavicansº
En peligro
Apuy, rayado, camiseta,
bagre cunagüaro
Brachyplatystoma juruense
Vulnerable
(A1d, A2d)
Bagre dorado
Brachyplatystoma rousseauxi
Valentón, capaz, pujón,
bagre atero
Brachyplatystoma vaillanti
En peligro
(A1d, A2d)
Baboso
Goslinia platynema^
En peligro
Inírida, Guaviare, Vichada, Meta, Arauca, Orinoco
Jau, toro, toruno, tijereta
Paulicea luetkeniº
En peligro
Inírida, Guaviare, Vichada, Meta, Arauca, Orinoco
Cajaro
Phractocephalus hemiliopterus
Tigre, rayado, pintadillo rayado, pintado, bagre rayado
del Cuyuní
Pseudoplatystoma fasciatum*
Bagre rayao del Orinoco
Pseudoplatystoma metaense
Pintadillo tigre
Pseudoplatystoma tigrinum*
Vichada, Tomo, Orinoco
Casi amenazada
Preocupación
menor
En peligro crítico CR (A1d)
Regional - En
Peligro EN
(A1d, A2d)
Nacional
En peligro
245
Ventuari, Inírida, Guaviare, Tomo,
Cataniapo, Meta, Arauca, Caura, Caroní,
Orinoco
Alto Orinoco, Casiquiare, Ventuari,
Cataniapo, Suapure, Caroní
Datos insuicientes
Inírida, Tomo, Meta, Cinaruco, Caroní,
Orinoco
Casi amenazada
Ventuari, Guaviare, Sipapo, Tomo, Meta,
Cinaruco, Suapure, Caura, Aro, Caroni,
Delta (sur)
Casi amenazada
Alto Orinoco, Casiquiare, Ventuari, Inírida, Guaviare, Vichada, Meta, Arauca,
Caura, Orinoco
Inírida, Guaviare, Vichada, Meta, Arauca, Orinoco
Vulnerable A2d
Ventuari, Inírida, Guaviare, Vichada,
Meta, Arauca, Caura, Orinoco
Casi amenazada
Meta, Caura, Orinoco
Casi amenazada
Casiquiare, Inírida, Guaviare, Vichada,
Meta, Capanaparo, Arauca, Caura, Orinoco, Cuyuní
Casi amenazada
Casiquiare, Inírida, Guaviare, Tomo,
Meta, Río Negro, Cinaruco, Suapure,
Arauca, Caura, Cuyuní
Casi amenazada
Inírida, Guaviare, Vichada, Tomo, Meta,
Arauca, Orinoco, Cuyuní
Casi amenazada
Río Negro, Alto Orinoco, Casiquiare,
Ventuari, Atabapo, Sipapo, Cataniapo, Parguaza, Cinaruco, Capanaparo,
Suapure, Cuchivero, Caura, Aro, Caroní,
Delta (sur)
Inírida, Guaviare, Vichada, Meta, Arauca, Orinoco
PECES
O. Lasso-Alcalá.
Nombre Común
Nombre cientíico
Bagre rayao del Orinoco
Pseudoplatystoma orinocoense
Paletón
Categoría
Colombia
Venezuela
Casi amenazada
Sorubim lima
Vulnerable
Guerevere, bagre cabo de
hacha, cucharo, doncella
Sorubimichthys planiceps
Vulnerable
(A2d)
Amarillo
Zungaro zungaro
Escalar de Venezuela
Pterophyllum altum
Vulnerable A2d
Inírida, Guaviare, Vichada, Meta, Arauca, Caura, Caroní, Orinoco
Casi amenazada
Inírida, Guaviare, Vichada, Tomo, Meta,
Suapure, Arauca, Apure, Caura, Aro,
Caroní, Delta, Orinoco
NOTAS
* Incluye dos especies para Colombia: P. orinocoense y P. metaense (Buitrago-Suárez y Burr 2007).
º Nombre válido Zungaro zungaro.
^ Nombre válido Brachyplatystoma platynemum.
246
Río Negro, Alto Orinoco, Casiquiare,
Ventuari, Atabapo, Sipapo, Cataniapo,
Parguaza, Cinaruco, Capanaparo, Suapure, Cuchivero, Caura, Aro, Caroní, Delta
(sur), Cuyuní
Guaviare, Meta, Orinoco
Preocupación
menor
Figura 7.11 Valor de uso: peces.
Cuencas
Río Negro, Alto Orinoco, Casiquiare,
Ventuari, Atabapo
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
c. Cuencas de los ríos Arauca (p3), Cinaruco (p5), Bita
(p6), Morichal Largo (p23) y Caris (p24), con relativamente pocas especies con valor de uso (25-49).
d. Cuencas de los ríos Capanaparo (p4), Tomo (p7), Vichada (p8), Atabapo (p11), Sipapo-Cuao (p14), Cataniapo (p15), Suapure (p17), Aro (p20), Caroní (p21),
Pao(p25), Zuata(p26) y Manapire (p27) presentaron
valores muy bajos en especies utilizadas tanto desde el
punto de vista de consumo doméstico (autoconsumo),
comercial u ornamental, en comparación con el grupo
a, lo cual no signiica necesariamente que no sean de
gran importancia para las comunidades locales.
cies. Se pudieron clasiicar las regiones en cuatro grupos. Es
importante anotar que a pesar de que alguna cuenca tenga
valores bajos, todas las cuencas clasiicadas tienen al menos
un proceso ecológico importante (Figura 7.12).
a. Cuencas de los ríos Guaviare (p9), Ventuari (p13), Caura (p19) y delta del Orinoco (p22), que indican valores
altos para estos criterios (valor 4).
b. Cuencas de los ríos Apure (p1), Meta (p2), Arauca (p3),
Inírida (bajo) (p10-1), Inírida (alto) (p10-2) y AguaroGuariquito (p28), que indican valores medios (3).
c. Cuencas de los ríos Capanaparo (p4), Cinaruco (p5),
Bita (p6), alto Orinoco (p12), Caroní (p21) y Morichal
Largo (p23), muestran valores bajos (2).
d. Cuencas de los ríos Tomo (p7), Vichada (p8), Atabapo
(p11), Sipapo-Cuao (p14), Cataniapo (p15), Suapure
(p17), Aro (p20), Caris (p24), Pao (p25), Zuata (p26)
y Manapire (p27), que presentaron valores muy bajos
para estos criterios (1).
Para los ríos Parguaza (p16), Cuchivero (p18) no se obtuvo
información.
Procesos ecológicos
Bajo este criterio se contemplaron una serie de aspectos
de importancia biológica y ecológica como por ejemplo sitios de reproducción, crecimiento y desarrollo, fragilidad
del sistema; así como importancia en procesos evolutivos
o biogeográicos, rareza de grupos, comunidades o espe-
Para los ríos Parguaza (p16), Cuchivero (p18) no se pudieron obtener valores coniables.
Figura 7.12 Procesos ecológicos: peces.
247
PECES
O. Lasso-Alcalá.
NOMINACIÓN DE ÁREAS
IMPORTANTES PARA LA
CONSERVACIÓN DE LA
ICTIOFAUNA
Estrella Fluvial de Inírida (Colombia-Venezuela)
(p32)
De acuerdo a la sumatoria de los valores según los criterios
deinidos y valorados en los apartados anteriores (Tabla
7.7), se propusieron seis áreas importantes para la conservación de acuerdo al componente ictiológico. Estas están
enmarcadas en ocho subcuencas o subregiones: delta del
Orinoco, Caura, Ventuari, Inírida, Guaviare, Bita, Meta,
Apure (Figura 7.13). A continuación se describen cada una
de ellas.
Región sur del delta del Orinoco (p33)
Área que incluye las partes bajas de los ríos Guaviare, Inírida, Atabapo y Orinoco, incluyendo el bajo río Ventuari,
Orinoco y conluencia con el río Atabapo.
Área deltana desde el caño Acoima (límite sur de la reserva
de Biosfera Delta del Orinoco) al norte; océano Atlántico al
este; Serranía de Imataca al sur; conluencia del Río Grande
en el Orinoco, al oeste.
Río Bita (p34)
Corresponde a la cuenca del río Bita.
Alto río Meta (p29)
Situada entre los ríos Upía al norte hasta la región de Puente de Oro (río Metica). También todas las cabeceras del río
Metica incluyendo la franja desde el lanco este de la cordillera hasta la conluencia con el río Meta.
AMENAZAS, OPORTUNIDADES
Y RECOMENDACIONES PARA
LA CONSERVACIÓN
Ríos Ariari / Guaviare (p30)
A continuación se desarrollan algunas generalidades de
acciones o actividades humanas que han impactado la ecología de las comunidades acuáticas en la cuenca del Orinoco tanto en Venezuela como en Colombia. Debe indicarse,
que existen pocos trabajos de investigación que puedan
documentar en forma cuantitativa o cualitativa el impacto biológico causado por cambios en el ciclo hidrológico
o contaminación de la Orinoquia. Sin embargo, basados
Incluye la cuenca del río Ariari hasta su conluencia con el
río Guaviare en Mapiripán.
Llanos inundables del Estado Apure (p31)
Áreas inundadas de la cuenca del río Apure, desde la ciudad de Calabozo al norte, conluencia del río Apure con el
Orinoco al este y Caño Guaritico al oeste.
Tabla 7.7 Valoración de las áreas nominadas para peces.
Codigo
Area nominada
Riqueza
Endemismo
Especies
amenazadas
Especies con valor
de uso
Procesos
ecológicos
pc29
Alto río Meta
4
3
4
4
3
pc30
Ariari/Guaviare
4
3
4
4
4
pc31
Llanos inundables
(Apure)
3
3
4
3
4
pc32
Estrella Inírida
4
3
4
4
4
pc33
Delta Orinoco/sur
3
3
4
4
3
pc34
Bita
248
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
Figura 7.13 Áreas nominadas para la conservación: peces.
1. Represamiento de aguas con ines domésticos
o agrícolas
en las investigaciones desarrolladas por Petts (1985, 1990a,
1990b) y nuestras observaciones, planes gubernamentales
y reportes técnicos (Barletta et al. 2010; Machado-Allison
1987a,b, Mago-Leccia 1978, Pérez-Hernández 1983, Rangel 1979, Taphorn 1980, Taphorn y García 1991), se pueden
clasiicar las intervenciones de ésta manera:
1. Represamiento de aguas con propósitos domésticos,
agrícolas o industriales.
2. Contaminación doméstica, agrícola e industrial.
3. Deforestación para usos agrícolas.
4. “Saneamiento” de tierras para uso agrícola o doméstico.
5. Minería y desarrollo petrolero.
6. Transporte luvial.
7. Introducción de especies exóticas y trasplantadas.
8. Sobrepesca
Las represas para uso agrícola o doméstico fueron construidas de manera extensiva en los últimos 50 años y
casi todas las cabeceras de los principales aluentes al
norte del Orinoco han sido intervenidas. Ríos como
Apure, Bocono, Cojedes, Guanare, Guárico, Masparro,
Portuguesa y Santo Domingo, entre otros, han sido
afectados extensamente. Las represas han producido
cambios negativos ya que alteran o regulan el régimen
natural hidrológico; impiden las migraciones naturales; alteran o impiden el buen desarrollo de los ciclos
biogeoquímicos y reducen sustancialmente la áreas de
criadero o “nursery” y para el crecimiento de los peces.
2. Contaminación doméstica, agrícola e industrial
Todas estas actividades causan algunos cambios en los ciclos naturales hidrológicos y biológicos los cuales afectan
directa o indirectamente las comunidades acuáticas en la
cuenca del Orinoco.
Las aguas utilizadas para áreas urbanas altamente concentradas y para agricultura, localizadas en las cabeceras de los ríos en la margen norte del Orinoco, son
249
PECES
O. Lasso-Alcalá.
descargadas de nuevo como aguas residuales. Así detergentes, hidrocarburos, fertilizantes, una alta variedad de pesticidas y residuos industriales como metales
pesados entran al medio acuático natural produciendo
alteración en la calidad del agua y daños bioquímicos y
isiológicos en los organismos que la habitan. Ejemplo
claro de esto es el río Portuguesa y Guárico por citar
algunos.
las tuberías o explosiones en los pozos. Venezuela ha
sido testigo de varios de estos accidentes los cuales han
resultado en daños extensos en algunas áreas en esos
estados. Estas actividades afectan los ecosistemas de la
siguiente manera: desertiicación debido a la salinización del suelo, contaminación del agua e incremento
de elementos suspendidos y sedimentos en el agua. Un
ejemplo de ríos o morichales afectados por estas actividades en la región oriental del país son los ríos/morichales: Tigre, Tigrito, Oritupano, Caris, Pao, Morichal
Largo y San Juan, entre otros.
3. Deforestación con propósitos urbanos o agrícolas
Las cabeceras de los principales aluentes del río Orinoco en las regiones andinas de Colombia y Venezuela,
han sido extensa e intensivamente deforestadas. Estas
generan merma en la intensidad de las lluvias, disminución de caudales e incremento de material sólido
suspendido y disuelto en los ríos. Esto produce modiicación de las características isicoquímicas naturales de
las aguas (calidad del agua) y cambios en los diferentes
microhábitats de los cauces.
Otro problema importante desde el punto de vista del
desarrollo de una minería dentro de la cuenca, lo representa la prospección y explotación de minerales preciosos en las cabeceras del Orinoco y otros ríos importantes como el Caura, Caroní, Ventuari, Inírida y muchos
otros. Aunque esta actividad todavía es incipiente en la
cuenca del Orinoco, los ejemplos provenientes de cuencas vecinas (Cuyuní-Esequibo), son suicientemente
dramáticos como para poner una atención especial en
esta actividad (ver Machado-Allison et al. 2000).
4. “Saneamiento” o “recuperación” de tierras con
ines urbanos o agrícolas
6. Transporte luvial
Existe una percepción común en el mundo y una creencia popular, que pantanos o sabanas inundables son tierras inservibles - peligrosas para la salud -, inoiciosas
y que las inundaciones son una amenaza inaceptable
para las tierras y la vida. Con esto en mente, los diferentes gobiernos han introducido el concepto de “saneamiento”, para deinir todas aquellas actividades que
conllevan al drenaje, relleno y “recuperación” de tierras
con ines urbanos y agrícolas. Los Módulos de Mantecal
en los Llanos del Estado Apure y los incentivos gubernamentales para “reforestar” la Orinoquia colombiana
son una muestra de éste tipo de acciones.
Un tema poco tratado como factor de alteración de los
ecosistemas acuáticos continentales, es lo relativo a la
planiicación y ejecución de obras relacionadas con la
posibilidad de crear un transporte luvial permanente. Hasta ahora, la acción más generalizada tiene que
ver con el dragado de un canal angosto y profundo por
donde barcos de gran calado puedan penetrar y salir
del Orinoco. Esta acción permanente sobre el fondo
del río no ha sido plenamente evaluada en el contexto
ecológico y su relación con las comunidades bénticas.
Otras acciones tiene que ver con la canalización del
río y la construcción de diques para contener el agua
en el canal principal. Una de estas acciones (cierre del
caño Mánamo), ha causado un desastre ecológico sin
precedentes en Venezuela y posiblemente en Suramérica. Finalmente, existen tres proyectos hidrológicos a los
cuales debemos colocar especial atención: 1) el desarrollo del Eje Apure-Orinoco; 2) la desviación de las aguas
del río Caura, 3) la hidrovía Meta – Orinoco y 4) el plan
hidrovía (intercontinental).
5. Minería e industria petrolera
La cuenca del río Orinoco en Colombia y Venezuela es
considerada como uno de los reservorios más grandes
de petróleo pesado y gas natural del mundo. Ya existen severos impactos ecológicos, por los momentos
restringidos a las áreas elevadas (Mesas) del Estado
Anzoátegui y tierras bajas y morichales de los Estados
Monagas y Delta Amacuro en Venezuela. Los impactos
producidos en estos ecosistemas tienen que ver directamente con los procesos de extracción del petróleo que
implican el uso de grandes cantidades de agua a alta
temperatura y que es utilizada para poder calentar el
petróleo y separarlo de las arenas. Otro riesgo latente
lo representan los derrames de petróleo por roturas en
7. La introducción de especies exóticas y trasplantadas
Uno de los mayores problemas actuales es la introducción de especies acuáticas foráneas (exóticas) como las
tilapias y truchas o las especies nativas trasplantadas de
250
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
una cuenca a otra como la mojarra amarilla (Caquetaia
kraussii), con la inalidad de “solventar los problemas
del hambre en zonas pobres”. Sin embargo, se ha demostrado que la introducción de especies, como por
ejemplo tilapias o sus híbridos (Oreochromis spp. y/o
Sarotherodon spp.) o el camarón malago (Macrobrachium rosembergi) en la Orinoquia, no han resuelto los
problemas alimentarios o sociales. Más aún, tampoco
han resultado en una actividad comercial exitosa en
la región como ha sido prometida y sus impactos han
ocasionado la extinción de algunas especies (Barletta et
al. 2010). Pérez y Rylander (1998), Pérez et al. (1999,
2003), Nirchio y Pérez (2002), entre otros, indican en
sus trabajos el peligro que conlleva la introducción de
especies o híbridos de especies foráneas en ecosistemas
naturales. Este es un tema que requiere un análisis a
mayor profundidad.
Universidades, Institutos de Investigación, Corporaciones
Autónomas Regionales, ONG y las Secretarias de Ambiente
y de Salud Pública de las Gobernaciones y Alcaldías.
El conocimiento de la megadiversidad de peces de la Orinoquia tiene implicaciones en su conservación pero también en el bienestar social y económico de la región por
su aporte en la seguridad alimentaria y el aporte de los
ingresos económicos de las poblaciones humanas locales.
Si se tiene en cuenta el papel de las comunidades ícticas
como bioindicadores de la acumulación de metales tóxicos
(como el mercurio), se convertirán entonces en un aliado
de los programas de salud pública para zonas con inluencia minera de oro. El área andina y de piedemonte de la
Orinoquia representan un escenario ideal para el desarrollo de investigaciones sobre patrones de diversidad íctica en
gradientes altitudinales y longitudinales, para entender mejor los factores y mecanismos que estructuran sus comunidades (Maldonado-Ocampo et al. 2008). Un estudio de
estas comunidades permitirá la formulación de programas
para evaluar, monitorear y restaurar la integridad biótica de
estos ecosistemas, uno de los más intervenidos antropicamente en la Orinoquia.
8. Sobrepesca
Más de 80 especies son capturadas como recursos pesqueros en la cuenca del Orinoco, con énfasis en las especies más preciadas como son los grandes bagres de
la familia Pimelodidae (Brachyplatystoma spp., Zungaro
zungaro y Pseudoplatystoma spp.) y el coporo o bocahico (Prochilodus mariae). La tendencia en la actualidad es capturar más coporo a medida que los bagres se
hacen cada vez más escasos. El patrón en ambos lados
de la cuenca es una disminución en las CPUE de todas
las especies carnívoras (ejemplo: grandes bagres) y una
sustitución por especies omnívoras o herbívoras menos
deseables (Barletta et al. 2010), mientras que los bocachicos o coporos que se mantienen más o menos “estables”.
Prácticamente todas las recomendaciones señaladas para
Colombia aplican para Venezuela. Muchas de ellas ya han
sido recogidas por Machado-Allison (1990, 1992, 1994,
1999, 2005) y/o están señaladas en las evaluaciones rápidas
de la biodiversidad en ecosistemas acuáticos (AquaRAP´s)
realizados en diferentes subcuencas de Venezuela: Caura
(Machado-Allison et al. 2002); delta (Lasso et al. 2004b);
conluencia Ventuari-Orinoco (Lasso et al. 2006) y CaroníParagua (Lasso et al. 2008). Sin embargo es oportuno destacar la necesidad de continuar realizando monitoreos en
el delta para evaluar el efecto de la pesca camaronera de
arrastre; evaluación de contaminación mercurial en cuencas del Escudo Guayanés; contaminación y deforestación
por agroquímicos en los Llanos y piedemonte, así como
evaluar con sumo cuidado todo el desarrollo petrolero que
se avecina en la faja petrolífera del Orinoco.
RECOMENDACIONES
La realidad en la cuenca no es una sola. La multiplicidad de
ambientes acuáticos que se releja en su zoogeografía tiene
su equivalente en las amenazas citadas previamente. Así, el
efecto de estas últimas y las recomendaciones para mitigarlas varían de un país a otro y de una subcuenca a otra. En
Colombia se debe desarrollar un programa de muestreo y
monitoreo de la ictiofauna ya que la Orinoquia es el escenario de expansión de varios sectores productivos (petróleo,
minería, cultivos industriales de agrocombustibles y maderas). Dado que en la Orinoquia posiblemente se esté perdiendo especies de peces a una tasa mayor que las que están
reconociendo e identiicando, se debe aprovechar mejor el
trabajo interinstitucional de los investigadores adscritos a
Finalmente, es de resaltar que gran parte de la cuenca es
compartida por ambos países, luego la ordenación de los
recursos pesqueros (de consumo y ornamentales) debería
ser realizada de manera coordinada entre las autoridades
pesqueras y ambientales correspondientes a objeto de evitar la sobreexplotación, tráico y comercio ilegal y burlas a
las vedas. Precisamente estas subcuencas compartidas son
las menos conocidas y por ello deben realizarse evaluaciones binacionales para aumentar su conocimiento y generar
así la línea base imprescindible para tomar decisiones y medidas de conservación a nivel regional.
251
PECES
O. Lasso-Alcalá.
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b
a
c
d
e
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a.
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Semaprochilodus laticeps. Foto: C. Lasso.
Nannostomus sp. Foto: O. Lasso-Alcalá.
Hoplias macrophthalmus. Foto: C. Lasso.
Pygocentrus cariba. Foto: N. Milani.
Pseudodoras niger. Foto: O. Lasso-Alcalá.
256
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
h
g
j
i
k
l
g.
h.
i.
j.
k.
l.
Sorubimichthys planiceps. Foto: A. Barbarino.
Liposarcus multiradiatus. Foto: O. Lasso-Alcalá.
Rhamphichthys apurensis. Foto: A. Barbarino.
Pterophyllum altum. Foto: O. Lasso-Alcalá.
Rivulus sape. Foto: D. Taphorn.
Awaous lavus. Foto: O. Lasso-Alcalá.
257
Chironius sp. Foto: F. Nieto.
8.
ANFIBIOS Y REPTILES
A. Acosta.
Andrés R. Acosta-Galvis, J. Celsa Señaris, Fernando Rojas-Runjaic, Diego Raúl RiañoPinzón
INTRODUCCIÓN
las tierras bajas que enmarcan las planicies llaneras (altillanuras y llanuras inundables), aloramientos rocosos, zonas
de transición amazónico-orinoquense, sistemas deltaicos
anegadizos y selvas piemontanas que poseen características
climáticas, topográicas y de vegetación únicas, inluyendo
sobre la distribución y presencia local de la herpetofauna.
Así, desde una perspectiva regional, la relación entre clima
y la presencia o ausencia de especies de anibios y reptiles es
estrecha. La cuenca posee un marcado régimen climático,
en el cual las especies son estacionales, de ahí su relativa
presencia o ausencia en algunas localidades, siendo uno de
los aspectos más determinantes en su registro y monitoreo.
Aproximadamente el 50% de las especies de la herpetofauna del mundo habitan en el Neotrópico (Duellman 1999).
Este porcentaje se incrementa continuamente como resultado de las exploraciones en áreas desconocidas y de nuevos estudios taxonómicos. Desde esta perspectiva los países
como Colombia y Venezuela están ubicados entre los diez
más ricos del planeta en diversidad biótica, habiéndose registrado hasta el momento para la fauna Amphibia unas
750 especies para Colombia y 333 especies para Venezuela,
mientras que para reptiles son conocidas 566 y 369 especies respectivamente (Acosta-Galvis 2000, Alarcón 1979,
Barrio-Amorós 2004a, 2009, Uetz 2008, La Marca 1997,
Péfaur y Rivero 2000).
De esta manera tenemos que gran parte de la cuenca, especialmente las tierras bajas, en términos climáticos es marcadamente monomodal, parecido a otras regiones adyacentes del norte de Suramérica, como la región Caribe donde
existe una temporada seca en la cual los anibios y algunos
reptiles no son conspicuos y otro período lluvioso donde se
expresa mayor diversidad (Lynch 2006a). En contraste, en
las áreas asociadas a las tierras medias y altas de las cordilleras andinas y el Escudo Guayanés cambia a un particular
sistema bimodal que produce mayor humedad y por ende,
mayor estabilidad ambiental favoreciendo la presencia de
grupos de herpetofauna de mayor complejidad.
La cuenca del Orinoco corresponde a uno de los complejos
ecorregionales naturales únicos en el mundo, está localizada al norte de Suramérica y geográicamente está compartida por Colombia (30%) y Venezuela (70%). Mientras
en Colombia presenta una baja diversidad de herpetofauna
con relación al resto del país, en Venezuela, su riqueza representa gran parte de la diversidad de anibios y reptiles a
nivel nacional.
La cuenca del Orinoco abarca un mosaico de regiones con
variados ambientes que van desde la divisoria de aguas en
la Cordillera Oriental Andina y la Guayana hasta áreas en
259
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
Dentro de la relación entre clima - anibios y reptiles, uno
de los factores determinantes está relacionado estrechamente con los ciclos de vida, en particular, con aquellos
que requieren ciertos elementos del microhábitat, como la
presencia de cuerpos de agua (charcas estacionales), temperatura, disponibilidad de semillas, frutos y presas potenciales, humedad relativa asociada a la cobertura vegetal
entre otros, los cuales como recurso no están disponibles
de forma constante a lo largo de un ciclo anual. En el caso
particular de los anibios estos exhiben importantes asociaciones entre sus hábitats y modos reproductivos (Crump
1974), mientras que para los reptiles la disponibilidad de
recursos alimenticios y microhábitats especíicos limitan
y moldean su distribución espacio-temporal en la cuenca.
sión de patógenos y, en los casos más extremos su extinción.
En este trabajo se resume, de forma preliminar, el conocimiento sobre los anibios y reptiles de la cuenca del Orinoco, haciendo especial énfasis en la riqueza, endemismo,
vacíos de información y áreas de especial importancia para
la conservación de su biodiversidad.
SUBREGIONES
BIOGEOGRÁFICAS
A partir de los análisis de las distribuciones de los anibios y
reptiles de la cuenca y basados en los registros disponibles,
son reconocidas ocho subregiones (Figura 8.1).
La modiicación antropogénica por actividades agropecuarias y el crecimiento demográico, han agregado en algunos
puntos, efectos negativos sobre las especies de anibios y
reptiles, un aspecto que no ha sido valorado hasta hoy. Estudios más profundos podrían evidenciar algunos cambios
discretos en los patrones de distribución, disminución de
las poblaciones, introducción de especies alóctonas, expre-
AR1 Amazonía
Localizada en la región más suroriental de la cuenca del
Orinoco en Colombia, corresponde a formaciones sedimentarias del Cuaternario y relieve ondulado conformado
Figura 8.1 Subregiones biogeográicas: anibios y reptiles.
260
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
diversidad muy poco conocida. Finalmente en las lomas y
planicies residuales guayanesas la vegetación está deinida
por las pendientes, la litología y la altitud, abarcando un
mosaico variado que va desde los bosques caducifolios a
bosques húmedos siempreverdes, sabanas llaneras inundables o no, sabanas tipo amazónicas más pobres en nutrientes y morichales, arbustales y matorrales.
por zonas de transición amazónico-orinoquense, con elevaciones inferiores a los 400 m. Esta zona está surcada por
innumerables ríos que conforman la red de aluentes del
río Inírida como el río Papuanagua, los caños Nabuquen,
Chucuto, Minas, Caparroal, Caño Tigre, entre otros. En su
límite norte se encuentran ecotonos con sabanas asociadas
a planicies, donde predomina la vegetación arbustiva asociada a árboles de porte pequeño y enclaves de selva húmeda tropical (Hernández et al. 1992).
AR4 Andes Colombia-Venezuela
Deinida por elevaciones superiores a los 500 m.s.n.m.
corresponde a las áreas asociadas de la Cordillera Andina
Oriental colombo-venezolana (vertiente Oriental de las
cordilleras Oriental en Colombia y Cordillera de Mérida
en Venezuela) reuniendo un mosaico de ecosistemas que
van desde más de 5.000 m.s.n.m. en el Nevado de Cocuy en
Colombia y en la Sierra Nevada de Mérida en Venezuela.
En esta zona montañosa nacen los innumerables ríos que
conforman la red de aluentes de la margen izquierda del
río Orinoco, donde los de origen andino son más largos y
caudalosos que los originados en la Cordillera de la Costa. A grandes rasgos los ambientes naturales en esta región
comprenden los páramos y subpáramos que se desarrollan
en el tope de las montañas a partir de los 2.800 m.s.n.m.,
las vertientes que ocupan entre los 1000 y 2800 m.s.n.m.,
y el piedemonte entre 500 y 1000 m.s.n.m. Los páramos y
subpáramos, con temperaturas entre 2 y 10 ºC, poseen una
lora con alto grado de endemismo, destacándose los frailejonales, arbustales y bosques achaparrados parameros. Las
vertientes representan la zona de transición entre los ambientes parameros y de piedemonte, de relieve empinado y
con una vegetación típicamente boscosa muy densa, exuberante y diversa, aún cuando su cobertura no es homogénea
a causa de las pendientes, de variaciones en la distribución
de la precipitación anual y de los tipos de suelos que han
sido sometidos a una alta intervención antrópica.
AR2 Llanos
Cubre unos 600.000 km2 repartidos por igual entre Colombia y Venezuela, y corresponde al inmenso valle sedimentario de llanuras inundables y altillanuras, formado
en el Terciario y Cuaternario, enmarcado entre el Escudo
Guayanés, Los Andes, la Cordillera de La Costa y el norte
de la Amazonía. Con una elevación entre 20 y 500 m, la
formación vegetal dominante es la sabana (medias anuales
superiores a los 24 ºC), aún cuando existen zonas selváticas
y bosques de galería a lo largo de los cursos de agua, morichales, matorrales y sabanas arboladas. Esta región, puede
ser dividida en llanos altos, llanos medios y llanos bajos, en
virtud de características isiográicas. Así, los llanos altos
son contiguos al piedemonte y se desarrollan bosques siempreverdes alternados con sabanas y chaparrales; los llanos
medios, ocupan las franjas de los cursos medios de los ríos
asociados y la vegetación está dominada por sabanas estacionales abiertas y arbustivas, además de bosques caducifolios y de galería. Finalmente los llanos bajos soportan
inundaciones más o menos prolongadas, que en algunos
sitios es permanente, por lo cual su vegetación es de sabana
y bosques inundables y/o palmares en los sitios de mayor
anegamiento, y de sabanas estacionales y bosques caducifolios en las áreas de mayor elevación.
AR3 Guayana
Abarca unos 360.000 km2 que van desde las tierras altas
del Escudo Guayanés o Pantepui (por encima de los 1.500
m.s.n.m.), las laderas de los tepuyes (tierras medias entre
los 500 y 1500 m.s.n.m.) y las lomas y planicies que corresponden a los relieves de menor altura asociados a ecosistemas de sabana. Las precipitaciones anuales en toda la región superan los 1.800 mm, e incluso se alcanzan los 4.000
mm en el tope de los tepuyes. En las cimas tepuyanas la
vegetación está representada por herbazales, arbustales y
bosque altotepuyanos característicos, que se destacan por
su diversa composición lorística y alto endemismo. Por
otra parte, en las laderas tepuyanas, zona de transición entre las tierras bajas y las altas, dominan los bosques altos de
cobertura media a densa, los cuales poseen una gran bio-
AR5 Zonas de transición
Abarca parte de las cuencas del los ríos Meta, Tomo, Bita,
Dagua-Mesetas y Tuparro, todos aferentes directos del
Orinoco, que corresponde a depósitos peridesérticos con
relieves planos y elevaciones inferiores a los 300 m.s.n.m.
(Hernández et al. 1992). En esta zona existe un importante
mosaico de ecotonos de diferentes tipos de sabanas asociadas a planicies, pequeños enclaves de selva húmeda tropical
y en una reducida proporción planicies residuales guayanesas, que condiciona una serie de tipos de vegetación, donde predominan las planicies arbustivas, combinadas con
bosques caducifolios, sabanas llaneras inundables hacia el
norte y sabanas amazónicas.
261
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
AR6 Cordillera de la Costa
nómico e intereses taxonómicos y biológicos particulares
de grupos de trabajo.
Corresponde a las vertientes meridionales de la Cordillera
de La Costa venezolana, incluyendo las altiplanicies de la
Formación Mesa y la Serranía del Interior central. Se desarrollan selvas caducifolias y semicaducifolias en las faldas
medias y bajas de las montañas, así como en los grandes
valles, cuya vegetación ha sido fuertemente modiicada y
convertida en pastizales, cultivos anuales, cafetales, zonas
urbanas y periurbanas. En esta zona montañosa nacen ríos
que conforman la red de aluentes norte del río Orinoco, los
cuales son más cortos y menos caudalosos que los originados en la región Andina.
En Colombia, los estudios se han orientado esencialmente
en la región de piedemonte, áreas adyacentes asociadas a
las planicies en la región de Villavicencio, y algunos registros puntuales en el Escudo Guayanés y la región andina.
Son desconocidas, en gran parte, las regiones de transición
Amazonas-Orinoco, el piedemonte de los departamentos
de Arauca y Casanare, las planicies de los departamentos
del Vichada y región oriental de Arauca (Stebbins y Hendrickson 1959, Valdivieso y Tamsitt 1963, Cochran y Goin
1970, Ayala 1986, Sánchez et al. 1995, Lynch 1997, 2005,
2006b, Cuevas 2007, Lynch y Vargas 2000, Moreno 2006,
Piedrahita 2007, Riaño 2009).
AR7 Área Guaviare-Vichada
Puntualizada por áreas con distribuciones inferiores a los
300 m.s.n.m. que corresponde a las áreas asociadas a colinas bajas disectadas por pequeñas corrientes de agua y
planicies. Se localiza al norte de la región de la Amazonía
y sur oriente de la altillanura. En esta zona innumerables
ríos que conforman la red de aluentes al Orinoco como los
ríos Tuparro, Vichada, Mataven y Guaviare, enmarcan un
mosaico de ecosistemas inluenciado en mayor grado por
ambientes amazónicos transicionales donde predominan
grandes extensiones de selva húmeda tropical alternado
por pequeños enclaves de arbustos y selvas de galería asociadas a las cuencas de los grandes ríos.
En Venezuela, ninguna región se considera muy bien explorada herpetológicamente (Señaris et al. 2009a). No obstante, y con base en la curva acumulativa de registros y riqueza
de especies, en la última década los esfuerzos de muestreo
para la desconocida herpetofauna del delta del Orinoco
y las planicies inundables adyacentes han sido sustancias
como resultado de estudios de línea base desarrollados en
el marco de exploraciones petroleras (Molina et al. 2004,
Señaris 2004, Señaris y Ayarzagüena 2004).
En un contexto mayor, la inmensa región Guayana venezolana ha tenido diferentes patrones e intensidad de
exploración, limitada principalmente a tierras de baja altura y teniendo como vía de acceso principal los ríos navegables hasta los años 80. Recientemente, con la ayuda de
helicópteros, las tierras medias y altas. Gorzula y Señaris
(1999) resumieron el conocimiento sobre la herpetofauna
de la Guayana venezolana hasta esa fecha, sumándose en
estos últimos seis años los trabajos generales de Ávila-Pires (2005), McDiarmid y Donnelly (2005) y Señaris et al.
(2009b).
ESTADO DEL CONOCIMIENTO
Para el análisis del estado de conocimiento en la cuenca del
Orinoco se utilizó el criterio biogeográico descrito anteriormente. Sin embargo, pese a que los anibios y reptiles
poseen rasgos biológicos únicos que los separan entre sí,
el estado de su conocimiento está ligado al esfuerzo de
muestreo de los grupos con excepción de algunos casos
muy puntuales. Se incluyen en este análisis los tres órdenes
de la clase Amphibia: ranas y sapos (Anura), salamandras
(Caudata) y caecilias o culebras ciegas (Apoda) y para la
clase Reptilia: tortugas (Orden Testudinata, Subordenes
Cryptodira y Pleurodira), caimanes y cocodrilos (Orden
Crocodylia), lagartos (Orden Squamata, Suborden Sauria),
serpientes (Orden Squamata, Suborden Ophidia) y tatacoas
(Orden Squamata, Suborden Amphisbaenia).
La región llanera venezolana cuenta con un limitado número de registros de herpetológicos (Staton y Dixon 1977)
y los esfuerzos de muestreo han sido modestos, quizás por
la gran homogeneidad de su herpetofauna y la ausencia de
taxa exclusivos. Las laderas andinas y de la Cordillera de
La Costa muestran patrones de exploración particulares, en
algunos casos relativamente elevados como en la Cordillera
de La Costa y en otros escasos, como en varios sectores de
las laderas andinas. No obstante, su actual grado de intervención limita el reconocimiento de su fauna original. En
el portal www.simcoz.org.ve se visualizan los registros de la
herpetofauna de Venezuela contenidos en los tres museos
nacionales más importantes del país.
Esfuerzo de muestreo
El grado de conocimiento taxonómico, ecológico y biogeográico de los anibios y reptiles de la cuenca del río
Orinoco es desigual motivado, fundamentalmente, por la
accesibilidad a las diferentes subregiones, el desarrollo eco-
262
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
Teniendo en cuenta lo anterior se concluye que para la
cuenca del Orinoco, los esfuerzos de muestreo de la herpetofauna se consideran relativamente altos para la pequeña
fracción de las laderas de la Cordillera de La Costa venezolana; medios para los llanos colombo-venezolanos y piedemonte de la Cordillera Andina en Colombia y bajos para
la extensa región Guayana y piedemonte de la Cordillera
andina en Venezuela. El área de la Amazonía tiene esfuerzos de muestreo muy bajos y para las zonas de transición y
Guaviare-Vichada prácticamente no existen datos (Figura
8.2).
de distribución geográica que en términos generales presentan vacíos de información respecto a su historia natural
y conservación. En Venezuela existe una síntesis del estado
de conocimiento de los anibios nacionales (Molina et al.
2009) en donde se evidencia el bajo conocimiento que se
tiene de la bioecología, abundancia, acervo genético y estado de conservación de la mayoría de especies.
AR1 Amazonía
Actualmente sólo se conoce un estudio relativo a los anibios de la región de Inírida, donde reportan 27 especies
de ranas (Lynch y Vargas, 2000) y una evaluación rápida
para la Estrella Fluvial del río Inirida donde se registran 31
especies de anibios y 31 de reptiles (Renjifo et al. 2009).
Mientras Rueda et al. (2007) y Riaño (2009) basados en
sus distribuciones y la evaluación de colecciones nacionales
de referencia reportan 14 especies de reptiles para esta región -un número muy bajo si evaluamos las características
de esta zona, realizadas por otros autores como Duellman
(1978) en zonas aledañas-; Renjifo et al. (2009) calculan
que la riqueza de la herpetofauna de esta región supera las
100 especies.
Nivel de conocimiento
El nivel de conocimiento herpetológico, al menos en términos de patrones de distribución, está ligado a los esfuerzos
de muestreo antes mencionados. En este contexto, algunos
grupos puntuales poseen información relevante sobre su
historia natural, distribución, conservación y amenazas
como es el caso de las tortugas y cocodrilos (Medem 1981,
Rueda et al. 2007). Sin embargo y en general, para los grupos restantes de anibios y reptiles, sólo han sido estudiados
algunos aspectos relacionados con su taxonomía y patrones
Figura 8.2 Esfuerzo de muestreo: anibios y reptiles.
263
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
Figura 8.3 Nivel de conocimiento: anibios y reptiles.
AR2 Llanos
En los Llanos venezolanos, la literatura publicada de anibios es relativamente escasa, a pesar que se supone un nivel
de conocimiento relativamente alto, derivado de la gran
homogeneidad –baja riqueza relativa y ausencia de elementos endémicos- de las comunidades a lo largo de toda
la región. Síntesis actualizadas y muy representativas de la
herpetofauna de los llanos venezolanos son las de BarrioAmorós (2004b) y Tarano (en prensa).
Esta ecorregión es la mejor documentada con registros y
publicaciones. En Colombia, la información registrada
para el área de inluencia de Villavicencio es la más signiicativa, con aportes sobre la taxonomía y distribución de anibios (Cochran y Goin 1970, Lynch 2006, Piedrahita 2007),
la descripción de nuevas especies de hílidos, y la ampliación de la distribución de algunos leptodactílidos (Pyburn
y Fouquette 1971, Trueb y Duellman 1971, Pyburn 1973,
Heyer 1978, 1979, 1994, 2005, Kluge 1979, Nieto 1999,
Lynch y Suárez-Mayorga 2002), ránidos (Hillis y De Sá
1988, Acosta, 1999), caecilidos (Lynch 1999) y salamandras
(Acosta 2007).
En lo referente a los reptiles de los Llanos colombianos Sánchez et al. (1995) y Riaño (2009) registran 121 especies, las
cuales han sido referenciadas en la región de Villavicencio
por diversos autores, para los grupos de saurios, tortugas y
cocodrilos (Werner 1889, Burt y Burt 1931, Burger 1952,
Medem 1954, 1968, 1981, Duellman 1958, Tamsitt y Valdivieso 1963, Valdivieso y Tamsitt 1963 Alarcón–Pardo 1969,
Kluge 1969, Vanzolini y Willians 1970, Willians 1982, Ayala
1986, Lamar 1987, Ávila-Pires 1995, Castaño-Mora 1997,
2002, Rueda-Almonacid et al. 2007), serpientes (Niceforo-María 1942, Dunn 1944a, b, c, d e, Peters 1960, Roze
1966, 1996, Rossman 1976, Dixon 1983a,b,1989, Michaud y
Dixon 1989, Dixon et al. 1993, Henderson 1997, Silva 1994,
De otro lado, los estudios que abarcan los aspectos sobre la
historia natural de estas especies son muy restrictos: Castellanos (2002) y Albaran (2008) desarrollaron estudios sobre las características acústicas de las ranas; Zorro (2007) y
Svenson (2008) abordaron las temáticas de uso del hábitat
y los efectos de la modiicación de los ecosistemas, en cultivos de palma de las áreas de planicie aledañas al piedemonte.
264
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
Ernest et al. 2000, Bailey y homas 2007) y anisbénidos, en
conjunto estos dos grupos carecen de información debido
a la diicultad de su colecta. Para Venezuela, además de algunos de los trabajos antes mencionados por su carácter de
revisiones generales, merece especial atención la síntesis de
Barrio-Amorós (2004).
lectas y registros puntuales (Péfaur y Díaz de Pascual 1987,
Barrio-Amorós y Molina 2010).
En cuanto al conocimiento de los reptiles en la ecorregión
Andes de Colombia (AR4), existen pocos trabajos para las
zonas medias y altas y casi todos los aportes al conocimiento de los grupos están relacionados con el área de Villavicencio. En Venezuela, La Marca y Soriano (2004) resumen
la riqueza de reptiles de los Andes venezolanos.
AR3 Guayana
Para Colombia, no existen estudios sobre los anibios en
esta región asociado probablemente a la baja representatividad geográica de esta área en Colombia. Para Venezuela, los trabajos de Gorzula y Señaris (1999), McDiarmid y
Donnelly (2005), Señaris y MacCulloch (2005), Señaris y
Rivas (2006, 2008), McCulloch et al. (2007), Barrio-Amorós y Brewer-Carías (2008) y Señaris et al. (2009b, c) sintetizan buena parte del conocimiento de anibios y reptiles de
la región. Sin embargo y a pesar de los intensos esfuerzos
de muestreo realizados en la última década, el grado de conocimiento es comparativamente bajo, teniendo en cuenta
la extensión y complejidad del territorio, además de la gran
diversidad y endemismo de esta región.
AR5 Zonas de transición
Su estado de conocimiento está parcialmente inventariado
y carece de un esfuerzo de muestreo a nivel espacio temporal. Se reconocen dos áreas de estudio a nivel de la herpetofauna, uno en la Reserva Natural Bojonawi en Puerto
Carreño (Vichada) en donde se conocen 22 especies de
anibios (Cuevas 2007) y otro en el Parque Nacional Natural El Tuparro, donde se registran 78 especies de reptiles
(Dixon y Michaud 1992, Medem 1981, Rueda et al. 2007).
AR6 Cordillera de la Costa
Una buena síntesis de los anibios y reptiles de las laderas
sureñas de la Cordillera de La Costa – cuenca del Orinoco
– está descrita en Lotzkat (2007).
AR4 Andes Colombia-Venezuela
En relación a los Andes colombianos, el piedemonte circunscrito al sector de Villavicencio es una de las áreas mejor documentadas. Para anibios Stebbins y Hendrickson
(1959) realizaron los primeros registros para Bellavista;
Cochran y Goin (1970), registran 33 especies de anuros en
Villavicencio y Lynch (2006) consolida la información de
las áreas circundantes del piedemonte de Villavicencio. Estudios aislados, relacionados con la taxonomía particular
de los grupos, amplían esta información (Silverstone 1976,
Kluge 1979, Pyburn y Lynch 1981, Heyer 1994, Lynch
1994a, b, 1999, Morales 1994, Acosta 1999, 2007, Lynch y
Suarez-Mayorga 2001). El efecto de los sistemas productivos sobre la diversidad de anibios, únicamente ha sido
desarrollado por Cáceres y Urbina (2009), al igual que sólo
se ha realizado la evaluación del nicho tróico de un ensamblaje de anuros (Páez 2007).
AR7 Área Guaviare-Vichada
Por el difícil acceso a sus localidades es una de las más desconocidas de la cuenca del Orinoco y carece de estudios
sistematizados. Los pocos registros de esta región son casuales, por lo que se conocen contados ejemplares de anibios y reptiles en colecciones colombianas.
La igura 8.3 ilustra, en general, el nivel de conocimiento
que se tiene de la herpetofauna en las diferentes regiones de
la cuenca del Orinoco.
Vacíos de información
Para la cuenca del Orinoco los vacíos de información están
asociados a las zonas de menor acceso, en especial hacia las
ecoregiones Amazonía (AR1), área Guaviare-Meta (AR7),
área de transición (AR5) y Guayana (AR3), donde la representatividad de los registros es baja y la prospección de estas áreas en el futuro podrían arrojar un importante número de especies. Cabe resaltar que algunas áreas al interior
de las subregiones con un conocimiento moderado son aún
desconocidas, como la región andina de los departamentos
de Arauca y Casanare en Colombia (AR4). Factores como
la diicultad de acceso, orden público y costos de investigación han limitado el desarrollo de las investigaciones. Adicionalmente si comparamos el grado de conocimiento de
Para las partes medias y altas andinas se tienen estudios sobre la deinición taxonómica de sus especies. En Colombia
se restringe a la descripción de nuevas especies en algunas
localidades dispersas de los departamentos de Meta, Cundinamarca y Boyacá (Rivero 1963, Cochran y Goin 1970,
Lynch y Duellman 1973, Kaplan 1991, 1994, Lynch 1994b,
Ruiz y Lynch 1991, 1998, Osorno Ardila y Ruiz 2001),
mientras que para los departamentos de Casanare y Arauca
no hay estudios. La vertiente oriental de los Andes venezolanos ha sido poco estudiada y sólo cuenta con algunas co-
265
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
Figura 8.4 Vacíos de conocimiento: anibios y reptiles.
los grupos herpetofauna (Apoda en anibios, serpientes y
lagartos en Reptilia) poseen una baja representatividad en
casi todas las localidades, así, futuras orientaciones en estos
grupos probablemente incrementarán sus distribuciones y
registros en algunas regiones (Figura 8.4).
como microhílidos (11 sp.), leiupéridos (7 sp.), dendrobátidos (Dendrobatoidea) (6 sp.), pípidos (3 sp.), y eleuterodactílidos, ceratófridos y ránidos (2 sp. cada uno, una
especie introducida de eleuterodactílido y otra de ránido)
(Figura 8.5). Sólo la recien creada familia Ceuthomantidae
posee un representante en la cuenca del Orinoco. El orden
Caudata está presente con tres salamandras del género Bolitoglossa, mientras que las cecilias (orden Gymnophiona)
corresponden a miembros de las familias Caecilidae (6 sp.)
y Rhinatrematidae (1 sp.).
BIODIVERSIDAD
Riqueza de especies
En la cuenca del Orinoco se han registrado 266 especies de
anibios y 290 de reptiles (Anexos 8 y 9). La Clase Amphibia está representada principalmente por el Orden Anura
con 256 especies, con contribuciones menores del orden
Gymnophiona o Apoda (7 sp.) y el orden Caudata (3 sp.).
En los anuros, agrupados en 15 familias, dominan los hílidos (75 sp.), seguidos por los estrabomántidos (37 sp.),
aromobátidos (Dendrobatoidea) (31 spp), leptodactílidos
y centrolénidos (22 sp. cada uno), bufónidos (19 sp.), hemifráctidos (16 sp.) frente a grupos menos representados
En términos biogeográicos la región Guayana (AR3) presenta la mayor riqueza de especies de anibios gracias a la
presencia de los tepuyes y por lo tanto de un gradiente altitudinal que le conieren mayor complejidad biótica. En
cuanto a la diversidad de anibios representados en las restantes ecoregiones los valores son comparativamente bajos,
pero no relejan la diversidad real de estas áreas debido a
que no existen inventarios exhaustivos tal como puede observarse en las ecorregiones de la Amazonia (AR1), zonas
de transición (AR5) y Guaviare (AR7) (Figura 8.6, Tabla 8.1).
266
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
Figura 8.5 Distribución porcentual de la diversidad de las familias de anibios en la cuenca del Orinoco.
Figura 8.6 Riqueza de especies: anibios.
267
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
Tabla 8.1 Riqueza de familias, géneros y especies de anibios distribuidos en las principales subregiones de la cuenca del Orinoco.
Orden
Fam.
Gén.
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Guayana
(AR3)
Andina
Colombia
(AR4 c)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
Zona de
transición
(AR5)
Cordillera
Costa
(AR6)
GuaviareMeta
(AR7)
Anura
15
61
10
50
176
83
50
25
31
26
Caudata
1
1
1
0
0
2
2
0
0
0
Gymnophiona
2
7
0
3
5
2
1
0
0
0
Total General
18
69
11
53
181
87
53
25
31
26
Si observamos el comportamiento de los registros de anibios en el gradiente altitudinal, tenemos que la mayor diversidad en la cuenca se concentra en las tierras bajas, en
especial en las regiones húmedas de la cuenca, siendo esta
diversidad alta hasta las localidades asociadas a los bosques
subandinos y las tierras medias del Escudo Guayanés (Figura 8.7).
En cuanto a los reptiles de la cuenca del Orinoco están representados por cuatro cocodrílidos (familias Alligatoridae
con tres especies y Crocodylidae con una); 16 especies de
tortugas dulceacuícolas; cinco especies de anisbénidos; 77
especies de lagartijas y 167 especies de serpientes. En las
tortugas dominan las familias Chelidae y Podocnemididae
con 6 y 5 especies respectivamente, seguidas por Testudini-
Figura 8.7 Diversidad de anibios en el gradiente altitudinal en la cuenca del Orinoco. En el eje “X” número de especies y en el eje
“Y” altitud sobre el nivel del mar.
268
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
Figura 8.8 Riqueza especíica de las familias del suborden Sauria para la cuenca del Orinoco.
dae y Geomydidae con dos especies cada una, y Kinosternidae con un representante. Los saurios (lagartijas) comprenden nueve familias de las cuales los gimnotálmidos,
gekónidos y policrótidos, representan el 73% de las espe-
cies (Figura 8.8). Por otra parte, entre las serpientes, de las
nueve familias, los colúbridos dominan ampliamente con
116 especies, seguidos por las serpientes venenosas de las
familias Viperidae (12 sp.) y Elapidae (17 sp.) (Figura 8.9).
Figura 8.9 Riqueza especíica de las familias del suborden Serpentes para la cuenca del Orinoco.
269
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
En términos biogeográicos dos regiones - Guayana (AR3)
con 196 especies y Llanos (AR2) con 135 especies - poseen
la mayor riqueza. En los Andes (AR4) este grupo presenta
una riqueza media en el sector de Colombia donde se registran 105 y una riqueza baja para Venezuela con 84 especies.
Al igual que la diversidad de anibios, se requiere de un mayor esfuerzo en los inventarios en las regiones de la Amazonia (AR1) y Vichada-Guaviare (AR7) donde la información
es baja y muy baja en la zona de transición (AR5) de acuerdo a las categorías establecidas (Figura 8.10, Tabla 8.2).
Figura 8.10 Riqueza de especies: reptiles.
Tabla 8.2 Riqueza de familias, géneros y especies de la fauna de reptiles distribuidos en las principales subregiones de la cuenca del
Orinoco.
Fam.
Gén.
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Guayana
(AR3)
Andina
Colombia
(AR4 c)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
Zona de
transición
(AR5)
Cordillera
Costa
(AR6)
GuaviareMeta
(AR7)
Testudines
3
9
1
9
15
2
3
7
0
9
Crocodylia
2
3
2
4
4
1
2
4
0
3
Squamata (Sauria)
9
37
7
35
65
30
26
20
0
17
Squamata (Serpientes)
8
59
4
98
107
69
50
39
0
27
Squamata (Amphisbaenia)
1
2
0
2
5
3
2
2
1
1
Total General
23
110
14
148
196
105
83
72
1
57
Orden
270
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
En lo que concierne a la distribución altitudinal, la mayor
diversidad de reptiles en la cuenca se localiza en las tierras
bajas, donde la mayor cantidad de registros se concentran
por debajo de los 750 m.s.n.m., en el cual las especies de
reptiles poseen amplios patrones de distribución; mientras
que para las tierras altas, bosques altoandinos hasta los páramos, el número de especies decrece de manera signiicativa haciendo su distribución más restringida (Figura 8.11).
Figura 8.11 Diversidad de reptiles en el gradiente altitudinal en la cuenca del Orinoco. En el eje “X” el número de especies y en el
eje “Y” la altitud en metros.
Endemismos
llanera del piedemonte andino y, en mucho menor grado,
en la vertiente sur de la Cordillera de La Costa al norte del
país.
En la cuenca del Orinoco venezolana, son endémicas el 39%
del total de las especies de anibios y el 20,6% de los reptiles.
Están concentradas principalmente en las tierras de mayor
elevación de la Guayana. En el Pantepui se ha encontrado
que de las especies registradas el 80-90% de los anibios y
el 40-50% de los reptiles son endémicos (BioHabitat 2008)
El grado de endemismo de la fauna de anibios es alto en
las subregiones de la Guayana y de los Andes (Figura 8.12),
destacándose una sola especie de rana endémica para el
delta del Orinoco y la ausencia de elementos exclusivos en
las planicies llaneras. Los anibios endémicos están asociados a los ecosistemas montañosos, ya que se encuentran
concentrados en los macizos tepuyanos de la Guayana venezolana por encima de los 1.500 m.s.n.m., en la vertiente
Al igual que para la clase Amphibia, la región Guayana
reúne la mayor riqueza de reptiles, con 177 especies (78%
del total), seguida por la región andina (Figura 8.13). Por
otra parte, en la cuenca del Orinoco en Colombia el 14%
de los anibios y el 7.2% de los reptiles son endémicos en
el cual la región andina y el piedemonte concentran esta
diversidad. Las regiones Guayana y Andina agrupan el 87%
de los endemismos de reptiles de la Orinoquía venezolana,
circunscritos en su mayoría a las tierras de mayor altura.
Una especie de morrona (Amphibaena gracilis), es exclusiva del Delta y áreas inundables de la cuenca media del
271
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
Figura 8.12 Endemismos: anibios.
Figura 8.13 Endemismos: reptiles.
272
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
Especies amenazadas
Orinoco, y otras dos serpientes, Crotalus pifanorum y Crotalus vegrandis, sólo se encuentran en los Estados Guárico
y Monagas -Anzoátegui, respectivamente. Entre tanto, para
Colombia varias especies exclusivas a la región piemontana en el área de Villavicencio corresponden a las serpientes
Atractus punctiventris, Liotyphlops anops, Micrurus medemi, Synophis lassallei y Umbrivaga pyburni. Finalmente
dos especies asociadas a las zonas de transición en la región
del Vichada Micrurus renjifoi y Sibonomorphus mikanii
conocidas únicamente en la localidad típica.
A partir de los criterios relativos a las categorías de amenaza, se identiicaron las especies y áreas en la cuenca Orinoco con mayor vulnerabilidad. Se utilizó la propuesta de la
IUCN Red List (2010), los Libros Rojos de Colombia para
anibios (Rueda et al. 2004) y reptiles (Castaño-Mora 2002)
y el Libro Rojo de la fauna de Venezuela (Rodríguez y Rojas-Suárez 2008). Los grados de amenaza para la diversidad
de anibios se resumen en la tabla 8.4.
Tabla 8.4 Grado de amenaza de los anibios en la cuenca del Orinoco. CO=Libros rojos de Colombia, VN= Libro rojo de Venezuela,
CR= En Peligro Crítico, EN= En Peligro, VU= Vulnerable, NT=Casi Amenazada, LC= Preocupación Menor, DD= Datos Deicientes, SE= Sin Evaluar.
Categoría
CO (2004)
VN (2008)
IUCN (2010)
CR
2
2
9
EN
2
1
7
VU
2
9
28
NT
0
24
4
LC
0
0
153
DD
0
44
54
SE
0
0
11
Total
6
80
266
Peligro crítico (CR)
Para la cuenca se tienen nueve especies de anibios del
orden Anura bajo esta categoría de amenaza, distribuidas
principalmente en la Cordillera Andina (AR4) de Colom-
bia (AR4c) y Venezuela (AR4v); siendo sus distribuciones
asociadas en gran medida a las tierras medias (Tabla 8.5).
Tabla 8.5 Anibios En Peligro Crítico (CR) para cada una de las regiones de la cuenca del Orinoco.
FAMILIA
AROMOBATIDAE
BUFONIDAE
ESPECIE
AR1 AR2
Allobates juanii (Morales, 1994)
AR3
AR4 c AR4 v
1
Mannophryne cordilleriana La Marca 1995 “1994”
1
Atelopus chrysocorallus La Marca, 1996
1
Atelopus guitarraensis Osorno, Ardila y Ruiz , 2001
1
Atelopus mandingues Osorno, Ardila y Ruiz, 2001
1
Atelopus minutulus Ruiz, Hernández y Ardila, 1988
1
273
AR5
AR6 AR7
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
FAMILIA
ESPECIE
AR1 AR2
AR3
AR4 c AR4 v
BUFONIDAE
Atelopus pedimarmoratus Rivero, 1963
1
HEMIPHRACTIDAE
Cryptobatrachus nicefori Cochran y Goin, 1970
1
DENDROBATIDAE
Minyobates steyermarki (Rivero, 1971)
AR5
AR6 AR7
1
Total
0
En peligro (EN)
0
1
6
2
0
0
0
Cordillera de La Costa en Venezuela (AR6); y al igual que
las especies críticamente amenazadas sus patrones de distribución geográica se asocian a las tierras de media y baja
altitud (Tabla 8.6).
Bajo esta categoría de amenaza se registraron para la cuenca siete especies de anibios anuros de dos familias, distribuidas en la Cordillera de los Andes (AR4 cv) y en la
Tabla 8.6 Anibios En Peligro (EN) para cada una de las regiones de la cuenca del Orinoco.
FAMILIA
ESPECIE
AR1 AR2
AR3
AR4 c
Allobates ranoides (Boulenger, 1918)
Aromobates orostoma (Rivero, 1978 “1976”)
AROMOBATIDAE
CENTROLENIDAE
AR4 v
AR5
AR6
AR7
1
1
Aromobates saltuensis (Rivero, 1978)
1
Mannophryne collaris (Boulenger, 1912)
1
Mannophryne yustizi (La Marca, 1989)
1
Centrolene petrophilum Ruiz y Lynch, 1991
1
Hyalinobatrachium esmeralda Ruiz y Lynch, 1998
1
Total
0
0
0
4
1
3
0
1
0
Vulnerable (VU)
Se reportan 28 especies representadas por dos órdenes
Anura y Caudata y distribuidas en siete familias, las cuales
abarcan distribuciones asociadas a los bosques nublados y
tierras altas de la Guayana (AR 3), Cordillera Andina (AR4
cv) y en la Cordillera de La Costa en Venezuela (AR6) (Tabla 8.7).
Tabla 8.7 Anibios Vulnerables (VU) para cada una de las regiones de la cuenca del Orinoco.
FAMILIA
ESPECIE
AR1 AR2 AR3 AR4 c
Allobates humilis Rivero, (1980 “1978”)
AROMOBATIDAE
BUFONIDAE
AR4 v
1
Anomaloglossus breweri (Barrio-Amorós, 2006)
1
Anomaloglossus murisipanensis (La Marca, 1997 “1996”)
1
Metaphryniscus sosae Señaris, Ayarzagüena y Gorzula,
1994
1
Oreophrynella cryptica Señaris, 1995
1
274
AR5
AR6
AR7
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
FAMILIA
BUFONIDAE
CENTROLENIDAE
HEMIPHRACTIDAE
HYLIDAE
ESPECIE
AR1 AR2 AR3 AR4 c
Oreophrynella huberi Diego-Aranzay y Gorzula, 1990
“1987”
1
Oreophrynella macconnelli Boulenger, 1900
1
Oreophrynella nigra Señaris, Ayarzagüena y Gorzula,
1994
1
Oreophrynella quelchii (Boulenger, 1895)
1
Oreophrynella vasquezi Señaris, Ayarzagüena y Gorzula,
1994
1
Centrolene buckleyi (Boulenger, 1882)
1
Centrolene geckoideum Jiménez de la Espada, 1872
1
Cochranella riveroi (Ayarzagüena, 1992)
AR4 v
AR5
AR6
AR7
1
Vitreorana antisthenesi (Goin, 1963)
1
Celsiella revocata (Rivero, 1985)
1
Stefania riveroi Señaris, Ayarzagüena y Gorzula, 1997
“1996”
Stefania schuberti Señaris, Ayarzagüena y Gorzula, 1997
“1996”
1
1
Dendropsophus stingi (Kaplan, 1994)
1
Hyloscirtus platydactylus (Boulenger, 1905)
1
Tepuihyla rimarum (Ayarzagüena, Señaris y Gorzula,
1993 “1992”)
1
1
Pristimantis boconoensis (Rivero et Mayorga, 1973)
1
Pristimantis ainis (Werner, 1899)
1
Ceuthomantis aracamuni (Barrio-Amorós et Molina,
2006)
1
STRABOMANTIDAE Pristimantis douglasi (Lynch, 1996)
1
Pristimantis frater (Werner, 1899)
1
Pristimantis marahuaka (Fuentes y Barrio-Amorós,
2004)
1
Strabomantis ingeri (Cochran y Goin, 1961)
1
Bolitoglossa guaramacalensis Schargel, García-Pérez y
PLETHODONTIDAE
Smith, 2002
Total
1
0
Casi Amenazado (NT)
0
15
8
4
0
2
0
considerados en un nivel medio de amenaza. Las demás
subregiones presentan un número de especies amenazadas
muy bajo (Figura 8.14). Sin embargo, es importante tener
en cuenta que las especies de anibios clasiicadas en la categoría de preocupación menor (LC) no fueron analizadas
por incluir aquellas especies con amplia distribución. En la
cuenca se registran 153 especies en la categoría de amenaza
de menor preocupación, entre tanto, 11 especies de reciente
descripción o reevaluación taxonómica no están evaluadas
y 54 especies están categorizadas con Datos Deicientes
Se registraron cuatro especies en esta categoría de amenaza,
distribuidas en tres familias, asociadas a las tierras altas de
la Guayana (AR3) y Cordillera Andina (AR4) (Tabla 8.8).
La información de las especies mencionadas, de las categorías de mayor amenaza (CR, EN, VU y NT), indica que las
áreas con un mayor número de especies amenazadas son
las regiones de la Guayana (AR3) y de los Andes colombianos (AR4c), mientras los Andes venezolanos (AR4v) son
275
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
Tabla 8.8 Anibios Casi Amenazados (NT) para cada una de las regiones de la cuenca del Orinoco.
FAMILIA
ESPECIE
AR1
HEMIPHRACTIDAE
Stefania satelles Señaris, Ayarzagüena y Gorzula,
1997 “1996”
HYLIDAE
Hyloscirtus jahni (Rivero, 1961)
STRABOMANTIDAE
AR2
AR3
AR4 c AR4 v
AR5
AR6
AR7
0
0
0
1
1
Pristimantis anolirex (Lynch, 1983)
1
Pristimantis savagei (Pyburn y Lynch, 1981)
1
Total
0
0
1
2
1
Figura 8.14 Especies amenazadas: anibios.
(DD) y requieren de especial atención debido a que carecen
de información biológica relevante y de manera potencial
pueden ser elevadas a una categoría de amenaza más signiicativa.
de uso, lo cual ha permitido incluirlos no sólo dentro de la
clasiicación propuesta por la IUCN sino en las categorías
de amenaza en CITES (Tabla 8.9). En la actualidad no se
cuenta con una propuesta de la IUCN para grupos como
serpientes, lagartos y anisbénidos, los cuales al ser evaluados acorde a su patrón de distribución y grado de amenaza
de sus hábitats podría ampliarse la información de estos
grupos. En la tabla 8.9 se resume el conocimiento de acuerdo a las categorías de amenaza propuestas.
En lo que concierne a la diversidad de reptiles, tenemos que
su grado de amenaza ha sido mejor estudiado en algunos
grupos particulares, como las tortugas y cocodrilos, en razón a que son consideradas especies tipiicadas con valor
276
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
Tabla 8.9 Categorías de amenaza de los reptiles en la cuenca del Orinoco. CO= Colombia sensu Castaño et al. (2002), VN= Venezuela, CR= En Peligro Crítico, EN= En Peligro, VU= Vulnerable, NT= Casi Amenazada, LC= Preocupación Menor, DD= Datos
deicientes, SE= Sin Evaluar.
Categoría
CO (2002)
VN (2008)
IUCN (2010)
CR
4
2
3
EN
1
0
0
VU
2
2
4
NT
3
3
0
LC
3
0
3
DD
1
4
1
SE
280
Total
14
11
291
Peligro Crítico (CR)
De acuerdo a la IUCN son reconocidas tres especies de reptiles en esta categoría y la mayor problemática está relacionada con la rápida disminución de sus poblaciones debido
a que están sujetas a presión antrópica (Tabla 8.10).
Tabla 8.10 Reptiles En Peligro Critico (CR) para cada una de las regiones de la cuenca del Orinoco.
FAMILIA
ESPECIE
AR1
AR2
AR3
AR4 c
AR4 v
AR5
CROCODYLIDAE
Crocodylus intermedius Graves, 1819
1
1
1
PODOCNEMIDIDAE
Podocnemis expansa (Schweigger, 1812)
1
1
1
TESTUDINIDAE
Chelonoidis carbonaria (Spix, 1824)
1
1
1
En peligro (EN)
1
AR6
AR7
1
1
1
1
Vulnerable (VU)
No son conocidas categorizaciones por parte de la IUCN
para los reptiles registrados en la Cuenca; sin embargo,
para Colombia Castaño-Mora (2002) propone una especie Chelonoidis denticulata (Linnaeus, 1766), mientras que
para Venezuela está categorizada como “Casi Amenazada”.
Para la cuenca del Orinoco están registradas cuatro especies bajo este criterio de amenaza, todas pertenecientes al
órden Testudines (Tabla 8.11)
Tabla 8.11 Reptiles Vulneables (VU) para cada una de las regiones de la cuenca del Orinoco.
FAMILIA
ESPECIE
AR1
Peltocephalus dumerilianus (Schweigger, 1812)
PODOCNEMIDIDAE
AR3
1
1
Podocnemis erythrocephala (Spix, 1824)
AR4 c
AR4 v
AR5
1
1
Podocnemis uniilis Troschel, 1848
TESTUDINIDAE
AR2
1
Chelonoidis denticulada (Linnaeus, 1766)
277
1
1
1
1
AR6
AR7
1
1
1
1
1
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
Casi Amenazado (NT)
A partir de la información de la UICN en las categorías de
amenaza en estado de Peligro Crítico (CR) y Vulnerable
(VU) se regionalizó el grado de amenaza de las especies en
las subregiones de la Cuenca. En las regiones Llanos (AR1),
Guayana (AR3) y Guaviare-Vichada (AR7) el número de
especies amenazadas es alto, en la zona de transición (AR5)
medio y en el resto de la cuenca muy bajo (Figura 8.15).
De la misma forma que las especies en peligro (EN) no son
conocidas categorizaciones por parte de la IUCN para los
reptiles registrados en la región; sin embargo, Castaño-Mora (2002) propone para Colombia tres especies de tortugas:
Chelus imbriatus (Schneider, 1783), Peltocephalus dumerilianus (Schweigger, 1812) y Podocnemis vogli Muller, 1935
Figura 8.15 Especies amenazadas: reptiles.
Especies con valor de uso
En el convenio CITES se han identiicado bajo el criterio
de explotación comercial tres especies de anibios todas en
el Apéndice II (Tabla 8.12) y 23 reptiles (Tabla 8.13). Para
el caso de las especies de anibios utilizadas en la cuenca
ninguna de las subregiones presenta un nivel de uso alto. La
zona de la Guayana se registró como de uso medio, mientras para las subregiones Amazonia (AR1), Andina colombiana (AR4c) y Guaviare-Vichada (AR7) son consideradas
de uso bajo. Las restantes zonas fueron categorizadas como
de uso muy bajo, pero no signiica que en estas áreas no se
presente algún tipo de uso, sino que hasta el momento no
han sido documentados (Figura 8.16)
En el caso de los anibios y reptiles de la cuenca del Orinoco se han identiicado algunos valores de uso como por
ejemplo:
1) Caza de subsistencia, particularmente en el caso de
algunas especies de tortugas, cocodrilos y lagartos de
mediano porte, donde la captura de adultos para carne
y sus huevos hacen parte de la prácticas antrópicas locales.
2) Uso cultural en donde se incluyen manejos tradicionales enfocado particularmente sobre tortugas.
3) El manejo y explotación comercial que incluye la zoocría y explotación ilegal para los restantes grupos de
reptiles y algunos grupos de anibios.
278
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
Figura 8.16 Valor de uso: anibios.
Figura 8.17 Valor de uso: reptiles.
279
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
El uso registrado de los reptiles en la cuenca ha sido mucho
mayor que el de las especies de anibios. En las subregiones
Llanos (AR2) y Guayana (AR3) se ha registrado un nivel de
uso de especies de reptiles alto y en las zonas de transición
(AR5) y Guaviare-Vichada (AR7) medio (Figura 8.17).
Tabla 8.12 Anibios categorizados en el convenio CITES bajo el Apéndice II para cada una de las regiones de la cuenca del Orinoco.
FAMILIA
ESPECIE
AR1
AROMOBATIDAE
Allobates femoralis (Boulenger , 1884)
1
DENDROBATIDAE
Dendrobates leucomelas Fitzinger in
Steindachner, 1864
1
DENDROBATIDAE
Minyobates steyermarki (Rivero, 1971)
1
Total
AR2
AR3
AR4 c
AR4 v
AR5
AR6
AR7
1
1
0
2
1
1
0
0
1
Tabla 8.13 Reptiles categorizados con el convenio CITES (I, II, III) para cada una de las regiones de la cuenca del Orinoco. Apéndice
I: especies con alta restricción comercial y pueden estar en categorías de amenaza o en proceso de extinción. Apéndice II: especies
con alguna restricción comercial II, pero que no necesariamente presentan categorías de amenaza. Apéndice III: especies con alguna
restricción comercial que requieren de participación multinacional para evitar su pérdida.
FAMILIA
ESPECIE
AR1
AR2
AR3
AR4 c
AR4 v
AR5
1
1
1
1
1
Paleosuchus palpebrosus
(Cuvier, 1807)
1
Paleosuchus trigonatus
(Schneider, 1801)
Caiman crocodilus crocodilus
Linnaeus, 1758
ALLIGATORIDAE
CROCODYLIDAE
Crocodylus intermedius
Graves, 1819
1
Peltocephalus dumerilianus
(Schweigger, 1812)
AR7
CITES
1
1
II
1
1
1
II
1
1
1
1
1
1
1
Podocnemis erythrocephala
(Spix, 1824)
PODOCNEMIDIDAE
IGUANIDAE
1
I
1
1
II
1
II
1
1
1
1
1
1
Podocnemis vogli Muller, 1935
1
1
Chelonoidis carbonaria
(Spix, 1824)
1
1
Chelonoidis denticulata
(Linnaeus, 1766)
1
1
1
1
Iguana iguana Linnaeus, 1758
1
1
280
II
1
1
Podocnemis expansa
(Schweigger, 1812)
Podocnemis uniilis Troschel,
1848
TESTUDINIDAE
1
AR6
II
1
II
II
1
1
1
1
1
1
II
1
II
1
II
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
FAMILIA
ESPECIE
TEIIDAE
Crocodilurus amazonicus
(Spix, 1825)
TEIIDAE
Tupinambis teguixin
(Linnaeus, 1758)
AR2
AR3
AR4 c
AR4 v
1
1
1
1
1
1
1
1
Corallus caninus
(Linnaeus, 1758)
1
1
Corallus hortulanus
(Linnaeus, 1758)
1
1
Corallus ruschenbergerii
(Cope, 1876)
1
Epicrates cenchria
(Linnaeus, 1758)
1
1
Epicrates maurus (Gray, 1849)
1
1
1
1
Eunectes murinus Linnaeus,
1758
1
1
AR5
CITES
1
II
II
II
II
1
1
1
1
II
II
1
II
1
II
II
Clelia clelia (Daudin 1803)
1
1
1
1
VIPERIDAE
Crotalus durissus cumanensis
(Linnaeus, 1758)
1
1
1
1
1
21
22
7
10
14
6
AR7
1
COLUBRIDAE
Total
AR6
1
1
Boa constrictor Linnaeus 1758
BOIDAE
AR1
II
1
0
III
12
NOMINACIÓN DE ÁREAS
IMPORTANTES PARA LA
CONSERVACIÓN DE LA
HERPETOFAUNA
AMENAZAS, OPORTUNIDADES
Y RECOMENDACIONES PARA LA
CONSERVACIÓN DE LAS ÁREAS
NOMINADAS
En la cuenca del Orinoco se propusieron siete áreas prioritarias para la conservación de los anibios y reptiles (Figura
8.18). En la tabla 8.14 se describe geográicamente cada una
de las áreas nominadas.
Entre las amenazas actuales y potenciales sobre la diversidad de herpetos de la Orinoquía, tenemos que el rápido
crecimiento de las actividades agropecuarias, explotación
minera y crecimiento demográico humano han generado
Tabla 8.14 Áreas nominadas como prioritarias para la conservación de la herpetofauna en la cuenca del Orinoco.
Área nominada
Criterios de delimitación
ANHA1
Formación del Escudo Guayanés. Bosque húmedo siempreverde, limitando al norte con el río
Guaviare. Fauna amazónica no diferente de la del sur
ANHA2
Sedimentos del Terciario y Cuaternario. Vegetación de sabanas, arbustales y bosques de galería. Régimen hídrico contrastante. Especies de amplia distribución
281
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
Área nominada
Criterios de delimitación
ANHA3
Zona de Escudo. Bosques siempreverdes de bajo porte, suelos pobres, subdividido según
mapa. Altos endemismos
ANHA4
Gradiente de humedad: norte - seco y sur - húmedo. Gradiente altitudinal pronunciado con
cambios importantes en composición de especies en distancias cortas, alta diversidad, alto
endemismo
ANHA5
Mezcla de sabanas eólicas y bosques riparios. Mezcla de fauna amazónica, llanera y guayanesa.
Posiblemente especies únicas
ANHA6
Mezcla de bosques semideciduos y siempreverdes. Gradientes altitudinales. Riqueza y endemismos moderados
ANHA7
Área Guaviare - Vichada
Figura 8.18 Áreas nominadas para la conservación: anibios y reptiles.
una fuerte presión sobre algunas poblaciones de anibios y
reptiles. En el caso particular de las especies asociadas a los
Andes y la Guayana, no se ha evaluado el efecto de estas
actividades y es en estos sitios, donde las especies poseen
mayor número de restricciones a nivel de sus hábitats, lo
que puede llevar a estas poblaciones al punto de una clara
y rápida disminución. Sin embargo, esta problemática no
es exclusiva de esta subregión, dado que hasta el presente
existen algunas subregiones de la cuenca, que carecen de
información real para identiicar el impacto de esta problemática en las poblaciones de herpetos.
Es signiicativo el rápido desarrollo de actividades relacionadas con la expansión de los bloques de explotación de
hidrocarburos y otros minerales en algunas subregiones de
la cuenca, como las zonas de piedemonte (siendo las de ma-
282
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
BIBLIOGRAFÍA
yor riqueza) y planicies de inundación, áreas en las cuales
no se ha evaluado la diversidad y dinámica de las comunidades de herpetos.
•
Igualmente, el desarrollo de actividades agrícolas industriales, han generado modiicaciones en la estructura de
los ambientes originales y una presión signiicativa sobre
las especies, siendo de especial importancia los cultivos de
palma, arroz, pino y los precursores de drogas ilícitas, ya
que han impulsado en particular procesos de deforestación
y contaminación con agroquímicos.
•
•
Asimismo, la introducción puntual y reciente de especies
exóticas con la consecuente competencia y disminución
de las poblaciones nativas de anibios y reptiles, sumado a
nuevas problemáticas como la detección conirmada en la
cuenca, basado en técnicas moleculares, de agentes patógenos responsables del declive de anibios en el mundo como
el hongo Batrachochytrium dendrobatidis, ha aumentado la
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ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
b
a
c
d
e
a.
b.
c.
d.
e.
f.
Podocnemis vogli. Foto: J. C. Señaris.
Trachycephalus venulosus. Foto: A. Acosta.
Pseudoboa neuwiedii. Foto: A. Acosta.
Rhinella humboldti. Foto: A. Acosta.
Plica umbra. Foto: J. C. Señaris.
Iguana iguana. Foto: J. C. Señaris.
f
288
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
g
h
i
j
k
g.
h.
i.
j.
k.
l.
Dipsas catesbyi. Foto: A. Acosta.
Chelonoidis carbonaria. Foto: F. Rojas-Runjiac.
Caiman crocodilus. Foto: J. C. Señaris.
Elachistocleis ovalis. Foto: A. Acosta.
Rhaebo guttatus. Foto: J. C. Señaris.
Bolitoglossa altamazonica. Foto: A. Acosta.
l
289
Penelope jacquacu. Foto: N. Ocampo
9.
AVES
M. Lentino.
Sebastián Restrepo-Calle, Miguel Lentino y Luis Germán Naranjo
INTRODUCCION
de biocombustibles, la proliferación de enclaves mineros y
de extracción de hidrocarburos, así como los procesos de
transformación de la estructura agraria y los patrones de
tenencia de la tierra en Venezuela, son entendidos como
los motores más poderosos de transformación del paisaje y
en consecuencia de la degradación de procesos ecológicos
y sociales.
La región de la Orinoquia es tal vez, una de las áreas más
interesantes para el estudio de la avifauna neotropical. La
heterogeneidad de sus paisajes, sus condiciones biogeográicas y la dinámica de ocupación del territorio de sus habitantes, son aspectos que aseguran una importante riqueza
natural, expresada en la ocurrencia de alrededor de 1200
especies de aves entre las zonas andinas y los llanos de Colombia y Venezuela, y las transiciones hacia la cuenca amazónica. No obstante, la enorme extensión de esta región,
estimada en cerca de 161.000.000 ha, así como el relativo
difícil acceso a algunos sectores, especialmente en Colombia, han impedido profundizar en el conocimiento actual
sobre la ecología, distribución y uso de la avifauna en ciertos tipos de ecosistemas, tema que plantea serios desafíos
para su estudio y conservación.
No sólo los efectos directos de estas dinámicas han venido impactando el estado de conservación de la avifauna de
la Orinoquia. También procesos localizados, relacionados
con prácticas derivadas de los motores de transformación,
afectan la coniguración del paisaje y por tanto comprometen la existencia de grupos de especies de aves. Alteraciones
en la dinámica de fuegos en la sabana, inducidas por la extensión de la frontera agrícola y pecuaria, tala de bosques
y siembra de cultivos de uso ilícito y otros cultivos temporales, transformaciones en los regímenes de inundación
en función del aprovisionamiento para los cultivos, renovación de los frentes de colonización y desplazamiento humano, constituyen factores complementarios de amenaza para
la biodiversidad. De esta manera, la planiicación para la
conservación de la avifauna del Orinoco, debe comprender
no solo las presiones de la transformación a gran escala,
sino también las afectaciones derivadas de procesos de menor escala.
Si bien numerosas iniciativas de conservación han sido desarrolladas tanto en Colombia como en Venezuela, con el
in de garantizar el mantenimiento de diferentes grupos de
especies y ecosistemas, en la actualidad esta rica biodiversidad continúa enfrentando amenazas que ponen en peligro
su integridad y permanencia. La transformación de diferentes coberturas vegetales con ines productivos y en consecuencia los cambios en los regímenes de propiedad, son
factores preponderantes que suponen una aceleración en
la pérdida de especies. Cambios especíicos en el territorio,
tales como la extensión de cultivos para la agroindustria
291
AVES
F. Trujillo.
SUBREGIONES
BIOGEOGRÁFICAS
Los factores de amenaza que han sido nombrados para la
Orinoquia, sumados al poco conocimiento sobre las especies y sus formas de afectación, representan un reto para la
planiicación de la conservación (McNish 2007, Umaña et
al. 2009). Evidentemente la asimetría en el conocimiento
sobre la distribución y la ecología de las especies, sumada a la localización de los procesos de amenaza, conforman escenarios críticos que demuestran la importancia
de abordar la conservación y el estudio de la avifauna de
esta región. Bajo este panorama, presentamos un ejercicio de priorización de zonas de interés para el estudio y la
conservación de la avifauna en la cuenca del Orinoco en
Colombia y Venezuela, en el que, a partir de subregiones
biogeográicas, evaluamos, esfuerzos de muestreo, nivel de
conocimiento, vacíos de información, así como la riqueza
de especies, la presencia de endemismos y de taxones amenazados, elementos relacionados con el uso de las especies
y la prioridad alrededor de ciertos procesos ecológicos tales
como las migraciones.
La Orinoquia presenta una importante variedad de hábitats, cada uno con una singular diversidad de especies asociada. Con el propósito de facilitar la identiicación de áreas
prioritarias para el estudio y la conservación de la avifauna,
deinimos 15 unidades de análisis o subregiones geográicas (Tabla 9.1), con base en la información geográica y el
criterio de los especialistas, siguiendo aspectos como las
formaciones vegetales predominantes, accidentes geográicos, aspectos climáticos e información sobre la distribución
de las especies.
Andes – piedemonte sur (av-a1)
Comprende los bosques húmedos del piedemonte de los
departamentos de Meta y Guaviare en Colombia, un área
de clara inluencia andino-amazónica. Esta es una región
Tabla 9.1 Subregiones de análisis.
Código
Subregión
Área (ha)
av-a1
Andes - piedemonte sur
2.076.892
av-a2
Andes - piedemonte centro
2.502.553
av-a3
Andes - piedemonte Mérida
2.965.525
av-a4
Andes - piedemonte de la cordillera de la costa
2.116.121
av-b1
Llanos aluviales planos recientes occidentales
7.328.794
av-b2
Llanos aluviales planos recientes centro - oriente
8.641.777
av-c1
Llanos inundables
11.478.562
av-c2
Altillanura
11.025.117
av-d1
Transicional bosque húmedo Orinoco - Amazonas
12.513.300
av-d2
Alto Orinoco - río Caura
11.867.507
av-d3
Río Caura-Imataca
7.271.011
av-e
Tepuyes
13.605.001
av-f
Delta del Orinoco, inluencia marina
2.780.337
av-h
Cauce del río Orinoco
3.695.611
av-g
Serranía de La Macarena
292
293.060
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Andes – piedemonte Cordillera de la Costa (ava4)
con formaciones boscosas húmedas situadas entre los 5003000 m.s.n.m. aproximadamente, lo que implica una enorme riqueza de aves y un gradiente importante de formaciones vegetales. Es una región con procesos evidentes de
transformación a causa de la expansión agrícola y pecuaria,
así como con marcadas dinámicas de extracción maderera.
Comprende las áreas boscosas en un rango aproximado
de 300 a 2500 m de altitud, en el límite norte de la cuenca
del Orinoco en Venezuela. Los bosques nublados de la cordillera de la costa, tanto en la cadena del litoral como del
interior, constituyen un área de vital importancia para los
procesos migratorios transcontinentales.
Andes – piedemonte centro (av-a2)
Bosques del piedemonte llanero, en los departamentos de
Arauca, Meta y Casanare en Colombia. Son áreas de corredores boscosos en la franja de los 2500 y 3000 m.s.n.m., con
transición de áreas de bosque altoandino a bosque húmedo,
ambos intervenidos.
Llanos aluviales planos recientes occidentales (avb1)
Cinturón de ecosistemas de transición entre la zona del
piedemonte y las grandes llanuras del Orinoco. Se extiende desde los departamentos de Guaviare, Meta, Casanare y
Arauca en Colombia y los estados Apure, Barinas y Portuguesa en Venezuela, cubriendo una franja entre los 300 y
100 m de elevación. Son áreas caracterizadas por un relieve
levemente quebrado por colinas con formaciones de bosques riparios y áreas con vegetación emergente y sabanas
en las partes bajas.
Andes – piedemonte Mérida (av-a3)
Los bosques de esta región en Venezuela comparten elementos constitutivos del paisaje andino de piedemonte de
las zonas Centro (av-a2) y Sur (av-a3), en la que son representativos gran variedad de ecosistemas entre los que se
destacan los bosques altoandinos y de transición hacia las
tierras bajas del Orinoco (Lentino et al. 2010).
Figura 9.1 Subregiones biogeográicas: aves. Nota: Para efectos cartográicos las 15 subregiones fueron agrupadas en 10 subregiones.
293
AVES
F. Trujillo.
Llanos aluviales planos centro-oriente (av-b2)
Alto Orinoco – río Caura (av-d2)
Comprende los estados centrales llaneros de Venezuela
ubicados al norte del río Orinoco, así como una pequeña
parte del norte del Estado Bolívar. Es una región relativamente plana, con presencia de bosques de galería, bosques
tropóilos y sabanas arboladas de Trachypogon. Las sabanas
abiertas que se encontraban al sur de los estados Anzoátegui y Monagas han sido transformadas en extensas plantaciones de pino caribe. Los morichales son característicos
de esta región.
Comprende todas las tierras bajas del Estado Amazonas y
parte de las del Estado Bolívar, incluyendo las importantes
cuencas de los ríos Ventuari y Caura, ésta última una de
las cuencas más prístinas del mundo. Al sur de la región
hay una fuerte inluencia amazónica, mientras que al norte
dominan las especies guayanesas. Se caracteriza por sus extensos bosques de selva pluvial, bosques sobre arenas blancas, bosques inundables y sabanas. Esta región se caracteriza por una notable riqueza de avifauna que se asocia con los
ecosistemas boscosos de los bosques del margen derecho
del río Ventuari (Lentino 2006).
Llanos inundables (av-c1)
Constituyen una de las subregiones de mayor extensión en
la cuenca, distribuida en las zonas planas e inundables de
los departamentos de Meta, Casanare y Arauca en Colombia, y de los estados Apure, Barinas, Cojedes, Guárico y sur
de Portuguesa en Venezuela. Se caracterizan por ser áreas
de relieve homogéneo que transforman su oferta natural en
función de los pulsos de inundación de los principales ríos
de la Orinoquia; con las características sabanas de banco,
bajío y estero (Ramia, 1967), y con presencia de bosques de
galería, arbustales de transición y grandes cuerpos de agua
asociados a formaciones vegetales como los morichales. Tal
vez esta es una de las áreas más importantes en términos
de recursos para las aves acuáticas. Al tiempo, las llanuras
inundables son las áreas en las que se concentra la mayoría de las prácticas agrícolas y pecuarias de la Orinoquia
(Araújo et al. 2006).
Río Caura – Imataca (av-d3)
Esta área comprende desde la margen derecha del río Caura hasta la penillanura del Cuyuní al este. Es un paisaje ondulado de colinas, cubierto por densos bosques pluviales en
el este y por sabanas arboladas al oeste. Al sur se extiende
desde los 500 m.s.n.m. de elevación, hasta los piedemontes
de los tepuyes. Gran parte de la zona está siendo afectada
por la minería y la explotación boscosa, así como por grandes desarrollos hidroeléctricos.
Tepuyes (av-e)
De todas las áreas consideradas esta es la de mayor extensión. La principal característica isiográica del Escudo
Guayanés es la presencia de los tepuyes, montañas de arenisca, con fuertes acantilados y cimas planas que alcanzan
los 3000 m de altura en algunos puntos, lo que hace que la
cobertura de vegetación sea muy variada, comprendiendo
herbazales y arbustales tepuyanos, selvas nubladas y pluviales. El sur de la región está limitado por todas las serranías
que separan la cuenca del Orinoco con la del Amazonas.
Altillanura (av-c2)
La subregión de altillanura se restringe a la porción colombiana de la Orinoquia que se extiende al sur oriente
del departamento del Meta y en el Vichada. Se caracteriza
por sus amplias extensiones de sabanas secas con tramos
de bosques de galería. La altillanura es una región con un
relieve homogéneo marcado por leves prominencias no
inundables en época de lluvias. Esta es una subregión actualmente muy intervenida por la avanzada de los cultivos
de gran extensión asociados a las políticas nacionales de
biocombustibles.
Delta del Orinoco: área con inluencia marina
(av-f)
Comprende extensas llanuras planas de menos de 100 m
de elevación en la zona más oriental de las tierras bajas de
la Guayana Venezolana. El delta del río Orinoco, es uno de
los mayores humedales de América Latina. Sus condiciones
de baja presencia de población y grandes extensiones de hábitats inalterados lo convierten en una de las regiones más
prístinas de Venezuela. Sin embargo, el área contiene, a la
vez, grandes yacimientos de hidrocarburos que la convierten en una importante región para el desarrollo de la industria petrolera. El delta del Orinoco está densamente cubierto por vegetación acuática: herbazales inundables, bosques
de pantano, morichales y manglares (Lentino 2004). La
presencia de grandes marismas lo identiican como un área
importante de descanso y/o paso de un gran número de
migratorios boreales.
Transicional bosque húmedo Orinoco-Amazonas
(av-d1)
Zonas bajas de los departamentos de Guaviare, Guainía y
Vichada en Colombia, hasta el caño Casiquiare en el Estado Amazonas en Venezuela. Son formaciones de bosque
húmedo en áreas de colinas y planicies, con presencia de
aloramientos rocosos del Escudo Guayanés. En estas áreas
boscosas, con marcada inluencia amazónica en su vegetación, también se encuentran enclaves de pastizales dentro
de lo que se denomina el cinturón de sabanas arenosas.
294
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Serranía de La Macarena (av-g)
Esfuerzo de muestreo
Zona norte de la Serranía de La Macarena, en los departamentos de Meta y Guaviare en Colombia. Se caracteriza
por sus formaciones boscosas húmedas y sub-húmedas con
inluencia amazónica y andina. Es una zona con una acentuada riqueza de avifauna y marcados procesos de transformación del paisaje, principalmente asociados a la colonización agrícola y pecuaria, y también al aumento en las áreas
sembradas de cultivos de uso ilícito.
El análisis evidenció que la mayor parte del trabajo ornitológico en la cuenca se ha concentrado principalmente en
Venezuela, en las subregiones del Alto río Orinoco-Caura
(av-d2) y río Caura-Imataca (av-d3), cuyos datos demuestran una amplia producción de información (Lentino
2006). Otras subregiones tales como los piedemontes Sur
(av-a1) de Mérida (av-a3) y de la Cordillera de la Costa (ava4) presentan niveles medios en los esfuerzos de muestreo.
Este mismo resultado se encontró para subregiones como
la Serranía de la Macarena (av-g), las llanuras aluviales (avb1), el cauce del Orinoco (av-h) y los Tepuyes (av-e) (Molina y Salcedo 2009), así como en las áreas costeras (Lentino 2004, Lentino y Salcedo 2008). Otras zonas como la
Altillanura (av-c2) y los llanos aluviales planos orientales
(av-b2) presentan niveles bajos, mientras que las áreas de
transición entre los ecosistemas del Amazonas y el Orinoco
(av-d1) dejan ver esfuerzos de muestreo muy bajos.
Cauce del río Orinoco (av-h)
Área deinida por el cauce principal del río Orinoco desde
la Estrella Fluvial del Inírida, en la conluencia de los ríos
Guaviare, Inírida, Atabapo y Orinoco, hasta Barrancas en
el este, donde comienza la región deltaica. El cauce del río
es un área con predominancia de cuerpos de agua y ecosistemas asociados entre los cuales se encuentran caños tributarios de aguas negras y claras, madreviejas, lagunas e
islas permanentes y estacionales, playas y zonas de rebalse.
Al estar esta subregión directamente deinida por el cauce
del río, la oferta de hábitats para la avifauna es sumamente dinámica y depende de las diferentes épocas climáticas.
En algunos casos, las islas sobre el Orinoco y sus aluentes constituyen valiosos refugios para especies con rangos
de distribución restringida, como en el caso del guitio del
Orinoco (Synallaxis beverlyae) (Hilty y Ascanio 2009), del
semillero de Carrizal (Amaurospiza carrizalensis) (Lentino
y Restall 2003) y carpinterito pechiblanco (Picumnus spilogaster orinocensis) (Restrepo-Calle 2007b), el zarcerito
cabecirufo (hlyposis sordida) (Ocampo et al. 2007, Castro
com. pers 2007), al igual que los bosques inundables de sus
márgenes (hripophaga cherriei) (Lentino et al. 2007).
En la mayoría de las ocasiones, los esfuerzos de muestreo
están determinados por las facilidades de acceso a las regiones, el esfuerzo regular en el tiempo y la distribución
amplia en localidades por subregión. Aunque existen casos
en los cuales se tiene información generada a través de esfuerzos altos de muestreo, esta realidad no necesariamente
da cuenta de la totalidad de las subregiones identiicadas.
No obstante, los esfuerzos de muestro permiten observar
que el conocimiento asociado a cada subregión está bastante vinculado con esfuerzos relativamente bajos o asociados
a localidades especíicas (Murillo-Pacheco 2005, RestrepoCalle y Peña-Herrera 2005).
Los estudios sobre la avifauna en la cuenca muestran así,
fuertes contrastes en cuanto a los esfuerzos de muestreo
y los niveles de conocimiento actual. Por ejemplo, algunas subregiones presentan niveles altos de conocimiento y
niveles medios de esfuerzos de muestreo, lo que se asocia
principalmente, al tipo de estudios llevados a cabo en dichas áreas. En el caso de la Subregión piedemonte de la
Costa (av-a4) concurre un alto nivel de conocimiento (Figura 9.3) y un nivel medio de esfuerzo de muestreo (Figura
9.2). En este caso, los aportes al conocimiento provienen de
los monitoreos realizados en la Estación Biológica La Mucuy y en la Estación Biológica de Rancho Grande, en donde se han logrado registros durante varios años sobre aves
migratorias y residentes, así como sobre el uso del hábitat
(Renjifo et al. 2005, Lentino et al. 2009).
ESTADO DEL CONOCIMIENTO
Se analizaron tres variables para deinir cuatro niveles de
estado del conocimiento de la avifauna de la Orinoquia:
(1) esfuerzo de muestreo, (2) nivel de conocimiento y (3)
vacíos de información. El esfuerzo de muestreo fue deinido como la intensidad y la frecuencia de los estudios que
aportaran al conocimiento de la avifauna y su ecología en
esta región. Los niveles de conocimiento se deinieron en
función de los volúmenes de información existentes tanto
en publicaciones como en literatura gris. Finalmente, los
vacíos de información hicieron referencia a áreas en las que
los dos aspectos anteriores presentan valores evidentemente bajos, usualmente asociados a zonas no visitadas o con
avifaunas algo desconocidas.
Nivel de conocimiento
Varias subregiones tuvieron niveles de conocimiento bajos,
entre ellas el piedemonte centro (av-a2), la Serranía de La
295
AVES
F. Trujillo.
Figura 9.2 Esfuerzo de muestreo: aves.
Macarena (av-g), los llanos aluviales planos orientales y occidentales (av-b1 y av-b2), los llanos inundables (av-c1) y
el cauce del río Orinoco (av-h). Pese a algunas contribuciones sustanciales hechas con propósitos descriptivos sobre
esta avifauna (Borrero 1960, Olivares 1962, 1982, Meyer
de Shauensee y Phelps 1972. Hilty y Brown 1986, Lentino
1997, Hilty 2003), existen pocos estudios que describan
aspectos ecológicos y biológicos y mucho menos sobre la
afectación poblacional de las especies por causa de procesos de transformación de hábitats o el uso por comunidades locales.
se ha tenido en estas subregiones, así como a la presencia
constante de ornitólogos y observadores de aves, quienes a
través de expediciones históricas, estudios cortos y visitas
oportunistas, han generado una base importante de información, principalmente sobre la distribución de las especies que allí ocurren.
Finalmente están los niveles más bajos de conocimiento,
atribuidos a las subregiones de la Altillanura (av-c2) y a las
zonas de transición entre el Orinoco y el Amazonas (avd1). Particularmente las zonas de transición han sido poco
visitadas y el nivel de conocimiento se reiere básicamente a los diferentes inventarios y caracterizaciones de corto
término llevados a cabo por Botero (1998), Stiles (1998),
Muñoz y Repizzo (2001) y Repizzo (2003). Igual ocurre en
la altillanura, cuya gran extensión, la homogeneidad aparente de sus hábitats y las diicultades de acceso, han determinado los tipos de estudio realizados y por ende el nivel
de conocimiento. Algunas iniciativas han hecho aportes
signiicativos en estas áreas, en la altillanura las caracterizaciones recientes hechas en reservas privadas (Ocampo
Otras subregiones, tales como la zona de inluencia marina
del Orinoco (av-f), los piedemontes sur y de Mérida (av-a1
y av-a3), el Alto Orinoco – río Caura (av-d2), el río Caura – Imataca (av-d3) y la zona de tepuyes (av-e) tuvieron
niveles medios de conocimiento. El nivel de conocimiento
y esfuerzo de muestreo para estas regiones son coincidentes en su mayoría, a diferencia de las subregiones del Alto
Orinoco – río Caura (av-d2) y del río Caura – Imataca (avd3). Esta coincidencia puede atribuirse al fácil acceso que
296
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Figura 9.3 Nivel de conocimiento: aves.
et al. 2007, Restrepo-Calle 2007b, Restrepo-Calle 2007c,
Restrepo-Calle 2009) y en las zonas de transición, en áreas
de manejo indígena (IAvH 2007a, 2007b, Restrepo-Calle
2007a, Naranjo et al. 2008).
más altos en cuanto a vacíos de información, fue el área de
transición entre la Orinoquia y la Amazonia.
BIODIVERSIDAD
Vacíos de información
En cuanto a los vacíos de información (Figura 9.4) se corrobora el análisis de las dos variables anteriores. Las subregiones en donde es mayor el esfuerzo de muestreo y el nivel
de conocimiento, tienen menores vacíos de información.
Este es el caso de las áreas con mejores condiciones de acceso, especíicamente la subregión de los llanos aluviales planos del occidente (av-b1). Esta situación también ocurre,
en menor medida, en las subregiones más orientales de la
cuenca tales como las zonas costeras en el Delta (av-f), los
altos ríos Orinoco – Caura (av-d2), el alto Caura – Imataca
(av-d3) y los tepuyes (av-e), donde es apenas consecuente
que los vacíos sean bajos en función de los valores medios
y altos de los esfuerzos de muestreo y los niveles de conocimiento. Como era de esperarse, la subregión con los valores
Con el propósito de evaluar el estado de biodiversidad y
la conservación de la avifauna de la cuenca del Orinoco,
se analizaron los siguientes aspectos: (1) riqueza, (2) endemismos, (3) niveles de amenaza, (4) valores de uso y (5)
procesos ecológicos. En el caso de la avifauna este último
aspecto se reirió particularmente a las migraciones.
Riqueza de especies
Si bien para la cuenca del Orinoco no existe un listado
uniicado que exprese la riqueza de su avifauna, diversas
aproximaciones a su estudio sí permitieron observar las
diferencias alrededor de este tema. Subregiones como las
del piedemonte sur (av-a1) y de transición entre el Orinoco y el Amazonas (av-d1), tuvieron las riquezas estimadas
297
AVES
F. Trujillo.
Figura 9.4 Vacíos de información: aves.
más altas (Figura 9.5), lo que se relaciona directamente con
una inluencia amazónica que se expresa tanto en paisajes
y tipos de hábitats, como en grupos de especies con distribuciones propias de estas áreas. Igual ocurre en las zonas
de la Macarena (av-g), y de las zonas de inluencia directa
del Escudo Guayanés, tales como las zonas altas de tepuyes
(av-e), del Orinoco y el Caura (av-d2 y av-d3).
Las llanuras planas occidentales (av-b1), al igual que las subregiones de piedemontes de Mérida, de los Andes (av-a3
y av-a2), presentan niveles medios de riqueza. Otras subregiones como la de la costa (av-a4), la altillanura (av-c2), los
llanos inundables (av-c3) y la zona deltaica (av-f) tienen
valores bajos de riqueza, en algunos casos explicada por la
homogeneidad de sus hábitats, su gran extensión, y la condición especialista de muchas especies en relación con sus
recursos limitantes. Finalmente, la menor riqueza de aves
de la cuenca ocurre en La Serranía de la Macarena (av-g) y
en las llanuras centrales y orientales (av-b2). Por su parte,
Los análisis de riqueza se desarrollaron a partir de la caliicación de umbrales construidos sobre el número de especies que se conocen a partir la experiencia de los autores, y
de diferentes listados de soporte.
Tabla 9.1. Rangos de riqueza de avifauna en la Orinoquia.
Umbral de caliicación
Número de especies
Alto
≥500
Medio
401 – 499
Bajo
300 – 400
Muy bajo
<300
Riqueza
298
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Figura 9.5 Riqueza de especies: aves.
Nivel de endemismo
las subregiones de la cuenca que cubren un gradiente altitudinal más amplio, que presentan mayores variaciones
estacionales, y que son espacios de conluencia entre diferentes unidades biogeográicas, como el caso de la zona de
inluencia del Escudo Guayanés y tepuyes (av-e), el cauce
del río Orinoco (av-h), las zonas de transición (av-d1) y el
piedemonte sur (av-a1), estuvieron asociadas con mayores
heterogeneidades de hábitats, y en consecuencia presentaron las avifaunas más ricas.
La clasiicación de los niveles de endemismo siguió los siguientes umbrales (Tabla 9.2) y respondió al conocimiento
de los autores y a listados y trabajos previos (Stiles 1997,
Hilty 2003, McNish 2007, Umaña et al. 2009).
La Figura 9.6 muestra los endemismos de las aves en las
diferentes subregiones de la cuenca. En este sentido, el panorama es bastante particular pues a diferencia de la zona
Tabla 9.2 Rangos de endemismo para la avifauna de la Orinoquia.
Umbral de caliicación
Número de especies
Alto
>26
Medio
11 - 25
Bajo
1 - 10
Muy bajo
0
Endemismos
299
AVES
F. Trujillo.
Figura 9.6 Endemismos: aves.
de más alta importancia por sus endemismos: la subregión
de los tepuyes (av-e), y las regiones de piedemonte que presentaron valores medios, el resto de las subregiones de la
cuenca tienen pocas especies endémicas. La condición anterior puede explicarse a partir de las grandes extensiones
de hábitats de la cuenca, las cuales garantizan amplia distribución en la mayoría de las especies de la avifauna. Si bien
existen asociaciones de algunas especies con ciertos tipos
de hábitat, no es frecuente que en estas grandes extensiones
ocurran taxones con rangos restringidos.
bregiones de los andes como las de la cordillera de Mérida
(av-a3) y las de la cordillera oriental colombiana (av-a2),
presentaron valores medios de amenaza, en parte referidas
a los mismos procesos de degradación y transformación del
paisaje.
En el anexo 10 se presenta la lista de especies endémicas
para la cuenca, distribuidas en los dos países.
En general el panorama de la cuenca en términos de las
amenazas para la avifauna, es muy bajo (Figura 9.7). Los
llanos inundables (av-c1) y los altos tepuyes (av-e) tuvieron valores bajos y el resto de las subregiones tuvieron los
valores más bajos posibles. Si bien en cada una de estas subregiones existen procesos que comprometen la salud de
los ecosistemas y sus especies, en casi toda la cuenca, por
su extensión, estos procesos son dispersos. No obstante,
cada una de estas subregiones enfrenta procesos de trans-
La clasiicación de los niveles de amenaza se deinió a partir
del conocimiento y la experiencia de los autores, listados de
especies conocidos (Renjifo, et al. 2002, Rodríguez y RojasSuárez 2008), y registros biológicos con referencia espacial.
Nivel de amenaza
En cuanto a la distribución de amenazas en la cuenca, la
subregión del piedemonte sur (av-a1) es la que presenta
los valores más altos. En gran medida, lo anterior puede
explicarse en función de los fuertes procesos de colonización que producen transformaciones del paisaje. Otras su-
300
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Tabla 9.3 Rangos de especies amenazadas en la Orinoquia.
Umbral de caliicación
Número de especies
Alto
15
Medio
10 - 14
Bajo
5-9
Muy bajo
1-4
Amenaza
Figura 9.7 Especies amenazadas: aves.
Valor de uso
formación evidentes que, como en el caso de las llanuras
inundables (av-c1) y la altillanura (av-c2), han sido velozmente intervenidas por proyectos agrícolas y pecuarios de
gran escala.
Desde el punto de vista de los usos de la avifauna, la información analizada en la cuenca dejó ver dos tendencias:
subregiones en las que el uso es alto y otras donde es muy
bajo, desde donde se deinieron los rangos para su evaluación. Las primeras, comprenden las partes bajas de la cuenca, donde es común que los diferentes pobladores utilicen
especies cinegéticas (Anatidae, Cracidae, entre otros) y de
interés comercial ornamental (Psittacidae e Icteridae, prin-
El anexo 11 presenta un listado de las especies amenazadas
para la cuenca en los dos países, diferenciadas por categorías de amenaza en el nivel regional.
301
AVES
F. Trujillo.
cipalmente). En zonas como el cauce del río Orinoco (avh), las zonas de piedemonte (av-a1, av-a2, av-a3 y av-a4),
y la zona de altos tepuyes, los valores de uso fueron muy
bajos, acusando tan solo ocasionalmente actividades de cacería (Figura 9.8).
Gran parte de la avifauna de la cuenca del Orinoco tiene
movimientos estacionales, deinidos por el invierno de los
países septentrionales y australes, o por la dinámica hídrica
en los principales tributarios del Orinoco. En este sentido,
la posibilidad de identiicar áreas a partir de las cuales se
garantice dicho proceso ecológico, es fundamental al momento de determinar áreas de interés para la conservación
de dicha avifauna.
Procesos ecológicos
Este tema de interés para la conservación de la avifauna en la cuenca abordó particularmente el proceso de las
migraciones. Cada una de las subregiones identiicadas
tiene condiciones especíicas de oferta de recursos, sobre
las cuales estos procesos pueden desarrollarse o limitarse.
La mayoría de las subregiones de la cuenca tuvieron bajos
valores en términos de su importancia para los procesos
migratorios. Sin embargo, ciertas áreas como la cordillera
Tabla 9.4 Rangos de especies usadas en la Orinoquia.
Umbral de caliicación
Número de especies
Alto
4
Muy bajo
1
Usos
Figura 9.8 Valor de uso: aves.
302
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
NOMINACIÓN DE ÁREAS
IMPORTANTES PARA LA
CONSERVACIÓN
de Mérida (av-a3), piedemonte de la Cordillera de la Costa
(av-a4) y la zona del río Orinoco (av-h), tuvieron valores altos, relacionados con su importancia dentro de las diferentes rutas migratorias transcontinentales. Otras subregiones
de importancia para tales procesos ecológicos, fueron las
sabanas inundables (av-c1) y la zona deltaica (av-f) (Figura 9.9). En el caso de las sabanas, su importancia se asocia
tanto con movimientos estacionales de grupos de aves particulares (como el caso de las acuáticas) en función de los
pulsos de inundación, algunas pequeñas áreas son utilizadas por los patos Dendrocygna como lugar de muda, para
luego migrar a otros humedales de la cuenca o fuera de ella
(Gómez-Dallmeier y Cringan 1989), o como rutas parciales
para los movimientos migratorios de especies poco conocidas como tibi-tibe (Bartramia longicauda) o atrapamosca
tijereta (Tyrannus savana). Finalmente, la importancia de
la zona del delta, para los procesos migratorios se asocia
con la oferta permanente de hábitat para que aves acuáticas,
principalmente playeras (Charadriiformes) utilicen las playas y los planos lodosos como áreas de invernada.
Para la conservación de la avifauna en la cuenca del Orinoco, fueron nominadas 21 áreas de interés (Figura 9.10,
Tabla 9.5). Su selección obedeció a varias consideraciones,
principalmente al estado del conocimiento (fortalezas y vacíos), a la presencia de amenazas, la importancia ecológica
y las posibilidades para gestionar la conservación.
Las áreas seleccionadas como prioritarias para la conservación de la avifauna en la cuenca del Orinoco dan cuenta
de la heterogeneidad de ambientes y procesos y pretenden
centrar la atención en diferentes escenarios desde los cuales pueda garantizarse la permanencia de la avifauna de la
región. Las 21 áreas seleccionadas son representativas de
cada una de las subregiones identiicadas y por tanto de las
especies que en ellas ocurren. El portafolio que estas áreas
constituyen, se piensa como una base útil para la deinición
de agendas para la gestión de la conservación.
Figura 9.9 Áreas de importancia para procesos migratorios: aves.
303
AVES
F. Trujillo.
Tabla 9.5. Áreas nominadas para la conservación de la avifauna en el Orinoco.
Código
Área nominada
Criterios para su delimitación
AV1
Macarena - Tinigua- Picachos
Polígono combinado de las tres áreas, incluyendo el cañón del río Duda.
AV2
Guatiqíia - Buena Vista- Guayabetal
Bosque de piedemonte del río Guatiquía hasta bosques andinos de
Guayabetal.
AV3
Orocué- Cusiana- Cravo Sur
Conluencia de los ríos Cravo Sur y Pauto con el rio Meta, incluyendo
Carimagua y la parte alta del río Tomo.
AV4
Sabanas inundables río Ariporo
Interluvio de los caños El Aceital y la Hermosa en el municipio de paz
de Ariporo.
AV5
Conluencia río Meta - Casanare
Interluvio de los ríos Casanare y Meta , desde la conluencia de los
mismos al occidente hasta la desembocadura del caño Pica Pico.
AV6
Tamá
Área protegida ya delimitada.
AV7
Sierra Nevada de Mérida
Área protegida ya delimitada.
AV8
Guaramacal
Área protegida ya delimitada.
AV9
Guatopo
Área protegida ya delimitada extendiendo en su ladera sur hasta la cota
de los 300 metros.
AV10
Sabanas inundables del bajo Apure
Delimitado por el río Guariquito en el este, en el sur por el Arauca hasta
Mantecal, al norte por el Baúl, abarcando las sabanas de banco, bajío y
esteros.
AV11
Orinoco Medio – Caura-Caicara
Áreas aguas abajo del río Orinoco entre la población de Caicara hasta la
boca del río Caura, y aguas arribas del Caura hasta Maripa, incluyendo
las lagunas del Caura.
AV12
Bajo Orinoco -Catillos de
Guayana Imataca
Contempla aguas abajo del río Orinoco entre las población de Castillos
de Guayana y el caño Acoima.
AV13
Cinaruco
Área protegida ya delimitada.
AV14
Conluencia Meta-Orinoco-Bita
Desde la desembocadura del Meta hacia el sur hasta aproximadamente
la mitad de la distancia entre Puerto Carreño y Puerto Ayacucho, y
desde allí hacia el oriente aproximadamente hasta las cabeceras del caño
Blanco. El polígono incluye las vegas y la desembocadura del Bita.
AV15
Tuparro - Sipapo
Polígono actual del PNN Tuparro ampliado hacia el oriente para cruzar
el río Orinoco y conectarse con la Reserva Forestal de Sipapo.
AV16
Estrella Fluvial de Inírida
Desde la desembocadura del Atabapo al oriente hasta Laguna Negra y
caño Bocón al occidente, incluyendo la vega norte del Guaviare y de allí
hacia el sur hasta los cerros de Mavicure.
AV17
Ventuari
Curso del río Ventuari hasta el delta del mismo en el Orinoco.
AV18
Duida
Área protegida ya delimitada, extendiendo su cobertura hasta la cota de
los 100 metros.
AV19
Canaima-Gran Sabana
Área ya deinida, extendiendo hasta el sur con los límites con Brasil.
304
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Código
Área nominada
Criterios para su delimitación
AV20
Delta del Orinoco - Capure
Área deinida, extendiendo hacia el norte hasta la población de Capure.
AV21
Guaquinima - Paragua
Área ya deinida, extendiendo hasta la cota de los 100 m en el rio
Paragua.
Figura 9.10 Áreas nominadas para la conservación: aves.
AMENAZAS, OPORTUNIDADES
Y RECOMENDACIONES PARA
LA CONSERVACIÓN DE LAS
ÁREAS NOMINADAS
lerantes a las transformaciones y por ende con un impacto
negativo sobre la riqueza local de aves.
Los llanos constituyen una de las principales áreas para la
reproducción y alimentación de aves acuáticas. El conocimiento actual sobre estas aves nos indica que ejercen un
papel importante en el funcionamiento de los ecosistemas
acuáticos, pero que aún no sabemos suiciente, para comprender su función de depredadores tanto en áreas naturales como agrícolas. Es necesario conocer el impacto de los
pesticidas en las poblaciones de aves, así como en la transmisión de enfermedades virales (Bosh et al. 2007). Otras
especies tienen valor económico como alimento para la
El panorama de amenazas que tienen las aves en la cuenca
se reiere en general a grandes procesos de transformación
que ocurren en la cuenca. El cambio de las áreas naturales
por cultivos, pastizales o plantaciones forestales tiene un
fuerte impacto sobre las comunidades de aves, incrementándose la sustitución de unas especies por otras más to-
305
AVES
F. Trujillo.
BIBLIOGRAFÍA
población humana, por lo que la ejecución de adecuados
planes de manejo es fundamental para la supervivencia de
las especies y su preservación como recurso.
•
Entre las oportunidades se destaca la posibilidad de estudios de rutas migratorias tanto de especies migratorias
boreales como australes. Aparentemente, los llanos constituyen el área principal de invernada de especies australes
como el atrapamosca tijereta (Tyrannus savana) y la golondrina de río (Progne tapera), así como de otras especies
migratorias boreales amenazadas como el pájaro arrocero
(Spiza americana) especie que se agrupa en dormideros
de miles de individuos.
•
•
•
Es necesario estudiar las migraciones locales de aves acuáticas, como los patos guiriríes (Dendrocygna spp) en los
llanos o las que realizan los cormoranes (Phalacrocórax
brasilianus) entre la costa y los llanos, esto nos permitirá
entender y proceder de forma correcta en su manejo como
recurso, comprendiendo por ejemplo el impacto que los
cormoranes ejercen en las granjas camaroneras en Venezuela.
•
•
•
•
La experiencia conseguida a través del sistema de redes de
AICAS (Áreas de Importancia para la Conservación de las
Aves) ayuda a establecer políticas de conservación a nivel
regional, promoviendo a la vez, la identiicación de nuevas áreas dado el apoyo internacional con el que cuenta,
y el interés creciente que despierta esta metodología en la
comunidad de ornitólogos y los aicionados a las aves (Lentino et al. 2005). La identiicación de áreas de interés para la
conservación de la avifauna debe integrar dinámicas institucionales locales alrededor del uso del territorio, así como
promover el acople de diferentes instrumentos aplicados a
su conservación.
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306
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BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
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AVES
F. Trujillo.
b
a
c
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e
a.
b.
c.
d.
e.
f.
Amauroespiza carizalensis. Foto: M. Lentino.
Cathartes aura. Foto: M. Lentino.
Dendrocincla merula. Foto: J. Zamudio-Asoc. Calidris.
Pithys albifrons. Foto: J. Zamudio-Asoc. Calidris.
Eudocimus ruber. Foto: M. Lentino.
Myrmotherula cherrieri. Foto: S. Restrepo.
f
308
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
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g.
h.
i.
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k.
l.
Heterocercus lavirvertex. Foto: S. Restrepo.
Dendroica cerulea. Foto: M. Lentino.
Progne chalybea. Foto: M. Lentino.
hripophaga cherriei. Foto: M. Lentino.
Todirostrum maculatum. Foto: M. Lentino.
Turdus nudigenis. Foto: S. Restrepo.
309
Panthera onca. Foto: S. Winter - Panthera
10.
MAMÍFEROS
F. Trujillo.
Fernando Trujillo González, Marisol Beltrán Gutiérrez, Angélica Diaz-Pulido, Arnaldo
Ferrer Pérez, Esteban Payan Garrido
INTRODUCCIÓN
nes de grandes extensiones y altura en Venezuela, a aloramientos esporádicos y de altura intermedia en Colombia,
al oeste del río Orinoco. Esto ha generado que muchos de
estos aloramientos se comporten como islas con procesos
de endemismos tanto en lora como fauna.
Los recursos naturales de la cuenca del río Orinoco en Colombia y Venezuela han sido caracterizados y valorados a
un nivel biológico, ecológico y social por medio de iniciativas puntuales de organizaciones e instituciones públicas y
privadas en ambas naciones. La dinámica poblacional de las
especies de fauna silvestre, así como la fragmentación y reducción de su hábitat natural en esta vasta región, son consecuentes con el acelerado crecimiento de las actividades
antrópicas productivas, extractivas y comerciales, sumadas
a drásticos cambios en los ciclos climáticos. Acompañando
estos procesos, se han obtenido numerosos diagnósticos y
programas enfocados al manejo y la conservación de los
ecosistemas presentes en la cuenca.
Adicionalmente, procesos hidrológicos puntuales relacionados con factores como la dinámica sucesional, la continuidad hidrológica, los ciclos de inundación, la mezcla de
aguas, la sedimentación y la colmatación, están ecológicamente relacionados con el mantenimiento de las especies
de mamíferos en la cuenca (Suárez-Pacheco 2004).
Bajo las distintas iguras de conservación, las especies de
mamíferos suelen considerarse como “focales”, cuyas necesidades de hábitat y función ecosistemica aseguran la persistencia de otras especies (Lambeck 1997). La diversidad
de mamíferos produce un rango de procesos (herbivoría,
predación, descomposición) que a su vez, inluencian otros
elementos de la biodiversidad. Por esto, es importante reconocer el valor de la conservación de estas especies, poniendo atención particularmente a aquellas endémicas con
hábitats reducidos y en estado de amenaza (Kerley et al.
2003).
En este capítulo se divide la cuenca del Orinoco de acuerdo
a factores que condicionan la distribución de las especies de
mamíferos allí presentes, como las cuencas hidrográicas y
los límites naturales que forman las comunidades de vegetación. La heterogeneidad de estos paisajes brinda múltiples recursos para el establecimiento de los mamíferos, que
por ejemplo, utilizan los bosques de galería como corredores de distribución, lo cual se releja en una mayor densidad
y diversidad de este grupo taxonómico en áreas de bosque
que en hábitats abiertos (Ludlow y Sunquist 1987). Igualmente, los procesos geológicos en la región han generado
un gradiente de aloramientos rocosos del Escudo Guya-
Por la escala de los movimientos de muchas especies de
mamíferos, se ha validado la importancia de mantener la
311
MAMÍFEROS
F. Trujillo.
SUBREGIONES
BIOGEOGRÁFICAS
integridad ecológica de los bosques de galería e inundables,
que funcionan como corredores biológicos. Estas zonas actualmente están en diferentes niveles de deterioro principalmente por actividades antrópicas como la deforestación
y las quemas extensivas, que ameritan estudios especíicos
para evaluar el nivel de amenaza sobre estos corredores de
fauna.
La siguiente propuesta de división de la cuenca del Orinoco
se hizo de acuerdo a dos factores principales que afectan
la distribución de la mastofauna: (1) las subcuencas hidrográicas y (2) el tipo de paisaje que forma distintos tipos de
cobertura vegetal (Figura 10.1).
Aunque la riqueza y el endemismo de especies de grupos
indicadores como los mamíferos, relejan distintos patrones de distribución geográica, estas medidas de la biodiversidad son utilizadas con frecuencia como herramientas
para la priorización de áreas de conservación (Olson et al.
2001). Para lograr esto, se requieren aportes desde la biogeografía, la taxonomía, la biología de la conservación y la
ecología del grupo de especies de mamíferos, de tal modo
que las diferentes subregiones de la cuenca sean consideradas, así como la integración del conocimiento de los actores
que han trabajado y estudiado dichos sitios.
Deinición de las subregiones biogeográicas
M1. Andina
Región de alta montaña con gradiente altitudinal superior
a los 1000 m.s.n.m. Se caracteriza por presencia de la vegetación paramuna, bosques altoandinos y andinos que, en
su mayoría están incluidos dentro de áreas protegidas, y
bosques subandinos, que se ven afectados por la actividad
humana. Esta zona abarca los lancos de la cordillera oriental que entran en contacto con la cuenca del río Orinoco.
Figura 10.1 Subregiones biogeográicas: mamíferos.
312
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
M6. Guayana
En Colombia, abarca los departamentos de Caquetá, Huila,
Meta, Cundinamarca, Boyacá, Arauca, Santander y Norte
de Santrander; mientras que en Venezuela comprende los
estados de Tachira, Merida, Trujillo, Lara, Apure, Barinas
y Portuguesa.
Región que representa el 35% del territorio total de la cuenca del Orinoco, y cuyo relieve se constituye por la formación geológica más antigua del precámbrico: el Escudo
Guayanés. Sus paisajes se encuentran dominados por vastas planicies y cerros aislados cubiertos por selvas y sabanas. En Colombia se extiende por los departamentos del
Guainía y Guaviare, mientras que en Venezuela abarca los
estados de Bolivar, Amazonas y Delta Amacuro. Incluye
las formaciones tepuyanas, que se destacan como mesetas
dispersas en toda la región (Pérez-Hernández y Lew 2001).
A pesar de que el sector Andino supone una inmensa diversidad biológica debido a la variedad de ambientes y
condiciones ecológicas que ofrece, en este capítulo no se
consideraron las especies de mamíferos de esta subregión,
las cuales presentan adaptaciones evolutivas particulares
distintas del resto de diversidad de especies de la cuenca
del Orinoco.
M7. Tepuyes
Son un rasgo isiográico característico de las Tierras Altas
de Guayana, que consisten en aloramientos rocosos que
presentan diferentes alturas desde unos cientos de metros
hasta los 3000 m.s.n.m. y un área supericial en sus cumbres
planas que puede alcanzar los 1000 m2. Tienen su mayor representación en Venezuela, aunque también se encuentran
en Colombia (Berry et al. 1995).
M2. Piedemonte
Incluye la transición desde la formación montañosa andina
hacia la llanura Orinoquense, considerando un gradiente
de elevación entre los 1000 y 500 m.s.n.m. Presenta una alta
fertilidad y precipitación que han generado bosques densos que proveen nichos para numerosas especies de lora y
fauna. En esta región se evidencia una fuerte intervención
antrópica relejada en zonas urbanas, agroecosistemas ganaderos, cultivos de palma, arroz y plantaciones forestales.
M8. Delta
Región en el estado Delta Amacuro de Venezuela, constituido por una planicie sedimentaria con una supericie de
23,000 km2, que cuenta con más de 300 caños e innumerables islas luviales (Silva-León 2005). Presenta vegetación
predominante de sabanas, arbustos y manglares.
M3. Serranía de la Macarena
Esta región comparte características de las subregiones colindantes pero no prevalece ningunas ellas en toda el área,
razón por la cual fue clasiicada como una subregión independiente. Las zonas bajas de la serranía comparten similitudes con la zona transicional Orinoco-Amazonas. También se encuentran áreas de sabana, en la zona meridional,
y algunos elementos lorísticos tepuyanos. En las áreas más
altas las características del paisaje son similares a las encontradas en la zona andina (Hernández-Camacho et al. 1992).
ESTADO DEL CONOCIMIENTO
Región con el 42% de supericie total de la cuenca del Orinoco, con extensas sabanas, llanuras inundables, altillanura
y serranías, con sectores de bosque de galería asociados a
los aluentes. Los Llanos colombianos abarcan los departamentos de Arauca, Casanare, Meta y Vichada; y en Venezuela comprenden territorio de los estados de Apure, Barinas, Portuguesa, Cojedes, Guárico, Anzoátegui y Monagas
(Ruíz 2004, Silva-León 2005, Romero et al. 2009).
Los mamíferos presentes en la cuenca del Orinoco fueron
clasiicados en tres categorías:
Mamíferos acuáticos: incluye especies pertenecientes al
orden Cetacea, Mustelidae (nutrias únicamente) y Sirenidae.
Mamíferos pequeños: incluye especies pertenecientes a los
órdenes Chiroptera y Rodentia, a excepción del chigüiro
(Hydrochoerus hydrochaeris).
Mamíferos medianos y grandes: incluye todas las demás
especies de mamíferos excepto las pertenecientes a los órdenes anteriormente mencionados en las otras dos categorías.
M5. Zona transicional Orinoco-Amazonas
Esfuerzo de Muestreo
Su formación geológica hace parte del Escudo Guyanés,
presenta un paisaje de terrazas altas (“tierra irme”) en los
cuales crece bosque heterogéneo no inundable y zonas más
bajas con bosques inundables. Cuenta con elementos lorísticos y faunísticos comunes de la Orinoquía y Amazonia.
En la cuenca del Orinoco ninguna región cuenta con un
alto esfuerzo de muestreo de mamíferos. Es necesario y
prioritario para la conservación de la mastofauna adelantar
investigaciones biológicas y ecológicas de estas especies en
la región.
M4. Llanos
313
MAMÍFEROS
F. Trujillo.
En Colombia se han realizado estudios de inventarios de
este grupo taxonómico en distintas zonas de la cuenca del
Orinoco (Cuervo-Diaz et al. 1986, Hernández et al. 1984,
Mejía 1995, Rodríguez -Mahecha et al. 1995, Alberico et al.
2000, Alberico y Rojas 2002, Mantilla-Meluk et al. 2009).
Particularmente para la zona transicional Orinoco-Amazonas, en el sector denominado Estrella Fluvial de Inírida, se
han realizado caracterizaciones generales de la mastofauna
(Cadena y Angel 1998, Muñoz y Repizzo 2001, Ferrer y Beltran 2009).
conservación para los mamíferos del Escudo de la Guayana
en Venezuela (Lim 2003).
El nivel de esfuerzo de estudios mastofaunísticos en la
cuenca del Orinoco se caliicó cualitativamente (en las categorías Alto, Medio, Bajo y Muy bajo) con base en el criterio de expertos que han trabajado por largo tiempo en la
cuenca.
Mamíferos acuáticos
Para los mamíferos acuáticos, el mayor esfuerzo de muestreo se ha llevado a cabo en las subregiones de los Llanos y
Delta. El esfuerzo es bajo en las zonas transicional Orinoco-Amazonas y Piedemonte; y se clasiicó como Muy bajo
para la subregión de la Guayana. Debido a las condiciones
de la formación geológica de los tepuyes, el rango de distribución de los mamíferos acuáticos no incluye estas regiones (Figura 10.2).
Desde la década de los 70 en Venezuela se han hecho inventarios de mastofauna para sitios puntuales de la Orinoquia,
a través de colectas y avistamientos de mamíferos (Handley
1976, Gardner 1988, Ochoa et al. 1988, Ojasti et al. 1992,
Soriano y Ochoa 1997, Linares 1998; Rivas 1998).
En el siglo XXI, las expediciones multidisciplinarias han
sido un importante método de estudio de este grupo taxonómico en la cuenca (Ochoa y Aguilera 2003, Ochoa et al.
2005, Ochoa et al. 2008, Rivas et al. 2008, Sanchez-Hernández y Ferrer-Pérez 2008, Lew et al. 2009a, 2009b). Complementario a lo anterior, se han establecido las prioridades de
Mamíferos pequeños
El estudio de mamíferos pequeños corresponde a inventarios aislados en regiones especíicas de la región, con niveles muy bajos de muestreo en la región de los Llanos y
Figura 10.2 Esfuerzo de muestreo: mamíferos acuáticos.
314
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Figura 10.3 Esfuerzo de muestreo: mamíferos pequeños.
Tepuyes. En la zona de transición Orinoco-Amazonas no
se han generado procesos de investigación continuos, y debido a sus condiciones aisladas y escasas de infraestructura,
el esfuerzo ha sido limitado, por lo que se clasiicó como
bajo (Figura 10.3).
plementan el esfuerzo en esta zona. Sin embargo, dichos
documentos son de difícil acceso y no se tiene certeza de la
calidad de la información.
Nivel de Conocimiento
El nivel de conocimiento de todos los grupos es consecuente con el nivel de esfuerzo de muestreo, siguiendo los
mismos patrones descritos anteriormente, con excepción
de los mamíferos medianos y grandes. Dichas especies han
tenido un esfuerzo de estudio mayor en la Guayana que en
las demás subregiones, pero la evaluación del nivel de conocimiento releja que es la región deltaica la que presenta
mayores valores en este aspecto.
Mamíferos medianos y grandes
La cuenca del Orinoco no tiene altos esfuerzos de muestreo
en mamíferos medianos y grandes. La zona de Piedemonte presenta el menor esfuerzo de muestreo en la región;
mientras que las subregiones Delta, Guayana y Transición
Orinoco-Amazonas fueron clasiicadas en la categoría de
esfuerzo de muestreo medio (Figura 10.4).
La subregión Llanos fue clasiicada en la categoría de esfuerzo de muestreo bajo. En Colombia se han realizado
caracterizaciones biológicas alrededor de los mamíferos
de mayor tamaño en esta subregión, en reservas naturales
privadas como Palmarito-Casanare (Diaz-Pulido y Payán 2009) y Bojonawi (Garrote 2007; Rodríguez-Bolaños
2007). Por tratarse de un área de continua exploración y
explotación petrolera, existen informes técnicos que com-
Mamíferos acuáticos
En la subregión de los llanos del territorio colombiano, el
conocimiento ha estado dirigido principalmente a aspectos
de uso de hábitat, abundancia, ecología, genética, acústica e interacciones con pesquerías de las especies acuáticas:
delines (Inia geofrensis) (Trujillo y Diazgranados 2004,
Fuentes et al. 2004, Ruíz-García et al. 2006), manatí antillano (Trichechus manatus) (Castelblanco-Martínez 2004,
315
MAMÍFEROS
F. Trujillo.
Figura 10.4 Esfuerzo de muestreo: mamíferos medianos y grandes.
Figura 10.5 Nivel de conocimiento: mamíferos acuáticos.
316
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
a la ecología y distribución de Inia geofrensis (Beltran 2008)
y Pteronura brasiliensis (Suárez 2010).
Bermúdez-Romero et al. 2004, Castelblanco et al. 2009) y
nutria gigante (Pteronura brasiliensis) (Carrasquilla y Trujillo 2004, Gómez-Serrano 2004, Gómez-Salazar et al. 2009).
Las prioridades de conservación para estas especies están
consolidadas en un plan de manejo y conservación en la
Reserva de Biosfera El Tuparro (Trujillo et al. 2008).
En Venezuela se han abarcado temas de taxonomía, abundancia, distribución y ecología de Trichechus manatus
(Mondoli 1974, Mondoli y Müller 1979, O’Shea et al.
1988, Correa-Viana et al. 1990, Boede-Mujica 1995); de
abundancia, morfología, ecología, dieta y etología de Inia
geofrensis (Trebbau 1975, Schnapp y Howroyd 1992, McGuire y Winemiller 1998, Carantoña 1999, Rodríguez 2000,
Escovar 2002); reportes de distribución de Sotalia luviatilis
y S. guianensis (Boher et al. 1995, Linares 1998) y Pteronura
brasiliensis (Mondoi y Trebbau 1978, 1997).
Especíicamente para las especies Inia geofrensis y Sotalia
luviatilis, en el marco del Programa de Estimaciones de
Abundancia de Delines de Río en Suramérica, se realizó un
estudio poblacional y de uso de hábitat de estas especies en
los cauces de los ríos Meta y Orinoco, desde la conluencia
de estos ríos hasta la región deltaica (Trujillo et al. 2010).
Ambas especies de delines junto a los manatíes del género
Trichechus son consideradas como migratorias por realizar
movimientos dentro de sus ciclos de vida a lo largo del río
Orinoco y sus aluentes de forma transfronteriza entre Colombia y Venezuela (Trujillo 2009).
Mamíferos pequeños
Para los mamíferos pequeños el nivel de conocimiento es
mayor en las zonas del Piedemonte andino-orinoquense
y la región deltaíca (Figura 10.6), en donde el estudio de
las comunidades de quirópteros ha sido reforzado por distintos grupos de investigación en ambos países. En el caso
de la Orinoquia colombiana se ha profundizado el estudio
de la distribución de los murciélagos (Muñoz-Saba et al.
El nivel de conocimiento en la zona transicional OrinocoAmazonas ha sido caliicado como bajo, y ha estado basado
casi exclusivamente en trabajos de tesis de grado dirigidos
Figura 10.6 Nivel de conocimiento: mamíferos pequeños.
317
MAMÍFEROS
F. Trujillo.
1997; Mantilla-Meluk et al. 2009) con énfasis en la familia Phyllostomidae (Mantilla-Meluk y Ramírez-Chaves en
preparación).
análisis de mercado de productos derivados del chigüiro
(Rodríguez et al. 2003; Aldana-Domínguez et al. 2007).
Adicionalmente, en los últimos años se han realizado estudios de distribución y abundancia de pecaríes (Pecari tajacu
y Tayassu pecari) y tapires (Tapirus terrestris) en el Parque
Nacional Natural El Tuparro en la Orinoquia colombiana,
que muestran densidades comparativamente más bajas que
las reportadas en la Amazonia para las mismas especies
(Gómez y Montenegro 2010).
Mamíferos medianos y grandes
Gran parte de la cuenca, las subregiones Llanos, Guayana y
la zona de Transición Orinoco-Amazonas presenta un nivel de conocimiento bajo sobre los mamíferos medianos y
grandes, mientras en el Piedemonte, estas especies han sido
escasamente estudiadas. Sin embargo, la subregión Delta se
consideró con un nivel de conocimiento medio, el mayor
en comparación a las demás subregiones de la cuenca (Figura 10.7).
En cuanto a primates, la Universidad de los Andes en
Colombia ha profundizado en los temas de distribución,
ecología y dieta, principalmente del churuco (Lagothrix
lagothrichia) en el Parque Nacional Natural Tinigua y la
Serranía de la Macarena (Stevenson 1998; Stevenson et al.
2002, 2005; Wagner-Medina et al. 2009).
A pesar de que la mayor parte de la cuenca muestra un
nivel bajo de conocimiento, existen investigaciones recientes y puntuales en torno a ciertos grupos de mamíferos de
gran tamaño. El chigüiro (Hydrochoerus hydrochaeris), por
ejemplo, es una de las especies con mayor información y
mejor estudiada en la cuenca del Orinoco. Se han desarrollado estudios sobre la estructura de las poblaciones (Aldana-Domínguez et al. 2002), estimaciones poblacionales,
preferencias de hábitat, preferencias alimenticias e incluso
Por otra parte, los felinos han sido estudiados en ambos
países abordando temáticas sobre distribución, estimación
de densidad, ecología, estado de conservación y conlictos
sociales de este grupo con actividades ganaderas (FUDECI
1995; Payan et al. 2007; Díaz-Pulido y Payan 2010). Actual-
Figura 10.7 Nivel de conocimiento: mamíferos medianos y grandes.
318
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
mente se desarrolla un plan de conservación alrededor del
jaguar (Panthera onca) que busca asegurar la conectividad
entre sus poblaciones a lo largo de todo su rango de distribución geográica, incluyendo áreas de la cuenca del Orinoco (Rabinowitz y Zeller 2010).
con el in de identiicar niveles de riesgo por actividades
antrópicas. Igualmente es importante evaluar más cuidadosamente ecosistemas que se consideran homogéneos desde
el punto de vista del paisaje, pero que en la práctica tienen
una gran cantidad de mosaicos de micro hábitats que generan condiciones ecológicas diferentes y que pueden albergar diferentes tipos de mastofauna.
Vacíos de Información
En la Orinoquia los vacíos de información asociados a los
mamíferos se deben principalmente al tamaño de la cuenca, con grandes áreas donde no se han realizado muestreos,
debido principalmente a diicultad de acceso y costos de
desplazamiento, como son las zonas de Tepuyes, Llanos,
Macarena y de Transición entre la Orinoquia y la Amazonía. En Colombia, se suma el factor de la presencia de grupos armados al margen de la ley que limitan la posibilidad
de realizar investigaciones.
En Colombia estudios de abundancia y dinámica poblacional son escasos, con excepción de los casos puntuales
mencionados en la sección anterior. A través de procesos
a mediano plazo de grupos de investigación con recursos
humanos y inancieros constantes, se ha logrado ampliar
información relacionada con delines de río, murciélagos,
chigüiros, primates y felinos.
Mamíferos acuáticos
En general los vacíos en conocimiento están categorizados
en un nivel medio para toda la cuenca, a excepción del Piedemonte (Figura 10.8). Para esta subregión no se tiene información robusta sobre la presencia, distribución y abundancia de las especies de nutrias, y no se reportan cetáceos
ni sirénidos.
En las zonas donde hay información, generalmente corresponde a estudios básicos de distribución y ecología. En
prospecto, se evidencia la necesidad de profundizar en los
inventarios biológicos de zonas aún desconocidas; y reforzar el conocimiento en la ecología de especies cuyos rangos
de hábitat son muy restringidos y de hábitos migratorios,
Figura 10.8 Vacíos de información: mamíferos acuáticos.
319
MAMÍFEROS
F. Trujillo.
Mamíferos pequeños
Como se mencionó anteriormente, la quiropterofauna ha
sido estudiada principalmente en el Piedemonte AndinoOrinoquense y la región Deltáica (Figura 10.9), por lo que
en estas regiones existe información acerca de la compo-
sición y ecología de las especies de murciélagos que allí se
distribuyen. Para el resto de la cuenca, no se registra signiicativamente la generación de información para el orden
Rodentia, evidenciando un amplio vacío de información.
Figura 10.9 Vacíos de información: mamíferos pequeños.
Mamíferos medianos y grandes
dinámica poblacional e interacción entre especies. En las
subregiones Andina y Delta, el nivel de vacío de información es medio, ya que existen grupos de investigación trabajando de manera regular en estas zonas (Figura 10.10).
En un gran porcentaje de la regíón (>75%) los vacíos de
información son altos. La carencia de infomación se presenta en todos los niveles (genética, composición de especies, poblaciones y comunidades), para lo que se requieren
estudios de biología, ecología y distribución de las especies,
320
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Figura 10.10 Vacíos de información: mamíferos medianos y grandes.
De acuerdo a esto, se dedujo que en la zona de la Guayana
existe la mayor riqueza de mastofauna, seguido de las regiones de Llanos, Piedemonte y Delta. Las subregión de Tepuyes, Macarena y la zona transicional Orinoco-Amazonas,
registran una baja riqueza, lo cual está relacionado con el
nivel de esfuerzo de muestreo en estas zonas (Figura 10.11).
BIODIVERSIDAD
Riqueza de especies
Para comparar y valorar la riqueza de mastofauna en las subregiones de la cuenca, el valor total de especies registradas
en la cuenca del Orinoco (318) (Ferrer et al. 2009) se fragmentó en cuatro para deinir los rangos de las categorías de
clasiicación (Tabla 10.1).
Recientemente, a través de un esfuerzo binacional de recopilación de información, se consolidó un listado basado
Tabla 10.1 Categorías y criterios tenidos en cuenta por la mesa de expertos en mamíferos para clasiicar la riqueza de mamíferos en
las subregiones de la Orinoquia.
Categoría
Criterio según el número de
especies
Muy baja
0-80
Baja
81-159
Media
160-238
Alta
239-318
321
MAMÍFEROS
F. Trujillo.
Figura 10.11 Riqueza de especies: mamíferos.
Tabla 10.2 Riqueza de especies, familias y géneros distribuidos en las principales subregiones de la cuenca del Orinoco.
Taxa
RIQUEZA DE ESPECIES
Fam.
Gen.
Piedemonte
Llanos
Guayana
Delta
TOTAL
DIDELPHIMORPHIA
1
11
18
10
16
12
26
SIRENIA
1
1
0
1
0
1
1
CINGULATA
1
3
3
4
5
2
6
PILOSA
4
5
5
2
6
5
7
PRIMATES
5
11
9
12
15
4
19
RODENTIA
8
36
40
27
45
23
77
LAGOMORPHIA
1
1
2
2
2
0
2
CHIROPTERA
9
62
108
101
124
62
150
CARNIVORA
5
19
18
17
18
11
22
PERISSODACTYLA
1
1
1
1
1
1
1
ARTIODACTYLA
2
4
4
4
5
4
5
CETACEA
2
2
0
2
2
2
2
TOTAL GENERAL
40
156
208
183
239
127
318
322
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Figura 10.12 Riqueza de especies de mamíferos en las principales subregiones.
en los registros de la mastofauna realizados por diversos
grupos de investigación de Colombia y Venezuela (Ferrer et
al. 2009). Como resultado de ello, se estimó la presencia de
318 especies de mamíferos en la cuenca del Orinoco, distribuidas en 12 órdenes (Tabla 10.2).
Endemismos
En dicha recopilación, no se tuvo en cuenta la diversidad
de especies en las subregiones Andina y Serranía de la Macarena; y las regiones de transición Orinoco-Amazonas y
Tepuyes fueron consideradas dentro de la subregión Guayana.
La subregión Guayana representa la zona más endemica de
toda la cuenca. Las demás subregiones cuentan con muy
pocas especies endémicas (Figura 10.13).
La cuenca del Orinoco no se destaca por tener un alto valor de endemismos. A pesar de esto, se hizo el ejercicio de
valorar el nivel de endemismo en las distintas subregiones
(Tabla 10.3).
Al dividir la cuenca en las cuatro subregiones principales, la
mayoría de endemismos corresponden a la subregión Guayana, en donde los Tepuyes que se forman allí representan
el principal factor geográico para esto (Figura 10.14).
Al dividir la cuenca en las cuatro subregiones principales,
la Guayana fue la de mayor diversidad, y la Deltaica la que
registra menor riqueza (Figura 10.12).
Tabla 10.3 Categorías y criterios tenidos en cuenta por la mesa de expertos en mamíferos para clasiicar el endemismo de mamíferos
en las subregiones de la Orinoquia.
Categoría
Criterio según el número de
especies
Muy bajo
0a3
Bajo
4a6
Medio
7a9
Alto
10 a 13
323
MAMÍFEROS
F. Trujillo.
Figura 10.13 Endemismos: mamíferos.
Figura 10.14 Endemismos de mamíferos en las principales subregiones.
324
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Especies amenazadas
A continuación se relacionan las especies que se encuentran en alguna categoría de amenaza de extinción según la
Unión Internacional para la Conservación de la Naturaleza
(IUCN 2010), y los libros rojos de Colombia y Venezuela
(Rodríguez-Mahecha et al. 2006, Rodríguez y Rojas-Suárez
2008) (Tabla 10.4).
De las 318 especies de mamíferos reportadas en la cuenca
del Orinoco, alrededor del 6% (18 especies) se encuentran
en las categorías de amenaza (CR, EN, VU) según la IUCN
(2010). La subregión Guayana presenta el mayor número
de especies amenazadas (Figura 10.15).
Figura 10.15 Especies amenazadas: mamíferos.
Tabla 10.4 Número de especies en las distintas categorías de amenaza de acuerdo a los libros rojos de Colombia (Co), Venezuela (Vn)
y la IUCN. Abreviaturas: En Peligro Crítico (CR); En Peligro (EN); Vulnerable (VU); Casi Amenazada (NT); Preocupación Menor
(LC); Datos Insuicientes (DD).
Categoría
IUCN
(2009)
Co
(2006)
Vn
(2008)
CR
3
2
1
EN
4
3
6
VU
11
6
17
NT
15
3
0
LC
254
1
0
DD
27
0
0
Total
314
15
24
325
MAMÍFEROS
F. Trujillo.
Las especies que han sido clasiicadas en la principales categorías de amenaza en Colombia (Rodríguez-Mahecha et
al. 2006) y en Venezuela (Rodríguez y Rojas-Suarez 2008)
se presentan el Tabla 10.5.
cionales; (4) mascotas; (5) comercio de animales, o partes
de estos incluyendo tráico ilegal; y (6) zoocría.
En las subregiones de Guayana y los Llanos, se encuentran
las especies con el mayor número de usos, mientras que en
los Tepuyes, las especies son escasamente aprovechadas por
las comunidades (Figura 10.16).
Especies con valor de uso
Se establecieron seis usos que las comunidades les dan a los
mamíferos de la cuenca del Orinoco según Ojasti (2000):
(1) caza deportiva; (2) caza de subsistencia; (3) uso cultural,
en donde se incluyen usos medicinales, religiosos o tradi-
El uso más frecuente es el de cacería con ines de subsistencia, pues 73 de las especies de mamíferos listadas son
Tabla 10.5 Lista de las especies de mamíferos que se ubican en las categorías de Peligro crítico (CR), En peligro (EN), Vulnerable
(VU) y Casi Amenazada (NT) de acuerdo a Rodríguez-Mahecha et al. (2006), Rodríguez y Rojas-Suárez (2008).
Categoría de amenaza en Libros Rojos
Especie
Venezuela
Colombia
Trichechus manatus
CR
EN
Priodontes maximus
CR
EN
Pteronura brasiliensis
EN
Lonchorhina fernandezi
EN
Myrmecophaga traidactyla
VU
VU
Aotus brumbacki
Ateles belzebuth
VU
Chiropotes israelita
VU
VU
Dynomis branickii
hyroptera lavali
VU
Speothus venaticus
VU
VU
Lagothrix lagothrica lugens
Leopardus pardalis
VU
NT
Leopardus tigrinus
VU
VU
Leopardus wiedii
VU
NT
Panthera onca
VU
NT
NT
Puma concolor
Lontra longicaudis
VU
Tapirus terrestris
VU
Sotalia luviatilis
VU
Inia geofrensis
VU
326
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Figura 10.16 Valor de uso: mamíferos.
NOMINACIÓN DE ÁREAS
IMPORTANTES PARA LA
CONSERVACIÓN DE LA
MASTOFAUNA
cazadas para tal in; mientras que ocho especies (principalmente felinos) son usadas como fuente de entretenimiento
en la caza deportiva. Veinticinco especies tienen un uso
comercial, especialmente por sus dientes, garras y pieles;
36 presentan un uso cultural (en la mayoría de casos relacionado con medicina); y 35 especies (principalmente ardillas y primates) son utilizadas por las comunidades como
mascotas. Se han llevado a cabo programas de zoocría con
el chigüiro (Hydrochaeris hydrochaeris), y en menor medida de manera experimental, se han realizado esfuerzos en
este sentido con la paca (Cuniculus paca) en varios sectores
de la Orinoquia.
Para los mamíferos de la cuenca del Orinoco fueron nominadas 33 áreas importantes para la conservación de estas
especies (Figura 10.17). Su selección se debe a claros vacíos
de información en estas áreas o a zonas indispensables para
la sobrevivencia de las poblaciones de mamíferos a largo
plazo, principalmente por ser reservorios de fauna o ser
áreas de conectividad entre poblaciones.
Las cuatro especies más explotadas son Leopardus pardalis,
Leopardus wiedii, Panthera onca y Tapirus terrestris, ya que
estas tienen asignados cinco de los seis distintos tipos de
usos considerados.
Los criterios de delimitación de estas áreas considerados
por el grupo de mastozoologos se mencionan en la Tabla
10.6. Cabe mencionar que once de estas áreas corresponden a formaciones de tepuyes en la Guayana Venezolana.
327
MAMÍFEROS
F. Trujillo.
Figura 10.17 Áreas nominadas para la conservación: mamíferos.
De las zonas priorizadas se realizó una evaluación de los niveles de riqueza, endemismo, especies amenazadas y valor
de uso de las especies de mamíferos en cada una de ellas.
Este ejercicio destacó las áreas del Caura, la Estrella Fluvial de Inírida, Imataca (bosques húmedos de Guayana), y
la zona de transición entre la subregión Guayana y Llanos,
como aquellas con mayor importancia para la conservación.
de las actividades de exploración, producción y transporte;
hidroeléctricas, represas y diques; contaminación de los
cuerpos de agua (ej. agroquímicos, mercurio, etc.); minería; monocultivos (agroindustria-biocombustibles); cultivos ilícitos; y deforestación.
El cambio del tipo de uso del suelo de la cuenca es una realidad inminente. La instauración de sistemas de producción masiva como monocultivos de la agroindustria y la
generación de biocombustibles están produciendo cambios
drásticos en el paisaje con consecuencias irreversibles en la
biodiversidad del Orinoco.
AMENAZAS, OPORTUNIDADES
Y RECOMENDACIONES PARA
LA CONSERVACIÓN DE LAS
ÁREAS NOMINADAS
No menos importante, es el efecto que puede estar causando el fuego en la integridad de los bosques de galería y la
interrupción de corredores biológicos (Armenteras et al.
2009). Si bien es cierto que la práctica de quemas en la región se ha usado por cientos de años para adecuar las sabanas a prácticas ganaderas, en las últimas dos décadas se ha
venido usando indiscriminadamente, lo que ha generado
una importante afectación de los bosques naturales, y a su
vez de la fauna que allí habita.
En la cuenca del Orinoco existen amenazas sobre los mamíferos, relacionadas con los proyectos de desarrollo que
han sido impulsados en la última década por grandes inversiones económicas (Silva-León 2005, Andrade-Pérez et
al. 2009). Dentro de dichas amenazas se identiicaron: bloques de explotación de hidrocarburos y las consecuencias
328
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Tabla 10.6 Áreas nominadas como prioritarias para la conservación y criterios para su delimitación.
Región
M1. Andes
M2. Piedemonte
M3. Sierra de la
Macarena
M4. Llanos
M5. Zona transicional OrinocoAmazonas
M7. Tepuyes
Código
Área nominada
Criterios para su delimitación
M1A1
Bosques montañosos cordillera de la
costa.
Vertiente sur del Parque Nacional Guatopo, Venezuela
M1A2
Vallecito-Macapo
Borde sur del Parque Nacional Tirgua (Venezuela) hasta la
parte Norte de Tinaco, con una altitud desde 600 m.s.n.m hacia
arriba.
M1A3
El Piñal
Incluye ríos Azul y Zununga. Límite suroeste Parque Nacional
El Tamá (Venezuela). Sur del río Uribante / oeste de El Piñal.
M1A4
Páramos norte
Incluye la Sierra Nevada del Cocuy al sur del río Arauca, el
límite sur incluye el río Ratoncito (Colombia).
M1A5
Paramos centrales
Incluye las zonas de Páramo de Sumapaz - Chingaza hasta
Zaque, mayor a 3200 msnm.
M2A1
Galeras del Pao
Área de Galeras del Pao
M2A2
El Baúl
Incluye río Portuguesa, río Cojedes al oeste. Al sur río Guanarito viejo hasta Guadarrama por el sureste (Venezuela).
M3A1
Sierra de la Macarena
Sierra de la Macarena desde los 500 m.s.n.m.
M4A1
Humedales del Lipa
Sabanas inundables caño Rosales hasta Cravo Norte (Colombia).
M4A2
Paz de Ariporo
En Casanare (Colombia), abarca sabanas inundables (150
m.s.n.m.) desde el río Ariporo hasta el río Pauto, limitando con
la rivera del río Meta.
M4A3
Cusiana – Cravo Sur
En Casanare (Colombia), desde el río Cusiana al oriente, hasta
el Caño Guirripa al occidente. Al norte desde la cota altitudinal
de 180 m.s.n.m. y al sur el río Meta.
M4A4
Cinaruco
Río Cinaruco hasta la desembocadura en el Orinoco (Venezuela). Oeste desde la Laguna de las Flores y La Culebra.
M4A5
Conluencia Bita-Meta-Orinoco
Conluencia desde el oeste río Junepo. Norte del Orinoco hasta
el brazo la Tigra. Por el sur en caño Dagua.
M4A6
Ribera Arauca
Río Arauca, bosques ribereños del Arauca, incluyendo Saravena
como límite oeste, quebrada Guarico al este.
M4A7
Ribera Casanare
Río Casanare, bosques ribereños del mismo desde las estribaciones del PNN el Cocuy en Tame. Hasta la desembocadura
sobre el río Meta (frontera colombo-venezolana).
M4A8
Ribera Meta
Ribera del río Meta desde el Río Cravo sur hasta la desembocadura del río Casanare (Colombia).
M5A1
Transición Orinoco-Amazonia
En Colombia, en el departamento del Guaviare. Al sur el río Papunaua hasta los nacimientos de los caños en la cuenca. Limita
al este con las cabeceras del río Inírida.
M7A1
Tepuyes Guayana
Tepuyes Guayana
M7A10
Canaima 3
Canaima 3
329
MAMÍFEROS
F. Trujillo.
Región
M7. Tepuyes
M6. Guayana
M8. Delta
Código
Área nominada
Criterios para su delimitación
M7A11
Duida Marahuaca
Duida Marahuaca
M7A2
Sierra Maigualida
Sierra Maigualida
M7A3
Sierra de Parima
Sierra de Parima
M7A4
Mua Sarisariñama
Mua Sarisariñama
M7A5
Alto Paragua 1
Alto Paragua 1
M7A6
Alto Paragua 2
Alto Paragua 2
M7A7
Alto Paragua 3
Alto Paragua 3
M7A8
Canaima 1
Canaima 1
M7A9
Canaima 2
Canaima 2
M6A1
Caura
Al norte limita con el río Orinoco; al oeste con el río Guaniamo; al este abarca desde la desembocadura del río Caura; y al
sur va hasta el raudal Cinco Mil. Al margen izquierdo hasta la
Sierra de Maigualida al sur.
M6A2
Estrella Fluvial de Inírida
Al sur los cerros de Mavicure, al norte caño Ocaro, al oeste
caño Cacao, y al este la comunidad Mínida Vieja sobre el río
Atabapo.
M6A3
Imataca (bosques húmedos Guayana)
Al norte río Grande, abarca bosque Siempreverde y la Ecorregión bosque húmedo de la Guayana.
M6A4
Transición Guayana - Llanos
Divisoria norte del río Vichada, al sur brazo Amanavén, al este
Río Orinoco, al oeste el caño Chupabe abarca hasta el municipio de Cumaribo (Colombia).
M8A1
Delta mangle
Caño Janeida al sur, abarca caño Nabajanuca. Al suroeste hasta
caño Guayaro.
Adicionalmente, existen factores de destrucción del hábitat
natural de estas especies como el crecimiento poblacional y
las consecuencias que este implica, como la ampliación de
infraestructura vial (ferrovías, vías terrestres, hidrovías) y
sobreexplotación directa y/o extracción selectiva de los recursos (e.g. sobrepesca, cacería por retaliación, productos
forestales y no forestales, etc.).
Panthera Colombia y Fundación Horizonte Verde, entre
otros actores, que generan información, gestión, propuestas y acciones de manejo para la Orinoquia y su diversidad
faunística (Gómez-Camelo et al. 2009).
En Venezuela existen instituciones ligadas a iniciativas de
conservación como el Ministerio del Poder Popular para el
Ambiente, el Instituto Venezolano de Investigaciones Cientíicas (IVIC), Fundación La Salle de Ciencias Naturales y
el Museo de Historia Natural La Salle (MHNLS), la Asociación Venezolana para la Conservación de Áreas Naturales
(ACOANA), la Asociación Civil Provita Wildlife Conservation Society (WCS), he Nature Conservancy (TNC) y
Conservación Internacional (CI). De igual manera, participan instituciones educativas como la Universidad Central
de Venezuela (UCV), la Universidad Nacional Experimental de Guayana (UNEG) y la Universidad Experimental de
los Llanos Ezequiel Zamora (UNELLEZ).
Por otra parte, las iniciativas de conservación lideradas por
un conjunto de instituciones y entidades públicas y privadas, son oportunidades de conservación para este grupo taxonómico. En Colombia están presentes el Instituto
de Investigación de Recursos Biológicos “Alexander von
Humboldt”, Corporinoquia, Cormacarena, la Universidad
Nacional de Colombia a través de su sede en Arauca y el
Instituto de Ciencias Naturales (ICN), Unitropico, la Universidad de los Llanos, Pontiicia Universidad Javeriana,
Universidad Distrital de Colombia, WWF Colombia, la
GTZ Colombia, Fundación Omacha, Palmarito Casanare,
330
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
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BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
b
a
c
d
e
a.
b.
c.
d.
e.
f.
Allouata seniculus. Foto: F. Trujillo.
Cuniculus paca. Foto: A. Diaz-Pulido.
Didelphis imperfecta. Foto: J. C. Señaris.
Lontra longicaudis. Foto: F. Trujillo.
Inia geofrensis. Foto: F. Trujillo.
Hydrochoeris hydrochaeris. Foto: F. Castro.
f
335
MAMÍFEROS
F. Trujillo.
h
g
j
i
k
g.
h.
i.
j.
k.
l.
Myrmecophaga tridactyla. Foto: F. Castro.
Odocoileus virginianus. Foto: A. Diaz-Pulido.
Panthera onca. Foto: S. Winter - Panthera.
Pecari tajacu. Foto: F. Trujillo.
Sciurus sp. Foto: F. Trujillo.
Leopardus pardalis Foto: F. Nieto.
l
336
11.
CASOS DE ESTUDIO
Morichal, Casanare. Foto: F. Nieto.
Bagres rayados en un mercado del Orinoco. Foto: F. Trujillo.
EVALUACIÓN
.1
DE LA CONTAMINACIÓN POR MERCURIO EN
PECES DE INTERÉS COMERCIAL Y DE LA
CONCENTRACIÓN DE ORGANOCLORADOS Y
ORGANOFOSFORADOS EN EL AGUA Y
SEDIMENTOS DE LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Fernando Trujillo, Carlos A. Lasso, María Claudia Diazgranados, Oriana Farina,
Luis E. Pérez, Aniello Barbarino, Magdalena González y José S. Usma
RESUMEN
INTRODUCCIÓN
Se realizaron evaluaciones de la contaminación por mercurio en peces de la Orinoquia colombo-venezolana. Se
evaluó la concentración de organoclorados y organofosforados en el agua y sedimentos de la cuenca colombiana
del Orinoco, debido a la fumigación masiva de cultivos
ilícitos que ocurre en la zona. En Colombia, se tomaron
muestras en los ríos Meta, Guaviare, Inirida, Orinoco y la
conluencia Meta-Orinoco. En Venezuela, las evaluaciones
se hicieron en la conluencia del Ventuari-Orinoco, en los
ríos Orinoco y Apure. Se colectaron 198 muestras de tejido
de músculo de peces (Colombia n=92, Venezuela n=106),
pertenecientes a 27 especies. Los resultados muestran elevadas concentraciones de mercurio. En Colombia, 16 de 17
especies analizadas presentaron valores del índice Cuota de
Riesgo (HQ)>1 y en Venezuela 13 de 18 especies. Estos valores sugieren una seria situación de riesgo para la salud de
las poblaciones locales, debido al consumo de pescado. Se
recomienda implementar un programa de monitoreo para
mitigar los efectos de este tóxico no sólo pensando en los
ecosistemas acuáticos y sus especies, sino también en la salud de las comunidades ribereñas, y de las personas que habitan los grandes centros urbanos donde se comercializan
los peces de la región.
Siempre que se habla de regiones como la Orinoquia o la
Amazonía, se asume tácitamente su enorme potencial hídrico como una esperanza a los problemas del siglo XXI,
relacionados con el acceso al agua. Sin embargo, no se ha
tenido en cuenta que ya existen procesos antrópicos que
están creando un impacto negativo de importantes proporciones en lo referente a la contaminación del recurso. A lo
largo de más de cuatro siglos, se han liberado e incorporado grandes cantidades de mercurio a los ríos suramericanos como resultado de la minería aurífera a pequeña escala
o artesanal que se ha desarrollado históricamente en la región. Esta situación ha sido evaluada en regiones como la
Amazonía en Brasil (Lacerda y Salomons 1992; Lacerda y
Marins 1997) y en la Guayana venezolana (Shrestha y Ruiz
de Quilarque 1989, Nico y Taphorn 1994, García-Sanchez
et al. 2006, García-Sanchez et al. 2008, Farina et al. 2009),
donde se han encontrado elevados niveles de mercurio en
el agua, sedimentos y en la biota acuática, indicando una
grave problemática de contaminación por Hg en la región.
En la minería artesanal, el oro es extraído por amalgamación con mercurio metálico (Hgº), el cual es posteriormente volatilizado por calentamiento y liberado al ambiente.
Se estima que un 45% de este mercurio se incorpora a la
columna de agua, y es posteriormente transformado por
los microorganismos en metil mercurio (MeHg), el cuál
Palabras clave: contaminación, mercurio, organoclorados,
organofosforados, Orinoquia, recursos pesqueros.
339
EVALUACIÓN
DE LA CONTAMINACIÓN POR MERCURIO EN PECES DE INTERÉS COMERCIAL
Y DE LA CONCENTRACIÓN DE ORGANOCLORADOS Y ORGANOFOSFORADOS
EN EL AGUA Y SEDIMENTOS DE LA ORINOQUIA
P. Sánchez.
es altamente tóxico. Su dispersión se ve favorecida por los
sedimentos que arrastran las corrientes, especialmente las
de aguas blancas. El restante 55% pasa a la atmósfera en
forma de etil mercurio, quedando latente hasta por 24 meses en zonas secas, y precipitándose relativamente rápido
en regiones con altos niveles de pluviosidad (Veiga et al.
1995). Algunos autores estiman que entre los años 1550 y
1880 se han utilizado más de 200.000 toneladas de mercurio para separar oro por amalgamación, especialmente en
las regiones de los ríos Suramericanos (Nriagu 1993; Villas
Bôas 1997; Maurice-Bourgoin et al. 1999).
En la región de la Orinoquia, la actividad pesquera atiende
dos tipos de mercados: uno a nivel local, especialmente a
través de peces llamados de “escama” (carácidos y cíclidos,
entre otros) y otro en mercados urbanos de grandes ciudades y capitales, especialmente los grandes bagres (peces de
“cuero”) (Ramírez-Gil y Ajiaco-Martínez 2001). Con este
último tipo de comercialización, las connotaciones de la
contaminación por mercurio son severas, pues implican
una amenaza de gran escala a nivel de salud pública, debido
al consumo masivo de peces con elevadas concentraciones
de mercurio.
En el agua el MeHg es rápidamente absorbido en la cadena
alimenticia, desde organismos detritívoros hasta carnívoros, acumulándose en cantidades importantes en peces,
reptiles y mamíferos acuáticos (Rosas y Lehti 1996, Gutleb
et al. 1997) y causando serios efectos en la biota y en las
personas debido a la ingesta de alimentos contaminados
(e.g. pescado) (USEPA 1984, Fréry et al. 2001, Limbong et
al. 2003, Porto et al. 2005, Castilhos et al. 2006).
Adicionalmente, a esta problemática se suma la relativamente reciente actividad de fumigación masiva de cultivos
ilícitos en Colombia, donde se estima que hasta antes del
2001 se habían asperjado más de 200.000 ha de coca y cerca
de 60.000 ha de amapola, utilizando aproximadamente tres
millones de litros de Glifosato (GP) (Vargas et al. 2001).
El efecto que ocasiona este compuesto en los organismos
no ha sido totalmente esclarecido, existiendo opiniones
controversiales acerca de su toxicidad y de la utilización en
Parques Nacionales (Ramírez-Duarte et al. 2003).
Análisis del contenido de mercurio en el cabello y la orina
de habitantes de comunidades en Brasil, muestran que las
concentraciones del metal llegan a ser más altas en personas que se alimentan de peces, que en los mismos mineros
(Rodrígues et al. 1994), alcanzándose niveles preocupantes
en el agua, plantas y peces, como es el caso del río Madeira (Martinelli et al. 1988). La Organización Mundial de la
Salud (OMS), establece como límite máximo de concentración de mercurio 0,5 µg/g o ppm, contrastando con 0.072,7 µgHg/g encontrado en los peces analizados del río Madeira. En ocasiones estas concentraciones fueron halladas
en peces a más de 180 km de distancia de la mina de oro
más próxima (Malm et al. 1990). Por lo que se ha sugerido:
a) la contaminación por mercurio es un proceso dinámico,
b) los organismos con mayores concentraciones son depredadores superiores que van bio-acumulando el metal,
y c) los peces migratorios como en el caso de los grandes
bagres son vehículos de transporte del mercurio a grandes
distancias. Lo cual ha sido determinante en que la problemática de contaminación por mercurio sea considerada de
carácter global.
Por lo tanto, la Fundación Omacha (Colombia) y la Fundación La Salle de Ciencias Naturales (Venezuela), con el
apoyo de WWF Colombia y el Instituto Alexander von
Humboldt, realizaron un primer diagnóstico sobre los niveles de mercurio, organoclorados y organofosforados en
los peces de la región de la Orinoquia. El estudio fue realizado como parte del proyecto Biodiversidad y Desarrollo
de Ecorregiones Estratégicas: Orinoquia. Los objetivos se
enmarcaron dentro del Acuerdo Global de Evaluación de
Mercurio del Programa Ambiental de las Naciones Unidas
(UNEP), especíicamente para evaluar y reportar aportes
antropogénicos de mercurio al medio natural.
MATERIAL Y MÉTODOS
Área de Estudio
Colombia
Se tomaron muestras de peces en cuatro áreas focales seleccionadas a priori, ubicando puntos estratégicos de la
cuenca del Orinoco y teniendo en cuenta la actividad minera en el país (Figura 11.1.1). Durante diciembre de 2003,
se colectaron muestras en la localidad de Puerto Carreño
(Vichada), el centro poblado más oriental de Colombia, lugar en donde la pesca se realiza principalmente de manera
artesanal, aunque paulatinamente se ha incrementado el
número de pesquerías de grandes bagres que son enviados
En Brasil y más recientemente en Venezuela y Colombia se
han comenzado programas pilotos y estrategias para minimizar el impacto del mercurio debido a la minería artesanal. Estas propuestas se han hecho desde el punto de vista
tecnológico, como la implementación de retortas para la
quema de amalgamas y a nivel educacional (Veiga y Meech
1995, Veiga et al. 1995, Pérez et al. 2007, Meneses 2008).
340
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Venezuela
a las principales capitales del país, y la pesca deportiva con
énfasis en el pavón (Cichla sp). En febrero de 2004, se realizó un muestreo en el municipio de Puerto Inírida (Guainía), ubicado en el extremo sur de la región, que funciona
como principal centro de acopio del oro extraído en sus
alrededores. Del 26 al 29 de enero de 2004 se colectaron
muestras en el área de inluencia del municipio de Puerto
López (Meta), y entre los días 11 y 14 de febrero de 2004 se
realizó el muestreo en San José del Guaviare (Guaviare). Estas dos últimas localidades representan puntos medios de
las migraciones de los grandes bagres hacia el piedemonte,
de ahí su importancia en el muestreo para evaluar las concentraciones de mercurio. Posteriormente se llevó a cabo
una segunda fase de colecta en Puerto Carreño en enero de
2005 y Puerto Inírida durante noviembre de 2004.
En Venezuela las muestras se colectaron en el puerto de
desembarque La Ceiba (08° 23´ N – 62° 40´ O), a las afueras de Ciudad Guayana, principal centro poblado de la orilla del río Orinoco en el Estado Bolívar (Guayana venezolana). Allí se adquirió el pescado de los desembarques que
se transportan hasta el mercado de San Félix. In situ, un
técnico revisó periódicamente las capturas de los pescadores artesanales desde el mes de diciembre 2003.
La segunda estación de muestreo fue la conluencia de los
ríos Orinoco y Ventuari, en el Estado Amazonas. Durante
diciembre 2003 se tomaron muestras en la conluencia de
ambos ríos (03° 59´34´´ N – 67° 02´29´´ O). En esta región,
la pesca es de subsistencia y constituye la principal fuente
Figura 11.1.1 Localidades de estudio en Colombia sobre los ríos Orinoco, Inírida, Meta y Guaviare.
341
EVALUACIÓN
DE LA CONTAMINACIÓN POR MERCURIO EN PECES DE INTERÉS COMERCIAL
Y DE LA CONCENTRACIÓN DE ORGANOCLORADOS Y ORGANOFOSFORADOS
EN EL AGUA Y SEDIMENTOS DE LA ORINOQUIA
P. Sánchez.
Colecta de muestras
de proteínas de la población indígena asentada en la zona.
También existe un campamento de pesca deportiva, dirigido fundamentalmente a la captura del pavón o tucunaré
(Cichla spp.). A diferencia de la primera zona de muestreo,
al suroeste de la conluencia del río Ventuari con el río Orinoco, se encuentra el Parque Nacional Yapacana, donde
contradictoriamente existe una alta actividad minera ilegal.
Tejido muscular de peces
En cada localidad se colectaron peces frescos, los cuales
fueron medidos y pesados in situ. Posteriormente se extrajo el tejido del músculo de la parte posterior de la aleta dorsal, en bloques de aproximadamente 3x4cm y 40 g (Figura
11.1.3). Las muestras fueron empacadas en papel aluminio
y bolsas herméticas rotuladas, para luego ser congeladas
hasta su análisis en el laboratorio.
Posteriormente se hizo un muestreo de peces capturados
directamente en el río Apure y/o adquiridas en el mercado
de la ciudad (Figura 11.1.2).
En total se colectaron 198 muestras de tejido de músculo de
peces (Colombia n=92, Venezuela n=106) para el análisis
de la concentración de mercurio total, las cuales pertenecieron a 27 especies identiicadas.
Figura 11.1.2. Localidades de estudio en la Orinoquia venezolana.
342
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Figura 11.1.3 Proceso de extracción de tejido muscular en los peces colectados. Foto: F. Trujillo.
Muestras de sedimento y agua
Para el tejido del músculo de peces se realizó la digestión
ácida de 5 g de la muestra en un Erlenmeyer con 5mL de
ácido nítrico y 5mL de ácido perclórico. Luego de la reacción, se colocó el Erlenmeyer en un plato de calentamiento
por 15 minutos, permitiendo la digestión a una temperatura de 60°C. Posteriormente, la muestra se dejó enfriar y se
adicionaron 10mL de ácido nítrico para realizar una nueva
digestión pero de manera más vigorosa hasta casi sequedad. Después de retirar el frasco y dejar que se enfriara se
adicionó 1mL de peróxido de hidrógeno, repitiendo la digestión hasta que se obtuvo una solución clara. Después se
llevó a un volumen de 50 mL con agua des-ionizada.
Los análisis de organoclorados y organofosforados sólo se
hicieron para Colombia, con un número reducido de muestras, con el objetivo de realizar un primer diagnóstico de la
situación de estos compuestos en los sistemas acuáticos de
la cuenca del Orinoco. En cada una de las localidades se
colectaron dos muestras de sedimento y dos muestras de
agua. Las muestras de sedimento supericial se extrajeron
en la orilla en un lugar alejado del asentamiento, a partir de
una pala. Las muestras fueron almacenadas en bolsas herméticas y mantenidas en frío hasta su llegada al laboratorio.
Las muestras de agua se colectaron en botellas de vidrio de
color oscuro de 1L, a las que se les adicionó 1mL de ácido
ascórbico. Posteriormente las botellas fueron selladas, enfriadas y llevadas al laboratorio para su análisis.
Las muestras de sedimento fueron pesadas entre 1 y 4 g
y se le adicionaron 10mL de ácido sulfúrico concentrado.
Luego se realizaron adiciones sucesivas de 1mL de peróxido de hidrógeno al 50% dejando el tiempo suiciente para la
descomposición del peróxido entre cada adición. Se calentó
la muestra lentamente hasta la descomposición total del peróxido. Posteriormente se dejó la muestra a digestión bajo
calentamiento hasta casi sequedad. Se adicionaron 5mL de
ácido nítrico, repitiendo la digestión varias veces hasta obtener una solución clara. Con agua des-ionizada se llevó la
muestra a un volumen de 25mL.
Determinación de mercurio
En Colombia las muestras fueron procesadas por los laboratorios especializados Daphnia y Asinal en Bogotá, en un
equipo de absorción atómica con generador de hidruros
marca Perkin Elmer. El sistema hidruro/mercurio es usado para obtener una alta sensibilidad en la determinación
de mercurio. El mercurio es determinado por la técnica de
vapor frío, luego de la reducción con borohidruro de sodio.
343
EVALUACIÓN
DE LA CONTAMINACIÓN POR MERCURIO EN PECES DE INTERÉS COMERCIAL
Y DE LA CONCENTRACIÓN DE ORGANOCLORADOS Y ORGANOFOSFORADOS
EN EL AGUA Y SEDIMENTOS DE LA ORINOQUIA
P. Sánchez.
Determinación de pesticidas organofosforados
En Venezuela los análisis fueron llevados a cabo en el Laboratorio de Mercurio de la Estación de Investigaciones
Hidrobiológicas de Guayana, de Fundación La Salle de
Ciencias Naturales.
Tejido muscular
A 10mg de muestra se le adicionaron 30mL de acetona,
luego se homogenizó y se pasó a través de una columna de
sílica gel. Al extracto se le adicionaron 50mL de solución de
cloruro de sodio. Posteriormente, se realizó una extracción
líquido-líquido con diclorometano (2 veces por 30mL). A
continuación, se reunieron las dos fracciones y se pasaron a
través de una columna de sulfato de sodio anhidro, concentrándose a 2mL, luego a sequedad y luego a solvente hexano. La solución se pasó a través de una columna de sílica,
recuperándose en diclorometano para ser concentrado a
0.5mL. Posteriormente se inyectó 1 uL al equipo cromatográico para su lectura.
El método empleado para la detección de mercurio fue
por espectrofotometría de absorción atómica, a través de
un equipo de marca LUMEX, mediante pirólisis a 800 ºC
de las muestras previamente pesadas. Los vapores producidos fueron succionados a través de una celda cerrada para
hacer la medición de absorbancia. Este método evita el
proceso de digestión ácida de las muestras, reduciendo los
errores asociados a esa etapa.
Determinación de pesticidas organoclorados
Tejido muscular
Muestras de agua
A 10g de muestra se le adicionaron en dos ocasiones 30mL
de acetona, homogenizándose y iltrándose, para luego pasar a través de una columna de sílica gel. Las dos fracciones
se juntaron y se pasaron a través de una columna de sulfato
de sodio anhidro, concentrándose primero a 2mL y luego
a sequedad. Posteriormente, se pasó a solvente hexano, y
la solución obtenida se iltró a través de una columna de
C-18, recuperando con diclorometano, concentrándose a
5mL. Finalmente 1 uL de la solución se inyectó al equipo
cromatográico.
Para el análisis de pesticidas organofosforados en muestras
de agua, se adicionaron 25 g de cloruro de sodio a 500 mL
de agua. Luego se realizó una extracción líquido-líquido
con diclorometano (tres veces por 40 mL). Posteriormente,
se reunieron las tres fracciones y se pasaron a través de una
columna de sulfato de sodio anhidro, concentrándose a 2
mL para inalmente inyectar 1 uL al equipo cromatográico.
En la Tabla 11.1.1 se muestran las especiicaciones de las
condiciones de lectura para la detección de los compuestos
organoclorados y organofosforados.
Muestras de agua
Análisis de datos
Para la identiicación de plaguicidas organoclorados se empleó el método oicial de la AOAC 970.52 de 20 g de muestra, sometiéndola a procesos de extracción de acetonitrilo
grado residuo. El extracto obtenido se sometió a partición
líquido-líquido con hexano grado residuo. Este se concentró y el extracto se puriicó sobre una columna de lorisil
activada. Posteriormente, los compuestos de interés se diluyeron con una mezcla de hexano-eter etílico grado residuo
y se concentró hasta 500 uL.
Para evaluar las diferencias en la concentración de mercurio obtenidas en los peces provenientes de las siete localidades estudiadas (Colombia y Venezuela), se utilizaron las
pruebas no paramétricas de Kruskal-Wallis (α=0.05) y posteriormente se comprobaron las posibles diferencias con
la prueba de Mann-Whitney U (α=0.05) con el programa
SPSS 16.0 para MacOS.
Tabla 11.1.1 Características del análisis para detección de organoclorados y organofosforados.
Medición
Especiicaciones
Equipo cromatográico
HRGC Modelo HP 6890
Detector
uECD-temperatura 300°C
Columna
Fase 5% fenil-poli(metilsiloxano) espesor 0.25um, longitud 30m, d.i. 0,25mm
Velocidad del gas de arrastre
1ml/min (70°C)
Inyector
HP-7683 Vol. de inyección 1.0 uL
Gases
Helio 99.9995%, mezcla Ar/CH4 (mL/min)
344
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Un análisis de ordenación multidimensional no métrico
(nMDS, por su siglas en inglés) fue construido a partir del
índice de similitud de Bray-Curtis, utilizando el programa
PRIMER 5.0, para explorar las asociaciones entre la concentración de mercurio en el tejido de los organismos, la
talla (longitud) y el peso utilizando como factor las localidades de estudio.
En Puerto Inírida se evaluaron 21 muestras correspondientes a once especies diferentes, cuya captura provenía tanto
del río Inírida como del Guaviare. Los valores más altos de
mercurio total correspondieron a Pseudoplatystoma fasciatum (= P. orinocoense) (1,1 µg/g) seguido de otro individuo
de rayado, un mapurito, un paletón y un barbiancho, todos
con concentraciones de 0,7 µg/g. Todos estos peces fueron
vendidos para consumo humano en el mercado local.
Para estimar si la magnitud de la contaminación mercurial en los peces analizados, representa un riesgo para la
salud humana como resultado del consumo de MeHg, se
realizó el cálculo del índice cuota de riesgo, conocido como
“Hazard Quotient” (HQ) (USEPA 1989). Este índice está
deinido como el cociente de un simple nivel de exposición
de una sustancia (E) o dosis de ingesta diaria en relación a
una dosis de referencia (HQ = E/RfD). Un HQ que exceda de 1, sugiere un riesgo potencial de efectos en la salud.
El valor RfD para el MeHg es de 0,0001 mg/Kg*día (IRIS
1995). El HQ, fue determinado considerando una RfD de 7
µg de MeHg por día, para una persona promedio de 70 Kg
y una ingesta alrededor de 100 g de pescado como ración
diaria, con lo que se calculó E después de obtener la concentración probable de MeHg promedio para cada especie,
la cual representa alrededor del 95% de la concentración de
mercurio total en el tejido del músculo de peces (Huckabee
et al. 1979, Akagi et al. 1994 y 1995).
En la igura 11.1.4 se presenta el compendio de las concentraciones medias de mercurio encontradas en músculo de
peces, en los cuatro puntos de muestreo en Colombia y que
está resumida por especie. Varias especies mostraron una
concentración media de mercurio por encima del máximo
permisible por la OMS: B. ilamentosum, Goslynia platynema (= Brachyplastystoma platynema) y Platynematichys
notatus. Más aún, otras especies como: P. fasciatum (P. orinocoense), Callophysus macropterus, Paulicea lutkeni (Zungaro zungaro), Sorubimichthys planiceps, Phractocephalus
hemiliopterus y Pinirampus pinirampu presentaron individuos con valores de mercurio mayores a 0,5 ppm.
El análisis de ordenación multidimensional no métrico de
la concentración de mercurio en el tejido del músculo, el
peso y la longitud de los peces en las localidades de estudio
en Colombia se presenta en la igura 11.1.5. Este análisis
muestra una interrelación entre la concentración del metal con la longitud y peso de los peces colectados, ya que
se observa que una mayor concentración de mercurio fue
obtenida generalmente asociada a un mayor peso y longitud del individuo, lo cual nos señala que existe un proceso
bioconcentración de este metal, producto de una continua
exposición. Asimismo, este análisis nos muestra que existe
una discriminación para las localidades de Puerto López y
San José de Guaviare como sitios donde los peces presentaron una concentración de mercurio mayor.
RESULTADOS
Colombia
Durante la primera fase, en Puerto Inírida se recogieron
doce muestras pertenecientes a ocho especies, incluyendo
peces migradores como el dorado (Brachyplatystoma rousseauxi), y otros representantes de sistemas de aguas blancas
(ríos Guaviare y Orinoco) y aguas negras (río Inírida), tales
como las mojarras o cíclidos (Cichlidae). En Puerto López
se tomaron 10 muestras de tejido en peces correspondientes a cinco especies de bagres y algunos cíclidos. En San
José del Guaviare se colectaron 11 muestras de músculo
correspondientes a nueve especies, incluyendo un valentón
(Brachyplatystoma ilamentosum) que presentó una concentración de mercurio elevada (1,30 µg/g).
En el caso de Puerto Inírida, observamos que las concentraciones de mercurio obtenidas en los peces estudiados se
distribuyen a lo largo de una gama, con individuos que presentaron los valores más bajos del metal, a pesar que ésta
es una de las zonas más cercanas a la extracción minera en
Colombia.
Muestras de sedimento y agua
En sedimento y agua se obtuvieron valores bajos tanto en
mercurio como en pesticidas organoclorados y organofosforados.
En la segunda fase se analizaron 32 muestras colectadas en
Puerto Carreño, especíicamente de peces provenientes de
la conluencia de los ríos Orinoco y Meta. En esta área de
estudio, las muestras presentaron concentraciones de mercurio por debajo de 0,1 µg/g.
En los ríos Meta, Orinoco y Bita (Puerto Carreño), los valores de concentración de mercurio en sedimento fueron
345
EVALUACIÓN
DE LA CONTAMINACIÓN POR MERCURIO EN PECES DE INTERÉS COMERCIAL
Y DE LA CONCENTRACIÓN DE ORGANOCLORADOS Y ORGANOFOSFORADOS
EN EL AGUA Y SEDIMENTOS DE LA ORINOQUIA
P. Sánchez.
Figura 11.1.4. Concentración de mercurio total en el tejido del músculo de las especies de peces colectadas en las localidades de
estudio en Colombia (Puerto Carreño, Puerto Inírida, Puerto López, San José de Guaviare). Las barras muestran la concentración
media de mercurio (±1 SD). La línea de referencia color rojo indica el valor máximo permisible de mercurio en peces según la OMS
(0,5ppm). Para nombres cientíicos actualizados ver texto.
Figura 11.1.5 Análisis de ordenación multidimensional no métrico de las variables: concentración de mercurio total [Hg], longitud
y peso, utilizando como factor las localidades de estudio en Colombia.
346
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
de 0,007; 0,008 y 0,013 µg/g respectivamente. Los valores
de pesticidas en las muestras de agua estuvieron por debajo
del límite de detección (organoclorados < 8 µg/L y organofosforados <3,5µg/L). En Puerto López las muestras de
sedimento y agua fueron tomadas respectivamente en el río
Meta y el río Negro, un pequeño tributario. Tanto las lecturas de mercurio y de los pesticidas estuvieron por debajo de
los limites de detección (mercurio < 0,005 ppm, organoclorados < 8 µg/L y organofosforados <3,5µg/L). Igualmente,
en cuatro puntos de la Estrella Fluvial de Inírida, abarcando los ríos Inírida, Guaviare y Orinoco, se analizaron las
concentraciones de mercurio y pesticidas en muestras de
sedimentos, obteniéndose solamente valores medibles para
el mercurio en el río Inírida (La Ceiba = 0,12 ppm) y en el
puerto (0,01 ppm).
dos y organofosforados en muestras de agua de los alrededores de San José de Guaviare, donde todos los análisis
dieron como resultado valores por debajo del límite de detección.
Venezuela
Durante la primera fase del estudio en Venezuela, los niveles de mercurio total obtenidos en esta sección del río
Orinoco (parte media) y río Ventuari (región Guayana),
son más altos que los observados en el bajo Orinoco (Puerto La Ceiba), donde 21 de 48 muestras presentaron valores
superiores a 0,5 µg/g. Posteriormente se hizo un muestreo
en el río Apure (región llanos), donde se analizaron 58
muestras de nueve especies diferentes de peces capturadas
directamente en el río Apure y/o colectadas en el mercado
de la ciudad. Estos valores de mercurio obtenidos estuvieron dentro del rango aceptable por la OMS para consumo
humano.
Finalmente, los valores de mercurio hallados en las muestras de sedimento tomadas en los ríos Guaviare, Ariari y
Guayabero y fueron de 0,01 para los dos últimos y menor al
límite de detección en el río Guaviare. Tampoco fue posible
obtener la concentración de los compuestos organoclora-
En la igura 11.1.6, se presenta el compendio de las concentraciones medias de mercurio encontradas en músculo
Figura 11.1.6 Concentración de mercurio total en el tejido del músculo de las especies de peces colectadas en las localidades de estudio en Venezuela (río Apure, río Orinoco y río Ventuari). Las barras muestran la concentración media de mercurio (±1 SD). La línea
de referencia color rojo indica el valor máximo permisible de mercurio en peces según la OMS (0,5ppm). Para nombres cientíicos
actualizados ver texto.
347
EVALUACIÓN
DE LA CONTAMINACIÓN POR MERCURIO EN PECES DE INTERÉS COMERCIAL
Y DE LA CONCENTRACIÓN DE ORGANOCLORADOS Y ORGANOFOSFORADOS
EN EL AGUA Y SEDIMENTOS DE LA ORINOQUIA
P. Sánchez.
Comparación entre las localidades de ambos países
de peces, en las tres localidades en Venezuela y que está
resumida por especie. Varias especies mostraron una concentración media de mercurio por encima del máximo permisible por la OMS: Brachyplatystoma vaillantii, Hydrolicus
armatus, Raphiodon vulpinus, Acestrorhynchus sp. y Boulengerella lucius. En otras especies como P. pinirampu, Hoplias
malabaricus y Cichla temensis, algunos individuos resultaron en valores de mercurio mayores a 0,5ppm.
Como se muestra en la igura 11.1.7, una comparación de la
concentración media de mercurio en el tejido del músculo
de los peces colectados, muestra diferencias signiicativas
entre las localidades y entre países. Al respecto, las menores
concentraciones del metal halladas se encontraron en el río
Apure (Venezuela), la cual fue signiicativamente diferente
al resto de las demás localidades (Mann Whitney U, p<0.05)
y seguida por Puerto Carreño (Colombia). Asimismo, observamos que la concentración media del metal en los peces fue similar entre Puerto Inírida, Puerto López, San José
de Guaviare (Colombia) y el río Orinoco (Venezuela). Es
interesante destacar que las concentraciones de mercurio
mas elevadas también se encontraron en Venezuela en el
río Ventuari, la cual no se diferenció únicamente de Puerto
López en Colombia, siendo ésta la localidad que presentó la
mayor concentración de mercurio media en ese país.
Debido a que en Venezuela aparecieron individuos de las
especies Hydrolicus armatus y Acestrorhynchus sp. con
valores anormalmente altos de mercurio (e.g. 3,44 y 1,42
ppm, respectivamente) y adicionalmente no se registró la
longitud de los peces en todas las localidades, no fue posible realizar el análisis de ordenación multidimensional no
métrico de las variables (Hg, peso, longitud) discriminados
entre las localidades de estudio, para observar posibles asociaciones y tendencias.
Figura 11.1.7 Concentración de mercurio total en el tejido del músculo de peces para cada localidad de estudio. Las barras color
blanco son las localidades de estudio en Colombia y las barras en color negro son las localidades en Venezuela. Las barras muestran
la concentración media de mercurio (±1 SD). La línea de referencia color rojo indica el valor máximo permisible de mercurio en
peces según la OMS (0,5ppm). Letras diferentes indican diferencias signiicativas (Mann-Whitney U, p<0.05) entre las localidades.
348
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
El índice de evaluación del riesgo para los peces que pueden
ser consumidos por las poblaciones locales, fue calculado
por especie y para cada país (Tabla 11.1.2). En general, el
consumo de estos organismos muestra valores muy elevados (HQ >> 1), de hasta 12,2 para Colombia (Brachyplatystoma ilamentosum) y de hasta 19,7 y 19,3 para Venezuela
(Hydrolicus armatus y Acestrorhynchus sp., respectivamente); entre otros, siendo las excepciones Hoplias malabaricus
en Colombia y Brachyplatystoma juruense, Brachyplatystoma rousseauxii, Goslinea platynema, Pseudoplatystoma tigrinun (= Pseudoplatystoma metaense) y Zungaro zungaro
en Venezuela, con HQ ≤ 1.
Tabla 11.1.2 Cuota de Riesgo (HQ) al consumir como alimento los peces colectados en Colombia y Venezuela durante el estudio.
El cálculo se realizó en base a la concentración promedio de Hg total por especie y calculando la concentración de metilmercurio
(MeHg) teórica probable.
País
Especie
Brachyplarystoma ilamentosum
COLOMBIA
VENEZUELA
m
Hg (ppm)
±SD
HQ
2
0.900
0.57
12.2
Brachyplarystoma rousseauxii
4
0.218
0.24
3.0
Brachyplarystoma vaillantii
3
0.140
0.00
1.9
Brachyplarystoma vaillantii
2
0.260
0.08
3.5
Calophysus macropterus
3
0.403
0.34
5.5
Cichla monoculus
1
0.320
-
4.3
Crenicichla sp
1
0.160
-
2.2
Goslinia platynema
3
0.543
0.29
7.4
Hoplias malabaricus
1
0.070
-
1.0
Hypopththalmus edentatus
1
0.300
-
4.1
Leiarius marmoratus
3
0.100
0.00
1.4
Paulicea lutkeni
8
0.360
0.25
4.9
Phractocephalus hemiliopterus
2
0.350
0.21
4.8
Pinirampus pirinampu
3
0.400
0.28
5.4
Platynematichthys notatus
1
0.660
-
9.0
Pseudoplatystoma fasciatum
6
0.442
0.36
6.0
Sorubimichthys planiceps
6
0.337
0.23
4.6
Acestrorhynchus sp
1
1.420
-
19.3
Boulengerella luclus
1
0.820
-
11.1
Brachyplatystoma rousseauxii
10
0.033
0.01
0.4
Brachyplatystoma vaillanti
11
0.563
0.20
7.6
Cichla intermedia
1
0.440
-
6.0
Cichla orinocensis
1
0.350
-
4.8
Cichla temensis
3
0.373
0.14
5.1
Goslinea platynema
9
0.038
0.01
0.5
Hoplias malabaricus
3
0.433
0.23
5.9
Hydrolycus armatus
4
1.453
1.34
19.7
Phractocephalus hemillopterus
8
0.114
0.13
1.5
Pinirampus pirinampu
14
0.388
0.34
5.3
349
EVALUACIÓN
DE LA CONTAMINACIÓN POR MERCURIO EN PECES DE INTERÉS COMERCIAL
Y DE LA CONCENTRACIÓN DE ORGANOCLORADOS Y ORGANOFOSFORADOS
EN EL AGUA Y SEDIMENTOS DE LA ORINOQUIA
P. Sánchez.
País
Especie
Pseudoplatystoma fasciatum
VENEZUELA
m
Hg (ppm)
±SD
HQ
17
0.111
0.12
1.5
Pseudoplatystoma sp
1
0.390
-
5.3
Pseudoplatystoma tigrinum
13
0.072
0.10
1.0
Rhaphiodon vulpinus
1
0.670
-
9.1
Zungaro zungaro
1
0.030
-
0.4
DISCUSIÓN
hace referencia al proceso de bioacumulación que ocurre
en bagres migradores, que a lo largo de sus desplazamientos reproductivos corriente arriba van consumiendo otros
organismos que tienen diferentes concentraciones de mercurio, produciendo que los animales capturados en áreas
muy lejanas de las explotaciones auríferas donde se usa
mercurio, tengan concentraciones elevadas. Estos resultados son semejantes a lo reportados por Crossa y Alonso
(2001) para la región Amazónica, donde encontraron valores muy altos de mercurio en los peces cerca de Iquitos,
área donde no hay actividad minera. El otro escenario, es
que existen depósitos naturales de mercurio, que aún han
no han sido caracterizados, y que podrían liberar cantidades del metal en respuesta a los pulsos de inundación, a
procesos de erosión y de pérdida de vegetación.
Concentración de mercurio en peces
Colombia
Los valores de mercurio total encontrados en tejidos de
peces en Colombia plantean varios interrogantes. Las concentraciones del metal en los peces de la zona de Inírida
en la primera fase fueron bajos, más no en los sedimentos,
siendo ésta la única localidad con niveles detectables del
metal. Sin embargo, la concentración de mercurio en los
peces para la segunda campaña aumentó considerablemente, lo cual podría estar relacionado a la intensa explotación
minera que se hace en la Serranía de Naquén, en el sector
nororiental del departamento del Guaínia. Esta zona se caracterizada por una densa red luvial de difícil acceso y carente de los servicios básicos mínimos, con un componente
importante de población indígena representado principalmente por Curripacos. En esta zona la CDA ha tratado de
regular la explotación aurífera, al igual que ha implementado campañas de capacitación para hacer más eiciente y
menos negativo el uso del mercurio. Sin embargo, no existen controles rigurosos sobre esta actividad, y se desconoce
por completo la cantidad de mercurio que se utiliza anualmente en la región, principalmente porque es comercializado con muy pocas restricciones desde el territorio brasilero. Esta situación ha motivado a diferentes organizaciones
a realizar evaluaciones de toxicidad de mercurio en seres
humanos en la región, encontrándose niveles importantes
de este contaminante (Idrovo et al. 2001).
En la región de Puerto Carreño, no se encontraron niveles de mercurio alarmantes en los peces, siendo este hecho
de gran importancia para la zona, donde se realiza pesca
intensiva para consumo en Colombia y Venezuela. Sin
embargo, es importante considerar mantener un monitoreo permanente con un numero de muestras mayor, que
permita conirmar los niveles de mercurio de los peces que
serán consumidos, y así prevenir la ingesta de pescado altamente contaminado.
Venezuela
Todas las muestras de las especies de Pseudoplatystoma spp.
y P. hemiliopterus presentaron valores por debajo del límite
máximo establecido por la OMS (0,5 µg/g). Por el contrario, sí aparecieron individuos de las especies Pinirampus
pinirampu y Brachyplatystoma vaillanti, que exceden este
valor.
Puerto López y San José del Guaviare fueron las otras zonas
donde se reportaron muestras con concentraciones altas
de mercurio, con valores de hasta 1,30 µg/g en un bagre
rayado (Pseudoplatystoma fasciatum = P. orinocoense) y
un valentón (Brachyplatystoma ilamentosum), respectivamente. Estos datos corresponden a los valores más altos de
mercurio encontrados en territorio colombiano, y llaman
la atención de manera especial, ya que cerca de estas zonas
no existe ningún tipo de explotación aurífera. Para explicar esto, planteamos dos posibles escenarios: en el primero,
No se observó una correlación signiicativa entre los peces
capturados y el peso, posiblemente debido a los elevados
valores de mercurio (valores fuera de rango) que mostraron
por ejemplo, las especies de Hydrolicus armatus y Acestrorhynchus sp. capturadas; como también el pequeño intervalo de pesos corporales, ya que no se obtuvieron ejemplares
mayores de 3 kg.
350
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Los valores más altos reportados durante el estudio, correspondieron a la zona Orinoco-Ventuari (río Ventuari), lo
cual coincide con lo observado en el río Caroní (embalse de
Guri). Estos valores tan elevados en el río Ventuari, podrían
estar relacionados con la existencia de minería ilegal en la
parte media y alta del río, así como en la conluencia con el
propio Orinoco (Figura 11.1.8). De hecho el Parque Nacional Yapacana (Cerro Yapacana) mantiene una explotación
minera desde hace varios años.
En general, existe una mayor tendencia a que las especies
migradoras de grandes bagres presenten mayores concentraciones de mercurio que aquellas que no son migradoras.
La excepción a esto sería la payara, pero se explica basado en el hecho de que en el río Ventuari existe explotación
aurífera y hay una exposición continua de los peces al
metilmercurio. No obstante, la payara también realiza migraciones aunque estas no están bien documentadas en la
Orinoquia venezolana (Lasso obs. pers.).
En la segunda fase de evaluación en el río Apure, se obtuvieron los niveles ms bajos de mercurio entre los dos países;
lo cual indica un riesgo muy bajo de intoxicación por el
consumo de peces contaminados, como también la ausencia de fuentes de liberación del metal.
Al comparar los valores de mercurio encontrados con otras
regiones del planeta (Tabla 11.1.3), se hace evidente que la
cuenca del río Orinoco presenta concentraciones del metal elevadas que ameritan ser re-evaluadas constantemente
con un programa de monitoreo, además de involucrar a los
Figura 11.1.8 Áreas de explotación minera en Venezuela. Fuente: Miranda et al. (1998).
351
EVALUACIÓN
DE LA CONTAMINACIÓN POR MERCURIO EN PECES DE INTERÉS COMERCIAL
Y DE LA CONCENTRACIÓN DE ORGANOCLORADOS Y ORGANOFOSFORADOS
EN EL AGUA Y SEDIMENTOS DE LA ORINOQUIA
P. Sánchez.
Tabla 11.1.3 Concentraciones de mercurio en el agua reportadas en diferentes regiones del planeta.
Localización
Hg (µg/g)
Lago Erie, Canadá
0,20 – 0,79
Mitra (1986)
Niigata, Japón
2,60 – 6,60
Inskip y Piotrowski (1985)
Tapajós, Amazonas
0,15 – 0,73
Padberg et al. (1990)
Madeira, Amazonas
0,21 – 2,70
Pfeifer et al. (1991)
Lagos de Finlandia
0,21 – 1,80
Mannio et al. (1986)
Lagos de Suécia
0,68 – 0,86
Bjorklund et al. (1984)
Región de Carajás, Amazonas
0,30 – 2,30
Lacerda et al. (1994)
Bajo Amazona e Várzea
0,06 – 0,77
Crossa y Alonso (2001)
Cuenca del Orinoco
0,03 – 3,44
Este estudio
organismos decisorios en la toma de acciones urgentes para
mitigar y reducir los niveles de contaminación por mercurio.
CONCLUSIONES
De las cuatro localidades colombianas evaluadas, sólo en
Puerto López y Puerto Inírida se encontraron evidencias
de presencia elevada de mercurio en los peces. Los valores más altos se presentaron en un bagre rayado con 1,29
µg/g de mercurio, lo que representa un valor al menos tres
veces por encima de lo recomendado por la OMS. En Venezuela la situación fue similar, en particular en la región
de Orinoco-Ventuari, con registros de mercurio muy elevados, especialmente en una payara (Hydrolicus armatus)
y en varios bagres de las especies Pinirampus pinirampu y
Brachyplatystoma vaillanti.
Organoclorados y organofosforados
Los valores de organoclorados y organofosforados fueron
muy bajos para todos los sitios de muestreo, tanto en los
análisis de agua como de sedimento. Estos resultados fueron contrario a lo esperado, por cuanto en la región de la
Orinoquia colombiana se conoce la presencia y crecimiento de cultivos ilícitos, donde en algunos casos se han hecho
fumigaciones masivas. Con relación a los valores reportados, encontramos varias posibles explicaciones:
•
•
Autor
La capacidad de dilución que tienen ríos de gran caudal
como el Meta, el Guaviare y el Orinoco es enorme, y
por eso las concentraciones son muy bajas.
Los sitios de muestreo, se localizaron en zonas de asentamientos urbanos, con importante presencia militar
que garantiza que no hayan cultivos ilícitos cercanos,
con excepción de San José del Guaviare (SIMCI 2005).
En Puerto Inírida se encontraron tres peces con concentraciones altas de mercurio, dos de ellos bagres y uno un
cíclido. En esta zona se esperaba registrar más muestras con
mercurio debido a la alta actividad minera, con la presencia
de un número importante de dragas y de antecedentes previos reportados por el Instituto Nacional de Salud. En este
sentido, se recomienda que en esta área se hagan mayores
esfuerzos de muestreo, en diferentes épocas hidrológicas,
y que se haga un levantamiento de información sobre los
sitios de explotación aurífera y el número exacto de dragas
operando.
Para futuras evaluaciones, se sugiere hacer muestreos en
áreas de fumigación con glifosato e igualmente en las zonas
de cultivos agrícolas lícitos que usen fumigación química
para control de plagas, como el caso de cultivos de arroz y
de vegas a lo largo de los ríos. Estos últimos son de carácter
estacional, por lo que se recomienda hacer los muestreos en
época de verano.
Los valores de organoclorados y organofosforados fueron
no detectables en todas las áreas de estudio analizadas. Esto
352
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
se puede deber a que no exista una concentración de estos compuestos importante después de su utilización como
pesticidas en la zona; y otro a que no se ha muestreado en
las zonas cercanas a las fumigaciones, y que el alto caudal
de las cuencas produzca un efecto de dilución importante.
•
•
Los valores encontrados en este estudio muestran que efectivamente existe un problema de contaminación por mercurio en la región, el cual debe ser analizado de manera
más profunda, creando un programa de monitoreo a corto,
mediano y largo plazo. Esta problemática no es nueva, ya
que existen múltiples reportes de contaminación con mercurio en muchos países suramericanos y en otros continentes (Lacerda y Salomons 1992; Bidone et al. 1997; Lacerda
y Marins 1997, Shrestha y Ruiz de Quilarque 1989, Nico y
Taphorn 1994, Peixoto-Boischio y Henshel 2000, GarcíaSánchez et al. 2006, García-Sánchez et al. 2008, Farina et al.
2009). Es esencial sin embargo, realizar más análisis y hacer
un uso responsable de la información para no crear situaciones de pánico que no estén completamente justiicadas.
Los análisis a largo plazo son imprescindibles, y es necesario hacer estudios piloto para estimar tamaños muestrales
en la cantidad de peces que se deben capturar para asegurar
que las concentraciones de mercurio a obtener sean representativas de cada especie y zona analizada.
Es recomendable implementar un sistema de monitoreo
de mercurio en peces con características similares al que
los Ministerios de Minas y Ambiente están realizando en
Brasil, donde se ha capacitado personas de comunidades
locales para hacer análisis de presencia-ausencia de mercurio en peces que van a ser consumidos. Los que muestran
concentraciones de mercurio, son separados y enviados a
laboratorios para cuantiicar las respectivas concentraciones del tóxico.
•
Afectación de la salud pública.
Problemática de contaminación a nivel binacional (Colombia-Venezuela).
Posibles reservorios naturales de mercurio que deberían ser identiicados y caracterizados.
Es fundamental el apoyo técnico y inanciero entre los institutos de investigación y las oicinas gubernamentales, a
in de lograr un monitoreo mas efectivo y al mismo tiempo
trabajar en conjunto implementando agendas regionales
y trasnacionales para solucionar los problemas de regulación, uso y tráico de mercurio en la minería artesanal,
como también en el desarrollo de medidas de remediación
y mitigación de la contaminación existente.
Tanto en Colombia como Venezuela, se espera que los datos obtenidos sirvan de información para afrontar el desafío que presume la contaminación de los ecosistemas acuáticos.
La información preliminar que se presenta en este informe
tiene implicaciones a varios niveles:
• Deterioro de la calidad del agua en la Orinoquia y del
ecosistema en general.
353
EVALUACIÓN
DE LA CONTAMINACIÓN POR MERCURIO EN PECES DE INTERÉS COMERCIAL
Y DE LA CONCENTRACIÓN DE ORGANOCLORADOS Y ORGANOFOSFORADOS
EN EL AGUA Y SEDIMENTOS DE LA ORINOQUIA
P. Sánchez.
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.2
CRUSTÁCEOS
DECÁPODOS DE LA ORINOQUIA
VENEZOLANA: BIODIVERSIDAD,
CONSIDERACIONES BIOGEOGRÁFICAS
Y CONSERVACIÓN
O. Lasso-Alcalá.
Guido Pereira, Carlos A. Lasso, Julián Mora-Day y Célio Magalhães
RESUMEN
INTRODUCCIÓN
Los crustáceos decápodos (camarones y cangrejos) dulceacuícolas han colonizado cuerpos de agua con una importante heterogeneidad de ambientes. El presente estudio presenta una evaluación preliminar sobre el estado actual del
conocimiento y los vacíos de información de este importante grupo de la biota acuática en la cuenca del Orinoco.
Actualmente, se han registrado en la Orinoquía venezolana
87 especies de crustáceos decápodos, correspondientes a
34 especies de camarones y 53 especies de cangrejos. La
subregión Delta es considerada la de mayor riqueza de especies en toda la cuenca (42 sp.- 48,3 %), y las subcuencas
del alto Orinoco en el Estado Amazonas muestran el mayor
número de endemismos de crustáceos. En toda la cuenca se
registran 17 especies endémicas de cangrejos (19,5 %) y 9
especies endémicas de camarones (11,5 %). Aunque pocas
especies tienen valor comercial se mencionan algunos casos de especies importantes por su consumo local.
Los crustáceos decápodos incluyen, entre otros, a los cangrejos, camarones y langostas. En la actualidad se han descrito 14.756 especies del orden Decapoda (De Grave et al.
2009), la mayoría de ellas marinas, y en menor proporción
especies que a través de su historia evolutiva han colonizado cuerpos de agua dulce y salobre. El término Decapoda
se reiere a la presencia de cinco pares de apéndices torácicos adaptados esencialmente a la locomoción, de los cuales el primero y a veces el segundo pueden o no presentar
quelas o pinzas. En términos evolutivos, a diferencia de los
cangrejos, los camarones presentan el abdomen engrosado y despegado del cefalotórax, lo que ha sido considerado
como un carácter primitivo (Ruppert y Barnes 1996).
A nivel mundial y particularmente en el trópico venezolano, los camarones y cangrejos dulceacuícolas se han diversiicado notablemente para colonizar cuerpos de agua
con una importante heterogeneidad de ambientes. Desde
inales del siglo XIX y principios del XX se han realizado
investigaciones sobre los decápodos dulceacuícolas y estuarinos de los ríos venezolanos, tal vez con mayor énfasis
en las cuencas que drenan al mar Caribe. Holthuis (1952)
en una extensa revisión de los camarones palaemónidos de
América, recopiló gran parte de la información de colectas y reportes existentes de Venezuela, pero es a partir de
Palabras Clave: camarones, cangrejos, crustáceos decápodos, endemismos, riqueza, uso.
357
CRUSTÁCEOS
DECÁPODOS DE LA ORINOQUIA VENEZOLANA: BIODIVERSIDAD,
CONSIDERACIONES BIOGEOGRÁFICAS Y CONSERVACIÓN
O. Lasso-Alcalá.
inales de la década del setenta, cuando comienza un incremento signiicativo en las colecciones y publicaciones sobre
la diversidad de este grupo en el país. Otras publicaciones
de carácter general que permiten complementar el panorama sobre el conocimiento de los crustáceos decápodos
dulceacuícolas en Venezuela incluyen las realizadas en
áreas vecinas y fronterizas: Brasil y Guayanas (Holthuis
1966, Kensley y Walker 1982, Magalhães 1986, 1990, Magalhães y Rodríguez 2002, Melo 2003); Colombia (Campos
et al. 2002, Campos 2005); Colombia y Venezuela (Pereira
et al. 2009); islas del Caribe (Chace y Hobbs 1969), fundamentalmente. Existen otras contribuciones más especíicas
relativas a ciertas familias y/o géneros (e.g. Hobbs y Hart
1982, Magalhães y Turkay 2008 a-b, Pretzmann 1968,1972,
Rathbun 1906).
vo a la biodiversidad zoogeográfíca y detectar los vacíos de
información de este importante grupo de la biota acuática
de la Orinoquia. Para el reconocimiento de la Orinoquia se
sigue el criterio de clasiicación de subcuencas propuesto
por Lasso et al. (2004), que fue actualizado en el primer
Taller Binacional (Figura 11.2.1).
Reseña histórica: antecedentes más importantes
Uno de los pioneros en el estudio de la carcinología en Venezuela fue Gilberto Rodríguez que hizo más énfasis en los
cangrejos, y posteriormente el primer autor de este capítulo
con los camarones dulceacuícolas. Las aportaciones sobre
cangrejos incluyen aspectos de carácter taxonómico o biogeográico (Rodríguez 1966 a, b, 1967, 1980 a, b, 1982 a, b,
1986, 1992, 1995, Smalley y Rodríguez 1972, Rodríguez y
Esteves 1973, Hulbert et al. 1981, Rodríguez y Pereira 1992,
Rodríguez y Suárez 1994, Rodríguez y Campos 1998, ) y
sistemático (Rodríguez y Campos 1998, Magalhães y Ro-
En la presente revisión se pretende realizar una evaluación
preliminar sobre el estado actual del conocimiento relati-
Figura 11.2.1 Subregiones para crustáceos en la cuenca del Orinoco. Nota: coinciden con las subregiones biogeográicas de peces
(modiicado de Lasso et al. 2004)
358
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
dríguez 2002), fundamentalmente. Dos trabajos que merecen mención especial son la monografía sobre camarones y
cangrejos de Venezuela (Rodríguez 1980a) y muy recientemente Campos (2005), sobre los cangrejos dulceacuícolas
de Colombia que consideró parte de la Orinoquía tanto de
Colombia como de Venezuela.
vant (1966), Novoa (2000) y Pereira et al. (2004), que se
reieren más bien a especies de interés comercial.
Los resultados que se muestran a continuación están basados en la revisión de las siguientes colecciones o museos:
Museo de Historia Natural la Salle, Caracas, Venezuela
(MHNLS); Museo de Biología de la Universidad Central
de Venezuela, Caracas (MBUCV) e Instituto Venezolano
de Investigaciones Cientíicas y Tecnológicas (IVIC). Para
complementar el listado de especies y los datos de distribución geográica se utilizaron numerosas referencias citadas
directamente en el listado o en la parte introductoria de
este trabajo (ver bibliografía).
Desde 1980 hasta el presente Pereira 2 colaboradores han
publicado numerosas contribuciones sobre camarones:
taxonomía (Pereira 1982, 1985, 1986, 1991, 1993, Rodríguez 1982 a,b,c); biodiversidad e inventarios en el delta del
Orinoco (López y Pereira 1996); y especies exóticas (Pereira et al. 2001). Un aspecto muy importante a resaltar y que
ha contribuido enormemente al conocimiento no sólo de la
biodiversidad de camarones sino de cangrejos también, se
reiere a las prospecciones o expediciones realizadas en el
marco de las evaluaciones “AquaRAP” (Evaluaciones Rápidas de la Biodiversidad Acuática) en la Orinoquía. Se han
realizado cuatro en total en las subcuencas o subregiones
señaladas a continuación: Magalhães y Pereira (2003) en
el río Caura; Pereira et al. (2004) en el delta del Orinoco
y golfo de Paria; Pereira et al. (2006) en la conluencia de
los ríos Orinoco-Ventuari y más recientemente Mora-Day
y Pereira (2006), en el alto Paragua (subcuenca del Caroní). Adicionalmente, es importante reseñar los trabajos de
Rodríguez y Suárez (2003) sobre la biodiversidad de crustáceos de Venezuela y el de Magalhães y Pereira (2007) sobre
la diversidad de crustáceos decápodos en el Escudo Guayanés.
BIODIVERSIDAD
Hasta la fecha se han descrito o señalado para la Orinoquía
venezolana 87 especies de crustáceos decápodos, correspondientes a 34 especies de camarones y 53 de cangrejos
(Anexo 12).
De los camarones, dos especies han sido introducidas en la
cuenca (Atya gaboensis, Macrobrachium rosenbergii) y 16
especies son de hábitos estuarinos o se encuentran ocasionalmente en aguas salobres. En el Orinoco la familia Palaemonidae contiene cerca del 90% de las especies reportadas
para la cuenca y está representada por cuatro géneros: Macrobrachium, Palaemon, Palaemonetes y Pseudopalaemon.
De ellos el que presenta mayor riqueza especíica es Macrobrachium (20 especies), luego iguran los géneros Palaemonetes (3 especies), Pseudopalaemon (1 especie) y por último
Por último, respecto a los crustáceos estuarinos del delta
del Orinoco y áreas adyacentes, es importante señalar a Da-
a
b
Fotografía 11.2.1. a) Macrobrachium surinamicum (hembra ovada); b) Macrobrachium amazonicum. Fotos: O. Lasso-Alcalá.
359
CRUSTÁCEOS
DECÁPODOS DE LA ORINOQUIA VENEZOLANA: BIODIVERSIDAD,
CONSIDERACIONES BIOGEOGRÁFICAS Y CONSERVACIÓN
O. Lasso-Alcalá.
Palaemon con otra especie. La familia Sergestidae está representada por Acetes paraguayensis y de la familia Atyidae
solo se ha reportado la especie exótica Atya gaboensis. Por
otra parte, en Suramérica solo se conocen cinco especies
de Euryrhynchus, el cual es el único género de la familia
Euryrhynchidae reportado para la Orinoquia. De ellas Eurhyrhynchus pemoni es endémica de la Gran Sabana (alto
Caroní) y Euryrhynchus amazonensis habita en las cuencas
del Orinoco y Amazonas (Pereira 1985).
el 48,3 % del total. En esta subregión predominan los cangrejos estuarinos, seguidos de los camarones que también
son de hábitos típicamente estuarinos e incluso marinos.
Las pocas especies de agua dulce se localizan siempre hacia
la parte alta y de menor salinidad del estuario. Otro aspecto importante de muchas de las especies en esta zona,
se reiere al hecho de que poseen una amplia distribución
debido a su capacidad de dispersión vía ambiente marino.
Respecto a las subcuencas de aguas interiores o más continentales, el alto Orinoco posee la mayor riqueza de especies
(14 sp., 16,1 %), seguido de las subcuencas del Caroni (13
sp., 14,9 %) y luego el Caura (10 sp., 11,5%). Hay algunas
subcuencas que tienen una menor riqueza, lo cual no es
una consecuencia directa de una menor área de drenaje,
sino de un desconocimiento importante o falta de muestreos (e.g. ríos Sipapo y Atabapo).
Los cangrejos están agrupados en once familias de las cuales sólo dos son estrictamente dulceacuícolas: Trichodactylidae (4 sp.) y Pseudothelphusidae (24 sp.). De esta última
destacan los géneros Microthelphusa y Fredius con siete y
11 especies y/o subespecies, respectivamente. Las familias
restantes son típicamente estuarinas y pueden encontrarse
tanto en las aguas dulces del delta del Orinoco durante un
período del año (aguas altas), como en agua salada durante
el estiaje (aguas bajas) (Anexo 12).
DISTRIBUCIÓN
GEOGRÁFICA: ENDEMISMOS
Y VULNERABILIDAD
RIQUEZA POR SUBCUENCAS O
SUBREGIONES
Ya se ha indicado anteriormente como un grupo bastante
diverso de especies estuarinas está prácticamente restringidas a las aguas salobres de la subregión del delta del Orinoco. Otro componente de la decapofauna muestra una
amplia distribución en la cuenca, sin embargo hay otro
grupo de especies que muestra una distribución bastante
La riqueza de los crustáceos decápodos de la Orinoquía
venezolana en cada una de las subcuencas se muestra en la
Tabla 11.2.1.
Se observa que la mayor riqueza corresponde a la subregión
Delta, en la cual se encuentran 42 especies que representan
Tabla 11.2.1 Riqueza de especies para cada una de las subcuencas y /o subregiones de la Orinoquía venezolana.
Cuchivero
6
Apure
7
8
Arauca
5
5,7
Capanaparo
5
5,7
Suapure
5
5,7
Cinaruco
7
8
Parguaza
5
5,7
Meta
8
9,2
Cataniapo
6
6,9
Sipapo
2
2,3
Atabapo
4
4,6
Ventuari
7
8
Alto Orinoco
14
16,1
360
6,9
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
restringida e incluso, a pesar de que todavía existen vacíos
importantes de colección, podría decirse que son endémicas. El nivel de endemismo en la cuenca es mayor en cangrejos que en camarones (Anexo 12). Diecisiete especies o
subespecies de cangrejos son endémicas (32 % del total de
cangrejos y 19,5 % del total de crustáceos), mientras que
solo hay nueve especies de camarones endémicos (29 % del
total de camarones y 11,5 % del total de crustáceos). Las
subcuencas del alto Orinoco en el Estado Amazonas muestran el mayor número de endemismos, con ocho especies
o subespecies endémicas. Entre estas se encuentran los camarones Macrobrachium aracamuni, Macrobrachium atabapensis, Macrobrachium pectinatum y los cangrejos Kingsleya hewashini, Microthelphusa sp. A, Microthelphusa sp. B,
Microthelphusa sp. C y Microthelphusa sp. D. Un centro de
endemismo lo constituye la parta alta de la subcuenca del
río Caroní. Aquí se encuentran tres especies de camarones
(Euryrhynchus pemoni, Macrobrachium manningi y Macrobrachium quelchi). Hay también dos especies de cangrejos,
Microthelphusa bolivari y Fredius platyacanthus, esta última
compartida con el alto Caura, una subcuenca que mantiene relaciones biogeográicas muy estrechas con el Caroní,
especialmente con peces y crustáceos. Estos ríos señalados
son los típicos ríos de aguas negras del Escudo Guayanés.
Hay que destacar también el río Cuao (aguas claras) en el
Estado Amazonas con dos endemismos, Fredius cuaoensis
y Fredius adpressus piaroensis, y el río Parguaza con un cangrejo, Fredius adpressus adpressus. Los endemismos señala-
dos hasta ahora podrían deinir una entidad biogeográica
denominada Subregión Guayana. Ahora bien, hay otros endemismos que muestran una distribución muy particular y
que podrían deinir lo que se llamaría Subregión Llanera,
con ciertas acotaciones o precisiones de tipo ecológico. En
primer lugar, entre los camarones se encontraría a Macrobrachium dierytrhum y Macrobrachium pumilum para el
río Aguaro, y Macrobrachium rodriguezi para el río Caris.
Ambos sistemas, Aguaro y Caris, son ríos de morichal de
aguas claras. El primero, se encuentra en los llanos centrales y constituye una isla ictiogeográica -está rodeada de
ríos llaneros de aguas blancas- y el Caris está en los llanos
orientales de Venezuela al norte del Orinoco, muy afín en
cuanto a su biota acuática con el Escudo Guayanés. Un cangrejo, Oedothelphusa orientalis, es endémico del río Morichal Largo, otro sistema de morichal parecido al Caris. Los
endemismos restantes, parecieran ajustar su distribución a
ríos llaneros típicos de aguas blancas o aluentes menores
de aguas claras, pero siempre asociados o inluenciados por
el piedemonte. Tal es el caso de dos especies de cangrejos
endémicas de la cuenca del río Meta (Eudaniella casanarensis) y Apure (Rodriguezus trujillensis), ambas de ríos de
piedemonte andino-orinoquense. También está el camarón
Macrobrachium reyesi (río Portuguesa) y los cangrejos, Microthelphusa barinensis (alto Apure), Microthelphusa racenisi (río Pao) y Orthothelphusa holthuisi (alto Apure) (Tabla
11.2.2).
Tabla 11.2.2 Especies de crustáceos decápodos endémicas de la Orinoquía venezolana.
Especies
Subcuencas o ríos
Familia Euryrhynchidae
Caroní
Euryrhynchus pemoni
Familia Palaemonidae
Macrobrachium atabapensis
Alto Orinoco
Macrobrachium dierytrhum
Aguaro
Macrobrachium manningi
Caroní
Macrobrachium pectinatum
Alto Orinoco
Macrobrachium pumilun
Aguaro
Macrobrachium quelchi
Caroní
Macrobrachium rodriguezi
Caris
Familia Pseudothelphusidae
Eudaniella casanarensis
Meta
Kingsleya hewashini
Alto Orinoco
Microthelphusa bolivari
Caroní
361
CRUSTÁCEOS
DECÁPODOS DE LA ORINOQUIA VENEZOLANA: BIODIVERSIDAD,
CONSIDERACIONES BIOGEOGRÁFICAS Y CONSERVACIÓN
O. Lasso-Alcalá.
Especies
Subcuencas o ríos
Familia Pseudothelphusidae
Microthelphusa sp. A
Alto Orinoco
Microthelphusa barinensis
Alto Apure
Microthelphusa racenisi
Pao
Microthelphusa sp. B
Alto Orinoco
Microthelphusa sp. C
Alto Orinoco
Microthelphusa sp. D
Alto Orinoco
Fredius cuaoensis
Cuao
Fredius chafanjoni
Alto Orinoco
Fredius adpressus adpressus
Parguaza
Fredius adpressus piaroensis
Cuao
Fredius platyacanthus
Caura-Caroní
Oedothephusa orientalis
Morichal Largo
Orthothelphusa holthuisi
Alto Apure
Rodriguezus trujillensis
Apure
Figura 11.2.2 Subregiones biogeográicas de acuerdo a la composición de la biota acuática continental: Guayana, Llanos y Delta.
Basado en Lasso y Lasso-Alcalá (2009).
362
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
ESPECIES COMERCIALES
En síntesis, basado en la distribución y las relaciones ilogenéticas de los taxa involucrados, podrían deinirse a
grandes rasgos tres subregiones biogeográicas: Guayana,
Llanos y Delta (Figura 11.2.2). En esta última, no existen
-hasta el momento- endemismos que la deinan, aunque no
se descarta que pudieran aparecer una vez que se identiiquen plenamente las especies colectadas en el AquaRAP
delta del Orinoco-golfo de Paria (2002) (Pereira et al. 2004).
Mientras tanto, su deinición se basa fundamentalmente en
las especies estuarinas.
Pocas especies tienen valor comercial (Anexo 12). Sin embargo, se pueden mencionar como especies importantes en
el comercio por su consumo local, a los camarones Macrobrachium carcinus y Macrobrachium rosenbergii, esta última introducida. Ambas especies alcanzan la mayor talla en
los ríos de la Orinoquia. En la zona estuarina del Delta las
pesquerías del camarón blanco (Litopenaeus schmitti) son
muy importantes, e incluso mas allá de los límites locales,
puesto que toda la pesca de esta especie en el Delta es transportada a Guiria y Cumaná (Estado Sucre) para su procesamiento y venta. También se explota periódicamente a las
especies de cangrejos deltaicas, Cardisoma guanhumi y Ucides cordatus. Aguas arriba del delta del Orinoco, el camarón Macrobrachium amazonicum es consumido localmente
de manera ocasional, puesto que a pesar de su pequeño
tamaño puede alcanzar densidades altas. Los cangrejos
pseudotelfúsidos de tallas grandes del género Fredius, son
capturados frecuentemente por los indígenas y en ciertas
zonas (ríos de montaña y cabeceras de cuencas) constituyen una fuente de proteínas muy importante. Los indígenas
también hacen collares con las pinzas de ejemplares adultos. Hacia el medio y alto Orinoco, incluyendo varios ríos
del Escudo Guayanés, cerca de diez especies de los géneros
Fredius, Kingsleya y Forsteria, son utilizadas como alimento y ornamento por parte de las comunidades indígenas
(Lasso 2009). Por último, algunas especies de camarones
pequeños son utilizadas como ornamentales, y ocasionalmente pueden verse en el mercado acuaróilo nacional. Tal
es el caso de los camarones dulceacuícolas Macrobrachium
amazonicum y Macrobrachium jelskii, conocidos ambos
con el nombre de camarón fantasma.
Por último, hay ciertas especies con alguna categoría de
amenaza (Anexo 12). Se considera está categoría en virtud
a lo restringido de su distribución y al hecho de encontrarse
en zonas de alto potencial de intervención antrópica por
contaminación o sobrepesca. Bajo esta deinición se encuentra Euryrhynchus pemoni (Vulnerable D2) (Pereira
2008a), amenazada por la actividad turística en la Gran
Sabana; Macrobrachium pumilum (Vulnerable D2) restringida al río Aguaro (Pereira 2008b); Macrobrachium reyesi (Vulnerable B1 ab-iii, iv, v) en los ríos del piedemonte
(Pereira 2008c) y Macrobrachium rodriguezi (Vulnerable
B1 ab-iii, v), restringido al río Caris y amenazado por la
actividad agrícola y pecuaria (Pereira 2008d). El cangrejo
de tierra o manglar, Cardisoma guanhumi es considerada
Vulnerable (A2 ad), por la sobrepesca (Pereira 2008e).
a
b
c
d
Fotografía 11.2.2. a) Macrobrachium sp. Casanare; b) Sesarma cf. rectum (cangrejo peludo); c) Fredius stenoleubus (cangrejo de río);
d) Cangrejo Trichodactylidae. Fotos: a), d) F. Trujillo; b) O. Lasso-Alcalá; c) J. C. Señaris.
363
CRUSTÁCEOS
DECÁPODOS DE LA ORINOQUIA VENEZOLANA: BIODIVERSIDAD,
CONSIDERACIONES BIOGEOGRÁFICAS Y CONSERVACIÓN
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.3
MAMÍFEROS
ACUÁTICOS DE LA ORINOQUIA VENEZOLANA
F. Trujillo.
Arnaldo Ferrer
RESUMEN
nández (2003), basándose en características geológicas,
paisajísticas y de vegetación, dividen a la Orinoquia en
cuatro grandes regiones: Guayano-Orinoquense, AndinoOrinoquense, Planicie Orinoquense y Delta-Orinoquense
(Tabla 11.3.1).
En este caso de estudio se consideraron las especies de
mamíferos que dependen totalmente del medio acuático
para cumplir su ciclo vital: manatí (Trichechus manatus),
delines (Inia geofrensis, Sotalia sp.), nutrias (Pteronura
brasiliensis, Lontra lungicaudis), perrito de agua (Chironectes minimus) y chigüire (Hydrochaeris hydrochaeris).
Se realizó una revisión de la información de colecciones
(museos nacionales), referencias bibliográicas, consultas a
expertos y observaciones personales para registrar la distribución geográica, hábitat, abundancia y amenazas para la
conservación de los mamíferos acuáticos en la cuenca del
Orinoco venezolano. La mayoría de estas especies carecen
de estudios que permitan establecer su estatus poblacional
y la información existente sobre aspectos ecológicos se encuentra fragmentada y dispersa.
La Orinoquia venezolana y colombiana posee un gran potencial de hábitat para mamíferos acuáticos, sin embargo
los estudios de distribución y estatus poblacional de las especies en la cuenca del Orinoco son muy limitados, excepto
para el chigüire (Hydrochaeris hydrochaeris).
De las diversas especies de mamíferos asociadas de alguna
manera al medio acuático, se consideraron en este trabajo
solo las que dependen totalmente de este medio para cumplir su ciclo vital: manatí (Trichechus manatus), delines
(Inia geofrensis, Sotalia sp.), nutrias (Pteronura brasiliensis,
Lontra lungicaudis), perrito de agua (Chironectes minimus)
y chigüire (Hydrochaeris hydrochaeris). Los resultados aquí
expuestos están basados en la información de colecciones
(museos nacionales), referencias bibliográicas, consultas a
personas relacionadas con el tema y observaciones personales.
Palabras clave: abundancia, amenazas, distribución geográica, hábitat, mamíferos acuáticos.
La cuenca del Orinoco se encuentra entre Colombia y Venezuela y ocupan un área de 1.080.000 km2. En Venezuela
representa el 60,15% del territorio nacional con 635.200
km2. Según MARN (2001) incluye cinco bioregiones lo
cual le coniere una alta biodiversidad. Michelangeli y Fer-
367
MAMÍFEROS
ACUÁTICOS DE LA ORINOQUIA VENEZOLANA
F. Trujillo.
Tabla 11.3.1 Clasiicación de las regiones de la Orinoquia. * parcialmente
Clasiicación
MARN 2001
Michelangeli y Fernández (2003)
Subcuenca del Orinoco
Bioregión, Los Andes*
Región Andino Orinoquense
Apure (cabeceras y piedemonte)
Bioregión Cordillera de la Costa
Delta del Orinoco
Bioregión deltaica
Región Delta Orinoquense
Morichal Largo - Uracoa - Tigre
Caris
Pao
Zuata
Manapiare
Bioregión los Llanos
Región Planicie Orinoquense
Apure (cabeceras y piedemonte)
Arauca
Capanaparo
Cinaruco
Meta
Caroní
Aro
Caura
Cuchivero
Suapure
Bioregión Guayana
Región Guayana Orinoquense
Parguaza
Cataniapo
Sipapo
Atabapo
Ventuari
Alto Orinoco
368
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
ESTADO DEL
CONOCIMIENTO DE LAS
ESPECIES INVOLUCRADAS
na Venezolana (Ojasti y Lacabana 2008). Legalmente está
protegido por el decreto 1485 (1996) donde se encuentra
vedado para la caza y el decreto 1486 (1996) que lo declara
en peligro de extinción. Se encuentra incluido en el Apéndice I de la Convención Internacional sobre el Comercio de
Especies Amenazadas de Fauna y Flora Silvestre (CITES).
Orden: Sirenia
Familia: Trichechidae
Género: Trichechus manatus
(Linnaeus, 1758)
A. Mignucci.
Manatíes
La familia Trichechidae posee un solo género viviente con
tres especies, de las cuales Trichechus manatus es la única
especie representada en la mastofauna venezolana.
Venezuela ha sido señalada como uno de los países que posee la mayor cantidad de hábitats poténciales para el manatí
(Correa-Viana et al. 1990), siendo la cuenca del Orinoco el
área de distribución principal y la más extensa en Venezuela (Figura 11.3.1).
Localidades de captura y avistamiento recopilados en
los trabajos realizados
El manatí, Trichechus manatus (Linnaeus, 1758), se encuentra distribuido desde la parte meridional de Estados
Unidos hasta el norte de América del Sur. Este mamífero
acuático, con características muy particulares, está registrado en el Libro Rojo de la Unión Internacional para la
Conservación de la Naturaleza (IUCN, 2009) en peligro de
extinción desde 1986. En Venezuela se encuentra bajo la
categoría de Peligro Crítico según el Libro Rojo de la Fau-
Delta del Orinoco y golfo de Paria
Barra del río Guanipa y caños Manamo y Aguas Negras,
Gucajara (El Pajal), Janeira, Pedernales y Angosto, Guatota, Buja, Cocuina, Capure, Macareo, Mariusa, Corocoima
Abajuru, Araguao, Araguaito, Simoina. Winikina, Guayo
y río Barima.
Figura 11.3.1 Distribución de Trichechus manatus en Venezuela.
369
MAMÍFEROS
ACUÁTICOS DE LA ORINOQUIA VENEZOLANA
F. Trujillo.
en dos especies, Inia boliviensis para los ríos del sistema del
Beni en Bolivia e Inia geofrensis para los ríos de las cuencas
del Amazonas y Orinoco. Hasta hace pocos años, esta última especie fue dividida en dos subespecies Inia geofrensis
geofrensis y Inia geofrensis humboldtiana, esta ultima presente en la cuenca del Orinoco. Sin embargo, la evidencia
molecular reciente conirma que sólo hay dos especies: la
de Bolivia y la del Amazonas y Orinoco, sin subespecies
(Banguera-Hinestrosa et al. 2002, Ruiz-García et al. 2008).
Cauce principal del río Orinoco y sus aluentes
Río Morichal Largo, Laguna Guasacónica, caños Arajueo
y Guarapo (cerca de Barrancas del Orinoco), Barranca del
Orinoco, Los Barrancos, Bisalito, Laguna de Mamo, Las
Bonitas, Las Majadas, Tellero, El Rosario, Boca del río Caura, laguna de Aricagua (río Caura), Mapire, Parmana, Caicara del Orinoco, Cabruta, Boca de Arichuna, La Urbana,
Santa Maria de Orinoco (Refugio de Fauna Silvestre Tortuga Arrau), caño Manaticito (Hato La Maciera al sureste del
pueblo de Arichuna), río Apure (Apurito, El Samán), río
Apure en la desembocadura del río Portuguesa, río Portuguesa, caño Boralu (San Rafael de Atamaica), caño Amarillo (Guanaparo arriba), río Caujarito, río Arauca (lagunas
de San Ramón, Sombrerito y Mata Azul), río Payara (entre
el Apure y el Arauca), río Capanaparo, río Claro, río Cunaviche (Guacharal), río Guanare, río Canaguá (San Rafael
de Canaguá).
La tonina del Orinoco se encuentra distribuida en los ríos
Orinoco, Apure, Negro y en el caño Casiquiare, en regiones
al sur del Orinoco, los Llanos y el Sistema Deltaico, entre 0
y 200 m s.n.m. (Linares 1998) (Figura 11.3.2).
La información existente en Venezuela sobre las poblaciones de Inia geofrensis es dispersa y fraccionada, existiendo
pocos estudios detallados. Linares (1998) consideró que su
población es estable en todo el país. No obstante, se desconoce el tamaño poblacional de Inia en los ambientes acuáticos venezolanos (Carantoña 1999).
Los estudios sobre distribución y abundancia, taxonomía
y manejo en cautiverio del manatí, están limitados principalmente a cinco estudios: 1) Mondoli (1974), suministra
información sobre taxonomía, estatus y distribución del
manatí a lo largo de la cuenca del río Orinoco y el Lago de
Maracaibo; 2) Mondoli y Müller (1979) aportan datos sobre su distribución y estatus en el Orinoco medio y región
oriental del país, 3) O´Shea et al. (1986) y 4) Correa-Viana
et al. (1990) realizaron estudios sobre distribución y abundancia del manatí en Venezuela y 5) Boede y Mujica (1995)
presentan sus experiencias en el manejo en cautiverio y algunas observaciones en el medio natural del manatí.
Amenazas a los manatíes e intervención de su hábitat
En Venezuela y en particular en la Orinoquia, la supervivencia de esta especie se encuentra amenazada por diversas
actividades antrópicas, como son las capturas incidentales
en faenas de pesca con redes de ahorque, caza ilegal con ines de venta en mercados locales y de subsistencia, además
de perturbación o destrucción de su hábitat por desarrollos agrícolas e industriales. En la actualidad el desarrollo
de explotaciones petroleras en la región del Delta podría
estar afectando la población de manatíes más importante
registrada hasta ahora en Venezuela. Sin embargo, aparentemente, esto todavía no ha sido evaluado.
Orden: Cetacea
Familia: Iniidae
Género: Inia geofrensis
(de Blainville, 1817)
F. Trujillo.
Delines
La tonina (Inia geofrensis) es una especie monotípica endémica de Suramérica. Pilleri y Gihr (1977) dividen el género
370
Entre las principales evaluaciones de estas especies destacan las siguientes: Trebbau (1975), quien realizó observaciones en el río Apure y mencionó aspectos de su distribución, dieta, variaciones en los patrones de coloración en
función de la edad y comportamiento en campo y cautiverio; Schnapp y Howroyd (1992), quienes en investigaciones
realizadas en los ríos Orinoco y Apure, señalaron aspectos
de su distribución y ecología, además de reportar índices de
abundancia relativa en el río Apure al este de San Fernando
y en el río Apurito aguas arriba, desde su desembocadura
en el Orinoco. Adicionalmente, registraron relaciones inversas entre el tamaño de grupo de toninas y la velocidad
de la corriente del río. McGuire y Winemiller (1998) reportaron aspectos de su ecología y distribución en el río Cinaruco, en el Parque Nacional Santos Luzardo, Estado Apure,
y registraron tamaños promedio de los grupos observados.
Carantoña (1999) consideró aspectos de su ecología en el
Refugio de Fauna Silvestre Caño Guaritico, Estado Apure,
donde reportó abundancia, movimientos locales, distribución espacial y estacional de los tamaños de grupo, actividad diurna y causas de mortalidad. Rodríguez (2000),
contribuyó al conocimiento de la abundancia y frecuencia de uso del hábitat de la especie en el Parque Nacional
Aguaro-Guariquito, Estado Guárico. Escovar (2002) evaluó
el estado poblacional y uso de hábitat de las toninas en el
río Suripá en Barinas. Así mismo, la Fundación OMACHA
y la Fundación La Salle de Ciencias Naturales iniciaron un
programa de estimación de abundancia, que incluyó cursos
de capacitación entre el 2003 y el 2009, con tres evaluacio-
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Figura 11.3.2 Distribución de Inia geofrensis.
nes: dos en el tramo Puerto Paéz-Caicara del Orinoco y una
en la región del Delta, aguas abajo de Tucupita, siendo esta,
la primera estimación de Inia geofrensis y Sotalia luviatilis en el Orinoco mediante transectos lineales y en bandas.
Los resultados de estos trabajos señalan que las densidades
son mayores en las conluencias de los tributarios (GómezSalazar et al. 2009).
El estado de protección legal de Inia geofrensis en Venezuela, está enmarcada en la Ley de Protección de la Fauna
Silvestre promulgada en 1970. En el Libro Rojo de la Fauna
Venezolana se reporta dentro de la categoría de Vulnerable (A2acde +3de). A nivel internacional, esta especie está
incluida en el Apéndice II de CITES (Convención sobre
Comercio Internacional de Especies Amenazadas de Animales y Plantas Silvestres) (Linares 1998) y la Unión Mundial para la Naturaleza la ha declarado bajo la categoría de
Datos Deicientes (IUCN, 2009).
Orden: Cetacea
Familia: Delphinidae
Género: Sotalia sp.
(Gray, 1866)
El género Sotalia ha sido dividido recientemente en dos
especies: Sotalia luviatilis para la cuenca del Amazonas y
Orinoco, y Sotalia guianensis para el Caribe (Caballero et
al. 2007). La especie marina se distribuye a lo largo de la
costa Atlántica desde Florianópolis en el extremo sur del
La principal amenaza sobre este cetáceo es la fragmentación de su hábitat por efecto de la construcción de diques
y represas que fraccionan sus poblaciones e interieren con
371
F. Trujillo.
el lujo genético entre ellas. Así mismo, la alteración de hábitat por navegación de embarcaciones, la contaminación
de los ríos por agroquímicos, vertidos de las industrias urbanas, el mercurio utilizado en la extracción minera (Rodríguez y Rojas-Suárez 1999) y otras actividades antrópicas
que pueden causar un impacto negativo para las poblaciones de mamíferos acuáticos en general, como son las interacciones negativas con pesquerías y más recientemente
capturas dirigidas para la pesca del mapurite (Calophysus
macropterus), especialmente en el Estado Bolivar (Trujillo
et al. 2006).
MAMÍFEROS
ACUÁTICOS DE LA ORINOQUIA VENEZOLANA
F. Trujillo.
Brasil, hasta Honduras en Centroamérica (Trujillo y Diazgranados 2002). En el Orinoco Sotalia ha sido reportada
en el Delta y cauce principal hasta 300 km. río arriba de
Ciudad Bolívar (Boher et al. 1995, Linares 1998). Recientemente se ha reportado este cetáceo en el cauce principal del
Orinoco entre la desembocadura del río Parguaza y Orupe,
en el Estado Bolìvar (Gómez-Salazar et al. 2009, Gómez-Salazar et al. en prensa). En vista de que no se han reportado
avistamientos de Sotalia en los tramos Puerto Páez-Puerto
Carreño-Puerto Ayacucho, se supone que su distribución
se encuentra limitada por los raudales del Caribe en el río
Orinoco, aproximadamente a 4 km. de la población de
Puerto Páez (Trujillo et al. 2006), aún cuando Rodríguez
y Rojas-Suárez (2008) reportan la distribución para todo el
río Orinoco y el caño Casiquiare (Figura 11.3.3).
nes genéticas para establecer la identidad taxonómica de
esta especie.
El japui o delfín negro (Sotalia luviatilis) como es llamado
en Venezuela, es una especie poco conocida, con tamaños
poblacionales aparentemente bajos siendo su condición relativamente estable en las bioregiones donde se encuentra
(Linares 1998). Para la Orinoquía los estudios más importantes corresponden a las evaluaciones de abundancia
llevadas a cabo por la Fundación La Salle y la Fundación
Omacha en varios segmentos del río Orinoco y su Delta,
en los cuales se reportan densidades relativamente bajas
comparadas con la Amazonía (Gómez-Salazar et al. 2009).
En Venezuela, esta especie se encuentra protegida por la
Ley de Protección a la Fauna Silvestre de 1970, está incluida en el Apéndice I de CITES, fue declarada por la Unión
Mundial para la Naturaleza (IUCN 1994) como especie insuicientemente conocida y en el Libro Rojo de la Fauna Venezolana en la categoría de Vulnerable (Ojasti y Lacabana
2008). Sin embargo, las amenazas a las que están sujetas sus
poblaciones son las mismas de todos los cetáceos, considerando las interacciones con las pesquerías como las más
contundentes para la supervivencia de los delines de río
(Trujillo y Diazgranados 2002).
El estatus taxonómico de este delfín es incierto en la Orinoquia, ya que geográicamente parece no corresponder a
Sotalia luviatilis, que se encuentra en la Amazonía (Trujillo
et al. 2010), y parece no ser la especie marina, que aunque
está presente en el Delta tiene algunas diferencias morfológicas en la aleta dorsal y en el tamaño corporal que la hace
diferente de los animales observados en el río Orinoco.
Esto hace necesario y urgente que se adelanten evaluacio-
Figura 11.3.3 Distribución de Sotalia luviatilis.
372
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Orden: Carnívora
Familia: Mustelidae
Género: Pteronura brasiliensis
(Gmelin, 1788)
F. Trujillo.
Nutrias
La nutria o perro de agua (Pteronura brasiliensis) es un género monotípico restringido a Suramérica, su distribución
se extiende desde la Orinoquia colombiana y venezolana,
cuenca del río Amazonas en Brasil y Ecuador, Guayana
Francesa, Guyana, Paraguay, Perú y Surinam hasta el norte
de Argentina (Mondoli 1970). Actualmente su distribución es fragmentada y parece estar extinta en Argentina y
Uruguay (Carter y Rosas 1997, Chehebar 1990). Particularmente se ha reportado que en Venezuela esta especie
presenta un gradiente de distribución altitudinal que oscila
entre 0 y 560 m.s.n.m. (Linares 1998).
La situación de esta especie es amenazada, las poblaciones
de nutrias fueron severamente perseguidas en Latinoamérica para el comercio de su piel extinguiéndose localmente en muchas zonas de su distribución original (Eisenberg
1989). Venezuela no escapó de estos eventos ya que durante los años 1950 y 1970 la cacería comercial del perro de
agua al igual que de los caimanes (Cocodrylus intermedius),
diezmó drásticamente las poblaciones para la venta de sus
pieles (Mondoli 1970). El Libro Rojo de la Fauna Silvestre
Venezolana incluye esta especie en la categoría En Peligro
(Ojasti y Lacabana 2008).
Los aportes al estado de conocimiento de esta especie en
Venezuela, se encuentran restringidos a pocos trabajos. Sus
poblaciones en la Orinoquia han sido reportadas históricamente para el ríos Apure y caño Guaritico, ríos Cunaviche, Cinaruco, Capanaparo, Arauca, Portuguesa, caño
Iguez tributario del río Guanarito, Cojedes, Caris, Morichal Largo, Delta del Orinoco (caños Winikina, Manamo,
Guapoa) y sureste y noreste del Delta respectivamente. En
el Orinoco medio ha sido reportada para el río Caura y sus
tributarios, Mocho, Nichare y Tabaro, la Urbana y en el
Estado Amazonas en los ríos Manapiare, Ventuari, Yutajé,
Esta especie usa distintos tipos de hábitat como los ríos
principales, tributarios, planicies inundables, observándose
que no asciende por ríos de montaña como lo hacen las
especies del género Lontra (Mondoli 1970, Brull y Ojasti
1981).
Figura 11.3.4 Distribución de Pteronura brasiliensis.
373
MAMÍFEROS
ACUÁTICOS DE LA ORINOQUIA VENEZOLANA
F. Trujillo.
Sipapo, Casiquiare y Malaca en el río Bari (Mondoi y Trebbau 1978, 1997). Carter y Rosas (1997) reportan al perro
de agua para el río Caroní, lago de Gurí, y el río Paragua.
En 2004 se observó un grupo de cuatro ejemplares en el río
Cucurital (alto Caronì), Parque Nacional Canaima (obs.
pers.) y parece ser común en el río Ventuari y aluentes
(Lasso com. pers.) (Figura 11.3.4).
bajo, estando amenazada en las regiones Andino Orinoquense y Planicie Orinoquense por pérdida de hábitat y
cacería furtiva (Linares 1998). El Libro Rojo de la Fauna
Venezolana la ha considerado Vulnerable (A2c) (Figura
11.3.5).
En Venezuela no hay trabajos sobre el estatus poblacional
y ecología del perro de agua pequeño, lo que implica un
vacío de información muy grande para el diseño de planes
de manejo y conservación.
Aun cuando estos reportes de distribución son bastante
amplios en la Orinoquia venezolana, sus poblaciones son
extremadamente bajas (Ojasti com. pers. en Rodríguez y
Rojas-Suárez 2008), encontrándose en estado más crítico
las poblaciones de las regiones Andino Orinoquense y Planicie Orinoquense.
La especie se encuentra protegida legalmente por la Ley de
Fauna Silvestre (1970), está sometida a veda permanente
según resolución del MARN N°95 (1979) y decretada en
peligro de extinción en 1996 (Decreto N°1.486, Gaceta
Oicial N° 36.062 1996). A nivel internacional se encuentra
en el Apéndice I de la Convención Internacional sobre el
Comercio de Especies Amenazadas de Fauna y Flora Silvestre (CITES) y está señalada como Vulnerable de Extinción
por la Unión Mundial para la Naturaleza (IUCN 1994). Las
amenazas para esta especie son las mismas que para Pteronura brasiliensis.
Esta especie se encuentra protegida legalmente en Venezuela por la Ley de Fauna Silvestre de 1970 en resolución
del MARN N°95 (1979) que establece la veda total para esta
y otras 36 especies, y decretada como especie en peligro de
extinción (Decreto N°1.486, Gaceta Oicial 1996). A nivel
internacional se encuentra en el Apéndice I de la Convención Internacional sobre el Comercio de Especies Amenazadas de Fauna y Flora Silvestre (CITES) y está señalada
como Vulnerable de Extinción por la Unión Mundial para
la Naturaleza (IUCN 2008).
Orden: Marsupialia
Familia: Didelphidae
Género: Chironectes minimus
(Zimmermann 1780)
Las principales amenazas a que está sometido el perro de
agua son la cacería ocasional para el comercio de su piel
(aunque está prohibido legalmente) y la creencia de los pescadores de que ésta especie es un fuerte competidor por
los recursos de la pesca. En este sentido, se cuenta con reportes de pescadores en Puerto Ayacucho, donde las matan
para disminuir aparentemente la competencia, y en ciertas oportunidades capturan las crías como mascotas. De la
misma forma, la fragmentación y destrucción de hábitat y
la contaminación de las aguas por las actividades mineras,
agrícolas e industriales.
F. Trujillo.
Orden: Carnívora
Familia: Mustelidae
Género: Lontra longicaudis
(Olfers, 1818)
La comadreja de agua o perrito de agua es una especie
monotípica que se encuentra distribuida desde el sur de
México, Centroamérica, Colombia, Venezuela, las Guyanas, Ecuador, Perú, Paraguay y sureste de Brasil hasta el
noreste de Argentina. En Venezuela se encuentran dos subespecies distribuidas en la Orinoquia: Chironectes minimus
minimus, presente en las regiones Guayana Orinoquense y
Delta Orinoquense, y Chironectes minimus panamensis registrado en la región Andino Orinoquense (Figura 11.3.6).
El perro de agua pequeño o nutria pequeña se encuentra distribuida desde el norte de México hasta el sur de
Uruguay (Emmons y Feer 1990). Esta especie es rara de
observar en el país, vive en pequeños ríos y caños bordeados de vegetación boscosa media o alta, es muy sensible a
intervenciones de su hábitat (Mason 1990). En la cuenca
del Orinoco sus poblaciones se consideran estables (Ojasti
y Lacabana 2008), sin embargo su tamaño poblacional es
374
Esta especie de marsupial habita en ríos de aguas claras y
torrentosas así como de aguas turbias y de corrientes suaves, se alimenta básicamente de peces y crustáceos (Mondoli y Medina 1957, Medina y Mondoli 1973). El perrito
de agua fue incluido en este trabajo por ser un depredador
tope en la cadena alimenticia, es un indicador de la salud
del ecosistema en la cuenca alta de la Orinoquia. La situación poblacional de esta especie no se conoce, sin embargo las poblaciones del norte del Orinoco pudieran ser las
más afectadas por intervención y destrucción del hábitat
(Bisbal 1988), ya que en estas zonas están concentrados los
mayores asentamientos urbanos, desarrollos agrícolas e industriales.
P. Soriano.
Otros Mamíferos Acuáticos
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Figura 11.3.5 Distribución de Lontra longicaudis.
Figura 11.3.6. Distribución de Chironectes minimus.
375
MAMÍFEROS
ACUÁTICOS DE LA ORINOQUIA VENEZOLANA
F. Trujillo.
Las principales amenazas para el perrito de agua son la
destrucción del hábitat, la contaminación de las aguas por
pesticidas provenientes de las actividades agrícolas y el
mercurio de las actividades mineras. En el Libro Rojo de
la Fauna Venezolana es considerado en menor riesgo, casi
amenazado. Se encuentra protegido en Venezuela por la
Ley de Fauna Silvestre (1970).
nes. Sin embargo, el nuevo régimen de tenencia de la tierra
en Venezuela, que limita la protección en predios privados,
fomenta la extracción de esta especie que trae como consecuencia una tendencia poblacional decreciente debido fundamentalmente a la cacería furtiva (obs. pers.). El libro Rojo
de la Fauna Venezolana le da la categoría de Menor riesgo
dependiente de conservación. La amenaza principal de esta
especie es la cacería furtiva (Ojasti 1971, 1973, Gondelles
et al. 1981).
Orden: Rodentia
Familia: Hydrochaeridae
Género: Hydrochoeris hydrochaeris
(Linneo 1766)
F. Trujillo.
Chigüire
El Hydrochoeris hydrochaeris comúnmente llamado chigüire o piropiro se encuentra distribuido desde Panamá
hasta el noreste de Argentina (Emmons y Feer 1990). En
Venezuela están presentes dos subespecies: Hydrochoeris
hydrochaeris hydrochaeris, distribuida en toda la cuenca del
Orinoco, cuenca del Lago de Valencia y la región de Barlovento (cuenca del Caribe); y el Hydrochoeris hydrochaeris
isthmius, restringido a la cuenca del Lago de Maracaibo
(Ojasti 1971, 1973).
EVALUACIÓN DE
INFORMACIÓN
Para la síntesis de información de biodiversidad y abundancia (tablas 11.3.2 y 11.3.3) se siguieron los parámetros
aplicados en el taller sobre biodiversidad acuática de la
cuenca del río Orinoco en el capítulo de mamíferos (Trujillo et al. 2004).
En lo referente al hábitat se consideró especíico (E) si está
presente en uno o máximo dos hábitat, generalista (G) si
sobrepasa dos hábitats y generalista en menor grado (GM)
si sobrepasan dos hábitats pero comúnmente se les encuentra en uno o dos de ellos. (Tabla 11.3.5).
Esta especie vive en una amplia variedad de ambientes,
siempre asociada a cuerpos de agua y a los pastizales que
crecen en sitios húmedos, utilizando desde sabanas hasta
zonas boscosas al margen de los ríos. Sus poblaciones se
encuentran más reducidas en estos hábitats boscosos. Su
estatus poblacional era estable en los llanos, delta y sur del
Orinoco hasta la publicación de Linares (1998).
En la Tabla 11.3.6 se observa que la especie más estudiada y
que representa menor riesgo es Hydrochoeris hydrochaeris.
Con respecto a las otras especies el nivel de conocimiento
sobre sus poblaciones es escaso y fraccionado para todas las
regiones, encontrándose en una situación más crítica que
Chironectes minimus y Lontra longicaudis.
El chigüire es una de las especies mejor conocida y estudiada en el país y es aprovechada comercialmente en los
llanos occidentales. El Ministerio del Ambiente y de los Recursos Naturales ha desarrollado un plan de manejo de sus
poblaciones silvestres en hatos particulares garantizando
hasta de alguna forma, cierta estabilidad de sus poblacio-
En cuatro regiones de la cuenca del Orinoco se proponen
áreas para la investigación y manejo de mamíferos acuáticos (tabla 11.3.7).
376
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Tabla 11.3.2 Criterios de clasiicación de abundancia.
Abundancia
Delines
Nutrias
Manatíes
Chigüires
30 ind / km lineal
> 5 letrinas / km lineal
NA
> 1000 ind /km2
A
Abundante
Au
Ausente
0
0
0
0
C
Común
< 30 ind / km lineal
3-4 letrinas / km lineal
2 comederos en
gramalote / km
lineal
300 - 1000 ind / 2 km2
RN
Raro en la naturaleza
1
1
1
< 300 ind / 2 km2
RP
Raro por presión
1
1
1
< 300 ind / 2 km2
Tabla 11.3.3 Formato de información para mamíferos acuáticos.
Especies a considerar
Categoría
IUCN
Inia geofrensis humboldtiana
Vu
Sotalia luviatilis
Vu
Pteronura brasiliensis
En
Lontra longicaudis
Vu
Manatíes
Trichechus manatus
EN
Chigüire
Hydrochaeris hydrochaeris
LC
Región
Abundancia
Hábitat
Delines
Nutrias
Perrito de agua Chironectes minimus
NT
Tabla 11.3.4. Clasiicación del nivel de información de hábitat.
Nivel de información
Número de estudios
MyC
Mayor conocimiento
Más de 2 estudios
MC
Menor conocimiento
Al menos 1 estudio
NC
Ningún conocimiento
Ningún estudio
NA
No aplica
No aplica
377
Nivel inform.
Peso
MAMÍFEROS
ACUÁTICOS DE LA ORINOQUIA VENEZOLANA
F. Trujillo.
Tabla 11.3.5 Cálculo de pesos.
Categoría UICN
Abundancia
Hábitat
Peso
CR
RN
G
1
CR
RP
E
2
CR
RP
G
3
CR
C
G
4
EN
RN
E
5
EN
RP
E
6
Vu
RN
E
7
Vu
RN
G
8
Vu
RP
E
9
Vu
RP
G
10
Vu
C
E
11
Vu
C
G
12
Vu
A
G
13
NT
RN
E
14
NT
RN
G
15
NT
C
E
16
NT
C
G
17
NT
A
E
18
LC
RN
E
19
LC
RN
G
20
LC
RP
G
21
LC
C
E
22
LC
C
G
23
LC
A
G
24
378
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Tabla 11.3.6. Información en diversidad de mamíferos acuáticos para las regiones de la Orinoquia venezolana.
Lontra
longicaudis
Trichechus
manatus
Hydrochaeris
hydrochaeris
Chironectes
minimus
Región Guayana
Orinoquense
Perrito de agua
Pteronura
brasiliensis
Región Delta
Orinoquense
Chigüires
Sotalia sp.
Región Planicie
Orinoquense
Manatíes
Categoría
Vu
Vu
Vu
Vu
Vu
LC
—
RN
Au
RN
RP-RN
NA
RP
—
E
NA
E
E
NA
G
—
NC
NA
NC
NC
NA
MC
—
Peso
7
0
7
7
0
21
—
Abundancia
C
Au
RP
RN
RP
C
—
Hábitat
G
NA
E
E
E
G
—
MyC
NA
MC
NC
MC
MyC
—
Peso
12
0
9
7
9
23
Abundancia
C
C
C
RN
C
RP
—
Hábitat
G
E
G
E
G
G
—
Nivel de
información
NC
NC
NC
NC
MyC
MC
—
Peso
12
11
12
7
12
21
—
Abundancia
C
RN*
C
RN
RP
RP
—
Hábitat
G
E
G
E
E
G
—
Nivel de
información
NC
NC
MC
MC
MyC
NC
—
Peso
12
7
12
7
9
21
—
Hábitat
Región Planicie
Orinoquense
Nutrias
Especies a
considerar
Abundancia
Región Andino
Orinoquense
Delines
Inia
geofrensis
Regiones
Mamíferos
Nivel de
información
Nivel de
información
* Reportado solo en el cauce principal del Orinoco río arriba, hasta el raudal de Carichana a 2 Km de Puerto Páez.
379
MAMÍFEROS
ACUÁTICOS DE LA ORINOQUIA VENEZOLANA
F. Trujillo.
Tabla 11.3.7 Áreas propuestas para la investigación y manejo de mamíferos acuáticos.
Región
Especie
Localidad
Prioridad
Chironectes
minimus
Piedemonte Andino
Investigación
Causa
Importancia
Distribución,
abundacia y perdida
de hábitat
Perdida de
hábitat y vacío
de información
Vacío de
información
Lontra
longicaudis
Piedemonte Andino
Investigación
y manejo
Distribución,
abundacia y perdida
de hábitat
Perdida de
hábitat y vacío
de información
Vacío de
información
Pteronura
brasiliensis
P.N. CinarucoCapanaparo, P.N
Aguaro-Guariquito,
R.F Caño Guaritico
Investigación
Distribución,
abundancia y uso de
hábitat
Presencia, vacío
de información
Área clave
Inia geofrensis
P.N Cinaruco-Capanaparo, río Apure y
Arauca,conluencia
de los ríos en el
canal principal del
Orinoco
Investigación
y manejo
Estatus
poblacional,uso de
hábitat y manejo
Presencia, vacío
de información
Área clave y
vacío de
información
Trichechus
manatus
Toda la región
Investigación
y manejo
Estatus poblacional,
hábitat potencial y
manejo
Presencia, vacío
de información
Presencia
Trichechus
manatus
Reserva de Biósfera
Macareo-Orinoco,
P.N. Mariusa
Investigación
y manejo
Estatus poblacional,
hábitat potencial y
manejo
Presencia
Área clave
Sotalia sp
Delta del Orinoco
Investigacíón
Estatus poblacional,
distibución
Presencia
Vacío de
información
Pteronura
brasiliensis
Reserva de Biósfera
Macareo-Orinoco,
P.N. Mariusa, río
Morichal Largo
Investigación
Estatus poblacional,
hábitat potencial y
manejo
Vacío de
información
Área clave y
vacío de
nformación
Lontra
longicaudis
Reserva de Biósfera
Macareo-Orinoco,
P.N. Mariusa, río
Morichal Largo
Investigación
Estatus poblacional,
hábitat potencial
Vacío de
información
Área clave y
vacío de
información
Pteronura
brasiliensis
Río Caura, Ventuari
y Alto Orinoco
Investigación
Distribución, estatus
poblacional, hábitat
potencial
Vacío de
información
Área clave
Lontra
longicaudis
Toda la región
Investigación
Distribución, estatus
poblacional, hábitat
potencial
Vacío de
información
Vacío de
información
Chironectes
minimus
Toda la región
Investigación
Distribución, estatus
poblacional, hábitat
potencial
Vacío de
información
Vacío de
información
Región Andino
Orinoquense
Región Planicie
Orinoquense
Región Delta
Orinoquense
Región Guayana
Orinoquense
380
Asociada a
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
Región
Región Guayana
Orinoquense
Especie
Sotalia sp
Localidad
Canal principal del
río Orinoco entre
Barrancas del
Orinoco y Puerto
Páez
Prioridad
Investigación
CONCLUSIONES Y
RECOMENDACIONES
Asociada a
Estatus poblacional
Causa
Vacío de
información
Importancia
Vacío de
información
evaluada. Igualmente se recomienda implementar estudios
de uso de hábitat en zonas puntuales como el cauce principal del Orinoco entre Barrancas del Orinoco y Puerto Páez.
Como puede observarse en este estudio, la mayoría de las
especies de mamíferos acuáticos de Venezuela, carecen de
estudios que permitan establecer su estatus poblacional,
ya que mucha de la información existente sobre aspectos
ecológicos se encuentra fragmentada y dispersa, principalmente en la cuenca del Orinoco. Por ello, es pertinente
concentrar esfuerzos para realizar estudios de abundancia,
uso de hábitat y manejo de estas especies, con el objeto de
realizar una evaluación de su distribución y hábitat potenciales en toda la cuenca del Orinoco y de allí el establecimiento preciso de los lineamientos de conservación de las
diferentes especies.
Las nutrias y el perrito de agua, requieren una evaluación
urgente de su estado actual, ya que se encuentran en áreas
con un alto índice de intervención y degradación del hábitat, especialmente en las regiones Andino Orinoquense.
En todos los casos anteriores, se sugiere igualmente hacer
esfuerzos conjuntos en la zona fronteriza con Colombia a lo
largo del río Orinoco, Meta y Arauca.
El chigüiro es la especie de mamífero acuático mejor estudiada en la región Planicie Orinoquense y se encuentra sometido en la actualidad a un programa de manejo llevado
a cabo por el Ministerio del Ambiente en la región llanera.
Sin embargo, los cambios en el regimen de tenencia de la
tierra, afectan su estatus poblacional. En el resto de las regiones de la cuenca del Orinoco las poblaciones se encuentran en decadencia debido a la cacería furtiva. Se recomienda aplicar programas de educación Ambiental y Guardería.
En el caso del manatí se deben concentrar los esfuerzos
particularmente en las áreas protegidas tales como la Reserva de Biosfera Delta del Orinoco y El Parque Nacional
Mariusa. Con respecto a los delines, se recomienda evaluar la región del Orinoco comprendida entre el Caura y
Tucupita, que es la zona que hasta el momento no ha sido
381
MAMÍFEROS
ACUÁTICOS DE LA ORINOQUIA VENEZOLANA
F. Trujillo.
BIBLIOGRAFÍA
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Frutos de palma de moriche. Foto: F. Nieto.
.4
FLORA
DE LA CUENCA DEL ORINOCO ÚTIL PARA
EL SOSTENIMIENTO DE LA DIVERSIDAD
ÍCTICA REGIONAL
O. Lasso-Alcalá.
Francisco Castro-Lima
RESUMEN
Palabras Clave: bosques inundables, conservación, ecosistemas acuáticos, hábitos alimentarios, ictiocoria. peces,
Orinoco.
La observación sistemática y el análisis del contenido estomacal en los peces durante los últimos 15 años, han
permitido identiicar semillas, hojas, frutos y lores de 230
especies de plantas del bosque inundable y de tierra irme,
consumidas por 82 especies de peces. Este recurso alimentario está agrupado en 43 familias vegetales, siendo las más
importantes: Arecaceae con 23 especies, Euphorbiaceae
(22), Burseraceae y Moraceae (14), Myrtaceae (12), Cecropiaceae (9), Chrysobalanaceae (8) y Myristicaceae (7). Los
géneros Ficus, Cecropia, Protium, Inga, Hevea, Mabea, Bactris, Alchornea, Hirtella, Virola y Psidium incluyeron la mayoría de las especies consumidas. Las especies ícticas que
consumen este recurso, pertenecen a las familias Anostomidae, Characidae, Doradidae, Auchenipteridae y Pimelodidae. La mayor diversidad de especies consumidoras son
de la familia Characidae y de los géneros: Brycon, Colossoma, Piaractus, Metynnis, Myleus, Mylossoma, Leporinus,
Chalceus, Astyanax, Triportheus y Pristobrycon. El estudio
de esta relación alimentaria es fundamental para conocer
los ciclos productivos de los peces, las plantas que ellos dispersan (ictiocoria), el valor nutricional y la diversidad de
lora consumida por estos, así como la importancia y valor
ecológico de los bosques inundables, información necesaria para el manejo sostenible, la acuicultura y la conservación de los ecosistemas de la cuenca del Orinoco.
INTRODUCCIÓN
Suramérica tiene una alta variedad de peces frugívoros y
omnívoros que basan su alimentación en frutos y semillas
que provienen de los bosques inundables y de tierra irme
(Araujo-Lima y Goulding 1997). Las relaciones tróicas entre plantas y peces se registran en la época de lluvias, cuando muchas especies de peces Characiformes, Siluriformes
y Perciformes penetran a los bosques inundados y aprovechan los recursos vegetales que lotan en la supericie o
están depositados en el fondo (Gottsberger 1978, Goulding
1980a, 1980b, Machado-Allison 1982, 2005, Marrero et al.
1997).
Mucho de este material vegetal alóctono proviene de dos
especies de palmas de la familias Arecaceae (Mauritia
lexuosa y Astrocaryum jauari) (Piedade 1985, Piedade et
al. 2003, 2006) y otras especies de las familias Burseraceae,
Rubiaceae, Cecropiaceae, Moraceae y Melastomataceae,
que habitan en las orillas, barrancos y taludes inclinados en
385
FLORA
DE LA CUENCA DEL ORINOCO ÚTIL PARA EL SOSTENIMIENTO
DE LA DIVERSIDAD ÍCTICA REGIONAL
F. Castro-Lima.
bosques de tierra irme y cuyas lores y frutos, caen directamente al agua o son dispersadas a causa de la escorrentía
de las aguas y la acción de murciélagos o aves dispersoras
(Goulding 1980a, 1980b).
Phractocephalus hemiliopterus, Trachelyopterus trachycorystes, Pterodoras spp., Leiarius spp., Pimelodus spp. y Oxidoras spp, todas ella de interés comercial.
Este conocimiento también resultaría útil para la acuicultura de estas especies nativas, en cuanto al empleo de recursos
vegetales como fuente de alimento completo o complementado con frutos como la guayaba el mango, u otros vegetales como patata, bore, calabaza, plátano, maiz, arroz, yuca o
semillas de caucho y de ceiba, tal como ha sido registrado
para la Amazonia por Araujo-Lima y Goulding (1997).
En la cuenca del río Orinoco se ha registrado una alta diversidad vegetal que representa abundante alimento para los
peces frugívoros y omnívoros (Lundberg 1998, MachadoAllison 2005); lo cual estimula el estudio y conirmación de
procesos ecológicos claves como la ictiocoria. La ictiocoria
es un proceso ecológico que contribuye a la dispersión de
las plantas, y tiene como particularidad el hecho de que se
requiere el paso de las semillas por tracto intestinal de los
peces para que sean viables y germinen (Gottsberger 1978,
Goulding 1980a, 1980b).
Aunque las plantas son parte fundamental de la dieta de
los peces, los estudios relativos a las especies vegetales que
éstos consumen son aún incompletos y enfocados en determinadas áreas (Canestri 1970, Gottsberger 1978, Goulding
1980, Goulding et al. 1988, Ziburski 1991, Kubitzki y Ziburski 1993, Machado-Allison 2005).
Comprender este tipo de co-evolución entre los peces y las
plantas del bosque inundable de la Orinoquia, contribuye
a la deinición de estrategias de manejo más efectivas del
bosques e importantes especies de la ictiofauna tales como
Colossoma macropomum, Piaractus brachypomus, Brycon
amazonicus, B. falcatus, B. whitei, Mylossoma duriventre,
M. aureum, Metynnis spp., Myleus spp., Triportheus spp.,
Este estudio registra 230 especies de lora que son aprovechadas por 88 especies de peces de la cuenca, aportando
información de línea base y conirmando el fenómeno de
ictiocoria en la cuenca.
Foto 11.4.1 Bosque inundable del Casanare. Foto: C. Suarez.
386
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Castro-Lima.
ANTECEDENTES
Tipos de ecosistema
Mientras en la cuenca del río Amazonas se distinguen dos
tipos de bosque inundable; los inundados por aguas blancas y por aguas negras (Sioli 1975, Prance 1980); en la Orinoquia se distinguen cuatro tipos: los de aguas blancas (vegas inundables); de aguas negras (rebalse); de aguas mixtas
y de aguas claras (rebalses claros).
Relaciones plantas y peces
La cuenca del río Orinoco presenta una alta heterogeneidad de ecosistemas acuáticos como resultado de diferentes procesos geológicos históricos (captura de ríos, levantamiento de los Andes y cordillera de la Costa), lujos de
inundación, un extenso sistema ribereño permanente y una
gran variedad de relieves topográicos.
Estos bosques presentan una composición lorística que diiere notablemente, de acuerdo al tipo de agua y suelo presente. Debido a la alta acidez, contenido mineral y escasa
penetración de luz en los rebalses, tanto sus bosques como
la vegetación herbácea acuática (Junk y Piedade 1997) y la
producción de itoplancton (Schmidt 1973, Sioli 1976) son
muy bajos. Por lo tanto la vida en estos ecosistemas depende en gran medida de la producción primaria de material
alóctono de los bosques ribereños (Erwin y Adis 1982, Junk
et al. 1989, Junk y Piedade 1997).
Estos ecosistemas acuáticos generan y mantienen diversas
comunidades de bosques y peces con relaciones ecológicas
como la ictiocoria. Los mecanismos de dispersión de semillas generalmente implican una gran producción y pérdida
de frutos, pues son ineicientes en cuanto a la posibilidad de
encontrar un lugar apropiado para la germinación y permiten que oportunistas exploten estos recursos (Janzen 1970,
1971, Fleming y Heithaus 1981). Por esa razón las plantas
de los ambientes acuáticos han desarrollado mecanismos
alternos de dispersión para complementar la ictiocoria, tales como hidrocoria, anemocoria, autocoria y zoocoria.
METODOLOGÍA
La ictiocoria es un mecanismo de dispersión presente en
las llanuras aluviales de la Amazonia y Borneo que se ha
mantenido en los grupos de plantas primitivas siendo posiblemente el mecanismo responsable de la colonización de
nuevos hábitats (Van der Pijl 1969). No obstante, no todos
los peces herbívoros son dispersores de semillas, pues algunas especies son depredadoras.
Observaciones directas en campo durante 16 años y la interacción con comunidades indígenas de la zona transicional
Orinoco-Amazonas, han permitido registrar la interacción
entre plantas y peces. Se realizaron recorridos terrestres y
luviales durante diferentes épocas del año en los principales ecosistemas inundables de la Orinoquia realizando entrevistas con pescadores locales, para conocer las especies
de lora consumidas por peces, sus nombres comunes y su
fenología.
Varias hipótesis sostienen que las comunidades ícticas de
Suramérica co-evolucionaron consumiendo frutos y semillas silvestres, contribuyendo así a la heterogeneidad espacial y mediante adaptaciones en la cadena alimentaria en
la que participan especies acuáticas y terrestres durante el
período de inundaciones (Araujo-Lima y Goulding 1997,
Goulding 1980a, 1980b, Machado-Allison 2005). Aunque
las semillas parecen ser mayoritarias en su dieta, también
consumen gran cantidad de frutas y hojas de plantas terrestres y en menor proporción zooplancton, insectos y peces
(Goulding 1980a, 1980b, Kubitzki y Ziburski 1993).
Con esta información previa se realizaron jornadas de observación no estandarizadas en los ríos, lagunas, caños,
esteros y bosques inundables, durante diferentes ciclos
climáticos, identiicando las especies vegetales con fruto y
determinando los sitios de alimentación o “pepeos” en los
cuales se colectaron los peces.
Los peces se colectaron con métodos tradicionales (indígenas, comunidades de colonos y pescadores artesanales).
Como carnada se emplearon las plantas observadas en los
“pepeos” durante las jornadas de pesca diurnas y nocturnas. Para el análisis de la dieta se descartó el material vegetal usado como carnada, los peces colectados fueron fotograiados y para su identiicación se utilizaron las claves de
Machado-Allison (1982), Taphorn (1993), Machado-Allison y Fink (1996) y Jegú (2001) así como la conirmación
de los especialistas Donald Taphorn y Michel Jegú.
La disponibilidad de esta fuente de alimento alóctono es
variada y así por ejemplo, mientras las plantas del bosque
inundable producen frutos que caen directamente al agua
y los peces las atrapan bajo el árbol o recolectándolos a la
deriva, otras especies vegetales de tierra irme llegan a los
bosques inundables por anemocoria y son luego transportadas hacia los ríos (ejemplo: Jacaranda copaia y Ceiba pentandra).
387
FLORA
DE LA CUENCA DEL ORINOCO ÚTIL PARA EL SOSTENIMIENTO
DE LA DIVERSIDAD ÍCTICA REGIONAL
F. Castro-Lima.
Las familias vegetales con el mayor número de especies ícticas que las consumen, son Cecropiaceae con 52 especies,
Malpighiaceae (35), Bombacaceae (34), Chrysobalanaceae
(32), Euphorbiaceae (29), Moraceae (27), Myristicaceae y
Polygonaceae (24), Rubiaceae (22), Bignoniaceae (21), Burseraceae, Myrtaceae y Quiinaceae (18) (Figura 11.4.1).
El material botánico colectado en estado fértil, fue depositado en el herbario de la Universidad de los Llanos
(Unillanos) e identiicado mediante las claves de Galeano
(1992), Gentry (1993), Henderson et al. (1995), Murillo y
Franco (1995), Bernal (1996), Stergios (1996), Steyermark
et al. (1998), Stevenson (1999), Murillo y Restrepo (2000),
Guillean (2001) y Quiñones (1995, 1999, 2001, 2005) y
comparando con los especímenes del herbarios Unillanos y
COAH. Se registraron las especies de lora y peces en cada
ecosistema, la fenología y las preferencias alimentarias de
los peces. Adicionalmente se tomaron más de mil fotografías de los peces capturados y sus ecosistemas asociados.
Los géneros vegetales más consumidos por peces fueron,
Cecropia con 52 especies, Alchornea (39), Mabea y Ficus
(37), Byrsonima (35), Ceiba (34), Euterpe (33), Mauritia
(32), Mouriri (31), Hevea (28), Virola y Coccoloba (24),
Dugüetia, Brosimum y Duroia (23), Psidium (22), Tabebuia
(21) y Dacryodes 20 (Figura 11.4.2). Las especies vegetales más consumidas por los peces se muestran en la Figura
11.4.3.
Ciclo fenológico
Este ciclo juega un papel preponderante en la alimentación
y reproducción de los peces. En la Orinoquia, se encontró
que la loración de las especies es mayor en verano o época
seca (diciembre a abril) con un 64%, mientras que el otro
36% de las especies lorece entre mayo y noviembre. En
cuanto a la maduración de frutos, su máximo nivel fue en
invierno o época de lluvias, entre junio y septiembre, con
125 especies mientras que en verano solo maduraron frutos
59 especies. Las demás especies se distribuyen en los meses
de transición entre verano e invierno y viceversa.
En cuanto a la maduración, un 60% de las especies vegetales estudiadas maduraron sus frutos en la época invernal entre inales de mayo y octubre, mientras que el 28%
presentaron maduración en verano entre diciembre y abril
(Figura 11.4.4), teniendo disponibilidad de semillas al comenzar la inundación del bosque.
Foto 11.4.2 Francisco Castro con un ejemplar de Leporinus
friderici. Foto: cortesía del autor.
RESULTADOS
Las especies vegetales que sirven de alimento a los peces
habitan en cinco ecosistemas: bosque inundable, ocasionalmente inundable y de tierra irme, morichales y sabana
inundable. Los bosques inundables presentan la mayor riqueza con 132 especies de plantas, seguido por el bosque de
tierra irme (69), el bosque ocasionalmente inundable (24),
el morichal (4) y la sabana inundable (1). Sin embargo, las
especies no son exclusivas de un solo ecosistema, Así, 15 especies se encuentran en los bosques inundables y de tierra
irme, de éstas las más importantes son Spondias mombin,
Attalea butyracea y Euterpe precatoria; nueve en bosques
ocasionalmente inundables y de tierra irme Aiphanes aculeata, Annona montana y Rollinia edulis; tres en bosques de
tierra irme y morichal y Maquira coriacea, que se encuentra en bosques no inundables y en morichales.
Flora
Se colectaron 500 especímenes vegetales pertenecientes a
230 especies agrupadas en 108 géneros y 46 familias (Tabla
11.4.1). Las familias con mayor riqueza de especies fueron
Arecaceae (23 especies), Euphorbiaceae (22), Myrtaceae
(15), Moraceae y Burseraceae (14), las de menor riqueza
fueron Bignoniaceae, Bixaceae, Lecythidaceae, Olacaceae,
Podostemaceae, Sapindaceae y Violaceae (Tabla 11.4.1).
Los géneros más representativos fueron Protium con nueve
especies, Ficus (8), Cecropia (7), Inga y Passilora (6), Hirtella, Mabea y Psidium (5). Cabe destacar la presencia de los
géneros Attalea, Astrocaryum, Humiria, Tetragastris, Myrciaria, Myrcia, Diclidanthera, Euterpe, Oenocarpus, Connarus y Matayba.
388
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Castro-Lima.
En cuanto al tipo de agua, en los bosques inundados por
aguas negras se encontraron 66 especies, 46 especies en los
bosques con aguas mixtas, 27 en bosques de aguas blancas,
22 en los bosques inundables de aguas claras y 69 en bosques de tierra irme (Tabla 11.4.1).
Tabla 11.4.1 Especies de plantas consumidas por peces en la Orinoquia colombiana. Se discriminan las especies de acuerdo al hábitat -tipo de suelo y agua que lo inundan-: (1): especies en bosques inundados por aguas negras; (2): especies en bosques con aguas
mixtas; (3): en bosques de aguas blancas (4): en los bosques inundables de aguas claras y especies de tierra irme (5):
Número especies
23
23
22
Familia
Arecaceae
Arecaceae
Euphorbiaceae
Nombre cientíico
Hábitat
Aiphanes aculeata
3
Astrocaryum acaule
1
Astrocaryum chambira
5
Astrocaryum jauari
1
Attalea butyracea
3
Attalea maripa
5
Bactris gasipaes
5
Bactris cf. glaucescens
4
Bactris gasipaes var. chichagüi
5
Bactris major
3
Desmoncus polyacanthos
2
Desmoncus orthacanthos
2
Euterpe precatoria
1
Leopoldinia pulchra
4
Mauritia lexuosa
4
Mauritiella aculeata
4
Mauritiella armata
4
Oenocarpus vacaba
5
Oenocarpus bataua
5
Oenocarpus mapora
1
Socratea exorrhiza
1
Syagrus orinocensis
5
Syagrus sancona
3
Alchornea castaneifolia
2
Alchornea luviatilis
1
Alchornea triplinervia
1
Alchornea latifolia
2
Amanoa guianensis
4
389
FLORA
DE LA CUENCA DEL ORINOCO ÚTIL PARA EL SOSTENIMIENTO
DE LA DIVERSIDAD ÍCTICA REGIONAL
F. Castro-Lima.
Número especies
22
15
14
Familia
Euphorbiaceae
Myrtaceae
Burseraceae
Nombre cientíico
Hábitat
Amanoa oblongifolia
4
Croton cuneatus
1
Croton sp.
5
Hevea benthamiana
4
Hevea brasilensis
5
Hevea guianensis
4
Hevea nitida
4
Hura crepitans
3
Hyeronima alchorneoides
1
Mabea montana
1
Mabea nitida
1
Mabea piriri
5
Mabea schomburgkii
2
Mabea trianae
2
Pera arborea
5
Piranhea trifoliata
2
Piranhea longepedunculata
2
Eugenia producta
1
Eugenia sp.1
5
Eugenia pachystachya
2
Eugenia stipitata
5
Myrcia sp.2
2
Myrcia sp.3
4
Myrciaria dubia
4
Myrciaria loribunda
2
Plinia sp.1
4
Plinia sp.2
4
Psidium acutangulum
2
Psidium densicomum
1
Psidium maribense
1
Psidium sp.1
1
Psidium sp.2
2
Dacryodes chimantensis
5
Dacryodes peruviana
5
390
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Castro-Lima.
Número especies
14
14
14
13
Familia
Burseraceae
Moraceae
Moraceae
Fabaceae
Nombre cientíico
Hábitat
Dacryodes sp.
5
Protium altsonii
5
Protium aracouchini
5
Protium glabrescens
5
Protium heptaphyllum
5
Protium llanorum
4
Protium robustum
5
Protium sagotianum
5
Protium sp.1
5
Protium unifoliolatum
1
Tetragastris mucronata
5
Tetragastris panamensis
5
Brosimum guianense
1
Brosimum lactescens
5
Brosimum sp.1
2
Ficus dendrocida
3
Ficus guianensis
1
Ficus insipida
3
Ficus mathewsii
5
Ficus maxima
1
Ficus nymphaeifolia
5
Ficus trigonata
1
Ficus sp.
2
Maclura tinctoria
3
Maquira coriacea
1
Naucleopsis ulei
5
Campsiandra implexicaulis
2
Campsiandra comosa
2
Copaifera pubilora
1
Macrolobium acaciifolium
1
Macrolobium multijugum
1
Erythrina fusca
3
Hydrochorea marginata
1
Inga cylindrica
1
391
FLORA
DE LA CUENCA DEL ORINOCO ÚTIL PARA EL SOSTENIMIENTO
DE LA DIVERSIDAD ÍCTICA REGIONAL
F. Castro-Lima.
Número especies
13
9
9
9
11
Familia
Fabaceae
Cecropiaceae
Chrysobalanaceae
Chrysobalanaceae
Annonaceae
Nombre cientíico
Hábitat
Inga marginata
5
Inga nobilis
1
Inga psittacorum
1
Inga punctata
5
Inga vera
3
Cecropia engleriana
2
Cecropia icifolia
5
Cecropia latiloba
5
Cecropia membranacea.
3
Cecropia metensis
1
Cecropia peltata
3
Cecropia sciadophylla
5
Coussapoa asperifolia
1
Coussapoa villosa
1
Hirtella americana
5
Hirtella elongata
5
Hirtella triandra
1
Hirtella racemosa
1
Hirtella sp.
1
Licania octandra
1
Licania pyrifolia
5
Licania apetala
1
Licania sp.
1
Annona glabra
1
Annona jahnii
5
Annona montana
3
Annona muricata
5
Dugüetia sp.1
3
Dugüetia sp.2
1
Dugüetia spixiana
1
Oxandra espintana
2
Rollinia edulis
3
Rollinia exsucca
2
Rollinia mucosa
5
392
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Castro-Lima.
Número especies
7
7
6
6
6
6
5
Familia
Myristicaceae
Sapotaceae
Melastomataceae
Passiloraceae
Passiloraceae
Rubiaceae
Anacardiaceae
Nombre cientíico
Hábitat
Iryanthera juruensis
5
Iryanthera laevis
5
Iryanthera sp.
5
Virola elongata
5
Virola carinata
1
Virola surinamensis
1
Virola lexuosa
5
Chrysophyllum argenteum
3
Manilkara sp.
1
Pouteria sp.1
2
Pouteria sp.2
1
Sarcaulus brasiliensis
5
Micropholis venulosa
5
Micropholis egensis
2
Bellucia grossularioides
5
Bellucia pentamera
5
Henriettea martiusii
4
Henriettea mucronata
4
Henriettea sp.
1
Henriettella sp.
1
Passilora foetida
2
Passilora misera
2
Passilora nitida
5
Passilora securiclata
2
Passilora sp.1
2
Passilora vitifolia
3
Duroia micrantha
1
Duroia sp.
5
Genipa americana
3
Genipa spruceana
5
Randia armata
2
Stachyarrhena duckei
2
Antrocaryon amazonicum
3
Spondias mombin
3
393
FLORA
DE LA CUENCA DEL ORINOCO ÚTIL PARA EL SOSTENIMIENTO
DE LA DIVERSIDAD ÍCTICA REGIONAL
F. Castro-Lima.
Número especies
5
4
3
3
3
3
Familia
Anacardiaceae
Clusiaceae
Araceae
Connaraceae
Cucurbitaceae
Lauraceae
3
Poaceae
3
Poaceae
3
Polygonaceae
3
Polygonaceae
3
3
3
Quiinaceae
Sapindaceae
Bignoniaceae
Nombre cientíico
Hábitat
Spondias venosa
5
Tapirira guianensis
5
Tapirira sp.
5
Garcinia madruno
1
Garcinia macrophylla
1
Tovomita spruceana
4
Tovomita macrophylla
1
Philodendron sp.
1
Montrichardia arborescens
4
Montrichardia linifera
2
Connarus punctatus
1
Connarus venezuelanus
1
Connarus sp.
2
Gurania eriantha
5
Cayaponia granatensis
5
Melothria pendula
5
Nectandra cuspidata
5
Nectandra pichurini
2
Ocotea cymbarum
2
Oryza grandiglumis
3
Oryza latifolia
3
Oryza ruipogon
2
Coccoloba caracasana
3
Coccoloba ovata
2
Coccoloba striata
2
Lacunaria sp.
1
Quiina macrophylla
1
Quiina lorida
2
Cupania americana
1
Matayba sp.1
1
Matayba sp.2
1
Crescentia amazonica
2
Jacaranda copaia
5
Tabebuia barbata
1
394
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Castro-Lima.
Número especies
Familia
2
Apocynaceae
2
Bixaceae
2
Bombacaceae
2
Boraginaceae
2
Hippocrateaceae
2
Malpighiaceae
2
Memecylaceae
2
Simaroubaceae
2
Sterculiaceae
2
Verbenaceae
2
Polygalaceae
1
Capparaceae
1
Caricaceae
1
Caryocaraceae
1
Gnetaceae
1
Nombre cientíico
Hábitat
Couma macrocarpa
5
Macoubea guianensis
4
Cochlospermum orinocense
5
Cochlospermum vitifolium
5
Ceiba pentandra
3
Pseudobombax munguba
1
Cordia tetrandra
3
Cordia sp.
2
Salacia impressifolia
2
Salacia sp.
4
Byrsonima japurensis
1
Byrsonima spicata
5
Mouriri guianensis
2
Mouriri myrtifolia
1
Simaba orinocensis
2
Simaba guianensis
1
Guazuma tomentosa
3
Guazuma ulmifolia
5
Vitex capitata
5
Vitex orinocensis
2
Diclidanthera bolivarensis
2
Diclidanthera sp.
3
Crateva tapia
2
Carica microcarpa
5
Caryocar microcarpum
1
Gnetum nodilorum
5
Humiriaceae
Humiria sp.
1
1
Aquifoliaceae
Ilex sp.
1
1
No identiicada
No identiicada
4
1
Olacaceae
Dulacia candida
2
1
Podostemaceae
Marathrum utile
5
1
Lecythidaceae
Eschweilera tenuifolia
2
230
395
FLORA
DE LA CUENCA DEL ORINOCO ÚTIL PARA EL SOSTENIMIENTO
DE LA DIVERSIDAD ÍCTICA REGIONAL
F. Castro-Lima.
Mauritia lexuosa.
Hevea guianensis.
Coccoloba ovata.
Iryanthera laevis.
Foto 11.4.3 Algunos frutos consumidos. Fotos: F. Castro-Lima.
Figura 11.4.1 Familias vegetales más consumidas por las especies de peces en la Orinoquia.
396
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Castro-Lima.
Figura 11.4.2 Géneros vegetales más consumidos por las especies de peces en la Orinoquia.
Figura 11.4.3 Especies vegetales más consumidas por las especies de peces en la Orinoquia.
397
FLORA
DE LA CUENCA DEL ORINOCO ÚTIL PARA EL SOSTENIMIENTO
DE LA DIVERSIDAD ÍCTICA REGIONAL
F. Castro-Lima.
Figura 11.4.4 Calendario de oferta alimenticia para la ictiofauna de acuerdo a la fenología de las especies en la Orinoquia colombiana.
Estas especies vegetales son consumidas por varios géneros de peces como Brycon, Colossoma, Leporinus, Chalceus, Markiana, Piaractus, Mylossoma, Myloplus, Metynnis,
Pygopristis, Pristobrycon y Serrasalmus.
Dispersión y depredación de semillas
Se registraron 99 especies dispersadas por peces, 49 de
otras119 especies son depredadas (las 71 especies restantes
son especies de tierra irme).
Algunas especies de plantas son depredadas por animales
terrestres y acuáticos, como en el caso de Brosimum guianense, B. latescens y Brosimum sp., cuyos frutos son consumidos por peces y primates y sus semillas dispersadas por
estos últimos (Alouatta seniculus, Lagothrix lagotricha, Cebus apella., Cacajao melanocephalus y Saimiri sciureus). En
el caso de Maquira coriacea (familia Moraceae) su dispersión ocurre por hidrocoria, y una gran cantidad de semillas
es consumida por peces, así que también es dispersada por
murciélagos como método alternativo.
Varias especies de las familias Euphorbiaceae, Bombacaceae, Poaceae, Bignoniaceae y Fabaceae, producen semillas
nutritivas que son consumidas, y parcial o totalmente digeridas durante la ingesta por los carácidos arencas (Triportheus spp), palometas (Mylossoma aureum y M. duriventre), pámpanos (Myloplus spp), caribes (Pristobrycon
y Serrasalmus), morocoto (Piaractus brachypomus) y cachama (Colossoma macropomum). Las semillas más consumidas corresponden a las especies Amanoa oblongifolia,
Mabea nitida, Mabea trianae, Hevea guianensis, Croton cuneatus, Piranhea trifoliata, Alchornea luviatilis, A. latifolia
y Pera sp. (familia Euphorbiaceae); Inga nobilis, Inga vera,
Macrolobium acaciifolium, Campsiandra implexicaulis, C.
comosa. (Fabaceae); Tabebuia barbata y jacaranda copaia
(Bignoniaceae); Pseudobombax munguba y Ceiba pentandra (Bombacaceae) y Oryza ruipogon y O. alta (Poaceae).
Hábito de crecimiento
Entre las especies consumidas por peces dominan las partes de árboles (153 especies), arbustos (54 sp.), lianas (16
sp.) y hierbas con siete especies.
398
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Castro-Lima.
Partes vegetales consumidas por los peces
Distribución de las plantas
Son mayormente consumidos los frutos de 149 especies
vegetales, semillas de 51 especies, arilos de 37 especies, lores de 17 especies, hojas de cinco especies y dos especies
vegetales hospedadoras de insectos (pupas y larvas de lepidópteros), que son consumidas por los peces. De algunas
especies los peces aprovechan más de una parte vegetal:,
consumen el arilo y semillas en 15 especies, lores y frutos
de siete especies, lores y semillas de cinco; frutos y semillas
de tres, lores y arilos de una y lores, frutos y hoja de una
especie.
Las plantas consumidas por los peces en la Orinoquia, se
distribuyen así: 73 especies se encuentran en el oriente de
la Orinoquia; 51 tienen distribución regional, 47 son exclusivas de la zona de piedemonte y 40 y 18 son propias
respectivamente del sur y norte de la Orinoquia.
Preferencia alimentaria
Veinticinco especies de peces solo consumieron frutos,
13 solo semillas; 13 lores, frutos y semillas; 10 lores, frutos, semillas y hojas; 19 solo frutos y semillas; y la especie
Myleus setiger preirió hojas aunque en su dieta incluyó insectos y semillas pero en abundancias menores.
Foto 11.4.4 Contenido estomacal del bagre Trachycorystes trachycorystes (Valenciennes, 1840). Foto: F. Castro-Lima.
Peces
cada una incluyen partes vegetales. Los géneros con más especies herbívoras fueron Leporinus (10), Brycon (8), Myloplus (7), Astyanax (6), Pristobrycon (3), mientras Chalceus,
registró el menor número de especies de esta condición (1).
Cabe destacar que las especies de hábitos pelágicos utilizan
el mayor número de especies vegetales (Tabla 11.4.3).
Se identiicaron 88 especies de peces consumidores de
plantas agrupados en 31 géneros, nueve familias y tres órdenes (Tabla 11.4.2).
Los órdenes con mayor número de especies consumidoras
fueron Characiformes (65), Siluriformes (20) y Perciformes
(tres).
Ubicación del alimento y uso de los sentidos en los
peces
Las familias con mayor riqueza especies herbívoras fueron
Characidae con 49 especies, Anostomidae (11), Pimelodidae (8) y Auchenipteridae (6); mientras el menor número
de especies mientras que en las familias Prochilodontidae,
Heptapteridae, Doradidae y Cichlidae solo tres especies de
Con el desarrollo sensorial apropiado, la disminución del
apetito y bajo condiciones apropiadas de luz en el medio,
la discriminación sensorial es posible y son los relejos de
búsqueda químicos o visuales quienes ayudan al pez a ser
más selectivo (Botero 2004), así, el tamaño y las habilidades
399
FLORA
DE LA CUENCA DEL ORINOCO ÚTIL PARA EL SOSTENIMIENTO
DE LA DIVERSIDAD ÍCTICA REGIONAL
F. Castro-Lima.
Tabla 11.4.2. Especies de peces consumidores de lora en la Orinoquia colombiana.
No.
ORDEN / FAMILIA
Nombre cientíico
Nombre común
CHARACIFORMES
1
Anostomidae
Leporinus ainis
Mije
2
Anostomidae
Leporinus agassizi
Mije
3
Anostomidae
Leporinus brunneus
Mije
4
Anostomidae
Leporinus fasciatus
Mije
5
Anostomidae
Leporinus friderici
Mije
6
Anostomidae
Leporinus leschenaulti
Mije
7
Anostomidae
Leporinus sp.1
Mije
8
Anostomidae
Leporinus sp.2
Ararí
9
Anostomidae
Leporinus sp.3
Mije
10
Anostomidae
Leporinus steyermarki
Bartolico
11
Anostomidae
Schizodon scotorhabdotus
Tuza
12
Characidae
Astyanax bimaculatus
Guarupaya
13
Characidae
Astyanax integer
Guarupaya
14
Characidae
Astyanax maximus
Guarupaya
15
Characidae
Astyanax siapae
Guarupaya
16
Characidae
Astyanax superbus
Guarupaya
17
Characidae
Astyanax venezuelae
Guarupaya
18
Characidae
Brycon amazonicus
Yamú, bocón
19
Characidae
Brycon bicolor
Yamú, bocón
20
Characidae
Brycon falcatus
Yamú, bocón
21
Characidae
Brycon melanopterus
Bocona
22
Characidae
Brycon pesu
Yamú, bocón
23
Characidae
Brycon sp.1
Yamú, bocón
24
Characidae
Brycon sp.2
Yamú, bocón
25
Characidae
Brycon whitei
Bocona
26
Characidae
Bryconops giacopinii
Sardina
27
Characidae
Chalceus macrolepidotus
Cola roja
28
Characidae
Colossoma macropomum
Cachama
29
Characidae
Markiana geayi
Sardina
400
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Castro-Lima.
No.
ORDEN / FAMILIA
Nombre cientíico
Nombre común
30
Characidae
Metynnis argenteus
Moneda
31
Characidae
Metynnis hypsauchen
Moneda
32
Characidae
Metynnis luna
Moneda
33
Characidae
Metynnis orinocensis
Moneda
34
Characidae
Moenkhausia cotinho
Sardina
35
Characidae
Moenkhausia dichroura
Sardina
36
Characidae
Moenkhausia lepidura
Sardina
37
Characidae
Moenkhausia oligolepis
Sardina
38
Characidae
Moenkhausia sp.
Sardina
39
Characidae
Myleus asterias
Pámpano
40
Characidae
Myleus lobatus
Pámpano
41
Characidae
Myleus rhomboidalis
Pámpano
42
Characidae
Myleus schomburgkii
Pámpano
43
Characidae
Myleus setiger
Pámpano
44
Characidae
Myleus torquatus
Pámpano
45
Characidae
Myloplus rubripinnis
Pámpano
46
Characidae
Mylossoma aureum
Palometa
47
Characidae
Mylossoma duriventre
Palometa
48
Characidae
Piaractus brachypomus
Morocoto
49
Characidae
Pristobrycon calmoni
Caribe
50
Characidae
Pristobrycon careospinus
Caribe
51
Characidae
Pristobrycon striolatus
Caribe
52
Characidae
Pygopristis denticulata
Caribe
53
Characidae
Serrasalmus gouldingi
Caribe
54
Characidae
Serrasalmus manueli
Caribe
55
Characidae
Tetragonopterus argenteus
Pecha, ojona
56
Characidae
Tetragonopterus chalceus
Pecha, ojona
57
Characidae
Triportheus brachipomus
Arenca
58
Characidae
Triportheus orinocensis
Arenca
59
Characidae
Triportheus rotundatus
Arenca
60
Characidae
Triportheus venezuelensis
Arenca
401
FLORA
DE LA CUENCA DEL ORINOCO ÚTIL PARA EL SOSTENIMIENTO
DE LA DIVERSIDAD ÍCTICA REGIONAL
F. Castro-Lima.
No.
ORDEN / FAMILIA
Nombre cientíico
Nombre común
61
Hemiodontidae
Hemiodus inmaculatus
Saltón
62
Hemiodontidae
Hemiodus argenteus
Saltón
63
Prochilodontidae
Semaprochilodus insignis
Coporo
64
Prochilodontidae
Semaprochilodus kneri
Coporo
65
Prochilodontidae
Semaprochilodus laticeps
Sapuara, Zapoara
SILURIFORMES
66
Auchenipteridae
Auchenipterichthys thoracatus
Torito
67
Auchenipteridae
Trachelyopterichthys anduzei
Tongolino
68
Auchenipteridae
Trachelyopterichthys taeniatus
Tongolino
69
Auchenipteridae
Trachelyopterus galeatus
Torito
70
Auchenipteridae
Trachycorystes sp.
Cabecepalo
71
Auchenipteridae
Trachycorystes trachycorystes
Cabecepalo
72
Doradidae
Oxydoras niger
Sierra copora
73
Doradidae
Oxydoras sifontesi
Sierra
74
Doradidae
Pterodoras rivasi
Sierra cagona
75
Heptapteridae
Rhamdia quelen
Barbilla
76
Heptapteridae
Rhamdia laukidi
Barbilla
77
Heptapteridae
Rhamdia muelleri
Barbilla
78
Pimelodidae
Leiarius marmoratus
Yaque
79
Pimelodidae
Leiarius pictus
Yaque
80
Pimelodidae
Phractocephalus hemiliopterus
Cajaro
81
Pimelodidae
Pimelodus albofasciatus
Chorrosco
82
Pimelodidae
Pimelodus blochii
Chorrosco
83
Pimelodidae
Pimelodus garciabarrigai
Chorrosco
84
Pimelodidae
Pimelodus ornatus
Nicuro
85
Pimelodidae
Pimelodus sp.
Chorrosco
PERCIFORMES
86
Cichlidae
Aequidens diadema
Viejita
87
Cichlidae
Aequidens metae
Viejita
88
Cichlidae
Aequidens pulcher
Viejita
402
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Castro-Lima.
Tabla 11.4.3 Especies ícticas con mayor consumo de especies vegetales y su importancia relativa dado por el porcentaje del total de
especies vegetales.
Especies
Número de especies vegetales consumidas
Porcentaje del total (%)
Brycon whitei
195
85
Brycon amazonicus
194
85
Colossoma macropomum
190
82
Brycon falcatus
189
82
Piaractus brachypomus
185
80
Brycon melanopterus
176
77
Brycon bicolor
145
63
Myloplus rubripinnis
139
60
Chalceus macrolepidotus
53
23
Triportheus venezuelensis
50
21
Astyanax maximus
45
20
Leiarius marmoratus
76
33
Leiarius pictus
76
33
sensoriales ayudan a la localización, identiicación y captura del alimento (Knights 1985).
que al caer al agua producen una vibración característica
que los peces aparentemente reconocen.
En la Orinoquia, los peces suelen nadar en busca de alimento por los bosques inundados (desde más de 7 m hasta
apenas unos centímetros de profundidad) utilizando varios
de sus sentidos. Los peces que habitan cerca de la supericie
y en sistemas de aguas poco profundas y claras, utilizan la
visión para localizar su alimento (Knights 1985, Pitcher y
Parrish 1993) y el éxito de su colecta dependerá de la turbidez del agua (Botero 2004). Así, en los bosques inundables de aguas claras, mixtas y negras, la vista juega un papel
importante, pues los peces ven lo que cae de los árboles y
pueden seleccionar el tipo de alimento.
DISCUSIÓN
Este estudio identiicó 230 especies vegetales consumidas
por 88 especies de peces de la Orinoquia principalmente
de los órdenes Characiformes, Siluriformes y Perciformes
(Cichlidae). De este último grupo se registró al género Aequidens, como consumidor principal del restos de frutos
de palmas, como Mauritia lexuosa, Astrocaryum jauari y
Oenocarpus bataua.
El género Semaprochilodus (Prochilodontidae) representa un raro caso de especies iliófagas que se alimentan de
materiales vegetales alóctonos en la Orinoquia y Amazonia (Goulding 1980a, 1980b, 1983). No obstante, S. laticeps,
S. kneri y S. insignis registraron un consumo adicional de
frutos de Astrocaryum jauari y Mauritia lexuosa especialmente en los bosques de aguas claras. Por su parte, Brycon
y Myloplus fueron los géneros con mayor consumo de lores, frutos y semillas gracias a sus hábitos pelágicos en la
columna de agua de los ríos. Igualmente, algunos bagres
Por el contrario en aguas blancas, mayor turbidez y por
ende, baja visibilidad, los peces usan el olfato para colectar fruto aromáticos como los de Licania pyrifolia, Duroia
micrantha, Stachyarrhena duckei, Pouteria sp., Spondias
mombin, Spondias venosa y Mauritia lexuosa. Por último,
el oído es utilizado por los peces especialmente en especies
vegetales que se dispersan por autocoria (ej: Mabea nitida,
Mabea trianae, Hevea guianensis, H. nitida, H, brasiliensis,
Amanoa guianensis) y con especies de frutos no dehiscentes
403
FLORA
DE LA CUENCA DEL ORINOCO ÚTIL PARA EL SOSTENIMIENTO
DE LA DIVERSIDAD ÍCTICA REGIONAL
F. Castro-Lima.
pelágicos nocturnos como Trachelyopterus galeatus, Trachelyopterichthys anduzei, Trachycorystes trachycorystes y
Auchenipterichthys sp. también se alimentan en la supericie. Los frutos más pesados generalmente se sumergen
rápidamente y son capturados por peces de fondo como
Phractocephalus hemiliopterus, Leiarius, Pterodoras, Oxidoras, Rhamdia y Pimelodus (Siluriformes).
dación, pues complementa la dieta de los peces en la época
de aguas bajas. Así, por ejemplo, en aguas bajas, las lores
de Inga vera, Vitex orinocensis, Mabea, nítida y Psidium
densicomum son aprovechadas por especies como Brycon
amazonicus, Brycon whitei, Myloplus rubripinnis, Mylossoma duriventre, M. aureum, Chalceus macrolepidotus y Piaractus brachypomus.
Comparativamente los bagres (Siluriformes) son mejores
dispersores de semillas que los Characiformes pues éstos
últimos sólo dispersan semillas de palmas y de árboles de
frutos carnosos. En los Characiformes, el consumo está determinado por la abundancia de alimento pues consumen
simultáneamente diferentes partes vegetales, con preferencia por frutos y semillas, aprovechando hojas y lores solo
en épocas de escasez. Por su parte, la mayoría de Siluriformes consumen solo frutos carnosos, excepto las especies de
Pterodoras que consumen gran variedad de hojas.
En la Orinoquia la mayor cosecha de frutos se presenta en
la época invernal (60% de las especies maduras) de manera
similar a lo registrado en la Amazonia, donde la mayoría
de las especies vegetales tienen un período intenso de maduración de frutos de dos a tres meses y los peces están
adaptados a esta breve cosecha (Ziburski 1991, Kubitzki y
Ziburski 1993, Ayres 1993, Goulding 1980a, 1980b, 1989).
En los Llanos de la Orinoquia venezolana, Lasso (2005) demostró el rol del material vegetal en la dieta de las especies
en planicies inundables. Así, si bien las macróitas acuáticas
(tejidos vasculares) no son muy importantes como ítems
alimenticios (solo lo son para Schizodon scotorhabdotus
y Leporinus spp), los frutos, semillas y lores, si son muy
importantes en la dieta de las especies, muchas de ellas de
interés pesquero. Dicho autor identiicó 30 especies vegetales que son fuentes potenciales de alimento. Entre estas
destacan por su abundancia: mangle de río (Coccoloba obtusifolia), laurel (Nectandria pichurini), anoncillo (Dugetia
riberensis), espinito de agua (Chomelia poiyantha), aráceas
(Astrocardium sp.), crisobalanáceas (Licanias triura), moráceas (Ficus sp.), caña lota (Costus arabicus) y guayaba de
agua (Calyptrantha pullei).
Este estudio conirmó que las familias vegetales Arecaceae
y Euphorbiaceae son las más importantes en la dieta de los
peces de los bosques inundables, coincidiendo con las observaciones de Araujo-Lima y Goulding (1997) en el Amazonas. Al analizar las partes vegetales consumidas por los
peces, observamos semillas de 99 especies vegetales, que
no fueron destruidas al ser defecadas en otras áreas, lo que
sería un primer indicio de ictiocoria en la cuenca Orinoco,
proceso ecológico que fue mencionado en la cuenca por
Machado-Allison (2005) y registrada para el Amazonas por
varios autores (Gottsberger 1978, Goulding 1980a, 1980b,
Ziburski 1991, Ayres 1993, Kubitzki y Ziburski 1993).
Otras especies de peces de talla pequeña a mediana usan las
semillas de ciertas gramíneas durante el periodo de lluvias.
En las sabanas llaneras se encuentran más de 40 especies de
gramíneas típicas de las zonas inundables. Las más comunes, cuyas semillas aparecen en los contenidos estomacales
incluyen a Spilanthes uliginosa, Papalum repens, Paspalum
orbiculatum, Panicum laxum, Luziola pittieri y Eragrostis
acutilora (Lasso 2005).
Cabe destacar que la conirmación de este proceso dependerá de posteriores estudios que evalúen y comparen los
tiempos de germinación entre semillas consumidas por
peces versus semillas que no hayan pasado por su tracto
digestivo (tratamiento control).
De otra forma, la fructiicación se vio afectada por la estacionalidad y el tipo de ecosistema acuático. En cuanto a
la estacionalidad, en el Orinoco generalmente se produce
un solo período de inundación, levemente desplazado con
respecto al régimen de lluvias y este período se constituye en el principal factor que incrementa la disponibilidad
de frutas y semillas para los peces dado que la mayoría de
las especies de árboles del bosque inundable tiene sincronizada su fructiicación con este período (Figura 11.4.5).
Cabe mencionar que la loración es tan importante como
la producción de frutos y semillas en el período de inun-
En cuanto a los tipos de ecosistemas, en la Amazonia los
bosques inundados por aguas blancas presentan mayor
abundancia de frutos. (Campbell et al. 1992). En la Orinoquia esta abundancia se presenta en los bosques inundados
por aguas negras que contienen más especies consumidas
por peces, comparado con los inundados por aguas blancas, mixtas y claras respectivamente, sin embargo se requiere profundizar la investigación en este tema.
404
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Castro-Lima.
Figura 11.4.5 Oferta alimentaria respecto al nivel de inundación en la Orinoquia colombiana. Fuente: IDEAM (1998-2002).
Foto 11.4.5 Yamu o bocón (Brycon amazonicus) (Spix y Agassiz 1829). Foto: F. Castro-Lima.
405
FLORA
DE LA CUENCA DEL ORINOCO ÚTIL PARA EL SOSTENIMIENTO
DE LA DIVERSIDAD ÍCTICA REGIONAL
F. Castro-Lima.
BIBLIOGRAFÍA
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EL FUEGO
COMO PARTE DE LA DINÁMICA NATURAL
DE LAS SABANAS EN LOS LLANOS
ORIENTALES DE COLOMBIA
F. Castro-Lima.
Milton Hernán Romero-Ruiz
RESUMEN
INTRODUCCIÓN
La actividad del fuego es esencial en la dinámica ecológica
de las formaciones vegetales de praderas, pastizales naturales, sabanas y herbazales. Ha contribuido a que en promedio 30.000 km2 de sabanas se hayan quemado entre 2000
y 2009, equivalente al 19% de este territorio orinoquence;
aproximadamente el 5% del total de quemas a nivel mundial para formaciones de sabanas y un 4% del total en Suramérica. Estos eventos, que se maniiestan por causas naturales y no naturales, son favorecidos por una combinación
de condiciones medioambientales como clima, geomorfopedología, topografía y cobertura terrestre que condicionan su presencia, así como su extensión, frecuencia y severidad. De ser removido este proceso, las sabanas pueden
ser fuertemente transformadas y la pérdida de hábitat y
especies puede ocurrir. Actualmente, los procesos de transformación que están afectando estas sabanas al parecer han
modiicado los patrones de fuego. Por ende, realizar investigaciones sobre las implicaciones que esta actividad tiene
sobre el mantenimiento de la sabana es prioritario para entender el papel de la actividad del fuego en la ecología de
cada mosaico de parches de vegetación, en la presencia de
especies, en las consecuencias para la actividad humana y
en la emisión de gases, en los llanos colombianos.
Globalmente es conocido que los factores climáticos asociados a la precipitación y la temperatura, junto con los
factores edáicos, son los principales agentes que condicionan y determinan la distribución de la vegetación. Por otra
parte, formaciones vegetales como las grandes y extensas
áreas de praderas; los pastizales naturales y las sabanas y
herbazales han ligado su apariencia a la actividad del fuego
(Bond et al. 2004). Las sabanas de los Llanos Orientales de
Colombia, hacen parte de este tipo de formaciones donde
el clima, los suelos y el régimen del fuego han determinado
su presencia. El origen de estas sabanas ha sido asociado a
los eventos geológicos ocurridos en el Cuaternario, donde
los procesos tectónicos de sedimentación y erosión que se
dieron a raíz de la aparición de la cadena montañosa de
los Andes, contribuyeron a un cambio climático que conllevaron al incremento de la aridez en esta región (Hernández 1998). Estudios palinológicos corroboran cambios en
la vegetación durante el Holoceno, donde se produjeron
cambios en la humedad y en las condiciones edáicas que
inluyeron en la presencia de la actual vegetación (Behling y
Hooghiemstra 1998, Behling y Hooghiemstra 1999, Berrío
et al. 2002, Marchant et al. 2002, Wille et al. 2003). Hace
4000 años, en los Llanos Orientales los bosques y las sabanas arbustivas dominaban el paisaje y solamente algunos
relictos de vegetación de sabana aparecían. Dos mil años
después, los bosques y la sabana arbustiva solamente cu-
Palabras clave: actividad del fuego, dinámica ecológica, sabanas, llanos colombianos.
409
EL FUEGO
COMO PARTE DE LA DINÁMICA NATURAL DE LAS SABANAS
EN LOS LLANOS ORIENTALES DE COLOMBIA
F. Castro-Lima.
brían un 50% del área y hoy en día esta proporción no excede el 5% (Van der Hammen 1992). Por otra parte, se ha
puesto de maniiesto el papel que las variables climáticas y
edáicas, que junto con las actividades humanas, han jugado en el mantenimiento de estas formaciones. El ser humano ha favorecido la acción del fuego, lo cual ha limitado el
establecimiento de la sucesión forestal y por ende la presencia de formaciones vegetales leñosas o boscosas (Sarmiento
1990, Levine 1992). Hoy en día se sugiere que para estas
formaciones el 80% de los fuegos son provocados por el ser
humano, mientras que el 20% restante representa eventos
naturales. Sin embargo, a pesar de tenerse indicios sobre
el origen geológico y el papel del fuego en la presencia de
estas formaciones, en la actualidad no se tiene un consenso
general sobre el origen de las sabanas en los Llanos Orientales de Colombia.
diciembre y abril, lo que equivale al 19% de este territorio
en Colombia; aproximadamente el 5% del total de quemas
que ocurre a nivel mundial en sabanas y un 4% del total de
quemas en Suramérica (Tansey et al. 2008, Romero-Ruiz et
al. 2010).
Los incendios son considerados como un evento de temporada, los cuales presentan su máxima actividad en los
períodos secos del año. A nivel mundial, hay dos picos de
actividad: una en julio y agosto y una segunda entre diciembre y principios de enero (Dwyer y Pereira 2000). En
América del Sur la temporada de incendios inicia en junio con un pico entre los meses de agosto a octubre. En el
norte de América del Sur, especíicamente en Colombia y
Venezuela, los incendios se producen desde inales de noviembre hasta principios de abril, alcanzando un máximo
en febrero (Dwyer y Pereira 2000).
LAS QUEMAS A NIVEL
MUNDIAL
EL FUEGO COMO DINÁMICA
DE LAS SABANAS EN LOS
LLANOS ORIENTALES
En el mundo cerca de 3,5 millones de km2 se queman por
año, de los cuales el 80% ocurre en áreas boscosas y arbustivas y un 17% en áreas de pastos naturales y cultivos (Figura 11.5.1) (CDB, Convention on Biological Diversity 2001,
Tansey et al. 2004). Del total de fuegos, un 38% ocurre en el
hemisferio sur y la mayoría de los eventos se asocia a áreas
con vegetación de sabana en Australia, Brasil, Colombia
y Venezuela. En los Llanos Orientales de Colombia entre
2000 y 2009 un promedio de 30.000 km2 se quemaron entre
Los procesos de fuego en las sabanas de los Llanos Orientales son complejos y han estado relacionados con el tipo
de evento que los provoca. Los eventos se clasiican como
naturales y no naturales. Los eventos naturales pueden ser
causados por la caída de un rayo o la propia descomposición
vegetal, mientras que los eventos no naturales están relacionados con la expansión del área agrícola o de infraestructu-
Figura 11.5.1 Ocurrencia de la actividad global del fuego entre 2000 y 2007. Los colores muestran la frecuencia de la ocurrencia del
fuego durante los siete años. Fuente: (Tansey et al. 2008).
410
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Suárez.
ra, el desmonte forestal, el control de plagas, la renovación
de pastizales o por acción del hombre de manera accidental
o intencional. Sea cual sea el tipo de evento, la combinación
de ciertas condiciones ambientales de la Orinoquia pueden
o no incrementar la probabilidad de la ocurrencia, extensión y severidad del incendio. Estas condiciones se reieren
a: i) factores climáticos relacionados con la baja precipitación, altas temperaturas, alta evaporación y velocidad del
viento, ii) las condiciones geomorfo-pedológicas y topográicas como el aspecto, la forma de la tierra, los suelos que
deinen generalmente la forma y extensión de los fuegos y
iii) los factores propios de la cobertura terrestre y la estructura y composición de la vegetación, como la consistencia
de las hojas, la forma de vida (árboles, arbustos, pastizales),
la disposición (material en descomposición, la hojarasca,
los elementos leñosos) y la composición química, aspectos
que determinan la cantidad de biomasa susceptible a ser
quemada y que facilitan la ignición (Dwyer y Pereira 2000,
Eva y Lambin 2000, Roy 2003). Estas condiciones dan los
factores que predisponen la actividad del fuego. En general,
cuando un incendio ocurre, se diferencian cuatro etapas:
la fase incipiente o inicial en donde se emprende el consumo de casi el 20% del oxígeno disponible en el área y las
llamas pueden alcanzar temperaturas cercanas a los 637°
C; la etapa de la combustión libre, en donde hay incorporación de más material inlamable, se produce gran cantidad
de humo, el oxígeno se reduce y las temperaturas pueden
alcanzar los 700° C; la fase latente, la más peligrosa debido
a que la temperatura, el humo y los gases de combustión
alcanzan valores superiores a los 700° C y la fase inal en
donde el fuego se extingue debido a la combustión total de
combustible. Como consecuencia, los materiales de carbón
se depositan en la zona quemada y en el entorno cercano,
dejando grandes cicatrices de áreas quemadas en el paisaje
que pueden ser detectadas y cuantiicadas.
Para que estos eventos ocurran en los Llanos Orientales la
estación húmeda se constituye en el periodo más importante previo a la estación de incendios. Es durante este periodo
cuando la producción de biomasa aérea es alta, favorecida
por la elevada humedad atmosférica que facilita el crecimiento y reproducción de las plantas. Al inalizar este periodo (mediados de noviembre) la biomasa acumulada se
convierte en el principal recurso para la combustión. Sin
embargo, la relativa alta humedad al comienzo de la estación seca inhibe el inmediato inicio de la temporada de
incendios. Como resultado, los eventos de fuegos durante
los primeros meses de la temporada seca (diciembre- enero) son aislados, de corta duración y pequeña extensión.
A medida que la estación seca avanza, la precipitación disminuye y en consecuencia, la humedad relativa, causando
que los elementos leñosos y los pastos se sequen, mientras
que los eventos de fuego empiezan a ser más extensivos frecuentes y severos (febrero-marzo). A inales de marzo la
lluvia comienza a incrementarse en un pequeño porcentaje,
siendo, no obstante, insuiciente para disminuir la actividad
del fuego. Sin embargo, cuando se aproxima la etapa inal
de la estación seca, la disponibilidad de la biomasa empieza
Figura 11.5.2 Promedio de áreas quemadas cada ocho días en la temporada seca (inales noviembre – medidos abril) entre 2000 y
2009 para los Llanos Orientales de Colombia.
411
EL FUEGO
COMO PARTE DE LA DINÁMICA NATURAL DE LAS SABANAS
EN LOS LLANOS ORIENTALES DE COLOMBIA
F. Castro-Lima.
a reducirse y las lluvias a incrementarse; de esta manera, a
comienzos de abril la frecuencia de fuegos, la severidad y
la extensión decrecen substancialmente. Esta tendencia es
mostrada en la igura 11.5.2 en donde un comportamiento tipo gausiano se maniiesta para este evento. La mayor
extensión de cicatrices de fuego se presenta en el periodo
comprendido entre los meses de febrero y marzo, siendo
la primera semana de marzo (día juliano 57) el lapso de
mayor actividad de fuegos. A inales de marzo, una abrupta
caída de la actividad de incendios se presenta ocurriendo
únicamente pequeños y aislados eventos que generalmente
están ligados a la actividad humana.
cantidad de material leñoso se seca durante la estación del
verano. Las sabanas de la llanura inundable (Arauca – Casanare), aunque permanecen inundadas durante la mayor
parte del tiempo, cuando llega la temporada seca forman
parches aislados de sabanas secas de alta biomasa que proveen las condiciones para que los eventos de fuego ocurran.
Por otra parte, debido a la presencia de aloramientos rocosos y áreas inundables combinadas con la distribución
en parches de muy baja biomasa, las sabanas arenosas (o
de dunas) raramente presentan eventos de fuego de larga
duración y extensión, siendo por ende muy localizados y
de baja severidad. En las áreas antrópicas constituidas por
pastos introducidos, cultivos y plantaciones, los eventos
de fuegos son muy aislados, de muy pequeña extensión y
generalmente localizados. Estos son provocados y controlados por el hombre, generalmente con ines de eliminación de material de desecho que se acumula en medio de
sus cultivos. Finalmente, en las áreas boscosas, los eventos
de fuego son aislados y se relacionan principalmente con
una prolongada sequía que termina afectando los corredores boscosos, o bien por la actividad humana que usa esta
técnica con ines de extracción de material forestal, ampliación de la frontera agrícola y en algunos casos, como medio
LOS FUEGOS Y LA
COBERTURA VEGETAL
En los Llanos Orientales el tipo de cobertura determina
la actividad de los fuegos. En las sabanas de la altillanura,
que se ubican en la margen sur del río Meta (departamentos del Meta y Vichada), abundan los pastos naturales que
pueden alcanzar alturas entre 2 y 3 metros, así como gran
Figura 11.5.3 Áreas promedio quemadas por tipo de cobertura durante la temporada seca (diciembre - enero) en la Orinoquia
colombiana.
412
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Suárez.
de caza para ahuyentar a los animales que se encuentran
dentro del área. En promedio la mayor actividad de fuegos
ocurre en las sabanas de la altillanura donde se presenta
cerca de un 60% de las cicatrices de quema. Un 25% ocurre
en las sabanas inundables, 10% en áreas de bosques, 3% en
zonas de cultivos y pastos exóticos y el 2% restante en las
sabanas arenosas y aloramientos rocosos (Figura 11.5.3).
rresponden a las sabanas de la altillanura localizadas en el
sector noreste en el interluvio de los ríos Meta y Bita en el
departamento de Vichada, en el sector suroeste cerca del
rio Manacacías en el departamento del Meta y en el sector
norte del bajo río Casanare hacia la frontera con Venezuela.
Igualmente, se presenta una alta frecuencia de quemas en
las sabanas inundables del sector bajo de los municipios de
Hato Corozal y Paz de Ariporo en el departamento de Casanare. Finalmente, las áreas cercanas al piedemonte y gran
parte de la margen occidental, en donde se concentra la
actividad humana (pastos introducidos, cultivos y plantaciones) la frecuencia de quemas es muy baja presentándose
únicamente uno ó dos eventos en los últimos diez años.
LA FRECUENCIA DE
LOS FUEGOS
A pesar de las aparentes condiciones climáticas, geomorfopedológicas y de cobertura, en los últimos diez años las
sabanas de los Llanos Orientales han presentado patrones
de distribución particulares en el área quemada (Figura
11.5.4). Cerca del 33,5% de estas sabanas no se ha quemado, 29% de las mismas solamente ha presentado un evento,
19% dos eventos, 15% tres eventos; 12% cuatro eventos,
10% cinco eventos y 15% entre 6 y 9 eventos. Las áreas en
donde se ha concentrado la mayor ocurrencia de fuegos co-
ALGUNAS CONSIDERACIONES
Actualmente, las sabanas de los Llanos Orientales están sufriendo una alta tasa de transformación, que aparentemente ha modiicado los patrones de fuego (Romero-Ruiz et al.
2010). Por ende, es urgente realizar investigaciones sobre
Figura 11.5.4 Mapa de recurrencia de áreas quemadas entre 2000 y 2009. Fuente: Romero-Ruiz (2010).
413
EL FUEGO
COMO PARTE DE LA DINÁMICA NATURAL DE LAS SABANAS
EN LOS LLANOS ORIENTALES DE COLOMBIA
F. Castro-Lima.
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las implicaciones ecológicas que esta actividad tiene sobre
el mantenimiento de la sabana, el papel de la actividad del
fuego en la ecología propia de cada mosaico de parches de
vegetación y en la presencia de especies (Russell-Smith et
al. 1997). Se sabe que si los fuegos no ocurren y no existe la
actividad humana, se van creando áreas de sabanas arbustivas, - se han documentado algunas asociaciones pioneras
(Rial 2006) - cuya frecuencia de fuego es menor y afecta pequeñas áreas, mientras que aquellas áreas de sabanas
naturales sometidas constantemente a fuegos, son zonas
abiertas de vegetación de gramíneas y pequeños elementos
leñosos que son más susceptibles a grandes extensiones de
quemas de alta frecuencia y severidad (Laris 2002). Igualmente, los bosques de galería se han constituido en barreras
naturales al fuego. A pesar de presentar un gran potencial
de biomasa combustible gracias al microclima en que se
desarrollan y a la presencia de especies piróilas, estos bosques constituyen barreras que impiden la entrada del fuego
(Biddulph y Kellman 1988). Comprender la dinámica, los
procesos ecológicos y la composición, estructura y funcionamiento de este tipo de sabanas nos permitirá entender de
una mejor manera el papel del mismo en el funcionamiento
de los ecosistemas, así como su relación con las especies
presentes dentro de la misma. Finalmente y coincidiendo
con Bond et al. (2004), desde el punto ecológico el fuego
es un proceso absolutamente esencial en la dinámica ecológica natural de las sabanas de los Llanos Orientales, y
ésta no debe ser alterada más allá del “rango normal”. Si
éste es removido, las sabanas pueden ser transformadas en
algo totalmente diferente y la pérdida de hábitat y especies
puede ocurrir. La gran función que tiene esta actividad es
incrementar el nivel de nutrientes disponibles en áreas de
suelos pobres, y en el caso de los Llanos Orientales , incrementar por una parte la producción de especies perennes y
prevenir la proliferación de los elementos leñosos (Menault
et al. 1993).
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.6
EFECTOS
EN LA ECOLOGÍA DE UN HUMEDAL
DE LOS LLANOS DE VENEZUELA
(CUENCA DEL ORINOCO) CAUSADOS
POR LA CONSTRUCCIÓN DE DIQUES
A. Rial.
Anabel Rial B., Carlos A. Lasso y José Ayarzagüena
RESUMEN
En la zona más baja de los Llanos del Orinoco en Venezuela
(>100 m.s.n.m.), se encuentran los humedales del Estado
Apure, cuyo territorio alcanza los 100.000 km2 y constituyen la cubeta receptora de las aguas de las cordilleras de los
Andes y de la Costa. Como en todos los humedales, dos
factores afectan de forma determinante el ecosistema: la
calidad y la cantidad de agua. En el caso de los humedales
llaneros, la cantidad de agua disponible ha sido reducida y
regulada durante los últimos 70 años mediante la construcción de módulos en las tierras bajas (sabanas inundables)
y represas en las secciones medias y altas de las cuencas.
Este efecto negativo se magniicó en la década de los 60 y
70 tras la construcción de los Módulos de Apure, la carretera nacional de los Llanos -que funciona como un gran
dique norte sur- y de los diques o terraplenes construidos
dentro de la mayoría de los hatos o incas de la región. En
el Estado Apure, la Estación Biológica El Frío, dentro del
hato homónimo de 63.000 ha, ha sido por cinco décadas,
uno de los mayores escenarios de estudio y conservación de
la biodiversidad en los Llanos de Venezuela. En este caso,
documentamos las observaciones y conclusiones a las que
llegamos, luego de dos décadas (1988-2008) de observación
de fenómenos anuales típicos del humedal. Ciertos eventos
inusuales durante algunos de esos años desencadenaron
cambios clave para entender y asociar cómo el impedimento al desborde de los grandes ríos y caños hacia la sabana,
ocasiona alteraciones físicas, químicas y biológicas a tres
niveles: 1) pérdida de conectividad sistema léntico-lótico,
2) limitación en el lujo de nutrientes y 3) disminución de
la riqueza de especies.
Palabras clave: pulso de inundación, sabanas, impacto,
conservación, Llanos de Apure.
INTRODUCCIÓN
Las obras de ingeniería
A escala nacional y regional, las obras hidráulicas y la incontrolada deforestación de las cabeceras de ríos y Reservas
Forestales en el piedemonte andino (San Camilo, Turén, Ticoporo y Caparo), han reducido el caudal de agua que naturalmente estaría destinado a enriquecer los humedales de
los llanos en el Estado Apure. El 70% de la electricidad de
Venezuela se genera en centrales hidroeléctricas y el 17% se
hace a través de los sistemas instalados en Los Andes.
Tres embalses y ocho represas afectan el caudal de los ríos
que drenan a los llanos del Orinoco: Camatagua, Los Cerritos y Las Majaguas, que represan los ríos Guárico, Pao, Cachinche, Cojedes y Sarare, aluentes llaneros del Apure. En
417
EFECTOS
EN LA ECOLOGÍA DE UN HUMEDAL DE LOS LLANOS DE VENEZUELA
(CUENCA DEL ORINOCO) CAUSADOS POR LA CONSTRUCCIÓN DE DIQUES
A. Rial.
los Andes y su piedemonte, la red hidrográica de los ríos
Caparo, Sarare y Suripá colecta sus caudales en tres presas construidas en el área Uribante-Caparo. Más al norte,
la red hidrográica de los ríos Canagua-Masparro y Santo
Domingo en el piedemonte andino del Estado Barinas, se
represa en la hidroeléctrica Santo Domingo (ríos Santo Domingo y Aracay). En la cuenca del río Uribante, el caudal de
los ríos Uribante, Negro y Potosí se almacena en el Embalse
Uribante y surte a la presa la Honda. Las aguas de los ríos
San Buenas y San Agatón (cuenca del río Doradas) se embalsan en Las Doradas y surten a la presa las Cuevas; y los
ríos Camburito, Caparo, Aricagua, Mucupatí, Mucuchachi,
Guaimaral y quebrada La Colorada surten al embalse Camburito-Caparo y a la presa Borde Seco- La Vueltosa.
entonces, cualquier posible efecto colateral sobre el ecosistema.
Otras dos grandes obras nacionales actúan también como
diques en estas llanuras inundables: la carretera transversal nacional de los Llanos y los Módulos de Apure (Figura
11.6.1). Los Módulos pretendían “domar las aguas” según
palabras del entonces presidente de la República Rafael
Caldera. Ciertamente las domaron, 2.500 km2 de terraplenes con ines productivos que se convirtieron en los años 70
en la mayor supericie modulada de Suramérica. El beneicio de esta obra de ingeniería implicó la pérdida del carácter natural y vivo de las aguas, y de su consecuente riqueza
biológica. La carretera nacional del Llano por su parte, divide en dos mitades, norte y sur, todo este plano inundable.
Al norte el río Apure y el Refugio de Fauna Caño Guaritico,
y al sur de la carretera, otro complejo de sabanas estabacondenado a prescindir de los escurrimientos y desbordes
de aguas enriquecidas de la margen norte, a pesar de que en
años recientes (2005-2006) se construyeron perforaciones
(alcantarillas) en dicha vía para el paso del agua.
A escala local, la necesidad de mantener mayores rebaños
de ganado propició el control de las inundaciones y la reducción de la sequía mediante la construcción de diques
en los hatos ganaderos. Terraplenes que funcionan como
pequeñas represas dentro del humedal, han modulado por
décadas los lujos de agua en la sabana. Con ines productivos y cierto grado de ingenuidad, su instalación desestimó
Figura 11.6.1 Imagen satelital de los Módulos de Apure.
418
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Rial.
EL ENTORNO FÍSICO
La antigua propiedad Hato El Frío (actual Empresa Socialista Productiva Marisela S.A.) fue por cinco décadas, uno
de los mayores escenarios de estudio y conservación de la
biodiversidad en los Llanos de Venezuela, aportando inestimable información sobre diversos tópicos. Presentamos
a continuación algunos aspectos que pueden ser útiles para
la comprensión de estos ecosistemas y a la luz de los actuales cambios y nuevos impactos en los llanos venezolanos.
Las sabanas o llanos, cuya extensión sobrepasa los dos
millones de kilómetros cuadrados, constituyen unos de
los ecosistemas de mayor importancia en Suramérica. Venezuela comparte con Colombia los llanos del Orinoco.
Esta amplia región de sabanas hiperestacionales están delimitadas al oeste por la Cordillera de los Andes, al norte
por la Cordillera de la Costa y por el Escudo de Guayana
al sureste. El río Guaviare al sur y el delta del Orinoco al
este, marcan el límite natural del bosque amazónico y otra
docena de ríos forman la red luvial principal de la región:
al suroeste el Meta, Cinaruco, Capanaparo, Arauca y Apure,
y al noroeste el Uribante, Masparro, Guanare, Portuguesa,
Guárico, Manapire y Pao (Lasso 2004).
EL HUMEDAL DEL FRÍO
Aspectos generales
El Hato El Frío, antigua propiedad de la Compañía Inversiones Venezolana Ganaderas (Invega) y el Refugio de
Fauna “Caño Guaritico”. (Figura 11.6.2 a,b), es una extensa
supericie (63.000 ha) de llanuras del tipo banco, bajío y
estero (Ramia 1967) situada en el Estado Apure , entre las
localidades de El Samán y Mantecal (07° 35´-07° 55´N y
68° 50-69° 00´O), con limites naturales al norte en el río
Apure y Caño Guaritico, y al sur en el caño Caucagua.
El clima de esta región es bimodal, un periodo seco (octubre-marzo) y un periodo de lluvias e inundaciones (abrilseptiembre) (Machado-Allison 2005), con variaciones
anuales e incluso locales en cuanto a su inicio y duración
que oscilan entre los 1000-2000 mm, determinando periodos semejantes de lluvia y sequía de unos cinco a seis
meses. Este patrón de precipitación se traduce en extensas
inundaciones de las regiones planas y bajas, desfasadas levemente respecto al inicio de las lluvias (Mago 1970). Estas
lluvias locales más las precipitaciones en las cabeceras de la
vertiente oriental de los Andes (2000-5000 mm) (MARNR
1983) originan cuatro fases hidrológicas de los ríos llaneros.
En este humedal se han deinido y caracterizado en detalle
los diferentes hábitats acuáticos (Lasso et al. 1999, Lasso
2004) e incluso las luctuaciones hídricas mensuales de un
conjunto representativo de cuerpos de agua (Rial 2001).
Así, de acuerdo a las interrelaciones del ecosistema acuático con la planicie o llanura inundable (sabanas) y en función del pulso de inundación, se han distinguido dos tipos
de ambientes: a) sistema luvial (Caño Guaritico) menos
dependiente de las lluvias locales, y b) áreas inundables
periféricas, principalmente inundadas por aguas de origen
pluvial (Figura 11.6.3).
La pertinencia de estas observaciones relativas a la precipitación y su distribución en la red de drenaje se verán luego,
pues tanto la construcción de represas y embalses en las cabeceras de la cuenca, como la construcción de diques en las
tierras bajas, han determinado cambios de diversa índole
en estos humedales del Orinoco (Hato El Frío).
Dinámica hidrológica
Diversos cuerpos de agua componen la red hídrológica de
este humedal: lénticos (charcos, préstamos, lagunas, esteros, bajíos, madreviejas) y lóticos (caños, ríos). Temporales y permanentes, activos (luye el agua de manera continua todo el año) e inactivos (no luye al agua todo el año).
Sus caudales varían durante los cuatro periodos hidrométricos del ciclo lluvia-sequía y a causa de uno o los dos pulsos de inundación originados bien por efecto directo de las
lluvias, o bien por el desborde de los ríos sobre la sabana.
La cuenca llanera incluye los ríos que discurren por las planicies altas y bajas desde el piedemonte andino (alrededor
de 200 m.s.n.m.) hasta la unión con el río Orinoco (1000
m.s.n.m.). El río Apure es su principal tributario en términos del área de drenaje (167.000 km2) y descarga de sedimentos (2000 m3/seg) (Saunders III y Lewis Jr. 1988, Zinck
1977) y forma un delta interno (delta interno del Apure)
de sabanas que se inundan principalmente por el agua de
lluvias “sheetlooding” más que por el desborde de ríos y
caños, como sucede en las planicies del Orinoco “fringing
loodplain” (Welcomme 1985, Lasso 2004). De este modo,
los humedales de Apure están sometidos a dos pulsos hidrológicos que causan dos tipos de inundación o anegamiento.
Efectivamente, la inundación de la sabana durante la época
de lluvias tiene dos orígenes. 1) La crecida o aumento del
nivel del agua del río Apure (colector principal) que impide
el drenaje del área y causa el desbordamiento de la red de
caños y 2) la alta pluviosidad que se concentra en deter-
419
EFECTOS
EN LA ECOLOGÍA DE UN HUMEDAL DE LOS LLANOS DE VENEZUELA
(CUENCA DEL ORINOCO) CAUSADOS POR LA CONSTRUCCIÓN DE DIQUES
A. Rial.
Figura 11.6.2 a, b. Mapa de ubicación en Venezuela y del Hato el Frío.
420
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Rial.
Figura 11.6.3. Esquema de los hábitats de las áreas inundables periféricas (1) y Caño Guaritico (2). 1) Caños (C), lagunas (L), bosque
de inundación (BI), esteros E y charcos temporales (CH). 2) Cauce principal (CP), playas (P), fondo del cauce (FC), madreviejas (M),
remansos marginales (RM), plano inundable Guaritico (PI), bosque inundables del Guaritico (BIG) y lagunas de inundación (LI).
Fuente: Lasso (2004).
minadas localidades y ambientes de las zonas más bajas:
bajíos, esteros y lagunas (de suelos arcillosos), satura los
suelos y produce el anegamiento. Ambas causas son función de la diicultad del drenaje externo e interno respectivamente (Lasso 2004). El río Apure (principal aluente del
Orinoco en los llanos de Venezuela) discurre de oeste a este
al norte de este hato, y es el colector principal del sistema
de drenaje de estas sabanas hacia el cual vierten los caños
Guaritico, Macanillal, Mucuritas y Capuchinos, los cuales
recogen a su vez, las aguas de una densa red de otros caños
secundarios.
el nivel del río Apure supera los 42 m y la capacidad hídrica
del suelo pronto se sobrepasa, así que las red de caños conluentes y las depresiones topográicas de las sabanas adyacentes (lagunas de desborde, esteros y bajíos aledaños),
se llenan e incluso desbordan (Figura 11.6.4). La sabana
queda uniicada así por un espejo de agua que comienza a
retirarse de nuevo durante la fase de bajada de aguas (octubre - noviembre) hasta la sequía (marzo) cuando el río
alcanza su mínimo caudal y todos los cuerpos de agua lóticos, excepto los esteros y grandes lagunas se desecan por
unos meses (Figura 11.6.5).
El clima bimodal, que determina un ciclo hidrológico de
cuatro fases: entrada de aguas, aguas altas, salida de aguas y
aguas bajas, origina en cada fase diversos paisajes. Durante
la sequía y en el periodo de aguas bajas, no existe contacto
entre la planicie inundable y el río Apure, pero en la estación de lluvias, durante la fase de aguas altas, el crecimiento
del colector principal y el deiciente drenaje interno, ocasionan el desborde de los caños hacia la sabana. En ese momento, las lluvias están en su máximo (junio-septiembre),
LA ALTERACIÓN LOCAL DEL
FLUJO NATURAL DE LAS AGUAS:
LOS DIQUES
Con el in de evitar el desbordamiento del Caño Guaritico
y del río Apure, al norte del Hato El Frío se construyeron
cuatro diques continuos (El Frío, Macanillal, Las Ventanas,
421
EFECTOS
EN LA ECOLOGÍA DE UN HUMEDAL DE LOS LLANOS DE VENEZUELA
(CUENCA DEL ORINOCO) CAUSADOS POR LA CONSTRUCCIÓN DE DIQUES
A. Rial.
Figura 11.6.4 Hidrograma del río Apure (1989-1990-1991) y Caño Guaritico (1990). Fuente: Lasso (2004).
Figura 11.6.5 Bajíos de la sabana durante la estación seca. Foto: A. Rial.
422
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Rial.
La Clemencia y Boca Macanillal), con una longitud aproximada de 19 km y dispuestos paralelos a los cauces del río,
caños y lagunas (Tabla 11.6.1, Figura 11.6.6). Tanto la parte oriental o menos inundable, como la occidental o más
inundable del Hato, eran principalmente bajíos, con una
pequeña proporción de esteros poco profundos y bancos
bajos (Ramia 1972). El objetivo principal de estos diques
o tapas, como se conocen también en los llanos, fue tratar
de controlar o minimizar las inundaciones por desborde
del Guaritico y el Apure, sirviendo también para la comunicación (vías de acceso) entre diferentes partes del Hato.
En plena temporada de aguas altas, los diques limitan la
penetración de las agua de desborde a la sabana a través
de caños secundarios, y solo en crecidas excepcionales y
mediante boquetes que se abren natural o mecánicamente
el agua ingresa a la sabana (Figura 11.6.7). Una vez que se
han abierto los diques, las brechas se tratan de cerrar nuevamente en octubre o noviembre si las lluvias lo permiten,
para retener los últimos aguaceros y la mayor cantidad de
agua posible para el ganado en la estación seca. Al inal de
las lluvias, cuando los caudales disminuyen, estas brechas
sirven de desagüe natural desde las áreas inundables periféricas hacia el Caño Guaritico y río Apure, cumpliéndose
así el ciclo hidrológico anual.
El impacto sobre las sabanas y su biodiversidad
Prácticamente todos los procesos que ocurren en grandes humedales tienen una relación mayor o menor con la
frecuencia, duración, magnitud y otras características del
pulso de inundación, que incluye la secuencia de la potamofase (periodo de inundación) o la limnofase (periodo de
sequía) (Neif 1997).
Tabla 11.6.1 Diques del Hato El Frío y Caño Guaritico indicando los puntos que unen, fecha de construcción y longitud aproximada. Tomado de Ramia (1972).
Nombre
Tramo
Fecha
Km
Macanillal
El Frío - caño Macanillal
1965
3,5
Las Ventanas
Caño Macanillal-Las Ventanas
1965
5
Boca Macanillal
La Clemencia-Boca Macanillal
1969
2,5
La Clemencia
Las Ventanas-La Clemencia
1968
8
Manirito
Carretera Manirito
1967
9
Cailadero
Manirito-Mata Cailadero
1979
4
La Morita
Carretera La Morita
1966
4,5
La Porfía
Carretera La Porfìa
1970
4
La Apontera
Carretera la Apontera
1970
1,5
Entrada oeste
Carretera El Frío
1966
1,5
Entrada este
Carretera El Frío
1967
1,5
Entrada central
Carretera El Frío
1970
1
terraplenes han limitado el ingreso de las aguas de desborde de los ríos hacia la sabana. Después de cuatro décadas
de interrupción del lujo natural del agua u alteración del
ciclo anual del pulso de inundación, comprobamos algunos cambios perceptibles a simple vista: alteraciones del
paisaje: desaparición de espejos de agua, variación de la
isonomía de caños y lagunas, alteraciones bióticas: proliferación de especies vegetales hasta convertirse en maleza,
desaparición de garceros únicos en toda la región (áreas de
Chacón (2007) analizó los cambios producidos en el paisaje del área de estudio debidos a la modulación (construcción de terraplenes) de la sabana. Comparando fotografías
aéreas tomadas antes (1960) con imágenes satelitales obtenidas después (1988), concluyó que la construcción de
terraplenes ha cuadriplicando la extensión del estero en detrimento del bajío y el banco. Si bien este dato es relevante y
probablemente esté asociado al hecho de retener más agua
de origen pluvial, nos detendremos en el hecho de que los
423
EFECTOS
EN LA ECOLOGÍA DE UN HUMEDAL DE LOS LLANOS DE VENEZUELA
(CUENCA DEL ORINOCO) CAUSADOS POR LA CONSTRUCCIÓN DE DIQUES
A. Rial.
Figura 11.6.6 Diques del Hato El Frío. Esquema detallado de zona norte En rojo: terraplenes, línea azul continua: cursos de agua y
lagunas, línea azul discontinua caños. Flechas azules dirección del lujo de desborde en época de lluvias. Tomado de Antelo (2008).
Figura 11.6.7 Rotura del dique Manirito. Foto: A. Rial.
424
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Rial.
nidiicación de aves Ciconiformes) y cambios de diferente
índole, algunos más evidentes que otros que agrupamos en
tres categórías: física, química o biológica (Figura 11.6.8).
desfase del ciclo natural de acuerdo a las particularidades
de cada ambiente. Así por ejemplo, desde 1995 hasta el
2000 se observó como el caño Rabo de Iguana fue perdiendo identidad y funcionalidad hasta quedar inmerso en la
depresión de los esteros de Manirito por el represamiento
de sus aguas, pasando de ser un caño activo (que conducía aguas) a uno inactivo (represado) e incluso a secarse
en algunas secciones. El terraplén norte-sur, así como la
carretera nacional este-oeste han favorecido por décadas
la sedimentación al impedir el libre movimiento de las corrientes de agua de inundación o anegamiento que mantenían el cauce regular de este desaparecido caño. Igualmente
y también al sur, sucedió con el caño Capuchinos, cuyo
caudal quedó reducido al mínimo en los últimos años de
observación. Han desaparecido también enormes espejos
de agua de lagunas como La Cochina y Yopito de unas 20
y 30 ha respectivamente, actualmente cubiertas por vegetación acuática y colmatadas por sedimentos, indudablemente por la desecación de los caños que las atravesaban antes
de la instalación de los diques. Las lagunas de inundación
marginales a los ríos del norte también han desaparecido
durante los periodos en los que no ingresan las aguas de
desborde al plano inundable.
Efectos físicos
El paso de la condición lótica (aguas corrientes) a léntica
(aguas estancadas) por efecto de los diques, implica ciertos cambios en los procesos físicos y químicos, particularmente sobre el balance hídrico entre el colector principal
y los aluentes. Las consecuencias también son distintas
dependiendo del modo en que se construya el dique: 1) si
son paralelos a los grandes cursos de agua (ríos y caños)
impiden el desborde de agua luvial hacia la sabana, y 2) si
son transversales al cauce de los caños, interrumpen la circulación libre del agua (tapas). El primer caso es conocido
y el segundo no había sido evaluado.
Un cambio evidente que resulta del segundo tipo, transversal al curso, es que los caños quedan segmentados en
secciones aisladas unas de otra a lo largo de su recorrido,
de tal modo que se comportan más bien como lagunas muy
largas y poco anchas, que como caños o sistemas lóticos.
Al actuar los diques como reguladores del lujo de agua, las
cuatro fases hidrológicas se alteran, propiciando un cierto
EFECTOS FÍSICOS
PÉRDIDA DE CONECTIVIDAD SISTEMA LÉNTICO - LÓTICO
Reducción en la amplitud del pulso
Desfase de la inundación en ambas márgenes
Colmatación - sedimentación
EFECTOS QUÍMICOS
EMPOBRECIMIENTO DE LA SABANA
Limitación o superación del aporte de nutrientes a la planicie inundable
Enriquecimiento de algunos sistemas lénticos
EFECTOS BIOLÓGICOS
DISMINUCIÓN DE LA RIQUEZA DE ESPECIES
Reducción en la capacidad de dispersión de determinadas especies
Cambios en la estrategia alimenticia de algunas especies
Dominancia de pocas especies
Establecimiento y dispersión de especies plaga
Aumento de la depredación de algunas especies
Figura 11.6.8 Esquema general de efectos de la alteración del régimen hídrico.
425
EFECTOS
EN LA ECOLOGÍA DE UN HUMEDAL DE LOS LLANOS DE VENEZUELA
(CUENCA DEL ORINOCO) CAUSADOS POR LA CONSTRUCCIÓN DE DIQUES
A. Rial.
Efectos químicos
cambio, debe decirse que algunas perturbaciones pueden
perjudicar la biodiversidad local.
Si bien se airma que la pérdida de nutrientes en sabanas
naturales es menor que en sabanas moduladas (LópezHernandez 1995), hay poca información disponible sobre
el efecto de los diques y los cambios en la hidroquímica
en este humedal. Obviamente, el paso de una condición
lótica a léntica, comporta una disminución en los tenores de oxígeno disuelto y una mayor acumulación de sedimentos, que si bien es un efecto físico (disminución de
la transparencia), se conjuga con la alteración del balance
de nutrientes, el aumento de la temperatura del agua, la
conductividad y el pH (mayor basicidad) (Lasso 2004). En
los llanos inundables al inal de la época seca, se acumula
gran cantidad de material vegetal seco o parcialmente seco
que no se descompone ni se lixivia dada la escasez de agua
(Bastardo, 1981). Con las primeras lluvias, ingresan valiosas cantidades de nutrientes (López-Hernández 1986 a,b,
López-Hernández y Niño 1994), aumenta notablemente la
concentración de los iones Na, K, Ca, Mg y P solubles en los
cuerpos de agua (Lasso 2004) y se intensiican los procesos
de descomposición, lavado y escorrentía de la sabana hacia
los caños y lagunas.
Entre 1991 y 2004 tras varios años de represamiento de algunos sectores mediante diques, se observó que los caños
funcionales pasaron a ser ambientes lénticos en algunos
tramos. Se aceleró la colmatación de los cauces y se establecieron nuevas especies de plantas acuáticas, cambiando
la composición y estructura de las comunidades vegetales
del caño. Ocurrió no solo un reemplazo de especies sino
una disminución de la riqueza. La bora o buchón de agua
(Eichhornia crassipes) y la paja de agua (Hymenachne amplexicaulis) dominaron estos ambientes que antes albergaban comunidades que se reemplazaban en las cuatro fases
del ciclo hidrológico, superando las 20 especies durante la
estación de aguas altas. A medida que aumentaba esta cobertura vegetal pobre en especies, la evapotranspiración y
la diicultad mecánica que ofrecen estas masas vegetales al
lujo de agua, contribuyó a la colmatación y al cubrimiento
de secciones cada vez más extensas de algunos caños (Figura 11.6.9).
En algunos ambientes como lagunas y bajíos también disminuyó la riqueza especíica, incluso desapareció el espejo
de agua debido al menor ingreso de las aguas de desborde
represadas por los diques. Así que en el tránsito de la desecación, fueron quedando solo tres o cuatro de las 15-20
especies de plantas acuáticas que se alternaban durante el
ciclo anual, hasta que la sucesión al ecosistema terrestre
mostró la sustitución permanente por una nueva condición
estrictamente terrestre en áreas de lagunas como la Carmera.
Los diques restringen la entrada de nutrientes y aceleran
la pérdida de elementos esenciales como el potasio; y aunque la pérdida neta de calcio, magnesio, fósforo y micronutrientes como el cinc y cobre es baja, en ausencia del lujo
natural impedido por los diques, solo las lluvias locales
restituyen el aporte de potasio y calcio (López-Hernández
1995). Por otro lado, al aumentar la biomasa vegetal (ver
siguiente apartado) y con ella la absorción y retención de
nutrientes, estos quedan menos disponibles en el sistema.
Ramia (1972) ya había registrado cambios en la vegetación
en ambos lados de los diques del Hato El Frío durante los
años 1970 y 1971, señalando la sustitución de Panicum
laxum por Hymenachne amplexicaulis en los lugares más
anegados y por Leersia hexandra en los ambientes más someros y alejados del dique. En la margen seca del caño Macanillal un bajío cubierto por Panicum laxum fue sustituído
por Leersia hexandra, mientras que en el lado inundado,
Paspalum chafajonii fue reemplazada por Paratheria prostrata. Otro cambio llamativo ocurrió a orillas de los esteros
del sur. Las comunidades descritas por Castroviejo y López (1985) según el método sociológico; complementadas
y analizadas luego, por sus variaciones en el tiempo (Rial
2000, 2004 a,b), mostraron en 2007 una isonomía distinta
respecto a lo observado entre 1989 y 2006. La presencia dominante de Pacourrina edulis, una especie que hasta entonces había sido considerada ocasional y escasa en el humedal
(Rial 2009), se convirtió en la especie dominante en un
amplio tramo de las márgenes de este estero.
Efectos biológicos
Flora y vegetación
El gradiente de profundidad de un cuerpo de agua puede
variar a lo largo del año, especialmente en el litoral movible
o zona de transición acuático-terrestre. La microtopografía del ambiente, el tipo de fondo e incluso a la presión del
pisoteo animal (ganado vacuno) inluyen en la forma de la
orilla. Los terraplenes o diques alteran la dinámica hídrica y
desconectan sistemas que en condiciones naturales estarían
unidos o intercambiando lujos en la estación de lluvias,
pero causan también otros efectos más precisos. Cuando
se rompen mecánicamente para descargar un lado anegado
de la sabana, cambian los microhábitats de algunos cuerpos
de agua, se alteran las orillas y se crean diferencias hidrométricas decisivas para la colonización y mantenimiento de
las comunidades vegetales que se alternan durante el ciclo
anual. Si bien el estado de equilibrio en los humedales es el
426
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Rial.
Figura 11.6.9 Caño Mucuritas, represado por los diques y actualmente cubierto por borales. Foto: A. Rial.
Efectivamente en la mayoría de los cuerpos de agua represados la tendencia muestra una disminución de la riqueza
de especies y una mayor abundancia de aquellas con estrategias adaptativas tales como reproducción sexual y asexual
o amplios márgenes de tolerancia a los cambios. Coincidiendo con las observaciones de López-Hernández y Niño
(1995), efectivamente la biomasa vegetal en sabanas moduladas puede llegar a duplicarse, a la vez que ocurren cambios en la composición de especies y disminuye la riqueza.
áreas naturales, a una dieta más pobre en áreas moduladas.
También para las aves los caracoles eran la dieta principal,
es el caso de especies estenófagas o especialistas como el carrao (Aramus guaraura), el gavilán caracolero (Rosthramus
sociabilis) y el chicuaco (Cochlearius cochlearius).
Peces
Las comunidades de peces del Hato El Frío muestran una
enorme riqueza que supera las 200 especies, 181 presentes
en el sistema río-planicie de inundación -en este caso representada por el Caño Guaritico y su plano inundable-,
y 85 especies distribuidas en las áreas inundables periféricas, donde el efecto de las lluvias locales es más importante
que el aporte luvial (Lasso et al. 1999). Tanto en el sistema
río-planicie de inundación como en las áreas inundables
periféricas, aunque en menor escala en estas últimas, hay
zonas de transición que alternan entre ambientes acuáticos
y terrestres, denominadas zonas de transición acuáticoterrestre (ATTZ) por Junk et al. (1989). El borde o litoral
movible de estas zonas se desplaza en la planicie adyacente
o sabanas llaneras de acuerdo a la amplitud de los pulsos
de inundación. Las diferencias en la duración de la inundación, estructura del suelo y vegetación, determinan la
existencia de hábitats dispuestos a modo de franjas paralelas que multiplican el efecto borde -concentración de la
biota acuática cerca de las orillas-, más allá del cauce principal responsable de la mayor inundación (Junk et al. 1989,
Lasso et al. 1999). Estos bordes topológicos resultan en un
gradiente en términos de la distribución y riqueza de especies. Así, a medida que nos alejamos del cauce principal
Invertebrados acuáticos
Este importante y versátil grupo de animales ha sido poco
estudiado en los llanos, razón por la cual, los cambios que
hayan podido experimentar, han debido pasar desapercibidos en su mayoría. Lasso (2004) reconoció al menos 28
grandes grupos de invertebrados que constituyen la base
de la cadena tróica de todos los ecosistemas acuáticos. A
grandes rasgos pueden agruparse en zooplancton, fases
inmaduras de insectos acuáticos, crustáceos decápodos
(camarones y cangrejos) y moluscos (almejas y caracoles).
Castroviejo et al. (1977) habían resaltado ya la importancia de los cangrejos y moluscos gasterópodos (caracoles)
en la dieta de gran cantidad de vertebrados en los llanos,
tanto acuáticos como terrestres y/o voladores. Ayarzagüena
(1988) describió los cambios en la dieta de la baba (Caiman
crocodilus) entre partes moduladas (diques) y sin modular.
Como consecuencia de la disminución poblacional de cangrejos (Poppiana dentata) y caracoles o guaruras (Pomacea
spp.), se demostró que este reptil pasó de tener una dieta
muy diversa y con abundancia de caracoles y cangrejos en
427
EFECTOS
EN LA ECOLOGÍA DE UN HUMEDAL DE LOS LLANOS DE VENEZUELA
(CUENCA DEL ORINOCO) CAUSADOS POR LA CONSTRUCCIÓN DE DIQUES
A. Rial.
disminuye la riqueza especíica y ocurre un reemplazo de
especies de manera natural, el cual se ha incrementado por
el establecimiento de los diques que impiden la dispersión
e intercambio de especies (Lasso et al. 1999). La presencia
de estos diques tiene un efecto aditivo, es decir, a medida
que aumentan el número de diques paralelos a los cauces
principales, disminuye la riqueza y diversidad de especies.
La reducción del área inundable o “nursery areas” que incluyen tanto el bosque inundable como las lagunas, sabanas y esteros, trae consigo menos disponibilidad de hábitat
para el refugio, alimentación, reproducción, crecimiento y
desarrollo de numerosas formas larvarias y juveniles de peces, que utilizan estos ambientes para completar su ciclo de
vida. De esta manera extensas supericies de sabanas permanecen secas gran parte del año inclusive durante la estación de lluvias y aguas altas (Machado-Allison 1994, 2005).
Especies emblemáticas en el Hato El Frío que ven impedidas sus migraciones laterales sean estas de índole alimentario o reproductivo -del río Apure o Caño Guaritico hacia la
sabana-, incluyen al coporo (Prochilodus mariae), cachama
(Colossoma macropomum), morocoto (Piaractus brachypomus), palometas (Mylossoma spp), mijes (Leporinus spp),
tusa (Schizodon scotorhabdotus) y bagres rayados (Pseudoplatystoma orinocoense y Pseudoplatystoma metaense) (Figura 11.6.10 a,b).
dios llevados a cabo por Lasso (datos no publicados) muestran como esta especie domina en la actualidad tanto en
abundancia como en biomasa en los esteros. Tras la apertura en 1989 (agosto) del dique caño Macanillal-laguna La
Ramera, pasaban en promedio 14.000 peces/hora de 14 especies desde la laguna hacia los esteros recién inundados,
de las cuales el 50% correspondía a P. cariba. La construcción de los diques ha facilitado también el establecimiento
de especies invasoras como la mojarra amarilla (Caquetaia
kraussii) (Señaris y Lasso 1993). Esta especie trasplantada
desde la cuenca de Maracaibo a los Llanos ha ido incrementado también su abundancia y biomasa de manera notable desde 1989 hasta el presente, desplazando a su paso a
numerosas especies, especialmente las más cercanas desde
el punto de vista ecológico y ilogenético como es el caso de
los cíclidos (Lasso obs. pers.).
Con la reducción del espejo de agua y las diicultades para
la dispersión, la concentración de peces que ocurre de manera natural en el verano o estación seca, también ha aumentado enormemente y es así que la depredación por aves
y grandes reptiles (cocrodílidos) es mucho mayor que en
otras áreas de la cuenca del Orinoco (Lasso 1996). Morales
y Pacheco (1986) estimaron que el 90% de la ictiomasa de la
dieta de las aves ictiofagas provenía de lagunas temporales
de áreas moduladas.
Otro problema derivado de la instalación de diques ha sido
el crecimiento desmesurado de ciertas especies que se han
convertido en plagas, como el caso del caribe colorado o
piraña (Pygocentrus cariba) (Machado-Allison 2005). Estu-
Reptiles y anibios
Quizás uno de los hechos más resaltantes en el conjunto
de cambios observados es la aparición de una nueva espe-
b
a
Figura 11.6.10 a) Bagre rayao (Pseudoplatystoma orinocoense); b) Coporo (Prochilodus mariae). Fotos: a) B. Román, b) P. Sánchez.
428
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Rial.
cie de anibio: la rana túngara (Physalaemus pustulosus). La
anurofauna llanera es una de las comunidades biológicas
mejor conocida gracias a los estudios en la Estación Biológica El Frío desde la década de los setenta, período durante
el cual esta especie no era conocida. Actualmente es una de
las más abundantes, y aunque se desconocen exactamente
las razones de su arribo e instalación, su presencia coincide
con la construcción de los diques del Caño Guaritico. Con
respecto a los grandes reptiles, hemos mencionado las variaciones en la dieta de la baba como resultado de una menor oferta de invertebrados afectados por la construcción
de los diques.
concentración, durante la estación seca, período en el cual
estas aves se congregan para consumirlas. Un fenómeno similar, pero menos documentado, corresponde a los patos
güires (Dendrocigna spp) abundantes y usualmente congregados en las lagunas durante la muda, que ahora son cada
vez mas escasos y sólo se han vuelto a observar en años de
lluvias excepcionales.
Mamíferos
El cachicamo sabanero (Dasypus sabanicola), especie amenazada y endémico de los llanos, es actualmente una especie rara que solía ser común, sobre todo en las sabanas del
sur del Hato. Por el contrario, los dos osos hormigueros,
Myrmecophaga tridactyla y Tamandua tetradactyla, parecen haber aumentado sus poblaciones, aunque no contamos con datos suicientes que lo aseguren o se relacione
con los diques. En el caso de la tonina Inia geofrensis, se
registró su presencia en el caño Setenta aluente del Guaritico, pero dejó de habitar algunos cuerpos de agua como el
caño Macanillal al inal de los 80. Este caño se comunicaba
con el Caño Guaritico y el río Apure, pero pasó de funcional a inactivo tras la construcción de los diques (Ayarzagüena 1983). En 1989 ya presentaba características biológicas intermedias entre ambos tipos de caños (composición
lorística, ictiofaunística) y fue entonces el último registro
de la presencia de estos delines de río en este caño del humedal (Lasso 2004).
Aves
Los cambios apreciados en las aves acuáticas han sido muy
signiicativos. Ayarzagüena et al. (1981) describieron la reproducción de colonias de garzas (garceros) en las sabanas
del Hato El Frío. Caracterizaron seis garceros en el Caño
Guaritico, que han sido documentados posteriormente y
de manera gráica en varias ocasiones. Con el cierre deinitivo del dique del Caño Guaritico en 1983, los garceros
fueron disminuyendo paulatinamente hasta llegar a desaparecer por completo cerca del año 2000.
El último garcero que se formó en dicho caño fue en el año
2003, coincidiendo con una ruptura del terraplén que permitió la entrada de agua desde el caño Guaritico, y apenas
ocupaba un centenar de metros del bosque de galería, contra los más de 8 km descritos por Ayarzagüena et al. (1981).
El orden en que se produjo la perdida de especies está claramente establecido. Primero desaparecieron los ibis (Eudocimus ruber y Phymosus infuscatus) y casi de manera
inmediata las garzas nocturnas Nyctanasa violacea, Nycticorax nicticorax y Cochlearius cochlearius. A esto siguió
la desaparición de las garzas grandes de los géneros Egreta
y Ardea. En estación lluviosa de 2003 esta rotura inusual
del dique de Caño Guaritico en varios puntos, permitió el
ingreso de las aguas de desborde y con este evento se puso
en evidencia su importancia para las garzas grandes que regresaron y ocuparon nuevamente el denominado “Garcero
6 de Macanillal” (principal caño tributario del Guaritico).
CONSIDERACIONES FINALES
SOBRE LOS CAMBIOS ACTUALES
Si bien la vocación ganadera de este hato le impulsó como
al resto de predios llaneros, a “domar” las aguas alterando
como se ha visto, la ecología del humedal, también es cierto que no habríamos podido documentar estos cambios si
no fuese por la colaboración de antiguos sus propietarios,
activos guardianes de la biodiversidad, y por el trabajo sostenido y eicaz de la Estación Biológica El Frío. Ciertamente
estas llanuras del Frío se contaban entre las más prístinas de
los llanos inundables de Apure.
La restricción del lujo natural de las aguas de desborde,
ha ocasionado sobre otras especies como el carrao (Aramus
guaraura), el gavilán caracolero (Rosthramus sociabilis) y el
chicuaco (Cochlearius cochlearius), cambios en su patrón
de comportamiento como consecuencia de la menor disponibilidad de presas, cuya dispersión depende a su vez, de
las inundaciones. Los caracoles acuáticos (Pomacea spp.)
que antes eran muy abundantes en las dos épocas (lluviassequía), han ido desapareciendo durante las lluvias y sólo
están disponibles en números considerables y por efecto de
El Hato El Frío fue propuesto ante el Comité MaB de la
Unesco como Reserva de la Biosfera, meses antes de su
expropiación y conversión en la actual Empresa Socialista
Productiva Marisela S.A. en el año 2008. La Estación Biológica El Frío (EBEF) y la Empresa Invega, antigua propietaria de estos predios, promovieron la creación en 1989 del
Refugio de Fauna Caño Guaritico, así como la investigación y la conservación de la biodiversidad de este humedal, cuya riqueza de lora supera las 300 especies, 200 de
429
EFECTOS
EN LA ECOLOGÍA DE UN HUMEDAL DE LOS LLANOS DE VENEZUELA
(CUENCA DEL ORINOCO) CAUSADOS POR LA CONSTRUCCIÓN DE DIQUES
A. Rial.
ellas plantas acuáticas; 319 especies de aves; 225 especies
de peces, 80 especies de mamíferos, incluyendo cuatro de
las cinco especies de felinos de Venezuela (jaguar, puma,
cunagüaro y onza), 20 especies de anibios y 50 especies de
reptiles, incluido el legendario caimán del Orinoco (Crocodylus intermedius). Esta especie en peligro de extinción,
cuyas poblaciones naturales se recuperaron exitosamente
(después de su casi total desaparición durante los años 60
y 70), fueron objeto durante más de dos décadas, del proyecto de conservación y cría en cautiverio que garantizó la
vida de los reproductores, la cría en cautiverio de los juveniles y su posterior liberación, así como el seguimiento de
las poblaciones naturales cuyo éxito se hizo evidente en la
presencia de nidadas de años consecutivos y en el promedio de distribución de tallas de la población que habita en
los caños del antiguo Hato El Frío. En 2007 se constató por
última vez la presencia de una población compuesta por al
menos 400 cocodrilos subadultos y adultos (Antelo 2008)
en los cuerpos de este humedal.
Tabla 11.6.2 Áreas de uso del suelo del Hato El Frío en la estación de lluvias.
Áreas de uso
(ha) Invierno
Zona protectora o de reserva
5.035,00
Áreas de lagunas y asientos
13.121,40
Áreas de inundación
32.517,47
Bancos y áreas no inundables
12.291,34
Total Hato El Frío
62.965,18
Fuente: Levantamiento Topográico, Eyra Linares, 2004. Interpretación de imágenes David Castillo, 2006.
A las alteraciones descritas anteriormente, se suma la situación actual. Las sabanas inundables del antiguo Hato
El Frío, el corazón de los Llanos (Figura 11.6.11) ahora a
cargo del Gobierno, han sido destinadas al cultivo de arroz
y la ganadería. Se sembrarán además 3.000 hectáreas de policultivos: maíz, frijol, yuca, auyama, plátano y se evalúa la
introducción de pastos para sistemas rotativos en otras 500
hectáreas. La Estación Biológica El Frío, ya no podrá auspiciar ni realizar más investigaciones y no se sabe de ninguna
iniciativa al respecto por parte de otra institución en el país.
Las sabanas del Frío también fueron consideradas uno de
los pocos reservorios de pastos naturales del país, gracias
al manejo sostenible de la ganadería, basado en el uso de
pastos nativos y en el aprovechamiento del suelo según su
vocación (Tabla 11.6.2).
Figura 11.6.11 Hato El Frío el corazón de Los Llanos. Tomado de INVEGA (2008).
430
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Rial.
BIBLIOGRAFÍA
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.7
EVALUACIÓN
Y OFERTA REGIONAL DE HUMEDALES DE LA
ORINOQUIA: CONTRIBUCIÓN A UN SISTEMA
DE CLASIFICACIÓN DE AMBIENTES ACUÁTICOS
C. Suárez.
Caro Claro C. I., Fernando Trujillo, Cèsar F. Suárez, José S. Usma
RESUMEN
Este caso de estudio aporta criterios técnicos para ajustar
el sistema de clasiicación de ambientes acuáticos para la
región de la Orinoquia colombiana. Hace un análisis de
los diferentes acercamientos de clasiicación de humedales,
cuerpos de agua, ecosistemas acuáticos o ambientes acuáticos propuestos a escala internacional (Convención Ramsar 2003, Corwardin et al. 1979), nacional (Minambiente
2002) y regional (Romero et al. 2004). Igualmente realiza
una propuesta preliminar de jerarquías de clasiicación
hasta el nivel de subclase; compuesto por tres provincias
geográicas, tres sistemas, dos ambientes, dos subsistemas,
cinco clases, dos subclases y once ecosistemas. De forma
complementaria, se describen los principales insumos cartográicos existentes para la delimitación de estos ambientes orinoquenses, incluyendo una propuesta metodológica
para el ensamblaje de los criterios propuestos en el sistema
de clasiicación.
Palabras claves: ambiente acuático, clasiicación, Colombia, cuenca, ecosistema, humedal, Orinoquia.
INTRODUCCIÓN
La cuenca del Orinoco ha sido considerada a nivel global
como una región estratégica, por ser una de las cuencas con
433
mayor biodiversidad mundial, establecida como prioridad
para su conservación junto con el Amazonas, el Mekong,
el Yangtze y el Congo. Alberga una gran diversidad de ecosistemas y especies de fauna y lora y en la actualidad se
registran para el Orinoco aproximadamente 1000 especies
de peces (Lasso et al. 2004) y un 15.3% de humedales con
respecto a su área total (UICN et al. 2003). En Colombia
ocupa una extensa área del territorio, aproximadamente del
34% al 35% (34.426 km2) (Romero et al. 2004); de los cuales 32.343 km2 (3.234.300 ha) corresponden a áreas inundables, lo que equivale al 31.7% de la supericie inundable
del país (IDEAM 1998).
La oferta hídrica del Orinoco colombiano constituye un
atributo ecológico regional de gran importancia, en la cual
se integran los aportes de las cuencas de los ríos Arauca,
Guaviare, Meta, Tomo y Vichada. Esta extensa red luvial
sumada a las características geomorfológicas ha modelado
a lo largo de los años un complejo de ambientes acuáticos
entre los que sobresalen las sabanas inundadas, los morichales, las lagunas, los caños y los bosques inundados. Algunos de estos ecosistemas han sido ejes en la consolidación de centros urbanos y asentamientos humanos desde
tiempos precolombinos, sin embargo, pese a su singularidad e importancia ecológica y económica, hoy en día son
considerados ecosistemas amenazados y vulnerables, tanto
EVALUACIÓN
Y OFERTA REGIONAL DE HUMEDALES DE LA ORINOQUIA: CONTRIBUCIÓN
A UN SISTEMA DE CLASIFICACIÓN DE AMBIENTES ACUÁTICOS
J. S. Usma.
ecosistema es deinido principalmente por el aspecto físico
y estructura (isonomía), de sus especies de plantas dominantes y también por sus procesos ecológicos predominantes tales como fuego, inundación o pastoreo”.
por las actividades antrópicas y sus ejes de desarrollo como
por los impactos del cambio climático, dada su alta sensibilidad al calentamiento global y al cambio de los regímenes
de inundación. No obstante, existe gran desconocimiento
de su situación actual, su valor de biodiversidad y su funcionamiento ecológico, especialmente en regiones con baja
densidad poblacional como la Orinoquia.
En la política nacional de biodiversidad (Minambiente et
al. 1997), se asume el ecosistema tal como lo precisa la Ley
165 de 1994: “un complejo dinámico de comunidades vegetales, animales y de microorganismos y su medio no viviente que interactúan como una unidad funcional”. Acerca del
mismo, se han hecho avances conceptuales importantes,
para la elaboración de los mapas de ecosistemas de los
Andes (Rodríguez et al. 2004) y de la cuenca del Orinoco
colombiano (Romero et al. 2004). Por último en Colombia el IDEAM, IGAC, IAvH, INVEMAR, SINCHI e IIAP
(2007), en la realización de la cartografía de los ecosistemas continentales, costeros y marinos de Colombia a escala
1:500.000, adoptan la deinición de ecosistema del Convenio de Diversidad Biológica como “un complejo dinámico
de comunidades vegetales, animales y de microorganismos
en su medio no viviente que interactúan como una unidad
funcional materializada en un territorio, la cual, se caracteriza por presentar una homogeneidad, en sus condiciones
biofísicas y antrópicas”.
Como parte de los ambientes acuáticos, los humedales proveen múltiples bienes y servicios que permiten el desarrollo de actividades económicas. Poseen además un alto valor
paisajístico y cultural. En el ciclo hidrológico desempeñan
un papel fundamental en la regulación hídrica de las cuencas, mediante el cumplimiento de funciones como amortiguación de inundaciones, retención y exportación de sedimentos y nutrientes y depuración de aguas. En términos de
reservorios de biodiversidad albergan especies, residentes
y migratorias, autóctonas y endémicas, amenazadas y en
vías de extinción y proporcionan hábitats y refugios para
las mismas.
En la cuenca del Orinoco, sector colombiano, los estudios
enfocados al conocimiento de los sistemas acuáticos, se localizan en el piedemonte llanero, en zonas de los departamentos de Arauca, Boyacá, Meta y Casanare. En general,
están asociados a los requerimientos ambientales que conlleva la actividad petrolera desarrollada allí y a la demanda
de acueductos, en el orden local. Se cuenta con trabajos de
diversa índole como tesis de pregrado, monografías, consultorías, planes de manejo y/o ordenamiento de microcuencas, entre otros; la mayoría de estos, fruto de iniciativas puntuales carentes de análisis ó aplicación de sistemas
de clasiicación para estos ecosistemas.
A partir de estos enunciados de ecosistemas se hacen
planteamientos para los ecosistemas acuáticos; para esto
se asocian a diversos factores como: la disponibilidad del
recurso hídrico, las condiciones de la vegetación asociada,
su ubicación en el paisaje, su origen ligado a las características biofísicas del agua, el clima y las comunidades bióticas
presentes. Los ecosistemas acuáticos pueden considerarse
entre los más importantes de la naturaleza y su existencia
depende totalmente del régimen hídrico que tengan; de
igual manera no poseen o tienen límites ijos, puesto que
sus variables se establecen de acuerdo al objeto o función
del trabajo, bien sea cientíico, político o de gestión. Así se
puede considerar, según el eje central de análisis como ecosistema acuático a una laguna, una cuenca, o una región
entera (USEPA).
Existen varias aproximaciones conceptuales acerca de los
lugares en donde la vida en el planeta se lleva a cabo. Para
el enfoque ecosistémico, eje de esta propuesta, se dispone
de múltiples deiniciones. La UNESCO delimita el ecosistema como un: “conjunto dinámico de animales, vegetales
y comunidades de microorganismos que se interrelacionan
entre sí y con su entorno en una unión funcional”. En esta
sobresalen como variables la vegetación, los organismos,
los procesos ecológicos y los elementos geofísicos como el
clima, suelo y el régimen de agua. Esta deinición se modiica en el 2002 (Vreugdenhil et al. 2002) para el Neotrópico: “ecosistema es una unidad relativamente homogénea
(distinguible a nuestra escala de trabajo 1:250.000) de organismos interactuando, procesos ecológicos y elementos
geofísicos tales como el suelo, clima y régimen de agua. Un
Uno de los aportes más importantes en conceptualización
y clasiicación de humedales lo realizan Cowardin et al.
(1979) quienes enuncian los humedales como “humedales
son tierras en transición entre sistemas terrestres y acuáticos, donde el nivel freático está usualmente en o cerca de la
supericie, o la tierra está cubierta por agua. Para propósitos
de esta clasiicación los humedales deben tener uno o mas
de los siguientes tres atributos: (1) al menos periodicidad,
434
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Suárez.
la tierra soporta predominantemente hidro-períodos; (2) el
sustrato no es permeable, suelo hídrico; y (3) el sustrato no
posee suelo y está saturado con agua o es cubierto por el
agua al menos durante la estación creciente del año”. Aquí
se resalta la relación entre lo terrestre y lo acuático, por lo
que la saturación del suelo y la relación son elementos primordiales.
Especíicamente para ecosistemas acuáticos y transicionales se parte del concepto de humedal, de uso generalizado y
adoptado por la convención Ramsar: “son humedales aquellas extensiones de marismas, pantanos, turberas o aguas
de régimen natural o artiicial, permanentes o temporales,
estancadas o corrientes, dulces, salobres o saladas, incluyendo las extensiones de agua marina cuya profundidad
en marea baja no exceda de seis metros” (Scott y Carbonell 1986). Este incluye características como temporalidad,
relación con el hombre y aspectos limnológicos (tipo de
agua), variables que convergen en múltiples propuestas
planteadas para su clasiicación especialmente desde los
años 70. De esta forma el término de ambientes acuáticos
abarca: humedales, cuerpos de agua profundos y ecosistemas acuáticos.
A partir de estos componentes, se desarrolla la propuesta de
clasiicación de ambientes acuáticos, la cual parte de la revisión de los actuales sistemas de clasiicación y lo previsto
por la política nacional de humedales de Colombia. Como
avance en el tema, para la cuenca del Orinoco, Venezuela
ha adelantado el inventario y monitoreo de sus humedales
(Rodríguez-Altamiranda 1999) y Colombia dispone de lineamientos y bases técnicas y de un marco de política para
humedales interiores (MAVDT 2002, Ricaurte et al. 2004).
Posteriormente WWF lideró una iniciativa donde llevó a
cabo un acercamiento entre algunas instituciones que han
liderado estudios en humedales de Venezuela (Fudena y
Universidad Simón Bolívar) y de Colombia (Ministerio de
Ambiente, Vivienda y Desarrollo Territorial -MAVDT- , la
Universidad de los Llanos - Unillanos, Fundación Omacha,
Fundación Humedales y el Instituto Amazónico de Investigaciones Cientíicas -SINCHI-).
METODOLOGÍA
macizo de Guayana, hasta el océano. Sus cuencas circundantes representan una de las áreas más ricas biológica e hidrológicamente y es considerada como uno de los sistemas
ribereños más importante del mundo, en particular, por el
volumen de descarga de agua hacia el Atlántico (descarga
promedio de 36 mil m3/por segundo).
De acuerdo a los registros del IDEAM (1998), en la cuenca
del Orinoco colombiano el área inundable de las cuencas
de los ríos Arauca, Guaviare, Inírida, Meta, Vichada, Tomo-Tuparro y Atabapo es de 32.343 km2 (3.234.300 ha), lo
que equivale al 31.7% de la supericie inundable del país. El
mismo autor cita que la zona de pantanos es de 1.464.445
m2 y que el número de ciénagas (lagunas de desborde) es
de 3.426, lo cual corresponde al 22.44% del total registrado
en el territorio colombiano.
Evaluación de propuestas de clasiicación
Se revisaron las propuestas de clasiicación de humedales
de nivel internacional, como las de Cowardin et al. (1979),
Ramsar (Scott y Jones 1995), Farinha et al. (1996), y de nivel
regional para la cuenca del Orinoco en Venezuela (Rodríguez-Altamiranda 1999) y en Colombia las propuestas elaboradas para ambientes acuáticos (regionales ó nacionales)
como las de Prada (1987), Donato (1998), Rangel (1998),
Naranjo et al. (1999), el Ministerio de Medio Ambiente en
la Política Nacional de Humedales (2002) y Ricaurte et al.
(2004).
Construcción de la propuesta de clasiicación
para la Orinoquia colombiana
Con el objeto de construir una propuesta de clasiicación
aplicable a toda la cuenca del Orinoco, se realizaron dos
reuniones técnicas de carácter internacional con la participación de instituciones colombianas y venezolanas, enmarcadas dentro del Programa Manejo Integrado de la Cuenca
del Orinoco de WWF en el año de 2004. Participaron por
Venezuela Fudena, Universidad Simón Bolívar, Instituto
de Hidrología y por Colombia, el Ministerio de Ambiente,
Vivienda y Desarrollo Territorial, WWF, la Universidad de
los Llanos, la Fundación Omacha, la Pontiicia Universidad
Javeriana, la Universidad Nacional (ICN), la Universidad
Jorge Tadeo Lozano, la Universidad Nacional de Medellín,
la Fundación Humedales y el Instituto Sinchi.
Descripción del área de estudio
La cuenca del río Orinoco se extiende a través del límite de
Colombia y Venezuela, desde los Andes hasta el Atlántico a
lo largo de 2140 km, desde su origen en el extremo sur del
435
Adicionalmente, se llevaron a cabo otras cinco reuniones
técnicas en Bogotá y Cali, donde además de la participación de las anteriores instituciones, se contó con el apoyo
EVALUACIÓN
Y OFERTA REGIONAL DE HUMEDALES DE LA ORINOQUIA: CONTRIBUCIÓN
A UN SISTEMA DE CLASIFICACIÓN DE AMBIENTES ACUÁTICOS
J. S. Usma.
técnico de las autoridades ambientales Cormacarena, Corporinoquia, CDA y del Instituto Alexander von Humboldt.
En este mismo sentido Naranjo (1997) propone un sistema
de clasiicación para el contexto colombiano basado en el
sistema de jerarquías para la clasiicación de humedales de
Estado Unidos (Cowardin et al. 1979), del Mediterráneo
(Farinha et al. 1996) y la clasiicación adoptada por Ramsar
(Scott y Jones 1995). Este estudio fue acogido por el Ministerio del Medio Ambiente (2002) para deinir líneas de
lo que es actualmente la Política Nacional de Humedales
Interiores de Colombia.
RESULTADOS Y ANÁLISIS
Evaluación de propuestas de clasiicación de humedales
Existe una amplia gama de propuestas para la clasiicación de humedales; la mayoría parten de lo propuesto por
Cowardin et al. (1979), y realizan modiicaciones o adaptaciones de acuerdo al objetivo y las características ecológicas
regionales de los ambientes. En la tabla 11.7.1 se resumen
los principales sistemas utilizados en el mundo.
En la jerarquía actual, marco de referencia en Colombia,
se incluyen dos ámbitos, siete sistemas, cinco subsistemas,
ocho clases y más de quince subclases. Se destaca la coincidencia conceptual de esta propuesta, en las grandes categorías, con la clasiicación vigente en Venezuela. Otra experiencia a nivel de Colombia es la desarrollada por una serie
de organizaciones entre ellas la Fundación Humedales, el
Instituto Humboldt, WWF, la Asociación Calidris, la Fundación Fuerachoga, la Universidad Javeriana, la Fundación
Ecotrópico y la Fundación Ecopar, en donde llevan a cabo
la promoción y realización de inventarios de humedales
andinos “Humeandes”, contribuyendo en la base conceptual de los inventarios y en la práctica de los mismos. Se
retoma así adaptación de la estructura jerárquica de los inventarios basada en los proyectos de MedWet, protocolo de
Inventario de Humedales de Asia, Ramsar y el sistema de
clasiicación de humedales y aguas profundas de Estados
Unidos. Proponen cinco niveles o escalas de inventarios: 1.
Ecorregiones, 2. Unidades biogeográicas para ecosistemas
acuáticos de montaña, 3. Cuenca de captación, 4. Sitio de
humedal y 5. Hábitat.
De lo anterior se puede concluir que existen múltiples
aproximaciones para clasiicar ambientes acuáticos, muchas de ellas dependiendo del tipo de análisis que se quiera
realizar y el área geográica de la cuál se trate.
A nivel regional se destacan varias iniciativas de clasiicación, una de ellas desarrollada por investigadores venezolanos, quienes establecieron una propuesta para los humedales de Venezuela, como parte del inventario, diagnóstico
ambiental y estrategia en este país. Identiicaron unidades
ecológicas de acuerdo a la presencia de suelos hídricos o
con alto contenido de agua, la vegetación hidróila y la hidrología, proponiendo así 24 categorías de humedales basadas en el medio (marino, estuarino, ribereño, lacustre, palustre, artiicial), el tipo de régimen (submareal, intermareal,
permanente y estacional), la vegetación, los suelos y categorías especíicas (Rodríguez-Altamiranda 1999). Como un
ejercicio más avanzado para aplicar esta clasiicación se tiene la propuesta de la Universidad Simón Bolívar (Castillo
2003), donde se precisan las categorías (tipos) que existen
para la cuenca del Orinoco en Venezuela.
Otro ejercicio de clasiicación de humedales importante de
mencionar, es el desarrollado por el Instituto Amazónico
de Investigaciones Cientíicas -Sinchi- en el Caquetá colombiano, en donde parten de los sistemas de clasiicación
tradicionales y realizan modiicaciones basadas en lo pro-
Tabla 11.7.1 Componentes de los ambientes acuáticos.
Organismos interactuando
Vegetación
Especies
Micro-Organismos
Procesos ecológicos
Inundación
Sedimentación
Flujo de nutrientes
Elementos geofísicos
Sustrato
Régimen del agua
Limnología
(tipos de agua)
Origen con relación a la intervención humana
Artiicial
Natural
436
Clima
Suelo
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Suárez.
puesto por Semeniuk y Semeniuk (1997) y la experiencia
de profesionales en el área de ecosistemas acuáticos, incorporando campos de clasiicación del paisaje y la geomorfología como un criterio de partida para realizar la clasiicación e inventario de humedales (Ricaurte et al. 2004).
La propuesta de clasiicación de Cowardin et al. (op.cit) se
basa en un sistema jerárquico que tiene en cuenta el tipo
de sustrato, el régimen de inundación y las formas de vegetación. Los sistemas y subsistemas, son en general muy
parecidos a la propuesta Ramsar (Davis et al. 1996) y a las
otras mencionadas anteriormente. Lo que cambia de manera creativa son las clases, subclases y tipos dominantes.
Para las primeras se tiene en cuenta la unidad taxonómica más alta del nivel de Subsistema. Describe la apariencia
general del hábitat en términos de la vegetación o forma
de vida dominante y la composición del sustrato (aspectos que pueden ser reconocidos sin la ayuda de mediciones
ambientales detalladas). Ejemplos de formas de vida son:
árboles, arbustos, plantas emergentes, musgos y líquenes,
que son fácilmente identiicables. Las subclases representan
un nivel de detalle mayor enfocado a las características de
la vegetación (e.g. decidua, siempre verde) o del tipo de sustrato. Los tipos dominantes son las categorías taxonómicas
subordinadas a las subclases y generalmente están determinadas con base en las especies dominantes de plantas o
animales. Aquí se resalta la relación entre lo terrestre y lo
acuático, por lo que la saturación del suelo y la relación son
elementos primordiales. En la propuesta, se establece que
la diferencia entre los humedales y los hábitats acuáticos
profundos es el gradiente de profundidad (cerca a 2 metros), con excepciones en los casos en que existen arbustos
y árboles emergentes que están a mayor profundidad, situación que es bastante común en una región como la Orinoquia, donde los pulsos de inundación alcanzan diferencias de más de 8 metros de profundidad (a lo largo del río
Orinoco), generando extensas áreas de bosques anegados.
con la biodiversidad de ambientes acuáticos, especialmente
en zonas donde el gradiente altitudinal es muy marcado,
caso de la cuenca del Orinoco delimitada desde la divisoria
de aguas. En este aspecto el estudio ORAM (IGAC 1999),
constituye la base más actualizada y completa como referente para la cuenca.
La tipología de aguas propuesta para la Amazonia (Sioli 1967), se aplica a la Orinoquia y sirve para dar mayor
detalle en la deinición de la subclase, por lo tanto es otro
insumo a tener presente.
Clasiicación de ambientes acuáticos en el
Orinoco colombiano
Una de las aproximaciones utilizada para la diferenciación
de ambientes acuáticos, es la clasiicación de las aguas en
ecosistemas acuáticos de la Amazonía, asociada con sus características isicoquímicas y su origen (Sioli op. cit., Duque
et al. 1997). Bajo esta clasiicación en la cuenca del Orinoco, se encuentra que las aguas que drenan o se originan en
las sabanas y áreas del Escudo Guayanés (ríos Inírida, Bita,
Tomo y Vichada) son pobres en electrolitos, tienen concentraciones altas de ácidos orgánicos y una carga baja de sedimentos; a su vez las aguas de los ríos andinenses - blancos
- (río Arauca, Guaviare y Meta) poseen una cantidad alta
de electrolitos y su pH está cercano a la neutralidad (Ramírez y Ajiaco 2001).
Donato (op. cit.), en el enfoque de provincias geográicas
aparte de la altitud, ya referida, considera elementos climáticos, geográicos y biológicos, de manera tal que permite
ordenar y entender la complejidad de los ecosistemas acuáticos del país. Las provincias propuestas por el autor son
cuatro: alta montaña tropical, andina, tierras bajas y costera.
En términos generales las propuestas internacionales de
Cowardin et al. (op.cit), Ramsar y Farinha et al. (op.cit)
proveen los elementos conceptuales más elaborados con
relación a humedales y permiten llegar a un nivel de detalle
especíico para la deinición de los tipos.
Con otro punto de vista, para la caracterización de los ecosistemas acuáticos de la Orinoquia y de la Amazonía colombiana, Rangel (1998) utiliza las siguientes categorías:
ecosistemas acuáticos propiamente dichos (ríos, cochas,
esteros), ecosistemas pantanosos (aluviones y terrazas aluviales) y ambientes sujetos a inundación (vegas, barras, diques y terrazas).
En el contexto nacional es importante el aporte de Donato (1998) en la deinición de unidades geográicas - provincias - porque toma una variable fundamental para la
comprensión de la diversidad de ecosistemas acuáticos en
Colombia, que es la altitud. Sin embargo, es necesario tener
en cuenta la isiografía como variable substancial asociada
De forma más especíica para ambientes sujetos a inundación Prada (1987) postula las categorías de ambientes acuáticos lóticos, ambientes acuáticos lénticos (lagos, resacas,
madreviejas), planos de inundación (igapó, várzea), ambientes inundados de forma permanente (cananguchales,
aguajales) y ambientes de aguas claras (quebradas, arroyos).
437
EVALUACIÓN
Y OFERTA REGIONAL DE HUMEDALES DE LA ORINOQUIA: CONTRIBUCIÓN
A UN SISTEMA DE CLASIFICACIÓN DE AMBIENTES ACUÁTICOS
J. S. Usma.
Con base en el trabajo de Naranjo et al. (1999), en la Orinoquia colombiana se reconocen siete complejos de humedales continentales: río Arauca, ríos Meta y Guaviare (llanuras aluviales inundables en invierno y madreviejas); río
Casanare, ríos Vichada y Tomo (planos inundables y una
laguna permanente) y río Inírida. Esto a su vez sirve como
marco para la región, en la Política Nacional de Humedales de Colombia (Minambiente 2002); esta propuesta deja
como base de acuerdo la clasiicación propuesta por Ramsar, que ya se mencionó.
acuerdo al proceso que los origina ó los mantiene. Dada
las características particulares de la región de la cuenca del
Orinoco, con sistemas luviales y palustres de alta representatividad, se incluyó el tipo de movimiento del agua desde
el punto de vista limnológico en sistemas lóticos y lénticos.
Subsistema
Se establece por los patrones de circulación del agua. Como
ejemplo se citan los subsistemas: permanentes (con una
zona de desborde bien deinida) y temporales (canales con
lujos de agua), dentro del sistema riverino. Para este caso
permanece sin modiicación alguna esta categoría.
Propuesta de Clasiicación de Humedales para la
Orinoquia
Clase
A partir de en las anteriores deiniciones se han agrupado las características de los ambientes acuáticos en cuatro
grandes componentes: los organismos interactuando, los
procesos ecológicos, los elementos geofísicos y la acción
del hombre (Tabla 11.7.1).
Describe la apariencia general del humedal o el hábitat de
aguas profundas, en términos de la forma de vida vegetal
dominante (por isionomía del humedal), o de la naturaleza
y composición del substrato. En esta propuesta se mantiene
el criterio de isonomía.
Con fundamento en la revisión de los diferentes estudios,
trabajos y propuestas para clasiicación de ambientes acuáticos (Anexo 13) y manteniendo como eje los lineamientos de la política nacional de humedales se representan los
niveles jerárquicos en orden descendente ajustados para la
cuenca (Figura 11.7.1). Estos corresponden a:
Subclase
Caliica la estructura y composición de comunidades ó características limnológicas como el tipo de agua (aspectos
físico-químicos). En la presente propuesta se consideran
los tipos de aguas de la clasiicación dada por Sioli (1967):
aguas negras, blancas y claras. Se adiciona el tipo mixtas,
teniendo en cuenta los diferentes gradientes existentes y las
dinámicas de los planos de inundación en la región.
Ámbito
Se reiere a la naturaleza ecosistémica más amplia, por origen y funcionamiento. Para esta clasiicación se utilizan las
provincias geográicas de ecosistemas acuáticos, propuestas
por Donato (op. cit.).
Ecosistema representativo
Corresponde a los ecosistemas acuáticos más identiicables.
Se introdujo esta categoría para seguir una secuencia lógica de los ambientes acuáticos presentes en la cuenca del
Orinoco.
Sistema
Para humedales naturales aplica la inluencia de factores
hidrológicos, geomorfológicos, químicos o biológicos; en
razón a esto se tienen: marino, estuarino, ribereño (ríos y
quebradas), lacustrino (lagos, embalses y grandes pozos) y
palustrino (lagunas de desborde, pantanos, esteros, sabanas inundadas y morichales). Los artiiciales se separan de
Tipología o nombre
Se reiere a la especiicidad del ambiente acuático, a nivel
local y regional.
Figura 11.7.1 Niveles Jerárquicos del sistema de clasiicación.
438
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Suárez.
Con los aportes de las reuniones técnicas se revisaron las
deiniciones de los niveles jerárquicos, y se establecieron los
criterios que predominan en cada deinición en el contexto
de la Orinoquia.
Para la categoría ámbito, el trabajo se restringe al ámbito
continental, debido a que el ámbito marino carece de representación en la parte de la cuenca del Orinoco colombiano.
Se complementó con la propuesta de provincias geográicas
de Donato (1998).
En el caso del Sistema, el criterio fundamental está regido
por el movimiento del agua, su uso y su origen:
• Fluvial, ambientes acuáticos conectados con el propio
río (madreviejas, planicies inundables). A diferencia
de lo propuesto por Ramsar, se incorporan los planos
inundables como humedales, sin desconocer que en
ellos pueden estar representados una amplia gama de
ecosistemas acuáticos. Se toma esta decisión debido a
la importancia de estos ambientes dentro de la cuenca, tanto por su extensión, como por el mantenimiento
de la productividad biológica, medida esta última en la
pesca, principalmente.
• Lacustre, cuerpos de agua con un área considerable y
con estratiicación térmica y química. Aparentemente
con muy pocos ejemplos en la Orinoquia, pero con una
buena representación de acuerdo a la clasiicación de
lagos propuesta por Roldán (1992) que abarca: “lagos
originados por acción de los ríos: ciénagas, lagos de origen meándrico y lagos de inundación”.
• Palustre, cuerpos de agua deinidos por escorrentía (esteros, morichales, lagunas de desborde, sabanas inundables). Incluye los ambientes caracterizados por el
aporte y procesos de circulación de materia orgánica.
Este grupo tiene una gran representación e importancia
en la cuenca.
• Geotérmico, Corresponde a aguas termales.
• Artiicial, se incluye dada la importancia de actividades como acuicultura, cultivo de arroz, provisión de
acueductos (embalses) y generación de energía, en la
cuenca.
El Subsistema, está deinido por la temporalidad de las
aguas, lo que es de gran relevancia en la región donde hay
pulsos de inundación asociados con las precipitaciones
estacionales, de régimen monomodal. Esta dinámica hidrológica se asocia con el cambio de uso en gran parte del
territorio.
En la Clase, prima la isonomía de la vegetación y/o el sustrato. En general se toma como variable la isonomía de la
439
vegetación y sólo se utiliza la variable del sustrato en el caso
concreto del sistema geotérmico.
En la subclase, se incorporan los aspectos físico-químicos,
comunidades biológicas predominantes y la geomorfología. Desde el punto de vista físico-químico (Sioli op. cit.), el
sistema luvial puede analizarse como:
• Ríos de aguas blancas de origen andino.
• Ríos de aguas claras de diverso origen: formaciones rocosas (Escudo Guayanés)
• Ríos de aguas negras de origen selvático y de sabanas.
Esta clasiicación es pertinente para la cuenca porque se tiene inluencia de componentes andinos -vertiente oriental
de la cordillera Oriental -; de llanura - sabanas inundables
y altillanura - intrusiones del Escudo Guayanés -Serranía
de la Macarena y zonas transicionales con la Amazonia- y
selva alta. Esta conluencia propicia que además de los tres
tipos de aguas descritos se presenten aguas mixtas, múltiples mezclas, criterio que apoya la ordenación de cuencas y
facilita el análisis. La propuesta ajustada con lo descrito se
relaciona en la tabla 11.7.2.
Protocolo de modelación de ambientes acuáticos
En este componente se dan lineamientos generales sobre
las principales etapas y procedimientos para obtener el
mapa de ambientes acuáticos de la vertiente colombiana
de la Cuenca del río Orinoco. La propuesta se basa en los
Estándares de Predicción de Mapas de Ecosistemas elaborada por el “Resources Inventory Comité” - el RIC para los
años 1999 y 2000 y los protocolos de calidad y exactitud.
Meidinger, (2000, 2003) y el Manual 10: Inventario de Humedales. Ramsar Convention Bureau, 2003.
Alcance
Si se toman como referencia las etapas de la estructura guía
de planeación e inventario de Humedales propuesta por la
Convención Ramsar (2003), en esta propuesta se cumple
con los primeros siete (7) pasos, de la estructura para planear un inventario de humedales. No obstante, se pretende
que además de sentar las bases para la identiicación cartográica y posterior clasiicación de ambientes acuáticos,
sea insumo para la identiicación de prioridades de conservación en el eje de agua dulce para toda la cuenca del río
Orinoco. Bajo estas consideraciones y en concordancia con
el paso siete “Escoger un método apropiado”, se deine una
metodología basada en el uso de los sistemas de información geográica (datos espaciales) y su relación con el conocimiento de la ecología de los ambientes acuáticos, lo cual
permite generar mapas que cumplen con los propósitos
enunciados. De esta forma, las metodologías de predicción
EVALUACIÓN
Y OFERTA REGIONAL DE HUMEDALES DE LA ORINOQUIA: CONTRIBUCIÓN
A UN SISTEMA DE CLASIFICACIÓN DE AMBIENTES ACUÁTICOS
J. S. Usma.
ANDINA
ALTA MONTAÑA
PROVINCIAS
Tabla 11.7.2 Sistema de clasiicación propuesto para ambientes acuáticos, cuenca del Orinoco–Colombia.
SISTEMA
AMBIENTE
CIRCULACIÓN
SUBSISTEMA
ESTACIONALIDAD
CLASE
FISONOMÍA
SUBCLASE
TIPO AGUAS
ECOSISTEMA
REPRESENTATIVO
FLUVIAL
LÓTICO
PERMANENTE
HERBACEA
CLARAS
ARROYOS
PALUSTRE
LÉNTICO
PERMANENTE
HERBACEA /
ARBUSTIVA
CLARAS
PANTANOS
LACUSTRE
LÉNTICO
PERMANENTE
HERBACEA
CLARAS
LAGUNAS
FLUVIAL
LÓTICO
PERMANENTE
SIN
VEGETACIÓN
BLANCAS
RIO/
QUEBRADAS
Ríos Andinos de
Aguas Blancas
FLUVIAL
LÓTICO
PERMANENTE
SIN
VEGETACIÓN
CLARAS
RIO/
QUEBRADAS
Ríos Andinos de
Aguas Claras
FLUVIAL
LÓTICO
ESTACIONAL
SIN
VEGETACIÓN
CLARAS y
BLANCAS
QUEBRADAS /
ARROYOS /
CAÑOS
Quebradas Andinas
Estacionales de
Aguas Claras
LACUSTRE
LÉNTICO
PERMANENTE
EMERGENTE
CLARAS
LAGUNAS
Lagunas Andinas de
Aguas Claras
LACUSTRE
LÉNTICO
PERMANENTE
EMERGENTE
BLANCAS
LAGUNAS
Lagunas Andinas de
Aguas Blancas
PALUSTRE
LÉNTICO
PERMANENTE
ARBUSTIVO
BLANCAS
PANTANOS
Pantanos Andinos
Arbustivos de aguas
blancas
PALUSTRE
LÉNTICO
PERMANENTE
HERBACEO
BLANCAS
PANTANOS
Pantanos Andinos
Herbáceos de aguas
blancas
PERMANENTE
SIN
VEGETACIÓN
TERMALES
GEOTERMICO
NOMBRE
TIPOLOGÍA
Turberas
Andinas
ARTIFICIAL
LÉNTICO
PERMANENTE
HERBACEO
BLANCAS
CULTIVOS DE
ARROZ
ARTIFICIAL
LÉNTICO
PERMANENTE
SIN
VEGETACIÓN
BLANCAS
ESTANQUES
ACUICULTURA
Estanques de acuicultura
ARTIFICIAL
LÉNTICO
PERMANENTE
EMERGENTE
BLANCAS
EMBALSES
Embalses Andinos
con vegetación
emergente de aguas
blancas
ARTIFICIAL
LÉNTICO
PERMANENTE
SIN
VEGETACIÓN
BLANCAS
EMBALSES
Embalses Andinos
de aguas blancas
440
Cultivos de arroz
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
PROVINCIAS
C. Suárez.
SISTEMA
AMBIENTE
CIRCULACIÓN
SUBSISTEMA
ESTACIONALIDAD
CLASE
FISONOMÍA
SUBCLASE
TIPO AGUAS
ECOSISTEMA
REPRESENTATIVO
NOMBRE
TIPOLOGÍA
FLUVIAL
LÓTICO
PERMANENTE
SIN
VEGETACIÓN
BLANCAS
RIOS
Ríos de tierras bajas
de aguas blancas
BOSCOSO
NEGRAS,
BLANCAS
MIXTAS
RIOS/
QUEBRADAS
Bosques inundados
de aguas blancas
Bosques inundados
de aguas mixtas
Bosques inundados
de aguas negras
TIERRAS BAJAS
FLUVIAL
LÓTICO
PERMANENTE
FLUVIAL
LÓTICO
PERMANENTE
ARBUSTIVO
NEGRAS,
BLANCAS ?
MIXTAS
RIOS/
QUEBRADAS
Arbustales inundados de aguas blancas
Arbustales inundados de aguas mixtas
Arbustales inundados de aguas negras
FLUVIAL
LÓTICO
ESTACIONAL
SIN
VEGETACIÓN
NEGRAS
QUEBRADAS
Canos estacionales
de tierras bajas de
aguas negras
BOSCOSO
NEGRAS,
CLARAS,
MIXTAS
RIOS/
QUEBRADAS
Bosques inundables
de aguas negras
Bosques inundables
de aguas claras
Bosques inundables
de aguas mixtas
RIOS/
QUEBRADAS
Arbustales inundables de aguas negras
Arbustales inundables de aguas claras
Arbustales inundables de aguas mixtas
FLUVIAL
FLUVIAL
LÓTICO
LÓTICO
ESTACIONAL
ESTACIONAL
HERBACEO /
ARBUSTIVO
NEGRAS,
CLARAS,
MIXTAS
FLUVIAL
LÓTICO
ESTACIONAL
HERBACEO
BLANCAS,
MIXTAS
PLANICIES DE
INUNDACIÓN
Herbazales inundables en plano
de inundación de
aguas mixtas - vegas
cultivables
Herbazales inundables en plano de
inundación de aguas
blancas - vegas
cultivables
PALUSTRE
LÉNTICO
PERMANENTE
BOSCOSO
A NEGRAS
BOSQUES
PANTANOSOS
Bosques pantanosos
de aguas negras –
morichal
PERMANENTE
SIN
VEGETACIÓN
NEGRAS
BLANCAS
LAGUNAS DE
DESBORDE
Madreviejas de
aguas negras –
madreviejas de
aguas blancas
PALUSTRE
LÉNTICO
441
EVALUACIÓN
Y OFERTA REGIONAL DE HUMEDALES DE LA ORINOQUIA: CONTRIBUCIÓN
A UN SISTEMA DE CLASIFICACIÓN DE AMBIENTES ACUÁTICOS
TIERRAS BAJAS
PROVINCIAS
J. S. Usma.
SISTEMA
AMBIENTE
CIRCULACIÓN
SUBSISTEMA
ESTACIONALIDAD
CLASE
FISONOMÍA
SUBCLASE
TIPO AGUAS
ECOSISTEMA
REPRESENTATIVO
NOMBRE
TIPOLOGÍA
PALUSTRE
LÉNTICO
PERMANENTE
VEGETACIÓN
EMERGENTE
NEGRAS
BLANCAS
LAGUNAS DE
DESBORDE
Madreviejas con vegetación emergente
de aguas negras –
madreviejas con vegetación emergente
de aguas blancas
PALUSTRE
LÉNTICO
ESTACIONAL
ARBUSTIVO /
HERBACEO
NEGRAS
BLANCAS
ARBUSTALES y
HERBAZALES
PANTANOSOS
Sabanas inundables,
esteros y pantanos
Ámbito: incluye las provincias geográicas, propuesta Donato (1998); Ambiente: columna nueva donde se acoge propuesta del Sinchi, criterio circulación- hidrológica; Subsistema: se mantiene la estacionalidad en circulación propuesta por el grupo; Clase: se mantiene el criterio de isonomia;
Subclase: se mantiene el criterio de tipo de aguas, y se adiciona la categoría de mixtas propuesta por el Sinchi.
de mapas de ecosistemas del RIC constituyen el punto de
partida para el diseño del modelo a seguir.
de otro. Sin embargo, esta selección de variables puede ser
parcial a la escala actual y debe ser revisada para una escala de mayor o menor detalle. Estas variables deben ser
adquiridas, estandarizadas a formato ArcInfo, Arcview o
ArcGis georreferenciadas si fuera necesario, empalmadas y
documentadas.
Etapas
Se proponen nueve (9) etapas en el diseño de la metodología, las cuales han sido adaptadas al esquema general de
predicción de mapas de ecosistemas propuesto por RIC en
el documento Standards for predictive ecosystem mapping.
La igura 11.7.2, ilustra los aspectos relevantes tenidos en
cuenta: las etapas en general como las variables de modelación y los resultados de los procedimientos espaciales de
éstas.
•
Análisis de necesidades
El desarrollo metodológico se puede basar en el uso de
información digital secundaria, estandarizada bajo los
criterios propuestos para el caso especíico y así como el
procesamiento de variables físicas como insumo para la determinación del régimen hídrico.
Fisiografía
De acuerdo con lo discutido anteriormente se adapta
la clasiicación de provincias geográicas propuesta por
Donato (1998), sin embargo para su delimitación geográica se toman en cuenta aportes valiosos del estudio
ORAM “Paisajes Fisiográicos de la Orinoquía – Amazonia” (IGAC 1999), en donde se retoma la experiencia del mismo Instituto Geográico en temas acuáticos
(Duque et al. 1997) y la conceptualización de Villota
(1992) sobre la isiografía desde el punto de vista edafológico.
Otro punto de partida son los avances del Instituto de
Investigación de Recursos Biológicos Alexander von
Humboldt, en la deinición de unidades de paisaje en
el marco del diseño e implementación de un Sistema de
Indicadores de Seguimiento de la Política de Biodiversidad en la Amazonia Colombiana y la actualización del
mapa de ecosistemas terrestres para Andes y la Orinoquia, los cuales toman los elementos del paisaje como
base conceptual en estos ejercicios.
Para este caso, se propone usar para Colombia los estudios
ya realizados y publicados como ORAM (IGAC 1999), Zoniicación de aptitud Forestal (CONIF 2001), la cartografía base del NIMA, las imágenes de satélite sensor Landsat
ETM 7 y TM 5 y los insumos temáticos y mapa de ecosistemas terrestres de la Orinoquia Colombiana (Romero et
al. 2004).
Revisión de las variables de modelación
Las variables temáticas a tener presente o mapas de entrada, son aquellas, que mediante el sistema de clasiicación
propuesto, caracterizan y diferencian un ambiente acuático
•
442
Régimen hídrico
La estacionalidad o permanencia de los cuerpos de
agua es una de las variables que marcan los límites de
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Suárez.
Fisiografía
Régimen
hídrico
Vegetación
Suelos
hídricos
Análisis de
necesidades
Tipos de aguas
Revisión de las
variables de
modelación
Límites geográicos creados:
Nuevos polígonos
Ensamble de datos
Procedimientos SIG
Clasiicación inicial
Base de datos creada
Nuevos atributos
Colección de datos de campo
Análisis de resultados
y modiicaciones
Edición cartográica
Validación de la calidad
y exactitud
Informe y mapa inal
Figura 11.7.2 Etapas generales para la modelación del mapa de ambientes acuáticos. Modiicado y adaptado del Resources Inventary
Comité (1999). Generic PEM Process.
los ambientes acuáticos así como la vegetación que está
asociada a estos lugares. Con el in de conocer esta dinámica se sugiere utilizar modelos de inundación basado en el conocimiento del balance hídrico y la relación
del aumento del caudal con las formas del terreno, de
esta forma bajo un modelo cartográico se identiican
aquellas áreas que por causa del aumento en la altura
del nivel freático son cubiertas por agua.
•
Vegetación
Los insumos más importantes disponibles como información de referencia para este tema son el Mapa
de cobertura y uso actual de la tierra a escala 1:500.000
(IGAC 2000) y el estudio de Zoniicación de aptitud forestal para los departamentos de Meta, Vichada, Casanare y Arauca (CONIF op. cit.). En este mismo sentido
y en el marco del mapa de ecosistemas de la Orinoquia
el IAvH, posee mapas temáticos de vegetación a escala
1:200.000.
443
•
Suelos hídricos
El mapa de suelos de Colombia a escala 1:500.000
(IGAC 2000), proporciona información acerca de las
características de los suelos, el material y los componentes taxonómicos de los suelos entre otras características, lo que permite conocer aquellos suelos que están
dispuestos a regimenes hídricos.
•
Tipos de agua
El agua como fundamento en la estructura y dinámica
ecológica de los ecosistemas acuáticos constituye una
variable esencial en la comprensión de su complejidad
y diversidad. Sioli (1967), propone una clasiicación de
aguas en la Amazonia, clasiicación utilizada y aceptada
por especialistas en el tema, por tal motivo se considera
el tipo de agua como un factor importante. Se aplica
esta clasiicación a los principales cuerpos de agua de
acuerdo a la información disponible.
EVALUACIÓN
Y OFERTA REGIONAL DE HUMEDALES DE LA ORINOQUIA: CONTRIBUCIÓN
A UN SISTEMA DE CLASIFICACIÓN DE AMBIENTES ACUÁTICOS
J. S. Usma.
Ensamblaje de datos
Clasiicación inicial
La integración de variables se realiza bajo funciones propias para el manejo de datos espaciales. Los métodos usados para implementar estas funciones afectan tanto a las
operaciones en sí como a los datos de entrada (Aronof
1989), por lo tanto se busca la menor redundancia en los
atributos de tal forma que se puedan clasiicar y por ende
representar una verdadera proyección de la realidad.
La clasiicación inicial es producto del ensamblaje de los
criterios seleccionados bajo elementos cartograiables y la
veriicación con imágenes de satélite tanto de temporada
de invierno como de verano, guardando las premisas del
sistema de clasiicación tanto en sus criterios cardinales
como de base de datos asociada a los elementos geográicos
(igura 11.7.3). Una vez se posean cada una de las unidades
debidamente clasiicadas se realiza un proceso de homogenización, generalización y suavizado de la información
espacial.
El Instituto de Investigaciones de Recursos Biológicos
Alexander von Humboldt, en el marco de la elaboración de
los mapas de ecosistemas de Andes y de la cuenca del Orinoco colombiano, ha aplicado procedimientos metodológicos de integración, generalización y suavizado de variables
espaciales para la generación de mapas que de igual manera
se han aplicado en la cartografía de ecosistemas a escala nacional IDEAM, IGAC, IAvH, Invemar, Sinchi e IIAP (2007).
Se revisa que las unidades espaciales cumplan con el área
mínima cartograiable para la escala seleccionada y se lleva
a cabo la selección de acuerdo a los criterios primarios de
la clasiicación.
Criterio 1
Criterio 2
Integración
1y2
Eliminación de polígonos
Escala cartográica
Veriicación
Generalización selectiva
Claves dominantes
Veriicación
campo
Clasiicación inicial
Figura 11.7.3 Procesamiento metodológico de información.
444
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Suárez.
Recolección de datos de campo
Parte de la calidad y exactitud del mapa, se debe a la corroboración y levantamiento de la información en campo.
Esto permite hacer cambios en aquellas áreas donde la información no es consistente con lo existente en la realidad.
Las visitas a zonas con incertidumbre en su clasiicación
permiten hacer los ajustes tanto en los límites geométricos
del componente espacial, como también cambios en los
atributos asociado a los objetos geográicos.
Análisis de resultados y modiicaciones
Se efectúa una revisión de los datos de campo con la clasiicación inicial realizada. En este momento se hacen todos
los cambios de atributos, basándose en la combinación de
atributos asociados de las diferentes unidades cartograiadas y la información colectada en las visitas de campo.
Estándares de metadatos
El desarrollo de la Infraestructura Colombiana de Datos
Espaciales (ICDE), conformada por una serie de organizaciones en cabeza del IGAC ha avanzado en la estandarización de datos espaciales permitiendo obtener información
acerca del estado y origen de los mismos, (IGAC 1999). De
conformidad con esta iniciativa nacional de metadata, todas las entidades en este modelo tanto de entrada como de
salida, llevarán metadatos que cumplan con el nivel de conformidad 1 de acuerdo al ICONTEC.
CONCLUSIONES y
RECOMENDACIONES
Del análisis de diferentes propuestas de clasiicación de humedales en el mundo, se establece la necesidad fundamental de adaptarlas a las características geográicas de cada
zona, debido a las particularidades de cada una de ellas y en
especial a la gran dimensión de los ambientes acuáticos en
algunas áreas, como es el caso de la cuenca del Orinoco. En
este sentido, la aproximación limnológica de tipos de agua
constituye un elemento interesante para separar y distinguir algunos cuerpos de agua.
El sistema de clasiicación propuesto a escala 1:500.000, recoge los principios jerárquicos de las propuestas de clasiicación internacionales, mantiene su correspondencia con
la propuesta nacional, la propuesta de Venezuela y es un
sistema replicable. Sin embargo, su aplicación debe ser actualizada con la coniguración y presencia de aspectos dominantes como la vegetación y aspectos limnológicos de
los ambientes objeto de estudio. Un avance importante en
la elaboración del modelo cartográico de ambientes acuáticos de la Orinoquia es el modelo de inundación porque
facilita la identiicación de ambientes acuáticos especialmente en las áreas temporalmente inundables, y posibilita
comparar las dinámicas de inundación, entre años.
La selección de las variables isiografía, régimen hídrico,
vegetación, suelos hídricos, tipos de agua, puede ser parcial
a la escala actual - 1:500.000 - y debe ser revisada para una
escala de mayor o menor detalle.
Se hace prioritario hacer una integración de modelos cartográicos de ecosistemas acuáticos como este que se propone, con los modelos cartográicos para ecosistemas terrestres, para la cuenca del Orinoco. Se sugiere construir una
agenda de trabajo con entes nacionales como el Instituto
Alexander von Humboldt, IGAC y organismos regionales,
y ajustar la propuesta idealmente a una escala 1:100.000.
445
EVALUACIÓN
Y OFERTA REGIONAL DE HUMEDALES DE LA ORINOQUIA: CONTRIBUCIÓN
A UN SISTEMA DE CLASIFICACIÓN DE AMBIENTES ACUÁTICOS
J. S. Usma.
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Llanero cruzando ganado, Casanare. Foto: A. Navas.
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
ANEXOS
Anexo 1.
Sanoja, E., W. Diaz, J. Rosales y P. Rodriguez. 2010. Lista de especies de la Orinoquia Guayanesa seleccionadas siguiendo el
criterio de subcuencas del Orinoco de la lora de la Guayana Venezolana.
El presente listado se realizó a partir de la selección de las especies de postomos 1 al 9 de Steyermark et al. (1995-2005) que están incluidas solo en la
Orinoquia Guayanesa, sin considerar las cuencas que drenan al río Amazonas o al Esequibo. Indican una riqueza de 8.273 especies de plantas con
996 especies endémicas (Sanoja et al. en preparación). Si bien es necesario reconocer que existen adiciones posteriores a la publicación utilizada, así
como cambios por sinonimia, los datos generales presentados pueden considerarse representativos de la Orinoquia Guayanesa y se concluye que
representa más del 50% de la lora del país.
I. PTERIDOPHYTA
Blechnum stipitellatum (Sodiro) C. Chr.
ASPLENIACEAE
Blechnum violaceum (Fée) C. Chr.
Asplenium angustum Sw.
Salpichlaena hookeriana (Kuntze) Alston
Asplenium auritum Sw.
Salpichlaena volubilis (KaulF.) J. Sm.
Asplenium chimantae A.R. Sm.
CYATHEACEAE
Asplenium cirrhatum Rich. ex Willd.
Alsophila imrayana (Hook.) D.S. Conant
Asplenium claussenii Hieron
C. spectabilis var. spectabilis
Asplenium cowanii A.R. Sm.
Cyathea andina (H. Karst.) Domin.
Asplenium cristatum Lam.
Cyathea bipinnatiida (Baker) Domin.
Asplenium cuneatum Lam.
Cyathea caracasana (Klotzsch) Domin.
Asplenium cuspidatum Lam.
Cyathea cyatheoides (Desv.) K.U. Kramer
Asplenium delitescens (Maxon) L.D. Gómez
Cyathea cyclodium (R.M. Tryon) Lellinger
Asplenium dissectum Sw.
Cyathea delgadii Sternb.
Asplenium feei Kunze ex Fée
Cyathea demissa (C.V. Morton) A.R. Sm. ex Lellinger
Asplenium labellulatum Kunze
Cyathea dissimilis (C.V. Morton) Stolze
Asplenium formosum Willd.
C. divergens var. divergens
Asplenium juglandifolium Lam.
Cyathea fulva (M. Martens y Galeotti) Fée
Asplenium laetum Sw.
Cyathea intramarginalis (P.G. Windisch) Lellinger
Asplenium pearcei Baker
Cyathea kalbreyeri (Baker) Domin
Asplenium pteropus KaulF.
Cyathea lasiosora (Kuhn) Domin
Asplenium pumilum Sw.
Cyathea lechleri Mett.
Asplenium radicans L.
Cyathea liesneri A.R. Sm.
Asplenium salicifolium L.
Cyathea macrocarpa (C. Presl) Domin
Asplenium serra Langsd. y Fisch.
C. macrosora var. macrosora
Asplenium serratum L.
C. macrosora var. reginae (P.G. Windisch) A.R. Sm.
Asplenium zamiifolium Willd.
Cyathea marginalis (Klotzsch) Domin
AZOLLACEAE
Cyathea microdonta (Desv.) Domin
Azolla caroliniana Willd.
Cyathea neblinae A.R. Sm.
BLECHNACEAE
Cyathea platylepis (Hook.) Domin
Blechnum asplenioides Sw.
Cyathea praeceps A.R. Sm.
Blechnum atropurpureum A.R. Sm. Endémico.
Cyathea pungens (Willd.) Domin
Blechnum auratum (Fée) R.M. Tryon y Stolze
Cyathea simplex R.M. Tryon
Blechnum binervatum (Poir.) C.V. Morton y Lellinger
Cyathea sipapoensis (R.M. Tryon) Lellinger
Blechnum brasiliense Desv.
Cyathea steyermarkii R.M. Tryon
Blechnum lehmannii Hieron.
Cyathea surinamensis (Miq.) Domin
Blechnum occidentale L.
Cyathea ulei (H. Christ) Domin
Blechnum schomburgkii (Klotzsch) C. Chr.
Cyathea villosa Willd.
Blechnum serrulatum Rich.
Cyathea williamsii (Maxon) Domin
449
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
DAVALLIACEAE
Bolbitis semipinnatiida (Fée) Alston
Nephrolepis biserrata (Sw.) Schott
Bolbitis serratifolia (Mert. ex KaulF.) Schott
Nephrolepis pectinata (Willd.) Schott
Cyclodium calophyllum (C.V. Morton) A.R. Sm.
Nephrolepis pendula (Raddi) J. Sm.
Cyclodium guianense (Klotzsch) van der Werf ex L.D. Gómez
Nephrolepis rivularis (Vahl) Mett. ex Krug.
Cyclodium inerme (Fée) A.R. Sm.
DENNSTAEDTIACEAE
Cyclodium meniscioides var. meniscioides
Blotiella lindeniana (Hook.) R.M. Tryon
Cyclodium varians (Fée) A.R. Sm.
Dennstaedtia bipinnata (Cav.) Maxon
Cyclopeltis semicordata (Sw.) J. Sm.
Dennstaedtia dissecta (Sw.) T. Moore
Didymochlaena truncatula (Sw.) J. Sm.
Histiopteris incisa (hunb.) J. Sm.
Diplazium centripetale (Baker) Maxon
Hypolepis viscosa Mett.
Diplazium cristatum (Desr.) Alston
Lindsaea arcuata Kunze
Diplazium grandifolium (Sw.) Sw.
Lindsaea cultriformis K.U. Kramer
Diplazium hians Kunze ex Klotzsch
Lindsaea cyclophylla K.U. Kramer
Diplazium lechleri (Mett.) T. Moore
Lindsaea divaricata Klotzsch
Diplazium plantaginifolium (L.) Urb.
Lindsaea dubia Spreng.
Diplazium roraimense Cremers y K.U. Kramer
Lindsaea guianensis subsp. guianensis
Diplazium wilsonii (Baker) Diels
Lindsaea hemiptera K.U. Kramer
Elaphoglossum acrocarpum (Mart.) T. Moore
Lindsaea javitensis Humb. y Bonpl. ex Willd
Elaphoglossum andicola (Fée) T. Moore
Lindsaea klotzschiana Moritz ex Ettingsh.
Elaphoglossum antioquianum Hieron.
Lindsaea lancea (Kunze) K.U. Kramer
Elaphoglossum auricomum (Kunze) T. Moore
Lindsaea mesarum K.U. Kramer
Elaphoglossum brachyneuron (Fée) J. Sm.
Lindsaea pallida Klotzsch
Elaphoglossum crispatum var. crispatum
Lindsaea parkeri subsp. parkeri
Elaphoglossum cuspidatum (Willd.) T. Moore
L. parkeri subsp. steyermarkiana K.U. Kramer
Elaphoglossum decoratum (Kunze) T. Moore
Lindsaea pendula Klotzsch
Elaphoglossum discolor (Kuhn) C. Chr.
Lindsaea pleioptera K.U. Kramer
Elaphoglossum dolichopus Mickel
Lindsaea portoricensis Desv.
Elaphoglossum erinaceum (Fée) T. Moore
Lindsaea reniformis Dryand.
Elaphoglossum laccidum (Fée) T. Moore
Lindsaea rigidiuscula Lindm.
Elaphoglossum loccosum Mickel
Lindsaea sagittata (Aubl.) Dryand.
Elaphoglossum glabellum J. Sm.
Lindsaea schomburgkii Klotzsch
Elaphoglossum hayesii (Mett. ex Kuhn) Maxon
Lindsaea semilunata (C. Chr.) C. Chr.
Elaphoglossum herminieri (Bory y Fée ex Fée) T. Moore
Lindsaea stricta var. jamesoniiformis K.U. Kramer.
Elaphoglossum hofmannii (Mett. ex Kuhn) H. Christ
L. stricta var. parvula (Fée) K.U. Kramer.
Elaphoglossum incubus Mickel
Lindsaea taeniata K.U. Kramer
Elaphoglossum laminarioides (Bory ex Fée) T. Moore
Lindsaea tenuis Klotzsch
Elaphoglossum langsdorii (Hook. y Grev.) T. Moore
Lindsaea tetraptera K.U. Kramer
Elaphoglossum longicaudatum Mickel
Lindsaea ulei Hieron. in H. Christ
Elaphoglossum luridum (Fée) H. Christ
Paesia acclivis (Kunze) Kuhn
Elaphoglossum macrophyllum (Mett. ex Kuhn) H. Christ
Pteridium arachnoideum (KaulF.) Maxon
Elaphoglossum maguirei Mickel
Pteridium caudatum (L.) Maxon
Elaphoglossum meridense (Klotzsch) T. Moore
Saccoloma domingense (Spreng.) C. Chr.
Elaphoglossum nigrescens (Hook.) T. Moore ex Diels
Saccoloma elegans KaulF.
Elaphoglossum obovatum Mickel
Saccoloma inaequale (Kunze) Mett.
Elaphoglossum paleaceum (Hook. y Grev.) Sledge
DICKSONIACEAE
Elaphoglossum parvulum Mickel
Culcita coniifolia (Hook.) Maxon
Elaphoglossum peltatum (Sw.) Urb.
DRYOPTERIDACEAE
Elaphoglossum piloselloides (C. Presl) T. Moore
Arachniodes denticulata (Sw.) Ching
Elaphoglossum plumosum (Fée) T. Moore
Arachniodes leucostegioides (C. Chr.) Ching
Elaphoglossum polyblepharum Mickel
Arachniodes macrostegia (Hook.) R.M. Tryon y D.S. Conant
Elaphoglossum praetermissum Mickel
Arachniodes ochropteroides (Baker) Lellinger
Elaphoglossum productum Rosenst.
Bolbitis nicotianifolia (Sw.) Alston
Elaphoglossum pteropus C. Chr.
Bolbitis portoricensis (Spreng.) Hennipman
Elaphoglossum raywaense (Jenman) Alston
450
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Elaphoglossum sporadolepis (Kunze ex Kuhn) T. Moore ex C. Chr.
Ceradenia kalbreyeri (Baker) L.E. Bishop
Elaphoglossum squarrosum (Klotzsch) T. Moore
Ceradenia kookenamae (Jenman) L.E. Bishop
Elaphoglossum steyermarkii Mickel
Ceradenia microcystis L.E. Bishop y A.R. Sm.
Elaphoglossum styriacum Mickel
Ceradenia pruinosa (Maxon) L.E. Bishop
Elaphoglossum succubus Mickel
Ceradenia spixiana (Mart. ex Mett.) L.E. Bishop
Elaphoglossum tantalinum Mickel
Cochlidium attenuatum A.C. Sm.
Elaphoglossum tectum (Humb. y Bonpl. ex Willd.) T. Moore
Cochlidium connellii (Baker ex C.H. Wright) A.C. Sm.
Elaphoglossum tovarense (Mett. ex Kuhn) T. Moore ex C. Chr.
Cochlidium furcatum (Hook. y Grev.) C. Chr.
Elaphoglossum vanderwerii Mickel
Cochlidium linearifolium (Desv.) Maxon ex C. Chr.
Elaphoglossum wurdackii Vareschi
Cochlidium serrulatum (Sw.) L.E. Bishop
Elaphoglossum xiphoides Mickel
Cochlidium tepuiense (A.C. Sm.) L.E. Bishop
Elaphoglossum zosteriformis Mickel
Cochlidium wurdackii L.E. Bishop
Hemidictyum marginatum (L.) C. Presl
Enterosora campbellii subsp. campbellii
Lastreopsis amplissima (C. Presl) Tindale
Enterosora parietina (Klotzsch) L.E. Bishop
L. efusa subsp. divergens (Willd.) Tindale
Enterosora trifurcata (L.) L.E. Bishop
Lomagramma guianensis (Aubl.) Ching
Grammitis anfractuosa (Kunze ex Klotzsch) Proctor
Lomariopsis fendleri D.C. Eaton
Grammitis apiculata (Kunze ex Klotzsch) F. Seym.
Lomariopsis japurensis (Mart.) J. Sm.
Grammitis asplenifolia (L.) Proctor
Megalastrum crenulans (Fée) A.R. Sm. y R.C. Moran
Grammitis blanchetii (C. Chr.) A.R. Sm.
Megalastrum subincisum (Willd.) A.R. Sm. y R.C. Moran
Grammitis bryophila (Maxon) F. Seym.
Oleandra articulata (Sw.) C. Presl
Grammitis caucana (Hieron.) C.V. Morton
Oleandra duidae A.C. Sm.
Grammitis cultrata (Bory ex Willd.) Proctor
Oleandra pilosa Hook.
Grammitis labelliformis (Poir.) C.V. Morton
Olfersia cervina (L.) Kunze
Grammitis liesneri A.R. Sm.
Polybotrya caudata Kunze
Grammitis limula (H. Christ) L.D. Gómez
Polybotrya sessilisora R.C. Moran
Grammitis af. major (Copel.) C.V. Morton
Polybotrya sorbifolia Mett. ex Kuhn
Grammitis melanosticta (Kunze) F. Seym.
Polystichum platyphyllum (Willd.) C. Presl
Grammitis mollissima (Fée) Proctor
Polystichum sp. A.
Grammitis moniliformis (Lag. ex Sw.) Proctor
Stigmatopteris longicaudata (Liebm.) C. Chr.
Grammitis myosuroides (Sw.) Sw.
Tectaria incisa Cav.
Grammitis paramicola L.E. Bishop
Tectaria lizarzaburui (Sodiro) C. Chr.
Grammitis peritimundi L.E. Bishop y A.R. Sm.
Tectaria plantaginea var. macrocarpa (Fée) C.V. Morton.
Grammitis plicata A.R. Sm.
T. plantaginea var. plantaginea
Grammitis sinuosa A.R. Sm.
Tectaria trifoliata (L.) Cav.
Grammitis staheliana (Posth.) Lellinger
Tectaria trinitensis Maxon
Grammitis subsessilis (Baker) C.V. Morton
Triplophyllum dicksonioides (Fée) Holttum
Grammitis suspensa (L.) Proctor
Triplophyllum funestum (Kunze) Holttum
Grammitis taenifolia (Jenman) Proctor
GLEICHENIACEAE
Grammitis taxifolia (L.) Proctor
Dicranopteris lexuosa (Schrad.) Underw.
Grammitis tegetiformis L.E. Bishop
Dicranopteris pectinata (Willd.) Underw.
Grammitis tenuicula (Fée) Proctor
Dicranopteris schomburgkiana (J.W. Sturm) C.V. Morton
Grammitis truncicola (Klotzsch) C.V. Morton
Sticherus biidus (Willd.) Ching
Grammitis xanthotrichia (Klotzsch) Duek y Lellinger
Sticherus pallescens (Mett.) Vareschi
Grammitis xiphopteroides (Liebm.) A.R. Sm.
Sticherus pennigera (Mart.) Copel.
Zygophlebia sectifrons (Kunze ex Mett.) L.E. Bishop
Sticherus remotus (KaulF.) Chrysler
HYMENOPHYLLACEAE
Sticherus revolutus (H.B.K.) Ching
Hymenophyllum angustum Bosch
Sticherus tepuiensis A.R. Sm.
Hymenophyllum apiculatum Mett. ex Kuhn
Sticherus sp. A
Hymenophyllum asplenioides (Sw.) Sw.
GRAMMITIDACEAE
Hymenophyllum axillare Sw.
Ceradenia arthrothrix L.E. Bishop y A.R. Sm.
Hymenophyllum brevifrons Kunze
Ceradenia capillaris (Desv.) L.E. Bishop
Hymenophyllum dependens C.V. Morton
Ceradenia discolor (Hook.) L.E. Bishop
Hymenophyllum elegans Spreng.
Ceradenia jungermannioides (Klotzsch) L.E. Bishop
Hymenophyllum fendlerianum J.W. Sturm
451
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Hymenophyllum fucoides (Sw.) Sw.
Trichomanes sprucei Baker
Hymenophyllum hirsutum (L.) Sw.
Trichomanes steyermarkii P.G. Windisch y A.R. Sm.
Hymenophyllum karstenianum J.W. Sturm
Trichomanes tanaicum Hook. ex J.W. Sturm
Hymenophyllum lehmannii Hieron.
Trichomanes trollii Bergdolt
Hymenophyllum lindenii Hook.
Trichomanes tuerckheimii H. Christ
Hymenophyllum microcarpum Desv.
Trichomanes vandenboschii P.G. Windisch
Hymenophyllum nanostellatum Lellinger
Trichomanes vittaria DC. ex Poir.
Hymenophyllum plumieri Hook. y Grev.
Trichomanes windischianum Lellinger
Hymenophyllum polyanthos (Sw.) Sw.
HYMENOPHYLLOPSIDACEAE
Hymenophyllum roraimense C.V. Morton
Hymenophyllopsis asplenioides A.C. Sm.
Hymenophyllum trichomanoides Bosch
Hymenophyllopsis ctenitoides Lellinger
Hymenophyllum trichophyllum H.B.K.
Hymenophyllopsis dejecta (Baker) Goebel
Hymenophyllum undulatum (Sw.) Sw.
Hymenophyllopsis hymenophylloides L.D. Gómez
Hymenophyllum valvatum Hook. y Grev.
Hymenophyllopsis incognita Lellinger
Hymenophyllum sp. A
Hymenophyllopsis steyermarkii Vareschi
Hymenophyllum sp. B
Hymenophyllopsis universitatis Vareschi
Trichomanes accedens C. Presl
ISOETACEAE
Trichomanes ankersii C. Parker ex Hook. y Grev.
Isoëtes killipii C.V. Morton
Trichomanes anomalum Maxon y C.V. Morton
Isoëtes triangula U. Weber
Trichomanes arbuscula Desv.
Isoëtes vermiculata Hickey
Trichomanes bicorne Hook.
LYCOPODIACEAE
Trichomanes capillaceum L.
Huperzia beitelii B. Øllg.
Trichomanes cellulosum Klotzsch
Huperzia capillaris (Sodiro) Holub
Trichomanes crinitum Sw.
Huperzia dichotoma (Jacq.) Trevis.
Trichomanes crispum L.
Huperzia hippuridea (H. Christ) Holub
Trichomanes cristatum Kaulf.
Huperzia huberi B. Øllg.
Trichomanes dactylites Sodiro
Huperzia killipii (Herter) B. Øllg.
Trichomanes diaphanum H.B.K.
H. linifolia var. jenmanii (Underw. y F.E. Lloyd) B. Øllg. y P.G. Windisch
Trichomanes diversifrons (Bory) Mett. ex Sadeb.
H. linifolia var. linifolia
Trichomanes egleri P.G. Windisch
Huperzia recurvifolia Rolleri
Trichomanes ekmanii Wess.
Huperzia relexa (Lam.) Trevis.
Trichomanes elegans Rich
Huperzia robusta (Klotzsch) Holub
Trichomanes imbriatum Backh. ex T. Moore
Huperzia taxifolia (Sw.) Trevis.
Trichomanes guidoi P.G. Windisch
Huperzia wilsonii (Underw. y F.E. Lloyd) B. Øllg.
Trichomanes hostmannianum (Klotzsch) Kunze
Lycopodiella alopecuroides (L.) Cranill
Trichomanes humboldtii (Bosch) Lellinger
Lycopodiella camporum B. Øllg. y P.G. Windisch
Trichomanes hymenophylloides Bosch
Trichomanes kapplerianum J.W. Sturm
L. caroliniana var. meridionalis (Underw. y F.E. Lloyd) B. Øllg. y P.G. Windisch
Trichomanes krausii Hook. y Grev.
L. caroliniana var. paradoxa (Mart.) B. Øllg. y P.G. Windisch
Trichomanes lucens Sw.
Lycopodiella cernua (L.) Pic. Serm.
Trichomanes macilentum Bosch
Lycopodiella contexta (Mart.) Holub
Trichomanes martiusii C. Presl
Lycopodiella iuliformis var. iuliformis.
Trichomanes membranaceum L.
L.iuliformis var. tatei (A.C. Sm.) B. Øllg.
Trichomanes ovale (E. Fourn.) Wess.
Lycopodiella riofrioi (Sodiro) B. Øllg.
Trichomanes pedicellatum Desv.
Lycopodiella steyermarkii B. Øllg.
Trichomanes pellucens Kunze
L. clavatum subsp. clavatum
Trichomanes pinnatum Hedw.
Lycopodium jussiaei Desv. ex Poir.
Trichomanes polypodioides L.
MARATTIACEAE
Trichomanes punctatum subsp. labiatum (Jenman) Wess
Danaea elliptica Sm. in Rees
Trichomanes radicans Sw.
Danaea moritziana C. Presl
Trichomanes rigidum Sw.
Danaea simplicifolia Rudge
Trichomanes robustum E. Fourn.
Danaea trifoliata Rchb. ex Kunze
Trichomanes roraimense Jenman
Marattia laevis Sm.
Trichomanes spruceanum Hook.
MARSILEACEAE
452
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Marsilea polycarpa Hook. y Grev.
Polypodium wagneri Mett.
METAXYACEAE
PSILOTACEAE
Metaxya rostrata (H.B.K.) C. Presl
Psilotum nudum (L.) P. Beauv.
OPHIOGLOSSACEAE
PTERIDACEAE
Ophioglossum palmatum L.
Acrostichum aureum L.
OSMUNDACEAE
Adiantopsis radiata (L.) Fée
Osmunda cinnamomea L.
Adiantum amazonicum A.R. Sm.
Osmunda regalis L.
Adiantum cajennense Willd. ex Klotzsch
PARKERIACEAE
Adiantum concinnum Humb. y Bonpl. ex Willd.
Ceratopteris pteridoides (Hook.) Hieron.
Adiantum delectens Mart.
Ceratopteris thalictroides (L.) Brongn.
Adiantum dolosum Kunze
PLAGIOGYRIACEAE
Adiantum fuliginosum Fée
Plagiogyria semicordata (C. Presl) H. Christ
Adiantum humile Kunze
POLYPODIACEAE
Adiantum latifolium Lam.
Campyloneurum amphostenon (Kunze ex Klotzsch) Fée
Adiantum leprieurii Hook.
Campyloneurum coarctatum (Kunze) Fée
Adiantum lucidum (Cav.) Sw.
Campyloneurum phyllitidis (L.) C. Presl
Adiantum lunulatum Burm. F.
Campyloneurum repens (Aubl.) C. Pres
Adiantum macrophyllum Sw.
Campyloneurum wurdackii B. León
Adiantum nudum A.R. Sm.
Dicranoglossum desvauxii (Klotzsch) Proctor
Adiantum obliquum Willd.
Microgramma baldwinii Brade
Adiantum petiolatum Desv.
Microgramma fuscopunctata (Hook.) Vareschi
Adiantum phyllitidis J. Sm.
Microgramma lycopodioides (L.) Copel.
Adiantum pulverulentum L.
Microgramma megalophylla (Desv.) de la Sota
Adiantum serratodentatum Willd.
Microgramma percussa (Cav.) de la Sota
Adiantum terminatum Kunze ex Miq.
Microgramma persicariifolia (Schrad.) C. Presl
Adiantum tetraphyllum Humb. y Bonpl. ex Willd.
Microgramma reptans (Cav.) A.R. Sm.
Adiantum tomentosum Klotzsch
Microgramma tecta (KaulF.) Alston
Cassebeera pinnata KaulF.
Microgramma thurnii (Baker) R.M. Tryon y Stolze
Cheilanthes bonariensis (Willd.) Proctor
Niphidium crassifolium (L.) Lellinger
Cheilanthes concolor (Langsd. y Fisch.) R.M. Tryon y A.F. Tryon
P. camptophyllaria var. lachnifera (Hieron.) Lellinger
Cheilanthes eriophora (Fée) Mett.
Pecluma dispersa (A.M. Evans) M.G. Price
Doryopteris conformis K.U. Kramer y R.M. Tryon
Pecluma hygrometrica (Splitg.) M.G. Price
Doryopteris davidsei A.R. Sm.
Pecluma pectinata (L.) M.G. Price
Doryopteris lomariacea Kunze ex Klotzsch
Pecluma plumula (Humb. y Bonpl. ex Willd.) M.G. Price
Doryopteris pedata var. palmata (Willd.) Hicken
Pecluma ptilodon var. pilosa (A.M. Evans) Stolze
Doryopteris rediviva Fée
Pleopeltis astrolepis (Liebm.) E. Fourn.
Doryopteris sagittifolia (Raddi) J. Sm.
Pleopeltis macrocarpa (Bory ex Willd.) KaulF.
E. lexuosus var. lexuosus
Pleopeltis repanda A.R. Sm.
E. hispidulus var. hispidulus
Polypodium attenuatum Humb. y Bonpl. ex Willd.
Eriosorus paucifolius (A.C. Sm.) Vareschi
Polypodium aturense Maury
Hemionitis rufa (L.) Sw.
Polypodium aureum L.
Pityrogramma calomelanos (L.) Link
Polypodium bombycinum Maxon
Pityrogramma ebenea (L.) Proctor
Polypodium caceresii Sodiro
Pityrogramma trifoliata (L.) R.M. Tryon
Polypodium decumanum Willd.
Pteris altissima Poir. in Lam.
Polypodium fraxinifolium Jacq.
Pteris pearcei Baker
Polypodium funckii Mett.
teris propinqua J. Agardh
Polypodium levigatum Cav.
Pteris pungens Willd.,
P. polypodioides var. burchellii (Baker) Weath.
Pteris quadriaurita Retz.
Polypodium pseudoaureum Cav.
Pteris tripartita Sw.
Polypodium sessilifolium Desv.
Pterozonium brevifrons (A.C. Sm.) Lellinger
Polypodium sororium Humb. y Bonpl. ex Willd.
Pterozonium cyclophyllum (Baker) Diels in Engl. y Prantl
Polypodium thyssanolepis A. Braun ex Klotzsch
Pterozonium cyclosorum A.C. Sm. in Gleason
Polypodium triseriale Sw.
Pterozonium elaphoglossoides (Baker) Lellinger,
453
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Pterozonium lineare Lellinger,
Selaginella palmiformis Alston ex Crabbe y Jermy
Pterozonium paraphysatum (A.C. Sm.) Lellinger
Selaginella parkeri (Hook. y Grev.) Spring
Pterozonium reniforme (Mart.) Fée
Selaginella porelloides (Lam.) Spring
Pterozonium retrolexum Mickel
Selaginella porphyrospora A. Braun
Pterozonium scopulinum Lellinger
Selaginella potaroensis Jenman
Pterozonium spectabile Maxon y A.C. Sm.,
Selaginella producta Baker
Pterozonium steyermarkii Vareschi,
Selaginella pubens A.R. Sm.
Pterozonium tatei A.C. Sm.,
Selaginella revoluta Baker
Pterozonium terrestre Lellinger
Selaginella roraimensis Baker
SALVINIACEAE
Selaginella scalariformis A.C. Sm.
Salvinia auriculata Aubl.
Selaginella smithiorum Valdespino
SCHIZAEACEAE
Selaginella sobolifera A.R. Sm.
Actinostachys pennula (Sw.) Hook.
Selaginella substipitata Spring
Actinostachys subtrijuga (Mart.) C. Presl
Selaginella terezoana Bautista
Anemia ayacuchensis Mickel,
Selaginella thysanophylla A.R. Sm.
Anemia buniifolia (Gardner) T. Moore,
Selaginella tuberculata Spruce ex Baker
Anemia ferruginea var. ferruginea
Selaginella tyleri A.C. Sm.,
Anemia millefolia (Gardner) C. Presl,
Selaginella umbrosa Lem. ex Hieron.
Anemia oblongifolia (Cav.) Sw.
Selaginella valdepilosa Baker
Anemia pastinacaria Moritz ex Prantl,
Selaginella vernicosa Baker
Anemia porrecta Mickel
Selaginella versatilis A.R. Sm.
Anemia villosa Humb. y Bonpl. ex Willd.
Selaginella wurdackii Alston
Lygodium venustum Sw.
THELYPTERIDACEAE
Lygodium volubile Sw.,
helypteris abrupta (Desv.) Proctor
Schizaea elegans (Vahl) Sw.
helypteris angustifolia (Willd.) Proctor
Schizaea luminensis Miers ex J.W. Sturm
helypteris arborea (Brause) A.R. Sm.
Schizaea incurvata Schkuhr
helypteris arborescens (Humb. y Bonpl. ex Willd.) C.V. Morton,
Schizaea poeppigiana J.W. Sturm in Mart.
helypteris binervata A.R. Sm.
Schizaea sprucei Hook.
helypteris chrysodioides var. goyazensis (Maxon y C.V. Morton) C.V. Morton
Schizaea stricta Lellinger
helypteris decussata var. decussata
SELAGINELLACEAE
helypteris delexa (C. Presl) R.M. Tryon
Selaginella albolineata A.R. Sm.
helypteris demerarana (Baker) C.F. Reed
Selaginella amazonica Spring in Mart.
helypteris hispidula (Decne.) C.F. Reed
Selaginella anaclasta Alston ex Crabbe y Jermy
helypteris interrupta (Willd.) K. Iwats
Selaginella applanata A. Braun
helypteris leprieurii var. leprieurii
Selaginella arrecta A.R. Sm.
helypteris nesiotica (Maxon y C.V. Morton) C.V. Morton,
Selaginella asperula Spring in Mart.
helypteris opposita (Vahl) Ching
Selaginella brevifolia Baker
helypteris opulenta (KaulF.) Fosberg
Selaginella breynii Spring in Mart.
helypteris pennata (Poir.) C.V. Morton
Selaginella cabrerensis Hieron.
helypteris rolandii (C. Chr.) R.M. Tryon
Selaginella calceolata Jermy y J.M. Rankin
helypteris roraimensis (Baker) C.F. Reed
Selaginella cladorrhizans A. Braun
helypteris serrata (Cav.) Alston
Selaginella coarctata Spring in Mart.
helypteris tetragona (Sw.) Small
Selaginella convoluta (Arn.) Spring
helypteris tristis (Kunze) R.M. Tryon
Selaginella cyclophylla A.R. Sm
VITTARIACEAE
Selaginella epirrhizos Spring
Anetium citrifolium (L.) Splitg.
Selaginella lagellata Spring
Antrophyum cajenense (Desv.) Spreng.
Selaginella fragilis A. Braun
Antrophyum guayanense Hieron.
Selaginella hirsuta Alston ex Crabbe y Jermy
Antrophyum ophioglossoides Lellinger
Selaginella humboldtiana A. Braun
Hecistopteris pumila (Spreng.) J. Sm.
Selaginella kunzeana A. Braun
Vittaria costata Kunze
Selaginella marahuacae A.R. Sm.
Vittaria gardneriana Fée
Selaginella marginata (Humb. y Bonpl. ex Willd.)
Vittaria graminifolia KaulF.
Selaginella microdonta A.C. Sm.
Vittaria lineata (L.) Sm.
454
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Vittaria remota Fée
Ruellia steyermarkii Wassh.
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
Ruellia tuberosa L.
ACANTHACEAE
Ruellia wurdackii Wassh.
Anisacanthus secundus Leonard
Sanchezia pennellii Leonard
Aphelandra fasciculata Wassh.
Staurogyne spraguei Wassh.
Aphelandra pilosa Leonard
hunbergia alata Bojer ex Sims
Aphelandra pulcherrima (Jacq.) H.B.K.
hunbergia erecta (Benth.) T. Anderson
Aphelandra scabra (Vahl) Sm.
Trichanthera gigantea (Humb. y Bonpl.) Nees
Asystasia gangetica (L.) T. Anderson
AIZOACEAE
Barleria cristata L.
Sesuvium portulacastrum (L.) L.
Barleria lupulina Lindl.
AMARANTHACEAE
Blechum pyramidatum (Lam.) Urb.
Achyranthes indica (L.) Mill.
Bravaisia integerrima (Spreng.) Standl.
Alternanthera brasiliana (L.) Kuntze
Elytraria imbricata (Vahl) Pers.
Alternanthera paronychioides A. St.-Hil.
Hygrophila guianensis Nees
Alternanthera philoxeroides (Mart.) Griseb.
Hygrophila surinamensis Bremek.
Alternanthera pulchella H.B.K.
Justicia breteleri Wassh.
Alternanthera sessilis (L.) R. Br.
Justicia calycina (Nees) V.A.W. Graham
Amaranthus australis (A. Gray) J.D. Sauer
Justicia carthaginensis Jacq.
Amaranthus dubius Mart.
Justicia cataractae Leonard
Amaranthus lividus L.
Justicia comata (L.) Lam.
Amaranthus spinosus L.
Justicia delascioi Wassh.
Amaranthus viridis L.
Justicia guianensis (N.E. Br.) Wassh.
Blutaparon vermiculare (L.) Mears
Justicia huberi Wassh.
Celosia argentea L.
Justicia hylaea Leonard
Celosia virgata Jacq.
Justicia kunhardtii Leonard
Chamissoa altissima (Jacq.) H.B.K.
Justicia laevilinguis (Nees) Lindau
Cyathula achyranthoides (H.B.K.) Moq.
Justicia monachinoi Wassh.
Cyathula prostrata (L.) Blume
Justicia moritziana Wassh.
Froelichia humboldtiana (Schult.) Seub.
Justicia nuriana Wassh.
Gomphrena globosa L.
Justicia panarensis Wassh.
Gomphrena sp. A
Justicia parguazensis Wassh.
Iresine difusa Willd.
Justicia parimensis Wassh.
Pfaia grandilora (Hook.) R.E. Fr.
Justicia paruana Wassh.
Pfaia iresinoides (H.B.K.) Spreng.
Justicia pectoralis Jacq.
ANACARDIACEAE
Justicia polystachya Lam.
Anacardium giganteum Hance ex Engl.
Justicia schomburgkiana (Nees) V.A.W. Graham
Anacardium occidentale L.
Justicia secunda Vahl
Anacardium spruceanum Benth. ex Engl.
Lepidagathis alopecuroidea (Vahl) R. Br. ex Griseb.
Astronium graveolens Jacq.
Lepidagathis gracilis (Bremek.) Wassh.
Astronium lecointei Ducke
Lepidagathis medicaginea (Bremek.) Wassh.
Astronium ulei Mattick
Lepidagathis nickeriensis Wassh.
Campnosperma gummiferum (Benth.) Marchand
Lepidagathis surinamensis (Bremek.) Wassh.
Cyrtocarpa velutinifolia (Cowan) J.D. Mitch. y Daly
Odontonema album V.M. Baum
Loxopterygium sagotii Hook. F.
Odontonema bracteolatum (Jacq.) Kuntze
Mangifera indica L.
Pachystachys spicata (Ruiz y Pav.) Wassh.
Spondias dulcis Parkinson
Pseuderanthemum maguirei Leonard
Spondias mombin L.
Ruellia bolivarensis Wassh.
Tapirira guianensis Aubl.
Ruellia delascioi Wassh.
Tapirira obtusa (Benth.) J.D. Mitch.
Ruellia geminilora var. angustifolia (Nees) Griseb.
hyrsodium spruceanum Benth.
Ruellia liesneri Wassh.
ANNONACEAE
Ruellia macrophylla Vahl
Anaxagorea acuminata (Dunal) A.DC.
Ruellia malaca Leonard
Anaxagorea brachycarpa R.E. Fr.
Ruellia menthoides (Nees) Hiern
Anaxagorea brevipes Benth.
455
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Anaxagorea dolichocarpa Sprague y Sandwith
Oxandra sp. A
Anaxagorea gigantophylla R.E. Fr.
Anaxagorea petiolata R.E. Fr.
Pseudoxandra polyphleba (Diels) R.E. Fr. [incluye Pseudoxandra guianensis
(R.E. Fr.) R.E. Fr.]
Anaxagorea rufa Timmerman
Rollinia exsucca (DC. ex Dunal) A.DC.
Annona ambotay Aubl.
Rollinia mucosa (Jacq.) Baill.
Annona atabapensis H.B.K.
Unonopsis glaucopetala R.E. Fr.
Annona glabra L.
Unonopsis grandis (Benth.) R.E. Fr.
Annona jahnii Saf.
Unonopsis guatterioides (A.DC.) R.E. Fr.
Annona montana Macfad.
Unonopsis velutina Maas
Annona muricata L.
Xylopia amazonica R.E. Fr.
Annona purpurea Moc. y Sessé ex Dunal
Xylopia aromatica (Lam.) Mart.
Annona sericea Dunal
Xylopia benthamii R.E. Fr.
Annona symphyocarpa Sandwith
Xylopia calophylla R.E. Fr.
Annona truncilora R.E. Fr.
Xylopia discreta (L. F.) Sprague y Hutch.
Annona sp. B
Xylopia emarginata Mart.
Bocageopsis canescens (Spruce ex Benth.) R.E. Fr.
Xylopia frutescens Aubl.
Bocageopsis multilora (Mart.) R.E. Fr.
Xylopia ligustrifolia Dunal
Cymbopetalum brasiliense (Vell.) Benth.
Xylopia nitida Dunal
Duguetia argentea (R.E. Fr.) R.E. Fr.
Xylopia parvilora Spruce
Duguetia calycina Benoist
Xylopia plowmanii P.E. Berry and D.M. Johnson
Duguetia caulilora R.E. Fr.
Xylopia sericea A. St.-Hil.
Duguetia lepidota (Miq.) Pulle
Xylopia spruceana Benth. ex Spruce
Duguetia lucida Urb.
Xylopia venezuelana R.E. Fr.
Duguetia megalophylla R.E. Fr.
APIACEAE
Duguetia paucilora Rusby
Eryngium ebracteatum Lam.
Duguetia pycnastera Sandwith
Eryngium foetidum L.
Duguetia quitarensis Benth.
Hydrocotyle umbellata L.
Duguetia rigida R.E. Fr.
APOCYNACEAE
Duguetia venezuelana R.E. Fr.
Allamanda cathartica L.
Duguetia sp. A
Allamanda doniana Müll. Arg.
Duguetia sp. B
Allamanda oenotherifolia Pohl
Ephedranthus guianensis R.E. Fr.
Allamanda thevetiifolia Müll. Arg.
Fusaea longifolia (Aubl.) Saf.
Ambelania acida Aubl.
Guatteria atabapensis Aristeg. ex D.M. Johnson y N.A. Murray
spidosperma album (Vahl) Benth. ex Pichon
Guatteria blepharophylla Mart.
Aspidosperma araracanga Marc.-Ferr.
Guatteria cardoniana R.E. Fr.
Aspidosperma cruentum Woodson
Guatteria dura R.E. Fr.
Aspidosperma cuspa (H.B.K.) S.F. Blake ex Pittier
Guatteria lexilis R.E. Fr.
Aspidosperma decussatum Woodson
Guatteria foliosa Benth.
Aspidosperma excelsum Benth.
Guatteria inundata Mart.
Aspidosperma glaucum Monach.
Guatteria latipetala R.E. Fr.
Aspidosperma leucocymosum Kuhlm.
Guatteria liesneri D.M. Johnson y N.A. Murray
Aspidosperma marcgravianum Woodson
Guatteria maguirei R.E. Fr.
Aspidosperma oblongum A. DC.
Guatteria maypurensis H.B.K.
Aspidosperma pachypterum Müll. Arg.
Guatteria ovalifolia R.E. Fr.
Aspidosperma steyermarkii Woodson
Guatteria riparia R.E. Fr.
Aspidosperma ulei Markgr.
Guatteria schomburgkiana Mart.
Aspidosperma vargasii A. DC.
Guatteria subsessilis Mart.
Aspidosperma sp. D
Guatteria williamsii R.E. Fr.
Aspidosperma sp. E
Guatteria sp. A [Guatteria af. rotundata Maas y Setten]
Catharanthus roseus (L.) G. Don
Heteropetalum brasiliense Benth. [incluye Heteropetalum spruceanum R.E. Fr.]
Condylocarpon amazonicum (Markgr.) Ducke
Oxandra asbeckii (Pulle) R.E. Fr.
Condylocarpon intermedium Müll Arg. var. intermedium
Oxandra espintana (Spruce ex Benth.) Baill.
Condylocarpon myrtifolium (Miq.) Müll Arg.
Oxandra leucodermis (Spruce) Warm.
Condylocarpon pubilorum Müll Arg.
456
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Couma macrocarpa Barb. Rodr.
Mandevilla surinamensis (Pulle) Woodson
Couma rigida Müll Arg.
Mandevilla symphitocarpa (G. Mey.) Woodson
Couma utilis (Mart.) Müll Arg.
Mandevilla turgida Woodson
Forsteronia acouci (Aubl.) A. DC.
Mesechites acutisepala Monach.
Forsteronia ainis Müll Arg.
Mesechites triida (Jacq.) Müll Arg.
Forsteronia diospyrifolia Müll Arg.
Microplumeria anomala (Müll Arg.) Markgr.
Forsteronia gracilis (Benth.) Müll Arg.
Molongum laxum (Benth.) Pichon
Forsteronia guyanensis Müll Arg.
Neocouma parvilora (Markgr.) Zarucchi
Forsteronia obtusiloba Müll Arg.
Odontadenia glauca Woodson
Forsteronia umbellata (Aubl.) Woodson
Odontadenia macrantha (Roem. y Schult.) Markgr.
Galactophora calycina (Huber ex Ducke) Woodson
Odontadenia nitida (Vahl) Müll Arg.
Galactophora crassifolia (Müll Arg.) Woodson
Odontadenia puncticulosa (Rich.) Pulle
Galactophora pulchella Woodson
Odontadenia verrucosa (Roem. y Schult.) K. Schum. ex Markgr.
Galactophora pumila Monach.
Pacouria guianensis Aubl.
Galactophora schomburgkiana var. megaphylla Monach.
Parahancornia fasciculata (Poir.) Benoist
Geissospermum reticulatum A. Gentry
Parahancornia negroensis Monach.
Himatanthus articulatus (Vahl) Woodson
Parahancornia surrogata Zarucchi
Himatanthus bracteatus (A. DC.) Woodson var. bracteatus
Plumeria inodora Jacq.
Himatanthus phagedaenicus (Mart.) Woodson
Plumeria rubra L.
Himatanthus semilunatus Markgr.
Prestonia acutifolia (Benth. ex Müll Arg.) K. Schum.
Himatanthus sucuuba (Spruce ex Müll. Arg.) Woodson
Prestonia cayennensis (A. DC.) Pichon
Lacmellea microcarpa (Müll Arg.) Markgr.
Prestonia exserta (A. DC.) Standl.
Lacmellea pygmaea var. latifolia Monach.
Prestonia initima Woodson
Lacmellea pygmaea Monach. var. pygmaea
Prestonia guianensis Gleason
Macoubea guianensis Aubl.
Prestonia lindleyana Woodson
Macoubea sprucei (Müll Arg.) Markgr.
Prestonia megagros (Vell.) Woodson
Macropharynx strigillosa Woodson
Prestonia tomentosa R. Br.
Malouetia calva Markgr.
Prestonia vaupesana Woodson
Malouetia lavescens (Willd. ex Roem. y Schult.) Müll Arg.
Rauvolia ligustrina Willd. ex Roem. y Schult.
Malouetia glandulifera Miers
Rauvolia polyphylla Benth.
Malouetia grandilora Woodson
Rhabdadenia bilora (Jacq.) Müll Arg.
Malouetia molongo M.E. Endress
Rhabdadenia macrostoma (Benth.) Müll Arg.
Malouetia pubescens var. glabra M.E. Endress
Rhabdadenia pohlii Müll Arg.
Malouetia tamaquarina (Aubl.) A. DC.
Rhigospira quadrangularis (Müll Arg.) Miers
Malouetia virescens Spruce ex Müll Arg.
Salpinctes kalmiifolius Woodson
Mandevilla anceps Woodson
Secondatia densilora A. DC.
Mandevilla benthamii (A. DC.) K. Schum.
Spongiosperma cataractarum Zarucchi
Mandevilla caurensis Markgr.
Spongiosperma macrophyllum (Müll Arg.) Zarucchi
Mandevilla duidae (Woodson) Woodson
Spongiosperma oleifolium (Monach.) Zarucchi
Mandevilla ilifolia Monach.
Stemmadenia grandilora (Jacq.) Miers
Mandevilla hirsuta (Rich.) K. Schum.
Tabernaemontana attenuata (Miers) Urb.
Mandevilla holstii Morillo
Tabernaemontana cerea (Woodson) Leeuwenb.
Mandevilla huberi Morillo
Tabernaemontana cymosa Jacq.
Mandevilla javitensis (H.B.K.) K. Schum.
Tabernaemontana lavicans Willd. ex Roem. y Schult.
Mandevilla lancifolia Woodson
Tabernaemontana heterophylla Vahl
Mandevilla leptophylla (A. DC.) K. Schum.
Tabernaemontana macrocalyx Müll Arg.
Mandevilla obtusifolia Monach.
Tabernaemontana maxima Markgr.
Mandevilla pachyphylla Woodson
Tabernaemontana palustris Markgr.
Mandevilla scaberula N.E. Br.
Tabernaemontana sananho Ruiz y Pav.
Mandevilla scabra (Hofmanns. ex Roem. y Schult.) K. Schum.
Tabernaemontana siphilitica (L. F.) Leeuwenb.
Mandevilla steyermarkii Woodson
Tabernaemontana undulata Vahl
Mandevilla subcarnosa var. angustata Steyerm.
hevetia ahouai (L.) A. DC.
Mandevilla subcarnosa (Benth.) Woodson var. subcarnosa
hevetia peruviana (Pers.) K. Schum.
Mandevilla subspicata (Vahl) Markgr.
AQUIFOLIACEAE
457
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Ilex acutidenticulata Steyerm.
Ilex yutajensis Wurdack
Ilex altiplana Steyerm.
ARALIACEAE
Ilex brevipedicellata Steyerm.
Dendropanax arboreus (L.) Decne. y Planch.
Ilex casiquiarensis Loes.
Oreopanax capitatus (Jacq.) Decne. y Planch.
Ilex ciliolata Steyerm.
Schelera acaropunctata Frodin
Ilex cowanii Wurdack
Schelera argophylla Frodin
Ilex culmenicola Steyerm.
Schelera auyantepuiensis (Steyerm.) Maguire, Steyerm. y Frodin
Ilex diospyroides Reissek
Schelera brachypoda Frodin
Ilex divaricata Mart. ex Reissek
Schelera chimantensis Frodin
Ilex duidae Gleason
Schelera clausa Frodin
Ilex gleasoniana Steyerm.
Schelera clavigera Frodin
Ilex gransabanensis Steyerm.
Schelera contracta Frodin
Ilex guaiquinimae Steyerm.
Schelera coriacea (Marchal) Harms
Ilex guianensis (Aubl.) Kuntze
Schelera crassilimba Frodin
Ilex holstii Steyerm.
Schelera disparifolia Frodin
Ilex huachamacariana Edwin
Schelera dissidens Frodin
Ilex ignicola Steyerm.
Schelera duidae Steyerm.
Ilex jauaensis Steyerm.
Schelera gracillima Steyerm. y Maguire
Ilex jenmanii Loes.
Schelera guanayensis Maguire, Steyerm. y Frodin
Ilex karuaiana Steyerm.
Schelera hitchcockii (Lasser y Maguire) Maguire, Steyerm. y Fr
Ilex lasseri Edwin
Schelera huachamacarii Maguire, Steyerm. y Frodin
Ilex laureola Triana y Planch.
Schelera huberi Frodin
Ilex liesneri Steyerm.
Schelera japurensis (Mart. y Zucc. ex Marchal) Harms
Ilex longipilosa Steyerm.
Schelera jauaensis (Maguire, Steyerm. y Frodin) Frodin
Ilex magnifructa Edwin
Schelera longistyla Frodin
Ilex maguirei Wurdack
Schelera maguireanorum Frodin
Ilex marahuacae Steyerm.
Schelera marahuacensis (Maguire, Steyerm. y Frodin) Frodin
Ilex marginata Edwin
Schelera monosperma (Maguire, Steyerm. y Frodin
Ilex martiniana D. Don
Schelera montana (Gleason) Maguire, Steyerm. y Frodin
Ilex oliveriana Loes.
Schelera morototoni (Aubl.) Maguire, Steyerm. y Frodin
Ilex parvifructa Edwin
Schelera myrioneura Frodin
Ilex paujiensis Steyerm.
Schelera paruana (Maguire, Steyerm. y Frodin) Frodin
Ilex polita Steyerm.
Schelera pauciradiata Maguire, Steyerm. y Frodin
Ilex psammophila Reissek
Schelera pedicelligera Maguire, Steyerm. y Frodin
Ilex ptariana Steyerm.
Schelera sessililora Splithof-Heerschop ex Frodin
Ilex retusa Klotzsch
Schelera sipapoensis Maguire, Steyerm. y Frodin
Ilex savannarum var. morichei Edwin
Schelera spruceana (Seem.) Maguire, Steyerm. y Frodin
Ilex savannarum Wurdack var. savannarum
Schelera steyermarkii Frodin
Ilex sessilifructa Edwin
Schelera suaveolens Frodin
Ilex sipapoana Edwin
Schelera tremuloidea Maguire, Steyerm. y Frodin
Ilex solida Edwin
Schelera ulocephala Frodin
Ilex spathulata Steyerm.
Schelera umbellata (N.E. Br.) R. Vig.
Ilex spruceana Reissek
Schelera umbraculifera Frodin
Ilex steyermarkii Edwin
Schelera yutajensis Steyerm. y B. Holst
Ilex subrotundifolia Steyerm.
Schelera sp. B
Ilex sulcata Edwin
Sciadodendron excelsum Griseb.
Ilex summa Steyerm.
ARISTOLOCHIACEAE
Ilex tateana Steyerm.
Aristolochia acutifolia Duch.
Ilex tepuiana Steyerm. ex Edwin
Aristolochia chamissonis Duch.
Ilex theezans var. riedelii Loes.
Aristolochia maxima Jacq.
Ilex tiricae Edwin
Aristolochia melgueiroi Barringer y Guánchez
Ilex umbellata Klotzsch
Aristolochia mossii S. Moore
Ilex vacciniifolia Reissek
Aristolochia nummularifolia H.B.K.
Ilex venezuelensis Steyerm.
Aristolochia pannosoides Hoehne
458
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Aristolochia ringens Vahl
Matelea fucata Woodson
Aristolochia rugosa Lam.
Matelea hildegardiana Morillo
Aristolochia sprucei Mast.
Matelea hirsuta (M. Vahl) Woodson
ASCLEPIADACEAE
Matelea holstii Morillo y Carnevali
Asclepias curassavica L.
Matelea lourteigii Morillo
Blepharodon glaucescens (Decne) Fontella
Matelea maritima (Jacq.) Woodson
Blepharodon grandilorus subsp. crassifolius (Schltr.) Morillo
Matelea planilora (Jacq.) Dugand
Blepharodon julianii Morillo
Matelea squiresii (Rusby) Morillo
Blepharodon maigualidae Morillo
Matelea stenopetala Sandw.
Blepharodon mucronatus (Schltdl.) Dcne
Matelea stergiosii Morillo
Blepharodon nitidus (Vell.) Macbr.
Matelea suareziae Morillo
Blepharodon ulei Schltr.
Matelea yanomamica Morillo
Calotropis gigantea (L.) Dryand.
Nephradenia linearis Benth. ex Fourn.
Cryptostegia madagascariensis Bojer ex Decne
Oxypetalum capitatum Mart.
Cynanchum chimantense Morillo
Sarcostemma clausum (Jacq.) Roem. y Schult.
Cynanchum franciscoi Morillo
Tassadia aristata (Benth. ex Fourn.) Fontella
Cynanchum guanchezii Morillo
Tassadia berteriana (Spreng.) W.D. Stevens
Cynanchum hirtellum (Oliver) V. Badillo
Tassadia ivonae Morillo
Cynanchum huberi Morillo
Tassadia marahuacensis Morillo
Cynanchum mirifolium (Gleason y Mold.) R. Holm
Tassadia medinae (Morillo) Morillo
Cynanchum montevidense Spreng.
Tassadia obovata Decne.
Cynanchum paraquense Morillo
Tassadia propinqua Decne.
Ditassa acerifolia Lasser y Maguire
Tassadia trailiana (Benth.) Fontella
Ditassa angustifolia Decne
ASTERACEAE
Ditassa auyantepuiensis (Steyerm.) Morillo
Acanthospermum australe (Loel.) Kuntze
Ditassa bolivarensis (R. Holm) Morillo
Acanthospermum hispidum DC.
Ditassa carnevalii (Morillo) Morillo
Achnopogon steyermarkii Aristeg.
Ditassa ciliata (Mold.) Morillo
Achnopogon virgatus Maguire, Steyerm. y Wurdack
Ditassa colellae (Morillo) Morillo
Achyrocline satureioides (Lam.) DC.
Ditassa duidae Gleason
Achyrocline vargasiana DC.
Ditassa foldatsii Morillo
Acmella ciliata (H.B.K.) Cass.
Ditassa juliani (Morillo) Morillo
Acmella radicans var. debilis (H.B.K.) R.K. Jansen
Ditassa liesneri Morillo
Acmella uliginosa (Sw.) Cass.
Ditassa multinervia (Morillo) Morillo
Ageratina pichinchensis (H.B.K.) R.M. King y H. Rob.
Ditassa obovata (R. Holm) Morillo
Ageratina roraimensis (N.E. Br.) R.M. King y H. Rob.
Ditassa olivaestevae Morillo
Ageratum ballotifolium (Maquire, Steyerm. y Wurdack) R.M. King y H. Rob.
Ditassa ottohuberi Morillo
Ageratum conyzoides L.
Ditassa sipapoana Morillo
Ambrosia peruviana Willd.
Ditassa tatei Gleason y Mold.
Austroeupatorium inulaefolium (H.B.K.) R.M. King y H. Rob.
Ditassa taxifolia Decne.
Ayapana amygdalina (Lam.) R.M. King y H. Rob.
Ditassa verticillata Morillo
Ayapana trinitensis (Kuntze) R.M. King y H. Rob.
Fischeria stellata (Vell.) Fourn.
Baccharis brachylaenoides DC. var. brachylaenoides
Gonolobus aristolochioides H.B.K.
Baccharis brachylaenoides var. ligustrina (DC.) Maguire y Wurdack
Marsdenia altissima (Jacq.) Dugand
Baccharis densa (N.E. Br.) V.M. Badillo
Marsdenia guanchezii Morillo
Baccharis lundii DC.
Marsdenia macrophylla (Kunth) Fourn.
Baccharis schomburgkii Baker
Marsdenia rubrofusca Benth. ex Fourn.
Baccharis trinervis (Lam.) Pers.
Marsdenia undulata (Jacq.) Dugand
Baccharis varians Gardner
Marsdenia xerohylica Dugand
Baccharis wurdackiana Malag.
Matelea amazonica Morillo
Baltimora geminata (Brandegee) Stuessy
Matelea badilloi Morillo
Barrosoa metensis (B.L. Rob.) R.M. King y H. Rob.
Matelea cumanensis (Willd. ex. Schult.) W.D. Stevens
Bidens cynapiifolia H.B.K.
Matelea delascioi Morillo
Bidens pilosa L.
Matelea denticulata (M. Vahl) Fontella y Schwarz
Brickellia difusa (Vahl) A. Gray
459
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Calea abelioides S.F. Blake
Duidaea marahuacensis Steyerm.
Calea berteriana DC.
Duidaea pinifolia S.F. Blake
Calea caleoides (DC.) H. Rob.
Duidaea rubriceps S.F. Blake
Calea divaricata Benth.
Duidaea tatei S.F. Blake
Calea esposi Maguire y K.D. Phelps
Eclipta prostrata (L.) L.
Calea kunbardtii Maguire
Egletes lorida Shinners
Calea linearifolia Maguire y Wurdack
Elephantopus hirtilorus DC.
Calea lucidivenia Gleason y S.F. Blake
Elephantopus mollis H.B.K.
Calea nana Maguire
Emilia fosbergii Nicolson
Calea oliveri B.L. Rob. y Greenm.
Emilia sonchifolia (L.) DC.
Calea orbiculata Maguire y Aristeg.
Erechtites hieracifolia (L.) RaF. ex DC.
Calea phelpsiae Lasser y Maguire
Erechtites valerianifolia (Link ex Spreng.) DC.
Calea politii Maguire
Erigeron karwinskianus DC.
Calea punctata Maguire y Wurdack
Eurydochus bracteatus Maguire y Wurdack
Calea sipapoana Maguire
Fleischmannia microstemon (Cass.) R.M. King y H. Rob.
Calea solidaginea subsp. deltophylla (Cowan) Pruski
Gamochaeta americana (Mill.) Wedd.
Calea sublantanoides V.M. Badillo
Gamochaeta simplicicaulis (Willd. ex Spreng.) Cabrera
Calea tolimana Hieron.
Gnaphalium elegans H.B.K.
Calea tricephala Maguire
Gnaphalium polycaulon Pers.
Calea sp. A
Gochnatia calophylla (Sch. Bip.) V.M. Badillo
Calea sp. B
Gongylolepis benthamiana R.H. Schomb.
Calea sp. C
Gongylolepis bracteata Maguire
Calea sp. E
Gongylolepis erioclada S.F. Blake
Centratherum punctatum Cass. var. punctatum
Gongylolepis fruticosa Maguire, Steyerm. y Wurdack
Chaptalia integerrima (Vell.) Burkart
Gongylolepis glaberrima S.F. Blake
Chaptalia nutans (L.) Pol.
Gongylolepis huachamacari Maguire
Chimantaea acopanensis Steyerm.
Gongylolepis jauaensis (Aristeg., Maguire y Steyerm.) V.M. Badillo
Chimantaea cinerea (Gleason y S.F. Blake) Maguire, Steyerm. y Wurdack
Gongylolepis martiana (Baker) Steyerm. y Cuatrec.
Chimantaea eriocephala Maguire, Steyerm. y Wurdack
Gongylolepis paniculata Maguire y K.D. Phelps
Chimantaea espeletoidea Maguire, Steyerm. y Wurdack
Gongylolepis paruana Maguire
Chimantaea huberi Steyerm.
Gongylolepis pedunculata Maguire
Chimantaea humilis Maguire, Steyerm. y Wurdack
Guayania bulbosa (Aristeg.) R.M. King y H. Rob.
Chimantaea lanocaulis Maguire, Steyerm. y Wurdack
Guayania cerasifolia (Sch. Bip. ex Baker) R.M. King y H. Rob.
Chimantaea mirabilis Maguire, Steyerm. y Wurdack
Guayania penninervata (Wurdack) R.M. King y H. Rob.
Chimantaea rupicola Maguire, Steyerm. y Wurdack
Guayania roupalifolia (B.L. Rob.) R.M. King y H. Rob.
Chionolaena latifolia (Benth.) Baker
Guayania yaviana (Lasser y Maguire) R.M. King y H. Rob.
Chromolaena bathyphlebia (B.L. Rob.) R.M. King y H. Rob.
Hebeclinium macrophyllum (L.) DC.
Chromolaena ivaefolia (L.) R.M. King y H. Rob.
Huberopappus maigualidae Pruski
Chromolaena laevigata (Lam.) R.M. King y H. Rob.
Ichthyothere terminalis (Spreng.) S.F. Blake
Chromolaena odorata (L.) R.M. King y H. Rob.
Koanophyllon fuscum (N.E. Br.) R.M. King y H. Rob.
Chromolaena pharcidodes (B.L. Rob.) R.M. King y H. Rob.
Koanophyllon tatei (B.L. Rob.) R.M. King y H. Rob.
Chromolaena squalida (DC.) R.M. King y H. Rob.
Lepidaploa auyantepuiensis (Aristeg.) H. Rob.
Chromolaena ternicapitulata Pruski
Lepidaploa bolivarensis (V.M. Badillo) H. Rob.
Chromolaena thurnii (B.L. Rob.) R.M. King y H. Rob.
Lepidaploa ehretifolia (Benth.) H. Rob.
Chromolaena tyleri (B.L. Rob.) R.M. King y H. Rob.
Lepidaploa gracilis (H.B.K.) H. Rob.
Clibadium surinamense L.
Lepidaploa grisea (Baker) H. Rob.
Clibadium sylvestre (Aubl.) Baill.
Lepidaploa pari (V.M. Badillo) H. Rob.
Condylidium iresinoides (H.B.K.) R.M. King y H. Rob.
Lepidaploa salzmannii (DC.) H. Rob.
Conyza bonariensis (L.) Cronquist
Lepidaploa sp. A
Conyza primulifolia (Lam.) Cuatrec. y Lourteig
Lessingianthus morilloi (V.M. Badillo) H. Rob.
Cosmos caudata H.B.K.
Lycoseris triplinervia Less.
Cyanthillium cinerea (L.) H. Rob.
Melanthera nivea (L.) Small
Cyrtocymura scorpioides (Lam.) H. Rob.
Mikania banisteriae DC.
Dasyphyllum vepreculatum (D. Don) Cabrera
Mikania chaetoloba Pruski
460
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Mikania chlorolepis Baker
Quelchia eriocaulis Maguire, Steyerm. y Wurdack
Mikania congesta DC.
Quelchia ×grandifolia Maguire, Steyerm. y Wurdack
Mikania cordifolia (L. F.) Willd.
Riencourtia latifolia Gardner
Mikania duidensis B.L. Rob.
Rolandra fruticosa (L.) Kuntze
Mikania guaco Humb. y Bonpl.
Sonchus asper (L.) Hill
Mikania hookeriana DC.
Sphagneticola brachycarpa (Baker) Pruski
Mikania lucida S.F. Blake
Sphagneticola trilobata (L.) Pruski
Mikania marahuacensis Steyerm. y Maguire
Spilanthes nervosa Chodat
Mikania michelangeliana Steyerm.
Spilanthes urens Jacq.
Mikania micrantha H.B.K.
Stenocephalum apiculatum (Mart.) Sch. Bip.
Mikania microptera DC.
Stenopadus campestris Maguire y Wurdack
Mikania nigropunctulata Hieron.
Stenopadus chimantensis Maguire, Steyerm. y Wurdack
Mikania pannosa Baker
Stenopadus colveei (Steyerm.) Pruski
Mikania parvilora (Aubl.) H. Karst.
Stenopadus connellii (N.E. Br.) S.F. Blake
Mikania psilostachya DC.
Stenopadus cucullatus Maguire y Wurdack
Mikania rondonensis V.M. Badillo
Stenopadus huachamacari Maguire
Mikania simpsonii W.C. Holmes y McDaniel
Stenopadus jauensis Aristeg.
Mikania solidinervia V.M. Badillo
Stenopadus kunhardtii Maguire
Mikania sprucei Baker
Stenopadus talaumifolius S.F. Blake
Mikania trinitaria DC.
Stomatochaeta acuminata Pruski
Mikania vitifolia DC.
Stomatochaeta condensata (Baker) Maguire y Wurdack
Neurolaena lobata (L.) Cass.
Stomatochaeta crassifolia (S.F. Blake) Maguire y Wurdack
Oritrophium marahuacense Steyerm. y Maguire
Stomatochaeta cylindrica Maguire y Wurdack
Orthopappus angustifolius (Sw.) Gleason
Stomatochaeta cymbifolia (S.F. Blake) Maguire y Wurdack
Oyedaea scaberrima (Benth.) S.F. Blake
Stomatochaeta steyermarkii Aristeg.
Oyedaea tepuiana (V.M. Badillo) Pruski
Struchium sparganophorum (L.) Kuntze
Oyedaea wurdackii Pruski
Synedrella nodilora (L.) Gaertn.
Pectis ciliaris L.
Tessaria integrifolia Ruiz y Pav.
Pectis elongata H.B.K.
Tilesia baccata (L.) Pruski var. baccata
Pectis pygmaea H.B.K.
Trichogonia arguta (H.B.K.) Benth. y Hook. F. ex Klatt
Pectis swartziana Less.
Trichospira verticillata (L.) S.F. Blake
Pentacalia freemanii (Britton y Greenm.) Cuatrec.
Tridax procumbens L.
Pentacalia phelpsiae (Cuatrec.) Cuatrec.
Tuberculocarpus ruber (Aristeg.) Pruski
Pentacalia ptariana (Cuatrec.) Cuatrec.
Tyleropappus dichotomus Greenm.
Pentacalia yapacana (Aristeg.) Cuatrec.
Unxia camphorata L. F.
Piptocarpha auyantepuiensis Aristeg.
Unxia sufruticosa (Baker) Stuessy
Piptocarpha jauaensis Aristeg. y Steyerm.
Verbesina angusta Maguire, Steyerm. y Wurdack
Piptocarpha poeppigiana (DC.) Baker
Verbesina columbiana B.L. Rob.
Piptocarpha polycephala Baker
Verbesina guianensis Baker
Piptocarpha trilora (Aubl.) Benn. ex Baker
Verbesina ligulata (Maguire y Wurdack) Pruski
Piptocarpha sp. A
Verbesina pilosa Maguire y Wurdack
Piptocoma areolata (Wurdack) Pruski
Vernonanthura brasiliana (L.) H. Rob.
Piptocoma schomburgkii (Sch. Bip.) Pruski
Wedelia ambigens S.F. Blake
Piptocoma spruceana (Benth.) Pruski
Wedelia calycina Rich.
Pluchea sagittalis (Lam.) Cabrera
Xiphochaeta aquatica Poepp. y Endl.
Porophyllum ruderale (Jacq.) Cass.
BALANOPHORACEAE
Praxelis asperulacea (Baker) R.M. King y H. Rob.
Helosis cayennensis (Sw.) Spreng. var. cayennensis
Praxelis paucilora (H.B.K.) R.M. King y H. Rob.
Langsdoria hypogaea Mart.
Pseudelephantopus spicatus (Juss. ex Aubl.) C.F. Baker
BASELLACEAE
Pseudogynoxys chenopodioides (H.B.K.) Cabrera
Anredera leptostachys (Moq.) Steenis
Pterocaulon alopecuroides (Lam.) DC.
BEGONIACEAE
Quelchia bracteata Maguire, Steyerm. y Wurdack
Begonia ischeri Schrank
Quelchia cardonae Steyerm.
Begonia fuchsioides Hook.
Quelchia conferta N.E. Br.
Begonia guaduensis H.B.K.
461
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Begonia humilis Aiton
Digomphia densicoma (Mart. ex A. DC.) Pilg.
Begonia meridensis A. DC.
Digomphia laurifolia Benth.
Begonia steyermarkii L.B. Sm. y B.G. Schub.
Distictella arenaria A. Gentry
Begonia ulmifolia Willd.
Distictella af. dasytricha Sandwith
BIGNONIACEAE
Distictella elongata (Vahl) Urb.
Adenocalymna apurense (H.B.K.) Sandwith
Distictella laevis (Sandwith) A. Gentry
Adenocalymna impressum (Rusby) Sandwith
Distictella magnoliifolia (H.B.K.) Sandwith
Adenocalymna inundatum var. surinamense Bureau y K. Schum.
Distictella monophylla Sandwith
Adenocalymna purpurascens Rusby
Distictella obovata Sandwith
Adenocalymna indet
Distictella paucilora A. Gentry
Amphilophium aschersonii Ule
Distictis granulosa Bureau y K. Schum.
Amphilophium paniculatum (L.) H.B.K.
Distictis pulverulenta (Sandwith) A. Gentry
Anemopaegma alatum A. Gentry
Godmania aesculifolia (H.B.K.) Standl.
Anemopaegma chrysoleucum (H.B.K.) Sandwith
Handroanthus chrysanthus (Jacq.) S. Grose subsp. chrysanthus
Anemopaegma loridum Mart. ex A. DC.
Handroanthus guayacan (Seem.) S. Grose
Anemopaegma jucundum Bureau y K. Schum.
Handroanthus serratifolius (Vahl) S. Grose
Anemopaegma karstenii Bureau y K. Schum.
Handroanthus subtilis (Sprague y Sandwith) S. Grose
Anemopaegma oligoneuron (Sprague y Sandwith) A. Gentry
Handroanthus uleanus (Kränzl.) S. Grose
Anemopaegma paraense Bureau y K. Schum. in Mart.
Jacaranda copaia (Aubl.) D. Don
Anemopaegma parkeri Sprague
Jacaranda obtusifolia Humb. y Bonpl.
Anemopaegma patelliforme A. Gentry
Jacaranda orinocensis Sandwith
Anemopaegma salicifolium (H.B.K.) Sandwith
Lundia corymbifera (Vahl) Sandwith
Arrabidaea bilabiata (Sprague) Sandwith
Lundia densilora A. DC.
Arrabidaea brachypoda (A. DC.) Bureau
Lundia erionema A. DC.
Arrabidaea candicans (Rich.) A. DC.
Lundia puberula Pittier
Arrabidaea carichanensis (H.B.K.) Bureau y K. Schum.
Macfadyena uncata (Andrews) Sprague y Sandwith
Arrabidaea chica (Humb. y Bonpl.) Verl.
Macfadyena unguis-cati (L.) A. Gentry
Arrabidaea cinnamomea (A. DC.) Sandwith
Manaosella cordifolia (A. DC.) A. Gentry
Arrabidaea corallina (Jacq.) Sandwith
Mansoa kerere (Aubl.) A. Gentry
Arrabidaea egensis Bureau y K. Schum.
Mansoa onohualcoides A. Gentry
Arrabidaea fanshawei Sandwith
Mansoa standleyi (Steyerm.) A. Gentry
Arrabidaea lorida A. DC.
Mansoa verrucifera (Schltdl.) A. Gentry
Arrabidaea grosourdyana (Baill.) Sandwith
Martinella obovata (H.B.K.) Bureau y K. Schum.
Arrabidaea inaequalis (DC. ex Splitg.) K. Schum.
Melloa quadrivalvis (Jacq.) A. Gentry
Arrabidaea japurensis (A. DC.) Bureau y K. Schum.
Memora bracteosa (A. DC.) Bureau ex K. Schum.
Arrabidaea lachnaea (Bureau ex Bureau y K. Schum.) Sandwith
Memora lavilora (Miq.) Pulle
Arrabidaea mollis (Vahl) Bureau ex K. Schum.
Memora patula Miers
Arrabidaea mollissima (H.B.K.) Bureau y K. Schum.
Memora pseudopatula A. Gentry
Arrabidaea nigrescens Sandwith
Memora schomburgkii (DC.) Miers
Arrabidaea oxycarpa Urb.
Memora tanaeciicarpa A. Gentry
Arrabidaea patellifera (Schltdl.) Sandwith
Mussatia hyacinthina (Standl.) Sandwith
Arrabidaea pubescens (L.) A. Gentry
Mussatia prieurei (A. DC.) Bureau ex K. Schum.
Arrabidaea selloi (Spreng.) Sandwith
Parabignonia steyermarkii Sandwith
Arrabidaea tuberculata A. DC.
Callichlamys latifolia (Rich.) K. Schum.
Paragonia pyramidata (Rich.) Bureau Phryganocydia corymbosa (Vent.)
Baill.
Ceratophytum tetragonolobum (Jacq.) Sprague y Sandwith
Pithecoctenium crucigerum (L.) A. Gentry
Clytostoma binatum (hunb.) Sandwith
Pleonotoma albilora (Salzm. ex A. DC.) A. Gentry
Clytostoma sciuripabulum Bureau y K. Schum.
Pleonotoma clematis (H.B.K.) Miers
Crescentia amazonica Ducke
Pleonotoma dendrotricha Sandwith
Crescentia cujete L.
Pleonotoma exserta A. Gentry
Cuspidaria subincana A. Gentry
Pleonotoma jasminifolia (H.B.K.) Miers
Cydista aequinoctialis (L.) Miers [not det. to variety]
Pleonotoma variabilis (Jacq.) Miers
Cydista lilacina A. Gentry
Potamoganos microcalyx (G. Mey.) Sandwith
Digomphia ceratophora A. Gentry
Pyrostegia dichotoma Miers ex K. Schum.
462
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Roentgenia sordida (Bureau y K. Schum.) Sprague y Sandwith
Pachira orinocensis (A. Robyns) W.S. Alverson
Schlegelia scandens (Briq. y Spruce) Sandwith
Pachira paraensis (Ducke) W.S. Alverson
Schlegelia spruceana K. Schum.
Pachira pseudofaroensis (A. Robyns) W.S. Alverson
Schlegelia violacea (Aubl.) Griseb.
Pachira quinata (Jacq.) W.S. Alverson
Sparattosperma leucanthum (Vell.) K. Schum.
Pachira rupicola (A. Robyns) W.S. Alverson
Stizophyllum inaequilaterum Bureau y K. Schum.
Pachira tepuiensis (Steyerm.) W.S. Alverson
Stizophyllum riparium (H.B.K.) Sandwith
Pachira trinitensis Urb.
Tabebuia barbata (E. Mey.) Sandwith
Pachira yapacanae Steyerm. ex W.S. Alverson
Tabebuia capitata (Bureau y K. Schum.) Sandwith
Pseudobombax croizatii A. Robyns
Tabebuia donnell-smithii Rose
BORAGINACEAE
Tabebuia luviatilis (Aubl.) A. DC.
Bourreria cumanensis (Loel.) O.E. Schulz
Tabebuia impetiginosa (Mart. ex DC.) Standl.
Cordia alliodora (Ruiz y Pav.) Oken
Tabebuia insignis (Miq.) Sandwith var. insignis, var. monophylla Sandwith, var.
pacimonensis
Cordia bicolor A. DC.
Tabebuia obscura (Bureau y K. Schum.) Sandwith
Cordia cabanayensis Gaviria
Tabebuia ochracea subsp. heterotricha (A. DC.) A. Gentry,
Cordia collococca Sandmark ex L.
T. ochracea subsp. neochrysantha (A. Gentry) A. Gentry
Cordia curassavica (Jacq.) Roem. y Schult.
Tabebuia orinocensis (Sandwith) A. Gentry
Cordia dentata Poir.
Tabebuia pilosa A. Gentry
Cordia exaltata Lam.
Tabebuia stenocalyx Sprague y Stapf
Cordia fallax I.M. Johnst.
Tanaecium jaroba Sw.
Cordia grandilora (Desv.) H.B.K.
Tynanthus polyanthus (Bureau) Sandwith
Cordia naidophila I.M. Johnst.
Tynanthus pubescens A. Gentry
Cordia nodosa Lam.
Xylophragma seemannianum (Kuntze) Sandwith
Cordia panamensis Riley
BIXACEAE
Cordia polycephala (Lam.) I.M. Johnst.
Bixa orellana L.
Cordia polystachya H.B.K.
Bixa urucurana Willd.
Cordia sagotii I.M. Johnst.
Cochlospermum orinocense (H.B.K.) Steud.
Cordia scabrifolia A. DC.
Cochlospermum vitifolium (Willd.) Spreng.
Cordia schomburgkii A. DC.
BOMBACACEAE
Cordia sericicalyx A. DC.
Catostemma commune Sandwith
Cordia sipapoi Gaviria
Catostemma durifolius W.S. Alverson
Cordia sprucei Mez
Catostemma ebracteolatum Steyerm.
Cordia stenostachya Killip ex Gaviria
Catostemma hirsutulum Steyerm.
Cordia steyermarkii Gaviria
Catostemma lemense Sanoja
Cordia tetrandra Aubl.
Catostemma marahuacense Steyerm.
Cordia umbellifera Killip ex G. Agostini
Ceiba pentandra (L.) Gaertn.
Cordia williamsii G. Agostini ex Gaviria
Eriotheca globosa (Aubl.) A. Robyns
Cordia sp. A
Matisia amplifolia Pittier
Heliotropium iliforme Lehm.
Matisia ochrocalyx K. Schum.
Heliotropium indicum L.
Ochroma pyramidale (Cav. ex Lam.) Urb.
Heliotropium lagoense (Warm.) Gürke
Pachira amazonica (A. Robyns) W.S. Alverson
Heliotropium polyphyllum Lehm.
Pachira aquatica Aubl.
Heliotropium procumbens Mill.
Pachira aracamuniana (Steyerm.) W.S. Alverson
Heliotropium purdiei I.M. Johnst.
Pachira coriacea (Mart.) W.S. Alverson
Heliotropium ternatum Vahl
Pachira cowanii (A. Robyns) W.S. Alverson
Lepidocordia punctata Ducke
Pachira faroensis (Ducke) W.S. Alverson
Tournefortia bicolor Sw.
Pachira fuscolepidota (Steyerm.) W.S. Alverson
Tournefortia candidula (Miers) I.M. Johnst.
Pachira gracilis (A. Robyns) W.S. Alverson
Tournefortia cuspidata H.B.K.
Pachira humilis Spruce ex Decne.
Tournefortia hirsutissima L.
Pachira liesneri (Steyerm.) W.S. Alverson
Tournefortia maculata Jacq.
Pachira mawarinumae (Steyerm.) W.S. Alverson
Tournefortia ulei Vaupel
Pachira minor (Sims) Hemsl.
Tournefortia volubilis L.
Pachira nitida H.B.K.
BRUNELLIACEAE
Cordia bullata subsp. humilis (Jacq.) Gaviria
463
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Brunellia comocladifolia subsp. ptariana (Steyerm.) Cuatrec.
CACTACEAE
BURSERACEAE
Acanthocereus tetragonus (L.) Hummelinck
Bursera karsteniana Engl.
Cereus hexagonus (L.) Mill.
Bursera simaruba (L.) Sarg.
Epiphyllum phyllanthus (L.) Haw.
Bursera tomentosa (Jacq.) Triana y Planch.
Hylocereus lemairei (Hook.) Britton y Rose
Commiphora leptophloeos (Mart.) J.B. Gillett
Mediocactus megalanthus (K. Schum. ex Vaupel) Britton y Rose
Crepidospermum rhoifolium (Benth.) Triana y Planch.
Melocactus mazelianus Ríha
Dacryodes chimatensis Steyerm. y Maguire
Melocactus neryi K. Schum.
Dacryodes cuspidata (Cuatrec.) Daly
Opuntia elatior Mill.
Dacryodes glabra (Steyerm.) Cuatrec.
Pereskia guamacho F.A.C. Weber
Dacryodes microcarpa Cuatrec.
Pilosocereus kanukuensis (Alexander) Leuenb.
Dacryodes nitens Cuatrec.
Rhipsalis baccifera (Sol. ex J.S. Mill.) Stearn
Dacryodes peruviana (Loes.) H.J. Lam
Subpilocereus repandus (L.) Backeb.
Dacryodes roraimensis Cuatr.
CAESALPINIACEAE
Dacryodes sclerophylla Cuatrec.
Apuleia leiocarpa (Vogel) J.F. Macbr.
Dacryodes steyermarkii Sandwith
Bauhinia aculeata L.
Dacryodes sp. A
Bauhinia cupulata Benth.
Protium altsonii Sandwith
Bauhinia eilertsii Pulle
Protium amazonicum (Cuatrec.) D. Daly
Bauhinia glabra Jacq.
Protium apiculatum Swart
Bauhinia guianensis Aubl.
Protium aracouchini (Aubl.) Marchand
Bauhinia kunthiana Vogel
Protium boomii Daly
Bauhinia longicuspis Spruce ex Benth.
Protium crassipetalum Cuatrec.
Bauhinia microstachya (Raddi) J.F. Macbr.
Protium crenatum Sandwith
Bauhinia outimouta Aubl.
Protium decandrum (Aubl.) Marchand
Bauhinia rutilans Spruce ex Benth.
Protium divaricatum Engl. subsp. divaricatum
Bauhinia scala-simiae Sandwith
Protium ferrugineum (Engl.) Engl.
Bauhinia siqueiraei Ducke
Protium giganteum Engl. var. giganteum
Bauhinia surinamensis Amshof
Protium grandifolium Engl.
Bauhinia ungulata L.
Protium guianense (Aubl.) Marchand
Brownea ariza Benth.
Protium heptaphyllum (Aubl.) Marchand
Brownea coccinea subsp. capitella (Jacq.) D. Velázq. y Agostini
Protium llanorum Cuatrec.
Brownea longipedicellata Huber
Protium macrocarpum Cuatrec.
Brownea similis Cowan
Protium macrosepalum Swart
Caesalpinia coriaria (Jacq.) Willd.
Protium opacum Swart
Caesalpinia granadillo Pittier
Protium paniculatum Engl.
Campsiandra angustifolia Spruce ex Benth. var. angustifolia
Protium ptarianum Steyerm.
Campsiandra angustifolia var. rosea (Poepp.) Stergios
Protium sagotianum Marchand
Campsiandra chigo-montero Stergios
Protium spruceanum (Benth.) Engl.
Campsiandra ferruginea Stergios
Protium tenuifolium (Engl.) Engl.
Campsiandra guayanensis Stergios
Protium trifoliolatum Engl.
Campsiandra implexicaulis Stergios
Protium unifoliolatum Spruce ex Engl.
Campsiandra nutans Stergios
Protium sp. A
Campsiandra taphornii Stergios
Protium sp. B
Campsiandra velutina Stergios
Protium sp. C
Campsiandra wurdackiana Stergios
Protium sp. D
Cassia cowanii var. guianensis (Sandwith) H.S. Irwin y Barneby
Tetragastris altissima (Aubl.) Swart
Cassia fastuosa Willd. ex Benth.
Tetragastris panamensis (Engl.) Kuntze
Cassia grandis L. F.
Trattinnickia burserifolia Mart.
Cassia moschata H.B.K.
Trattinnickia rhoifolia Willd.
Chamaecrista adiantifolia (Sandwith) H.S. Irwin y Barneby
CABOMBACEAE
Chamaecrista calycioides (Collad.) Greene
Cabomba aquatica Aubl.
Chamaecrista desvauxii (Collad.) Killip
Cabomba furcata Schult. y Schult. F.
Chamaecrista diphylla (L.) Greene
Cabomba haynesii Wiersema
Chamaecrista fagonioides (Vogel) H.S. Irwin y Barneby
464
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Chamaecrista lexuosa (L.) Greene
Macrolobium bifolium (Aubl.) Pers.
Chamaecrista glandulosa (L.) Greene
Macrolobium campestre Huber
Chamaechrista hispidula (Vahl) H.S. Irwin y Barneby
Macrolobium canaliculatum var. strigulosum R. Cowan
Chamaecrista kunthiana (Schldl. y Cham.) H.S. Irwin y Barneby
Macrolobium cataractarum R. Cowan
Chamaecrista negrensis (H.S. Irwin) H.S. Irwin y Barneby
Macrolobium discolor Benth. var. discolor
Chamaecrista nictitans (Steud.) H.S. Irwin y Barneby
Macrolobium discolor var. egranulosum R. Cowan
Chamaecrista orenocensis (Spruce ex Benth.) H.S. Irwin y Barneby
Macrolobium evenulosum R. Cowan
Chamaecrista pilosa (L.) Greene
Macrolobium gracile var. confertum (Gleason) R. Cowan
Chamaecrista ramosa (Vogel) H.S. Irwin y Barneby
Macrolobium limbatum Spruce ex Benth. var. limbatum
Chamaecrista roraimae (Benth.) Gleason
Macrolobium longeracemosum Amshof
Chamaecrista rotundifolia (Benth.) H.S. Irwin y Barneby
Macrolobium multijugum (DC.) Benth. var. multijugum
Chamaecrista serpens (L.) Greene
Macrolobium punctatum Spruce ex Benth.
Chamaecrista viscosa (H.B.K.) H.S. Irwin y Barneby var. viscosa
Macrolobium rubrum R. Cowan
Chamaecrista zygophylloides var. deamii (Britton y Rose) H.S. Irwin y Barneby
Macrolobium savannarum var. foldatsii (R. Cowan) P.E. Berry
Copaifera camibar Poveda, N. Zamora, y P.E. Sánchez
Martiodendron elatum (Ducke) Gleason var. elatum
Copaifera oicinalis (Jacq.) L.
Martiodendron excelsum (Benth.) Gleason
Copaifera pubilora Benth.
Mora excelsa Benth.
Crudia aequalis Ducke
Mora gonggrijpii (Kleinhoonte) Sandwith
Crudia glaberrima (Steud.) J.F. Macbr.
Parkinsonia aculeata L.
Crudia oblonga Benth.
Peltogyne loribunda (H.B.K.) Pittier
Cynometra bauhiniifolia Benth.
Peltogyne paniculata Benth.
Cynometra marginata Benth.
Peltogyne venosa (Vahl) Benth.
Cynometra spruceana Benth.
Peltophorum pterocarpum (DC.) Backer ex K. Heyne
Delonix regia (Bojer) RaF.
Recordoxylum pulcherrimum Barneby
Dialium guianense (Aubl.) Sandwith
Schizolobium parahyba var. amazonicum (Huber ex Ducke) Barneby
Dicymbe bernardii R. Cowan
Senna aculeata (Benth.) H.S. Irwin y Barneby
Dicymbe duidae R. Cowan
Senna alata (L.) Roxb.
Dicymbe fraterna R. Cowan
Senna atomaria (L.) H.S. Irwin y Barneby
Dicymbe hymenaea Barneby
Senna bacillaris (L. F.) H.S. Irwin y Barneby
Dicymbe paruensis R. Cowan
Senna cobanensis (Britton) H.S. Irwin y Barneby
Dicymbe praeruptorum Barneby
Senna latifolia (G. Mey.) H.S. Irwin y Barneby
Dicymbe uaiparuensis R. Cowan
Senna macranthera var. quadrifoliolata (Pittier) H.S. Irwin y Barneby
Dicymbe yutajensis R. Cowan
Senna macrophylla var. gigantifolia (Britton y Killip) H.S. Irwin y Barneby
Dicymbe sp. A
Senna multijuga (Rich.) H.S. Irwin y Barneby
Dimorphandra cuprea Sprague y Sandwith
Senna obtusifolia (L.) H.S. Irwin y Barneby
Dimorphandra davisii Sprague y Sandwith
Senna occidentalis (L.) Link
Dimorphandra dissimilis R.S. Cowan
Senna pendula (Humb. y Bonpl. ex Willd.) H.S. Irwin y Barneby
Dimorphandra macrostachya Benth.
Senna pilifera var. subglabra (S. Moore) H.S. Irwin y Barneby
Dimorphandra unijuga Tul.
Senna quinquangulata (Rich.) H.S. Irwin y Barneby
Elizabetha princeps R.M. Schomb. ex Benth.
Senna reticulata (Willd.) H.S. Irwin y Barneby
Eperua falcata Aubl.
Senna robiniifolia (Benth.) H.S. Irwin y Barneby
Eperua jenmanii Oliv.
Senna sandwithiana H.S. Irwin y Barneby
Eperua purpurea Benth.
Senna silvestris (Vell.) H.S. Irwin y Barneby
Eperua venosa R. Cowan
Senna spectabilis (DC.) H.S. Irwin y Barneby
Eperua sp. A
Senna spinescens (Vogel) H.S. Irwin y Barneby
Heterostemon mimosoides var. pacimoniensis R. Cowan
Senna undulata (Benth.) H.S. Irwin y Barneby
Hymenaea courbaril L. var. courbaril
Senna velutina (Vogel) H.S. Irwin y Barneby
Hymenaea parvifolia Huber
Senna wurdackii H.S. Irwin y Barneby
Jacqueshuberia pustulata Stergios
Tachigali albilora (Benoist) Zarucchi y Herend.
Jacqueshuberia splendens Stergios
Tachigali cavipes (Spruce ex Benth.) J.F. Macbr.
Macrolobium acaciifolium (Benth.) Benth.
Tachigali chrysophylla (Poepp.) Zarucchi y Herend.
Macrolobium acrothamnos R. Cowan
Tachigali davidsei Zarucchi y Herend.
Macrolobium angustifolium (Benth.) R. Cowan
Tachigali guianensis (Benth.) Zarucchi y Herend.
Macrolobium anomalum R. Cowan
Tachigali odoratissima (Spruce ex Benth.) Zarucchi y Herend.
465
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Tachigali paniculata Aubl.
Polycarpaea corymbosa (L.) Lam. var. brasiliensis (Cambess.) Chodat y Hassl.
Tachigali physophora (Huber) Zarucchi y Herend.
Polycarpon apurense H.B.K.
Tachigali pulchra Dwyer
CECROPIACEAE
Tachigali reticulosa (Dwyer) Zarucchi y Herend.
Cecropia angulata I.W. Bailey
Tachigali rusbyi Harms
Cecropia distachya Huber
Tamarindus indica L.
Cecropia engleriana Snethl.
CAMPANULACEAE
Cecropia icifolia Warb. ex Snethl.
Centropogon cornutus (L.) Druce
Cecropia kavanayensis Cuatrec.
Centropogon roraimanus E. Wimm.
Cecropia latiloba Miq.
Hippobroma longilora (L.) G. Don
Cecropia membranacea Trécul
Lobelia aquatica Cham.
Cecropia metensis Cuatrec.
Siphocampylus reticulatus (Willd. ex Roem. y Schult.) Vatke
Cecropia peltata L.
Siphocampylus tillettii Steyerm.
Cecropia sciadophylla Mart.
Siphocampylus sp. A
Coussapoa asperifolia Trécul
CAPPARACEAE
Coussapoa crassivenosa Mildbr.
Capparis amplissima Lam.
Coussapoa orthoneura Standl.
Capparis detonsa Triana y Planch.
Coussapoa parvifolia Standl.
Capparis lexuosa (L.) L. subsp. polyantha (Triana y Planch.) H.H. Iltis
Coussapoa trinervia Spruce ex Mildbr.
Capparis frondosa Jacq.
Coussapoa villosa Poepp. y Endl.
Capparis hastata Jacq. F. coccolobifolia (Mart. ex Eichler) H.H. Iltis y Dugand
Coussapoa viridifolia Cuatrec.
Capparis maroniensis Benoist
Pourouma acuminata Miq.
Capparis muco H.H. Iltis, L. Cumana y G. Aymard
Pourouma bicolor Mart. subsp. bicolor
Capparis odoratissima Jacq.
Pourouma cecropiifolia Mart.
Capparis osmantha Diels
Pourouma cucura Standl. y Cuatrec.
Capparis sola Macbr.
Pourouma guianensis Aubl. subsp. guianensis
Capparis verrucosa Jacq.
Pourouma melinonii Benoist subsp. melinonii
Capparis sp. A
Pourouma minor Benoist
Cleome guianensis Aubl.
Pourouma mollis Trécul subsp. mollis
Cleome gynandra L.
Pourouma ovata Trécul
Cleome latifolia Vahl ex DC.
Pourouma tomentosa Miq.
Cleome parvilora H.B.K.
Pourouma velutina Miq.
Cleome pilosa Benth.
CELASTRACEAE
Cleome spinosa Jacq.
Elaeodendron xylocarpum (Vent.) DC.
Cleome viridilora Schreb.
Goupia glabra Aubl.
Crateva tapia L.
Maytenus apiculata Steyerm.
Morisonia americana L.
Maytenus iciformis Reissek
Steriphoma ellipticum (DC.) Spreng.
Maytenus guyanensis Klotzsch ex Reissek
CAPRIFOLIACEAE
Maytenus huberi Steyerm.
Sambucus canadensis L. var. laciniata A. Gray
Maytenus insculpta Steyerm.
Viburnum tinoides L. var. roraimense (Killip y A.C. Sm.) Steyerm.
Maytenus kanukuensis A.C. Sm.
Viburnum sp. A
Maytenus laevis Reissek
CARICACEAE
Maytenus macrocarpa (Ruiz y Pav.) Briq.
Carica papaya L
Maytenus myrsinoides Reissek
CARYOCARACEAE
Maytenus pittieriana Steyerm.
Anthodiscus mazarunensis Gilly
Maytenus pruinosa Reissek
Anthodiscus obovatus Benth. ex Wittm.
Zinowiewia aymardii Steyerm.
Caryocar glabrum (Aubl.) Pers.
CHENOPODIACEAE
Caryocar microcarpum Ducke
Chenopodium ambrosioides L.
Caryocar montanum Prance
CHLORANTHACEAE
Caryocar nuciferum L.
Hedyosmum intermedium Todzia
Caryocar pallidum A.C. Sm.
Hedyosmum tepuiense Todzia
Caryocar villosum (Aubl.) Pers.
CHRYSOBALANACEAE
CARYOPHYLLACEAE
Chrysobalanus icaco L.
Drymaria cordata (L.) Willd. ex Roem. y Schult. subsp. cordata
Chrysobalanus venezuelanus Prance
466
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Couepia canescens (Gleason) Prance
Licania guianensis (Aubl.) Griseb.
Couepia cognata (Steud.) Fritsch
Licania heteromorpha Benth.
Couepia foveolata Prance
Licania hispida Prance
Couepia guianensis Aubl.
Licania hitchcockii Maguire
Couepia maguirei Prance
Licania hypoleuca Benth.
Coupeia obovata Ducke
Licania incana Aubl.
Couepia paraensis (Mart. y Zucc.) Benth.
Licania intrapetiolaris Spruce ex Hook. F.
Couepia racemosa Benth. ex Hook. F.
Licania irwinii Prance
Couepia sandwithii Prance
Licania kunthiana Hook. F.
Couepia steyermarkii Maguire
Licania laevigata Prance
Exellodendron barbatum (Ducke) Prance
Licania lasseri Maguire
Exellodendron coriaceum (Benth.) Prance
Licania lata J.F. Macbr.
Hirtella adderleyi Prance
Licania latifolia Benth. ex Hook. F.
Hirtella bicornis Mart. y Zucc.
Licania latistipula Prance
Hirtella bullata Benth.
Licania leucosepala Griseb.
Hirtella confertilora Prance
Licania licaniilora (Sagot) S.F. Blake
Hirtella cowanii Prance y Maguire
Licania longistyla (Hook. F.) Fritsch
Hirtella davisii Sandwith
Licania maxima Prance
Hirtella delexa Fanshawe y Maguire
Licania micrantha Miq.
Hirtella duckei Huber
Licania minutilora (Sagot) Fritsch
Hirtella elongata Mart. y Zucc.
Licania mollis Benth.
Hirtella glabrata Pilg.
Licania octandra (Hofsgg. ex Roem. y Schult.) Kuntze
Hirtella glandulosa Spreng.
Licania orbicularis Spruce ex Hook. F.
Hirtella guainiae Spruce ex Hook. F.
Licania pakaraimensis Prance
Hirtella hispidula Miq.
Licania pallida Spruce ex Sagot
Hirtella longipedicellata Prance
Licania parvilora Benth.
Hirtella macrosepala Sandwith
Licania parvifolia Huber
Hirtella orbicularis Prance
Licania parvifructa Fanshawe y Maguire
Hirtella paniculata Sw.
Licania petrensis Prance
Hirtella physophora Mart. y Zucc.
Licania polita Spruce ex Hook. F.
Hirtella pimichina Lasser y Maguire
Licania pyrifolia Griseb.
Hirtella punctillata Ducke
Licania rufescens Klotzsch ex Fritsch
Hirtella racemosa Lam.
Licania sprucei (Hook. F.) Fritsch
Hirtella scabra Benth.
Licania steyermarkii Maguire
Hirtella schultesii Prance
Licania subarachnophylla Cuatrec.
Hirtella silicea Griseb.
Licania triandra Mart. ex Hook. F.
Hirtella tentaculata Poepp.
Licania vaupesiana Killip y Cuatrec.
Hirtella triandra Sw.
Licania wurdackii Prance
Hirtella ulei Pilg.
Licania sp. A
Licania alba (Bernoulli) Cuatrec.
Parinari campestris Aubl.
Licania apetala (E. Mey.) Fritsch
Parinari excelsa Sabine
Licania boyanii Tutin
Parinari maguirei Prance
Licania canescens Benoist
Parinari pachyphylla Rusby
Licania cordata Prance
Parinari rodolphii Huber
Licania coriacea Benth.
Parinari sprucei Hook. F.
Licania crassivenia Spruce ex Hook. F.
CLETHRACEAE
Licania cruegeriana Urb.
Clethra guyanensis Klotzsch ex Meissn.
Licania densilora Kleinhoonte
CLUSIACEAE
Licania discolor Pilg.
Calophyllum brasilense Cambess.
Licania divaricata Benth.
Caraipa densifolia Mart. subsp. densifolia Mart.
Licania egleri Prance
Caraipa grandifolia Mart. subsp. grandifolia
Licania foldatsii Prance
Caraipa llanorum Cuatrec.
Licania furfuracea Prance
Caraipa longipedicellata Steyerm.
Licania glabrilora Prance
Caraipa parvielliptica Cuatrec.
467
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Caraipa punctulata Ducke
Clusia rosea Jacq.
Caraipa richardiana Cambess.
Clusia rotundifolia Gleason
Caraipa savannarum Kubitzki
Clusia savannarum Maguire
Caraipa spuria Barb. Rodr.
Clusia schomburgkiana (Planch. y Triana) Benth. ex Engl.
Caraipa tereticaulis Tul.
Clusia schomburgkii Vesque
Caraipa sp.
Clusia sipapoana (Maguire) Pipoly
Chrysochlamys membranacea Planch. y Triana
Clusia spathulaefolia Engl.
Chrysochlamys paucilora Steyerm.
Clusia steyermarkii Maguire
Chrysochlamys weberbaueri Engl.
Clusia troncosii Maguire
Clusia amabilis Maguire
Clusia amazonica Planch. y Triana
Clusia sp. A [Será publicada por Pipoly usando el nombre de “Clusia bonnetioides”]
Clusia annularis Maguire
Clusia sp. B [Será publicada por Pipoly usando el nombre de “Clusia boomii”]
Clusia asymmetrica Pipoly
Clusia sp. C [Será publicada por Pipoly como “Clusia oligandra” Maguire ex
Pipoly]
Clusia aymardii Pipoly
Clusia candelabrum Planch. y Triana
Clusia sp. D [Será publicada por Pipoly como “Clusia picta” = Oedematopus
polycarpus]
Clusia cardonae Maguire
Garcinia macrophylla Mart.
Clusia cerroana Steyerm.
Garcinia madruno (H.B.K.) Hammel
Clusia chiribiquetensis Maguire
Hypericum marahuacanum N. Robson
Clusia cochlitheca Maguire
Mahurea exstipulata Benth. subsp. duckei (Huber) Kubitzki
Clusia columnaris Engl.
Mahurea exstipulata Benth. subsp. exstipulata
Clusia comans (Meisn.) Pipoly
Moronobea coccinea Aubl.
Clusia crassifolia Planch. y Triana
Moronobea jenmani Engl.
Clusia duartei Maguire
Moronobea ptaritepuiana Steyerm.
Clusia duidae Gleason
Neotatea duidae (Kobuski y Steyerm.) P.F. Stevens y A.L. Weitzman
Clusia fabiolae Pipoly
Neotatea longifolia (Gleason) Maguire
Clusia lavida (Benth.) Pipoly
Platonia insignis Mart.
Clusia fockeana Miq.
Symphonia globulifera L. F.
Clusia grandilora Splitg
Tovomita acutilora M.S. Barros y G. Mariz
Clusia gratula Maguire
Tovomita albilora A.C. Sm.
Clusia guayanae Pipoly
Tovomita atropurpurea Steyerm.
Clusia hexacarpa Gleason
Tovomita brevistaminea Engl.
Clusia huberi Pipoly
Tovomita carinata Eyma
Clusia imbricata Steyerm.
Tovomita eggersii Vesque
Clusia brachystyla Maguire
Clusia insignis Mart.
Tovomita fanshawei Maguire
Clusia lopezii Maguire
Tovomita af. glazioviana Engl.
Clusia martiana Engl.
Tovomita gracilipes Planch. y Triana
Clusia melchiori Gleason
Tovomita longifolia (Rich.) Hochr.
Clusia microstemon Planch. y Triana
Tovomita rubella Spruce ex Planch. y Triana
Clusia minor L.
Tovomita schomburgkii Planch. y Triana
Clusia nemorosa G. Mey.
Tovomita spruceana Planch. y Triana
Clusia obovata (Spruce ex Planch. y Triana) Pipoly
Tovomita tenuilora Benth. ex Planch. y Triana
Clusia octandra (Poepp.) Pipoly
Tovomita umbellata Benth.
Clusia opaca Maguire
Tovomita weddelliana Planch. y Triana
Clusia pachyphylla Gleason
Tovomita sp. A [T. auriculata Cuello y Pipoly sp. nov. ined.]
Clusia palmicida Rich. ex Planch. y Triana
Tovomita sp. B [T. foldatsii Cuello y Pipoly, sp. nov. ined.]
Clusia panapanari Choisy
Clusia parvula (Maguire) Pipoly
Tovomita sp. C [T. berryii Cuello y Pipoly, sp. nov. ined.]
Clusia phelpsiae Lasser y Maguire
Tovomita sp. E [T. agostiniana]
Clusia phelpsiana Maguire
Vismia cayennensis (Jacq.) Pers.
Clusia ptaritepuiensis (Steyerm.) Pipoly
Vismia guianensis (Aubl.) Choisy
Clusia pusilla Steyerm.
Vismia japurensis Reichardt
Clusia radiata Maguire y K.D. Phelps
Vismia lauriformis (Lam.) Choisy
Clusia renggerioides Planch. y Triana
Vismia laxilora Reichardt
468
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Vismia macrophylla H.B.K.
Rourea amazonica (Baker) Radlk.
Vismia sandwithii Ewan
Rourea cuspidata Benth. ex Baker
Vismia sessilifolia (Aubl.) Choisy
Rourea foreroi Aymard y P.E. Berry
Vismia steyermarkii N. Robson
Rourea frutescens Aubl.
Vismia tenuinervia (M.E. Berg) N. Robson
Rourea glabra H.B.K.
COMBRETACEAE
Rourea grosourdyana Baill.
Buchenavia congesta Ducke
Rourea krukovii Steyerm.
Buchenavia fanshawei Exell y Maguire
Rourea pubescens (DC.) Radlk.
Buchenavia grandis Ducke
Rourea sprucei G. Schellenb
Buchenavia macrophylla Eichler
Rourea surinamensis Miq.
Buchenavia ochroprumna Eichler
CONVOLVULACEAE
Buchenavia oxycarpa (Mart.) Eichler
Aniseia martinicensis (Jacq.) Choisy
Buchenavia pallidovirens Cuatrec
Aniseia minor (Choisy) J.A. McDonald
Buchenavia parvifolia Ducke
Bonamia apurensis D.F. Austin
Buchenavia reticulata Eichler
Bonamia holtii O’Donell
Buchenavia suaveolens Eichler
Bonamia maripoides Hallier F.
Buchenavia tetraphylla (Aubl.) R.A. Howard
Calycobolus glaber (H.B.K.) House
Buchenavia viridilora Ducke
Convolvulus nodilorus Desr.
Combretum assimile Eichler
Dicranostyles ampla Ducke
Combretum cacoucia Exell
Dicranostyles globostigma D.F. Austin
Combretum decandrum Jacq.
Dicranostyles guianensis Mennega
Combretum frangulifolium H.B.K.
Dicranostyles holostyla Ducke
Combretum fruticosum (Loel.) Stuntz
Dicranostyles longifolia Ducke
Combretum laurifolium Mart.
Dicranostyles scandens Benth.
Combretum laxum Jacq.
Dicranostyles sericea Gleason
Combretum pyramidatum Desv.
Evolvulus alsinoides (L.) L.
Combretum rotundifolium Rich.
Evolvulus cardiophyllus Schltdl.
Combretum spinosum Bonpl.
Evolvulus elegans Moric.
Laguncularia racemosa (L.) C.F. Gaertn.
Evolvulus ilipes Mart.
Terminalia amazonia (J.F. Gmel.) Exell
Evolvulus frankenioides Moric.
Terminalia crispialata (Ducke) Alwan y Stace
Evolvulus glomeratus Nees y Mart.
Terminalia dichotoma G. Mey.
Evolvulus nummularius (L.) L.
Terminalia guaiquinimae Maguire y Exell
Evolvulus ovatus Fernald
Terminalia guyanensis Eichler
Evolvulus pterocaulon Moric.
Terminalia lucida Hofsgg. ex Mart.
Evolvulus sericeus Sw.
Terminalia oblonga (Ruiz y Pav.) Steud.
Evolvulus tenuis Mart. ex Choisy subsp. sericatus (House) Ooststr.
Terminalia quintalata Maguire
Evolvulus villosissimus Ooststr.
Terminalia ramatuella Alwan y Stace
Ipomoea alba L.
Terminalia steyermarkii Alwan y Stace
Ipomoea argentea Meisn.
Terminalia virens (Spruce ex Eichler) Alwan y Stace
Ipomoea asarifolia (Desr.) Roem. y Schult.
Terminalia yapacana Maguire
Ipomoea batatas (L.) Lam.
CONNARACEAE
Ipomoea carnea Jacq. subsp. istulosa (Mart. ex Choisy) D.F. Austin
Cnestidium guianense (G. Schellenb.) G. Schellenb.
Ipomoea discolor (H.B.K.) G. Don
Connarus cordatus L.A. Vidal, Carbonó y Forero
Ipomoea imbriosepala Choisy
Connarus coriaceus G. Schellenb.
Ipomoea hederifolia L.
Connarus lambertii (DC.) Sagot
Ipomoea imperati (Vahl) Griseb.
Connarus perrotteti (DC.) Planch.
Ipomoea incarnata (Vahl) Choisy
Connarus punctatus Planch.
Ipomoea indica (Burm.) Merr.
Connarus rigidus Forero
Ipomoea mauritiana Jacq.
Connarus ruber (Poepp.) Planch.
Ipomoea meyeri (Spreng.) G. Don
Connarus ruber (Poepp.) Planch.
Ipomoea minutilora (M. Martens y Galeotti) House
Connarus venezuelanus Baill.
Ipomoea nil (L.) Roth
Pseudoconnarus macrophyllus (Poepp.) Radlk.
Ipomoea pes-caprae (L.) R. Br.
Pseudoconnarus subtriplinervis (Radlk.) G. Schellenb.
Ipomoea phyllomega (Vell.) House
469
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Ipomoea piurensis O’Donell
Fevillea cordifolia L.
Ipomoea quamoclit L.
Gurania acuminata Cogn.
Ipomoea reticulata O’Donell
Gurania huberi Cogn.
Ipomoea rubens Choisy
Gurania nigrescens C. Jefrey
Ipomoea schomburgkii Choisy
Gurania simplicifolia (Steyerm.) C. Jefrey
Ipomoea setifera Poir.
Gurania spinulosa (Poepp. y Endl.) Cogn.
Ipomoea squamosa Choisy
Gurania spruceana Cogn.
Ipomoea subrevoluta Choisy
Gurania subumbellulata (Miq.) Cogn.
Ipomoea tiliacea (Willd.) Choisy
Gurania trialata Cogn.
Ipomoea triida (H.B.K .) G. Don
Helmontia lepthanta (Schltdl.) Cogn.
Ipomoea turbinata Lag.
Lagenaria siceraria (Molina) Standl.
Iseia luxurians (Moric.) O’Donell
Lufa cylindrica (L.) M. Roem.
Jacquemontia agrestis (Choisy) Meisn.
Lufa sepium (G. Mey.) C. Jefrey
Jacquemontia ciliata Sandwith
Melothria pendula L.
Jacquemontia densilora (Meisn.) Hallier F.
Melothria trilobata Cogn.
Jacquemontia gracillima (Choisy) Hallier F.
Momordica charantia L.
Jacquemontia guyanensis (Aubl.) Meisn.
Posadaea sphaerocarpa Cogn.
Jacquemontia pentantha (Jacq.) G. Don
Psiguria triphylla (Miq.) C. Jefrey
Jacquemontia sphaerostigma (Cav.) Rusby
Psiguria umbrosa (H.B.K.) C. Jefrey
Jacquemontia tamnifolia (L.) Griseb.
Psiguria sp. A
Lysiostyles scandens Benth.
Rytidostylis amazonica (Mart. ex Cogn.) Spruce ex Kuntze
Maripa densilora Benth.
CUNONIACEAE
Maripa elongata Ducke
Weinmannia balbisiana H.B.K.
Maripa paniculata Barb. Rodr.
Weinmannia brachystachya Willd. ex Engl.
Maripa paucilora D.F. Austin
Weinmannia corocoroensis J.C. Bradford y P.E. Berry
Maripa repens Rusby
Weinmannia elliptica H.B.K.
Maripa scandens Aubl.
Weinmannia fagaroides H.B.K.
Merremia aturensis (H.B.K.) Hallier F.
Weinmannia glabra L. F.
Merremia cissoides (Lam.) Hallier F.
Weinmannia guyanensis Klotzsch ex Engl.
Merremia macrocalyx (Ruiz y Pav.) O’Donell
Weinmannia laxiramea Killip y A.C. Sm.
Merremia maypurensis Hallier F.
Weinmannia sorbifolia H.B.K.
Merremia quinquefolia (L.) Hallier F.
Weinmannia velutina O.C. Schmidt
Merremia ternifoliola Pittier
Weinmannia sp. A
Merremia umbellata (L.) Hallier F.
CUSCUTACEAE
Merremia wurdackii D.F. Austin y Staples
Cuscuta campestris Yuncker
Odonellia hirtilora (M. Martens y Galeotti) K.R. Robertson
Cuscuta costaricensis Yuncker
Operculina hamiltonii (G. Don) D.F. Austin y Staples
Cuscuta indecora Choisy
Operculina sericantha (Miq.) Ooststr.
CYRILLACEAE
CRASSULACEAE
Cyrilla racemilora L.
Kalanchoë pinnata (Lam.) Pers.
Purdiaea nutans Planch.
CUCURBITACEAE
DICHAPETALACEAE
Cayaponia cruegeri (Naudin) Cogn.
Dichapetalum froesii Prance
Cayaponia granatensis Cogn.
Dichapetalum pedunculatum (DC.) Baill.
Cayaponia guianensis C. Jefrey
Dichapetalum rugosum (Vahl) Prance
Cayaponia jenmanii C. Jefrey
Tapura amazonica Poepp.
Cayaponia macrocalyx Harms
Tapura capitulifera Spruce ex Baill.
Cayaponia metensis Cuatrec.
Tapura guianensis Aubl.
Cayaponia ophthalmica R.E. Shult.
DILLENIACEAE
Cayaponia racemosa (Mill.) Cogn.
Curatella americana L.
Cayaponia selysioides C. Jefrey
Davilla kunthii A. St.-Hil.
Ceratosanthes palmata (L.) Urb.
Davilla nitida (Vahl) Kubitzki
Cucumis anguria L.
Davilla rugosa Poir. var. rugosa
Cucurbita moschata(Duch. ex Lam.) Duch. ex Poir.
Davilla steyermarkii Kubitzki
Doyerea emetocathartica Grosourdy
Doliocarpus areolatus Kubitzki
470
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Doliocarpus brevipedicellatus Garcke
Drosera roraimae (Klotzsch ex Diels) Maguire y J.R. Laundon
Doliocarpus carnevaliorum Aymard
Drosera sessilifolia A. St.-Hil.
Doliocarpus dentatus (Aubl.) Standl.
Drosera yutajensis Duno y Culham
Doliocarpus guianensis (Aubl.) Gilg
EBENACEAE
Doliocarpus hispidobaccatus Aymard
Diospyros artanthifolia Mart.
Doliocarpus leiophyllus Kubitzki
Diospyros capreifolia Mart. ex Hiern
Doliocarpus macrocarpus Mart. ex Eichler
Diospyros guianensis (Aubl.) Gürke
Doliocarpus major J.F. Gmel.
Diospyros guianensis (Aubl.) Gürke
Doliocarpus paucinervis Kubitzki
Diospyros ierensis Britton
Doliocarpus prancei Kubitzki
Diospyros inconstans Jacq.
Doliocarpus savannarum Sandwith
Diospyros lissocarpoides Sandw.
Doliocarpus spraguei Cheesman
Diospyros poeppigiana A. DC.
Doliocarpus verruculosus Kubitzki
Diospyros vestita Benoist
Pinzona coriacea Mart. y Zucc.
Diospyros sp. A
Tetracera costata Mart. ex Eichler
ELAEOCARPACEAE
Tetracera surinamensis Miq.
Sloanea bolivarensis Steyerm.
Tetracera tigarea DC.
Sloanea brachytepala Ducke
Tetracera volubilis L.
Sloanea brevipes Benth.
Tetracera willdenowiana Steud.
Sloanea carrenoi Steyerm.
DIOSCOREACEAE
Sloanea cataniapensis Steyerm.
Dioscorea alata L.
Sloanea caudata Steyerm.
Dioscorea altissima Lam.
Sloanea cavicola Steyerm.
Dioscorea amazonum Mart. ex Griseb.
Sloanea crassifolia C.E. Sm.
Dioscorea aspera Humb. y Bonpl. ex Willd.
Sloanea davidsei Steyerm.
Dioscorea atrescens R. Knuth
Sloanea eichleri K. Schum.
Dioscorea bolivarensis Steyerm.
Sloanea grandilora Sm.
Dioscorea cayenensis Lam.
Sloanea guianensis (Aubl.) Benth.
Dioscorea crotalariifolia Uline
Sloanea laxilora Spruce ex Benth.
Dioscorea cuspidata Humb. y Bonpl. ex Willd
Sloanea longiaristata Steyerm.
Dioscorea decorticans C. Presl
Sloanea megacarpa Steyerm. y Marc.-Berti
Dioscorea holmioidea Maury
Sloanea merevariensis Pittier ex Steyerm.
Dioscorea nitida R. Knuth
Sloanea obtusifolia (Moric.) K. Schum.
Dioscorea panamensis R. Knuth
Sloanea pittieriana Steyerm.
Dioscorea pilosiuscula Bertero
Sloanea ptariana Steyerm.
Dioscorea piperifolia Humb. y Bonpl. ex Willd.
Sloanea pubescens (Poepp.) Benth.
Dioscorea pittieri R. Knuth
Sloanea robusta Uittien
Dioscorea polygonoides Humb. y Bonpl. ex Willd.
Sloanea rufa Planch. ex Benth.
Dioscorea scabra Humb. y Bonpl. ex Willd.
Sloanea sipapoana Steyerm.
Dioscorea sororopana Steyerm.
Sloanea spathulata C.E. Sm.
Dioscorea trichanthera Gleason
Sloanea steyermarkii C.E. Sm.
Dioscorea triida L. F.
Sloanea steyermarkii C.E. Sm.
Dioscorea trifoliata H.B.K.
Sloanea stipitata Spruce ex Benth.
Dioscorea sp. A
Sloanea subpsilocarpa Steyerm.
DROSERACEAE
Sloanea synandra Spruce ex Benth.
Drosera arenicola Steyerm.
Sloanea ternilora (Moc. y Sessé ex DC.) Standl.
Drosera bilora Willd. ex Roem. y Schult.
Sloanea venezuelana Steyerm.
Drosera capillaris Poir.
Sloanea wurdackii Steyerm.
Drosera cayennensis Sagot ex Diels
Sloanea sp. C
Drosera communis A. St.-Hil.
Sloanea sp. D
Drosera esmeraldae (Steyerm.) Maguire y Wurdack
EREMOLEPIDACEAE
Drosera felix Steyerm. y L.B. Sm.
Antidaphne antidaphneoides (Rizzini) Kuijt
Drosera hirticalyx Duno y Culham
Antidaphne viscoidea Poepp.
Drosera intermedia Hayne
Eubrachion gracilis Kuijt
Drosera kaieteurensis Brumm.-Ding.
ERICACEAE
471
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Agarista duckei (Huber) Judd
hibaudia smithiana Maguire, Steyerm. y Luteyn
Bejaria aestuans L.
hibaudia truncata A.C. Sm.
Bejaria imthurnii N.E. Br.
Vaccinium chimantense Maguire, Steyerm. y Luteyn
Bejaria sprucei Meisn.
Vaccinium euryanthum A.C. Smith
Cavendishia callista Donn.Sm.
Vaccinium puberulum Klotzsch ex Meisn.
Disterigma humboldtii (Klotzsch) Nied.
Vaccinium roraimense N.E. Br.
Gaultheria alnifolia (Dunal) A.C. Sm. var. alnifolia
Vaccinium steyermarkii Luteyn
Gaultheria erecta Vent.
ERYTHROXYLACEAE
Gaultheria setulosa N.E. Br.
Erythroxylum amazonicum Peyr.
Gaylussacia buxifolia H.B.K.
Erythroxylum cataractarum Spruce ex Peyr.
Ledothamnus atroadenus Maguire, Steyerm. y Luteyn
Erythroxylum citrifolium A. St.-Hil.
Ledothamnus decumbens Maguire, Steyerm. y Luteyn
Erythroxylum divaricatum Peyr.
Ledothamnus guyanensis Meisn.
Erythroxylum foetidum Plowman
Ledothamnus jauaensis Maguire, Steyerm. y Luteyn
Erythroxylum gracilipes Peyr.
Ledothamnus luteus Maguire, Steyerm. y Luteyn
Erythroxylum guanchezii Plowman
Ledothamnus parvilorus Gleason
Erythroxylum havanense Jacq.
Ledothamnus sessililorus N.E. Br.
Erythroxylum impressum O.E. Schulz
Mycerinus chimantensis Maguire, Steyerm. y Luteyn
Erythroxylum kapplerianum Peyr.
Mycerinus sclerophyllus A.C. Sm.
Erythroxylum lenticellosum Huber
Mycerinus viridilorus Steyerm. y Maguire
Erythroxylum ligustrinum DC.
Notopora auyantepuiensis Steyerm.
Erythroxylum lindemanii Plowman
Notopora cardonae A.C. Sm.
Erythroxylum lineolatum DC.
Notopora chimantensis Steyerm. y Maguire
Erythroxylum macrophyllum Cav.
Notopora schomburgkii Hook.F.
Erythroxylum mucronatum Benth.
Notopora smithiana Steyerm. y Maguire
Erythroxylum oreophilum (O.E. Schulz ex Pilg.) Steyerm. y Maguire
Orthaea crinita A.C. Sm.
Erythroxylum orinocense H.B.K.
Orthaea merumensis Maguire, Steyerm. y Luteyn
Erythroxylum roraimae Klotzsch ex O.E. Schulz
Orthaea paruensis Maguire, Steyerm. y Luteyn
Erythroxylum rufum Cav.
Orthaea thibaudioides Maguire, Steyerm. y Luteyn
Erythroxylum schomburgkii Peyr.
Orthaea venamensis Maguire, Steyerm. y Luteyn
Erythroxylum steyermarkii Plowman
Pernettya marginata N.E. Br.
Erythroxylum suberosum A. St.-Hil.
Psammisia guianensis Klotzsch
Erythroxylum af. subrotundum A. St.-Hil.
Psammisia urichiana (Britton) A.C. Sm.
Erythroxylum vernicosum O.E. Schulz
Satyria carnosilora Lanj.
Erythroxylum williamsii Standl. ex Plowman
Satyria panurensis (Benth. ex Meisn.) Benth. y Hook.F. ex Nied.
EUPHORBIACEAE
Sphyrospermum buxifolium Poepp. y Endl.
Acalypha alopecuroides Jacq.
Sphyrospermum cordifolium Benth.
Acalypha arvensis Poepp.
Sphyrospermum klotzschianum (MansF.) A.C. Sm.
Acalypha cuneata Poepp.
Tepuia cardonae A.C. Sm.
Acalypha diversifolia Jacq.
Tepuia intermedia Steyerm.
Acalypha macrostachya Jacq.
Tepuia multiglandulosa Steyerm. y Maguire
Acalypha scandens Benth.
Tepuia speciosa A.C. Sm.
Acalypha schiedeana Schltdl.
Tepuia tatei Camp
Acalypha setosa A. Rich.
Tepuia vareschii Steyerm.
Acalypha villosa Jacq.
Tepuia venusta Camp
Acidoton nicaraguensis (Hemsl.) G.L. Webster
hibaudia breweri Steyerm. y Maguire
Actinostemon amazonicus Pax y K. Hofm.
hibaudia carrenoi Steyerm. y Maguire
Actinostemon schomburgkii (Klotzsch) Hochr.
hibaudia cupatensis Huber
Adelia triloba (Müll. Arg.) Hemsl.
hibaudia dolichandra Maguire, Steyerm. y Luteyn
Adenophaedra grandifolia (Klotzsch) Müll Arg.
hibaudia formosa (Klotzsch) Hoerold
Alchornea castaneifolia (Willd.) A. Juss.
hibaudia glandulifera A.C. Sm.
Alchornea discolor Poepp.
hibaudia involucrata A.C. Sm.
Alchornea glandulosa Poepp.
hibaudia longipes Maguire, Steyerm. y Luteyn
Alchornea grandilora Müll. Arg.
hibaudia nutans Klotzsch ex MansF.
Alchornea triplinervia (Spreng.) Müll. Arg.
472
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Alchorneopsis loribunda (Benth.) Müll. Arg.
Croton sp. B
Amanoa almerindae Leal
Croton sp. C.
Amanoa cupatensis Huber
Croton sp. D.
Amanoa glaucophylla Müll. Arg.
Croton sp. E
Amanoa guianensis Aubl.
Croton sp. G
Amanoa steyermarkii Jabl.
Croton sp. H
Aparisthmium cordatum (A. Juss.) Baill.
Dalechampia ainis Müll. Arg.
Bernardia amazonica Croizat
Dalechampia attenuistylus Armbr.
Caperonia castaneifolia (L.) A. St.-Hil.
Dalechampia brownsbergensis G.L. Webster and Armbr.
Celianella montana Jabl.
Dalechampia dioscoreifolia Poepp.
Chaetocarpus schomburgkianus (Kuntze) Pax y K. Hofm.
Dalechampia liesneri Hut
Chamaesyce dioeca (H.B.K.) Millsp.
Dalechampia magnoliifolia Müll. Arg.
Chamaesyce hirta (L.) Millsp.
Dalechampia megacarpa Armbr.
Chamaesyce hypericifolia (L.) Millsp.
Dalechampia papillistigma Armbr.
Chamaesyce hyssopifolia (L.) Small
Dalechampia scandens L.
Chamaesyce prostrata (Aiton) Small
Dalechampia tenuiramea Müll. Arg.
Chamaesyce thymifolia (L.) Millsp.
Dalechampia tiliifolia Lam.
Cnidoscolus urens (L.) Arthur
Dendrothrix multiglandulosa Esser
Conceveiba guianensis Aubl.
Dendrothrix yutajensis (Jabl.) Esser
Conceveiba martiana Baill.
Discocarpus essequeboensis Klotzsch
Conceveiba ptariana (Steyerm.) Jabl.
Discocarpus gentryi S.M. Hayden
Croton argenteus L.
Discocarpus spruceanus Müll. Arg.
Croton argyrophyllus H.B.K.
Ditaxis polygama (Jacq.) L.C. Wheeler
Croton bolivarensis Croizat
Drypetes fanshawei Sandwith
Croton cajucara Benth.
Drypetes variabilis Uittien
Croton conduplicatus H.B.K.
Euphorbia comosa Vell.
Croton cuneatus Klotzsch
Euphorbia cotinifolia L.
Croton fragrans H.B.K.
Euphorbia heterophylla L.
Croton gossypiifolius Vahl
Euphorbia humayensis Brandegee
Croton guaiquinimae Steyerm.
Euphorbia spruceana Boiss.
Croton hirtus L’Hér.
Gavarretia terminalis Baill.
Croton icabarui Jabl.
Glycydendron amazonicum Ducke
Croton lobatus L.
Hevea benthamiana Müll. Arg.
Croton matourensis Aubl.
Hevea guianensis Aubl.
Croton megalodendron Müll. Arg.
Hevea microphylla Ule
Croton mollis Benth.
Hevea paucilora (Spruce ex Benth.) Müll. Arg.
Croton nepetifolius Baill.
Hura crepitans L.
Croton nuntians Croizat
Hyeronima alchorneoides Allemão
Croton orinocensis Müll. Arg.
Hyeronima oblonga (Tul.) Müll. Arg.
Croton palanostigma Klotzsch
Jatropha curcas L.
Croton potaroensis Lanj.
Jatropha gossypiifolia L.
Croton roraimensis Croizat
Mabea anomala Müll. Arg.
Croton scutatus P.E. Berry y J.F. Gaskin
Mabea arenicola Esser
Croton sipaliwinensis Lanj.
Mabea frutescens Jabl.
Croton spiraeifolius Jabl.
Mabea linearifolia Jabl.
Croton spruceanus Benth.
Mabea montana Müll. Arg.
Croton subcoriaceus Jabl.
Mabea nitida Spruce ex Benth.
Croton subincanus Müll. Arg.
Mabea occidentalis Benth.
Croton subserratus Jabl.
Mabea piriri Aubl.
Croton trinitatis Millsp.
Mabea pulcherrima Müll. Arg.
Croton umbratilis H.B.K.
Mabea subsessilis Pax y K. Hofm.
Croton vergarenae (Jabl.) L.J. Gillespie
Mabea taquari Aubl.
Croton yavitensis Croizat
Mabea trianae Pax
Croton sp. A
Mabea sp. A
473
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Manihot anomala Pohl
Phyllanthus paezensis Jabl.
Manihot brachyloba Müll. Arg.
Phyllanthus paraqueensis Jabl.
Manihot carthaginensis (Jacq.) Müll. Arg.
Phyllanthus piscatorum H.B.K.
Manihot esculenta Crantz
Phyllanthus pycnophyllus Müll. Arg.
Manihot surinamensis D.J. Rogers y Appan
Phyllanthus rupestris H.B.K.
Manihot tristis Müll. Arg.
Phyllanthus stipulatus (RaF.) G.L. Webster
Maprounea amazonica Esser
Phyllanthus strobilaceus Jabl.
Maprounea guianensis Aubl.
Phyllanthus subapicalis Jabl.
Margaritaria nobilis L. F.
Phyllanthus tenellus Roxb.
Micrandra glabra (R.E. Schult.) R.E. Schult.
Phyllanthus tepuicola Steyerm.
Micrandra minor Benth.
Phyllanthus urinaria L.
Micrandra rossiana R.E. Schult.
Phyllanthus vacciniifolius (Müll. Arg.) Müll. Arg.
Micrandra siphonioides Benth.
Phyllanthus ventuarii Jabl.
Micrandra spruceana (Baill.) R.E. Schult.
Piranhea longepedunculata Jabl.
Micrandra sprucei (Müll. Arg.) R.E. Schult.
Piranhea trifoliata Baill.
Micrandra sp. A.
Plukenetia loretensis Ule
Microstachys corniculata (Vahl) Griseb.
Plukenetia multiglandulosa Jabl.
Omphalea diandra L.
Plukenetia penninervia Müll. Arg.
Pausandra martinii Baill.
Plukenetia polyadenia Müll. Arg.
Pedilanthus tithymaloides (L.) Poit.
Podocalyx loranthoides Klotzsch
Pera bicolor (Klotzsch) Müll. Arg.
Pogonophora schomburgkiana Miers ex Benth.
Pera citriodora Baill.
Richeria grandis Vahl
Pera decipiens (Müll. Arg.) Müll. Arg.
Ricinus communis L.
Pera distichophylla (Mart.) Baill.
Sagotia brachysepala (Müll. Arg.) Secco
Pera glabrata (Schott) Baill.
Sagotia racemosa Baill.
Pera tomentosa (Benth.) Müll. Arg.
Sandwithia guianensis Lanj.
Phyllanthus amarus Schumach.
Sandwithia heterocalyx Secco
Phyllanthus atabapoensis Jabl.
Sapium contortum Croizat
Phyllanthus attenuatus Miq.
Sapium glandulosum (L.) Morong
Phyllanthus bolivarensis Steyerm.
Sapium jenmanii Hemsl.
Phyllanthus borjaensis Jabl.
Sapium paucinervium Hemsl.
Phyllanthus brasiliensis (Aubl.) Poir.
Senefeldera inclinata Müll. Arg.
Phyllanthus caribaeus Urb.
Senefelderopsis chiribiquetensis (R. Schult. y Croizat) Steyerm.
Phyllanthus caroliniensis Walter
Senefelderopsis croizatii Steyerm.
Phyllanthus carrenoi Steyerm.
Tetrorchidium rubrivenium Poepp.
Phyllanthus chimantae Jabl.
Tragia fendleri Müll. Arg.
Phyllanthus duidae Gleason
Tragia guayanensis L.J. Gillespie
Phyllanthus elsiae Urb.
EUPHRONIACEAE
Phyllanthus luitans Benth. ex Müll. Arg.
Euphronia acuminatissima Steyerm.
Phyllanthus hyssopifolioides H.B.K.
Euphronia guianensis (R.H. Schomb.) Hallier F.
Phyllanthus jauaensis Jabl.
Euphronia hirtelloides Mart.
Phyllanthus juglandifolius Willd.
FABACEAE
Phyllanthus lediformis Jabl. Mem.
Abrus precatorius L.
Phyllanthus lindbergii Müll. Arg.
Abrus pulchellus Wall. ex hwaites
Phyllanthus longistylus Jabl.
Acosmium nitens (Vogel) Yakovlev
Phyllanthus maguirei Jabl.
Acosmium stirtoni Aymard y V. González
Phyllanthus major Steyerm.
Aeschynomene americana L.
Phyllanthus microphyllus H.B.K.
Aeschynomene brasiliana (Poir.) DC.
Phyllanthus minutifolius Jabl.
Aeschynomene evenia C. Wright
Phyllanthus minutulus Müll. Arg.
Aeschynomene luminensis Vell.
Phyllanthus myrsinites H.B.K.
Aeschynomene histrix Poir.
Phyllanthus obfalcatus Lasser y Maguire
Aeschynomene paniculata Willd. ex Vogel
Phyllanthus orbiculatus Rich.
Aeschynomene pratensis Small
Phyllanthus orinocensis Steyerm.
Aeschynomene rudis Benth.
474
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Aeschynomene scabra G. Don
Clitoria falcata Lam.
Aldina aurea R.S. Cowan
Clitoria guianensis (Aubl.) Benth.
Aldina berryi R.S. Cowan y Steyerm.
Clitoria javitensis (H.B.K.) Benth.
Aldina discolor Spruce ex Benth.
Clitoria laurifolia Poir.
Aldina elliptica R.S. Cowan
Clitoria sagotii Fantz
Aldina heterophylla Spruce ex Benth.
Clitoria simplicifolia (Kunth) Benth.
Aldina kunhardtiana R.S. Cowan
Clitoria steyermarkii Fantz
Aldina latifolia Spruce ex Benth.
Coursetia ferruginea (H.B.K.) Lavin
Aldina macrophylla Spruce ex Benth.
Crotalaria incana L.
Aldina paulberryi Aymard
Crotalaria maypurensis H.B.K.
Aldina reticulata R.S. Cowan
Crotalaria micans Link
Aldina sp. A
Crotalaria nitens H.B.K.
Aldina sp. B
Crotalaria pilosa Mill.
Aldina sp. C
Crotalaria retusa L.
Aldina sp. G
Crotalaria sagittalis L.
Alexa canaracunensis Pittier
Crotalaria spectabilis Roth
Alexa confusa Pittier
Crotalaria stipularia Desv.
Alexa cowanii Yakovlev
Crotalaria af. velutina Benth.
Alexa herminiana N. Ramírez
Cymbosema roseum Benth.
Alexa imperatricis (R.H. Schomb.) Baill.
Dalbergia amazonica (Radlk. ex Köpf) Ducke
Alysicarpus vaginalis (L.) DC.
Dalbergia ecastophyllum (P. Browne ex L.) Taub.
Andira inermis (W. Wright) DC.
Dalbergia foliosa (Benth.) A.M. Carvalho
Andira surinamensis (Bondt) Splitg. ex Amshof
Dalbergia frutescens (Vell.) Britton
Andira tervequinata R.T. Penn. Aymard y Cuello
Dalbergia hygrophila (Mart. ex Benth.) Hoehne
Andira sp. A.
Dalbergia intermedia A.M. Carvalho
Barbieria pinnata (Pers.) Baill.
Dalbergia inundata Spruce ex Benth.
Bowdichia virgilioides H.B.K.
Dalbergia monetaria L. F.
Calopogonium coeruleum (Benth.) C. Wright
Dalbergia riedelii (Benth.) Sandwith
Calopogonium mucunoides Desv.
Dalbergia spruceana Benth.
Canavalia brasiliensis Mart. ex Benth.
Dalbergia subcymosa Ducke
Canavalia dictyota Piper
Dalbergia sp. A
Canavalia grandilora Benth.
Dalbergia sp. B
Canavalia rosea (Sw.) DC..
Dalbergia sp. C
Centrolobium paraense Tul.
Derris amazonica Killip
Centrosema angustifolium (H.B.K.) Benth.
Derris negrensis Benth.
Centrosema brasilianum (L.) Benth.
Derris pterocarpus (DC.) Killip
Centrosema macrocarpum Benth.
Desmodium adscendens (Sw.) DC.
Centrosema molle Mart. ex Benth.
Desmodium aine Schltdl.
Centrosema pascuorum Mart. ex Benth.
Desmodium axillare (Sw.) DC.
Centrosema plumieri (Turpin ex Pers.) Benth.
Desmodium barbatum (L.) Benth.
Centrosema tetragonolobum Schultze-Krat y R.J. Williams
Desmodium cajanifolium (H.B.K.) DC.
Centrosema triquetrum (Hofmanns. ex Benth.) Benth.
Desmodium campyloclados Hemsl.
Centrosema venosum Mart. ex Benth.
Desmodium distortum (Aubl.) J.F. Macbr.
Centrosema virginianum (L.) Benth.
Desmodium hickenianum Burkart
Chaetocalyx scandens (L.) Urb.
Desmodium incanum DC.
Clathrotropis brachypetala (Tul.) Klein.
Desmodium orinocense (DC.) Cuello
Clathrotropis brunnea Amshof
Desmodium pachyrrhizum Vogel
Clathrotropis glaucophylla R.S. Cowan
Desmodium procumbens (Mill.) A. Hitchc.
Clathrotropis macrocarpa Ducke
Desmodium sclerophyllum Benth.
Clathrotropis nitida (Benth.) Harms
Desmodium scorpiurus (Sw.) Desv
Clitoria arborescens W.T. Aiton
Desmodium tortuosum (Sw.) DC.
Clitoria cavalcantei Fantz
Desmodium trilorum (L.) DC.
Clitoria coriacea Schery
Desmodium wydlerianum Urb.
Clitoria dendrina Pittier
Dioclea albilora R.S. Cowan
475
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Dioclea apurensis H.B.K.
Lonchocarpus sericeus (Poir.) H.B.K. ex DC.
Dioclea guianensis Benth.
Lonchocarpus tubicalyx Pittier ex Poppend.
Dioclea holtiana Pittier ex R.H. Maxwell
Lonchocarpus urucu Killip y A.C. Sm.
Dioclea macrantha Huber
Lonchocarpus utilis A.C. Sm.
Dioclea macrocarpa Huber
Machaerium acuminatum H.B.K.
Dioclea malacocarpa Ducke
Machaerium acutifolium Vogel
Dioclea relexa Hook. F.
Machaerium aine Benth.
Dioclea rigida R.S. Cowan
Machaerium altiscandens Ducke
Dioclea ruddiae R.H. Maxwell
Machaerium amazonense Hoehne
Dioclea scabra (Rich.) R.H. Maxwell
Machaerium aristulatum (Spruce ex Benth.) Ducke
Dioclea steyermarkii R.H. Maxwell
Machaerium dubium (H.B.K.) Rudd
Dioclea virgata (Rich.) Amshof
Machaerium ferox (Mart. ex Benth.) Ducke
Diplotropis martiusii Benth.
Machaerium loribundum Benth.
Diplotropis purpurea (Rich.) Amshof
Machaerium guaremalense Pittier
Diplotropis racemosa (Hoehne) Amshof
Machaerium inundatum (Mart. ex Benth.) Ducke
Diplotropis strigulosa R.S. Cowan
Machaerium kegelii Meisn.
Diplotropis sp. A
Machaerium leiophyllum (DC.) Benth.
Dipteryx magniica (Ducke) Ducke
Machaerium lunatum (L. F.) Ducke
Dipteryx odorata (Aubl.) Willd.
Machaerium macrophyllum Benth.
Dipteryx punctata (S.F. Blake) Amshof Meded.
Machaerium madeirense Pittier
Eriosema crinitum (H.B.K.) G. Don
Machaerium multifoliolatum Ducke
Eriosema rufum (H.B.K.) G. Don
Machaerium myrianthum Spruce ex. Benth
Eriosema simplicifolium (H.B.K.) G. Don
Machaerium quinatum (Aubl.) Sandwith
Erythrina fusca Lour.
Machaerium robiniifolium (DC.) Vogel
Erythrina mitis Jacq.
Machaerium tovarense Pittier
Erythrina poeppigiana (Walp.) Cook
Machaerium sp. A
Erythrina rubrinervia H.B.K.
Macroptilium gracile (Poepp. ex Benth.) Urb
Etaballia dubia (H.B.K.) Rudd
Macroptilium lathyroides (L.) Urb.
Fissicalyx fendleri Benth.
Macroptilium longepedunculatum (Mart. ex Benth.) Urb.
Galactia gracillima Benth.
Macroptilium monophyllum (Benth.) Maréchal y Baudet
Galactia jussiaeana Kunth
Monopteryx angustifolia Spruce ex Benth.
Galactia striata (Jacq.) Urb.
Monopteryx sp. A
Gliricidia sepium (Jacq.) Kunth ex Walp.
Mucuna pruriens (L.) DC.
Hymenolobium heterocarpum Ducke
Mucuna rostrata Benth.
Hymenolobium petraeum Ducke
Mucuna urens (L.) Medik.
Indigofera bongardiana (Kuntze) Burkart
Muellera frutescens (Aubl.) Standl.
Indigofera hirsuta L.
Myrocarpus venezuelensis Rudd
Indigofera lespedezioides H.B.K.
Myrospermum frutescens Jacq.
Indigofera microcarpa Desv.
Myroxylon balsamum (L.) Harms
Indigofera sufruticosa Mill.
Ormosia bolivarensis (Rudd) Stirton
Indigofera tinctoria L.
Ormosia coccinea (Aubl.) Jacks.
Lecointea amazonica Ducke
Ormosia costulata (Miq.) Kleinhoonte
Lonchocarpus crassispermus Poppend.
Ormosia grandilora (Tul.) Rudd
Lonchocarpus crucisrubierae Pittier
Ormosia lignivalvis Rudd
Lonchocarpus densilorus Benth.
Ormosia macrocalyx Ducke
Lonchocarpus dipteroneurus Pittier
Ormosia macrophylla Benth.
Lonchocarpus fendleri Benth.
Ormosia nobilis Tul.
Lonchocarpus loribundus Benth.
Ormosia paraensis Ducke
Lonchocarpus hedyosmus Miq.
Ormosia steyermarkii Rudd
Lonchocarpus heptaphyllus (Poir.) DC.
Ormosia subsimplex Spruce ex Benth.
Lonchocarpus imatacensis Poppend.
Ormosia williamsii Rudd
Lonchocarpus martynii A.C.
Ormosia sp. A (O. mataridek sp. nov.)
Lonchocarpus pictus Pittier
Ormosia sp. B
Lonchocarpus punctatus H.B.K.
Pachyrhizus erosus (L.) Urb.
476
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Phaseolus lunatus L.
Swartzia piarensis R.S. Cowan
Phaseolus vulgaris L.
Swartzia picta Spruce ex Benth.
Piscidia carthaginensis Jacq.
Swartzia pinnata (Vahl) Willd.
Platymiscium pinnatum (Jacq.) Dugand
Swartzia pittieri Schery
Platymiscium nigrum Ducke
Swartzia polyphylla DC
Platypodium elegans Vogel
Swartzia roraimae Sandwith
Poecilanthe amazonica (Ducke) Ducke
Swartzia schomburgkii Benth.
Poecilanthe hostmannii (Benth.) Amshof
Swartzia sericea J. Vogel
Poiretia punctata (Willd.) Desv.
Swartzia sprucei Benth.
Pterocarpus acapulcensis Rose
Swartzia stipellata R.S. Cowan
Pterocarpus amazonum (Benth.) Amshof
Swartzia tessmannii Harms
Pterocarpus oicinalis Jacq.
Swartzia triptera Barneby
Pterocarpus rohrii Vahl .
Swartzia vaupesiana R.S. Cowan
Pterocarpus santalinoides L’Hér. ex DC.
Swartzia wurdackii R.S. Cowan
Rhynchosia edulis Griseb.
Swartzia sp. A.
Rhynchosia melanocarpa Grear
Swartzia sp. E
Rhynchosia minima (L.) DC.
Taralea cordata Ducke
Rhynchosia phaseoloides (Sw.) DC.
Taralea crassifolia (Benth.) Ducke
Rhynchosia reticulata (Sw.) DC.
Taralea oppositifolia Aubl.
Rhynchosia schomburgkii Benth.
Taralea reticulata (Benth.) Ducke
Sesbania emerus (Aubl.) Urb.
Tephrosia adunca Benth.
Sesbania exasperata H.B.K.
Tephrosia cinerea (L.) Pers.
Soemmeringia semperlorens Mart.
Tephrosia senna H.B.K.
Spirotropis longifolia (DC.) Baill.
Tephrosia sessililora (Poir.) Hassl.
Spirotropis sp. A
Tephrosia sinapou (Buc’hoz) A. Chev.
Stylosanthes angustifolia Vogel
Teramnus uncinatus (L.) Sw.
Stylosanthes capitata Vogel
T. uncinatus subsp. uncinatus
Stylosanthes guianensis (Aubl.) Sw.
Vatairea guianensis Aubl.
Stylosanthes hamata (L.) Taub.
Vatairea paraensis Ducke
Stylosanthes humilis H.B.K.
Vataireopsis surinamensis H.C. Lima
Stylosanthes viscosa (L.) Sw.
Vigna adenantha (G. Mey.) Maréchal Mascherpa y Stainier
Swartzia arborescens (Aubl.) Pittier
Vigna candida (Vell.) Maréchal Mascherpa y Stainier
Swartzia argentea Spruce ex Benth.
Vigna juruana (Harms) Verdc.
Swartzia aymardii Barneby
Vigna lasiocarpa (Mart. ex Benth.) Verdc.
Swartzia benthamiana Miq.
Vigna linearis (H.B.K.) Maréchal Mascherpa y Stainier
Swartzia brachyrachis Harms
Vigna longifolia (Benth.) Verdc.
Swartzia buntingii R.S. Cowan
Vigna luteola (Jacq.) Benth.
Swartzia cardiosperma Spruce ex Benth.
Vigna peduncularis (H.B.K.) Fawc. y Rendle
Swartzia caudata R.S. Cowan
Vigna vexillata (L.) A. Rich.
Swartzia conferta Spruce ex Benth.
Zollernia grandifolia Schery
Swartzia cowanii Steyerm.
Zollernia paraënsis Ducke
Swartzia cupavenensis R.S. Cowan
Zornia brasiliensis Vogel
Swartzia dipetala Willd. ex J. Vogel
Zornia curvata Mohlenbr.
Swartzia jenmanii Sandwith
Zornia diphylla (L.) Pers.
Swartzia laevicarpa Amshof
Zornia lasiocarpa A.R. Molina
Swartzia laxilora Bong. ex Benth.
Zornia latifolia Sm.
Swartzia leiogyne (Sandwith) R.S. Cowan
Zornia myriadena Benth.
Swartzia leptopetala Benth.
Zornia reticulata Sm.
Swartzia maguirei R.S. Cowan
Zornia sericea Moric.
Swartzia microcarpa Spruce ex Benth.
FLACOURTIACEAE
Swartzia pachyphylla Harms
Banara guianensis Aubl.
Swartzia palustris Barneby
Banara orinocensis (Cuatrec.) Sleumer
Swartzia panacoco (Aubl.) R.S. Cowan
Carpotroche crispidentata Ducke
Swartzia parvifolia Schery
Carpotroche grandilora Spruce ex Benth.
477
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Casearia aculeata Jacq. Enum.
Coutoubea spicata Aubl.
Casearia arborea (Rich.) Urb.
Curtia conferta (Mart.) Knobl.
Casearia commersoniana Cambess.
Curtia obtusifolia (Benth.) Knobl.
Casearia decandra Jacq.
Curtia tenuifolia (Aubl.) Knobl.
Casearia grandilora Cambess.
Irlbachia cardonae (Gleason) Maguire
Casearia guianensis (Aubl.) Urb.
Irlbachia nemorosa (Willd. ex Roem. y Schult.) Merrill
Casearia hirsuta Sw.
Irlbachia phelpsiana Maguire
Casearia javitensis H.B.K.
Irlbachia poeppigii (Griseb.) L. Cobb y Maas
Casearia mariquitensis H.B.K.
Irlbachia tatei (Gleason) Maguire
Casearia mollis H.B.K.
Macrocarpaea autanae Weaver
Casearia pitumba Sleumer
Macrocarpaea marahuacae L. Struwe y V.A.
Casearia prunifolia H.B.K.
Macrocarpaea rugosa Steyerm.
Casearia rusbyana Briq.
Neurotheca loeselioides (Spruce ex Progel) Baill.
Casearia spinescens (Sw.) Griseb.
Potalia elegans L. Struwe y V.A. Albert
Casearia spruceana Benth. ex Eichler
Potalia maguireorum L. Struwe y V.A. Albert
Casearia sylvestris Sw.
Potalia resinifera Mart.
Casearia tremula (Griseb.) Griseb. ex Wright
Rogersonanthus arboreus (Britton) Maguire y B.M. Boom
Casearia ulmifolia Vahl ex Vent.
Rogersonanthus quelchii (N.E. Br.) Maguire y B.M. Boom
Casearia zizyphoides H.B.K.
Schultesia benthamiana Klotzsch ex Griseb.
Euceraea nitida Mart.
Schultesia brachyptera Cham.
Euceraea sleumeriana Steyerm. y Maguire
Schultesia guianensis (Aubl.) Malme
Hecatostemon completus (Jacq.) Sleumer
Schultesia pohliana Progel
Homalium guianense (Aubl.) Oken
Schultesia subcrenata Klotzsch ex Griseb.
Homalium racemosum Jacq.
Sipapoantha ostrina Maguire y B.M. Boom
Laetia americana L.
Symbolanthus aureus L. Struwe y V.A. Albert
Laetia coriacea Spruce ex Benth.
Symbolanthus camanensis Maguire y B.M. Boom
Laetia cupulata Spruce ex Benth.
Symbolanthus elisabethae (M.R. Schomb.) Gilg
Laetia procera (Poepp.) Eichler
Symbolanthus huachamacariensis Steyerm.
Laetia suaveolens (Poepp.) Benth.
Symbolanthus rosmarinifolius L. Struwe y V.A. Albert
Lindackeria paludosa (Benth.) Gilg.
Symbolanthus sessilis Steyerm. y Maguire
Lunania parvilora Spruce ex Benth.
Symbolanthus yaviensis Steyerm.
Ryania angustifolia (Turcz.) Monach.
Tachia gracilis Benth. Hooker’s
Ryania dentata (H.B.K.) Miq.
Tachia grandifolia Maguire y Weaver
Ryania speciosa Vahl..
Tachia schomburgkiana Benth.
Ryania spruceana Monach.
Tapeinostemon breweri Steyerm. y Maguire
Xylosma benthamii (Tul.) Triana y Planch.
Tapeinostemon jauaensis Steyerm. y Maguire
Zuelania guidonia (Sw.) Britton y Millsp.
Tapeinostemon rugosum Maguire y Steyerm.
GENTIANACEAE
Tapeinostemon sessililorum (Humb. y Bonpl. ex Schult.) Pruski y S.F. Sm.
Adenolisianthus arboreus (Spruce ex Progel) Gilg
Tapeinostemon spenneroides Benth.
Celiantha chimantensis (Steyerm. y Maguire) Maguire
Tetrapollinia caerulescens (Aubl.) Maguire y B.M. Boom
Celiantha imthurniana (Oliv.) Maguire
Voyria acuminata Benth.
Chelonanthus alatus (Aubl.) Pulle Enum.
Voyria aphylla (Jacq.) Pers.
Chelonanthus angustifolius (H.B.K.) Gilg
Voyria aurantiaca Splitg.
Chelonanthus longistylus (J.G.M. Pers. y Maas) L. Struwe y V.A. Albert
Voyria clavata Splitg.
Chelonanthus purpurascens (Aubl.) L. Struwe S. Nilsson y V.A. Albert
Voyria corymbosa Splitg.
Chelonanthus schomburgkii (Griseb.) Gilg
Voyria lavescens Griseb.
Chorisepalum carnosum Ewan J. Wash.
Voyria pittieri (Standl.) L.O. Williams
Chorisepalum ovatum Gleason
Voyria spruceana Benth.
Chorisepalum psychotrioides Ewan
Voyria tenella Hook.
Chorisepalum rotundifolium Ewan
Voyria tenuilora Griseb.
Chorisepalum sipapoanum (Maguire) L. Struwe y V.A. Albert
Voyriella parvilora (Miq.) Miq.
Coutoubea minor H.B.K.
GESNERIACEAE
Coutoubea ramosa Aubl.
Alloplectus savannarum C.V. Morton
Coutoubea relexa Benth.
Besleria gibbosa (Poepp.) Hanst.
478
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Besleria laxilora Benth.
Elachyptera loribunda (Benth.) A.C. Sm.
Besleria parvilora L.E. Skog y Steyerm.
Hippocratea volubilis L.
Besleria pendulilora Fritsch
Hylenaea comosa (Sw.) Miers.
Chrysothemis dichroa Leeuwenb.
Peritassa compta Miers.
Chrysothemis pulchella (Donn ex Sims) Decne.
Peritassa huanucana (Loes.) A.C. Sm.
Codonanthe calcarata (Miq.) Hanst.
Peritassa laevigata (Hofmanns.) A.C. Sm.
Codonanthe crassifolia (Focke) C.V. Morton
Peritassa peruviana (Miers) A.C. Sm.
Codonanthopsis dissimulata (H.E. Moore) Wiehler
Peritassa pruinosa (Seem.) A.C. Sm.
Columnea microsepala (C.V. Morton) Kvist y L.E. Skog
Prionostemma aspera (Lam.) Miers
Columnea sanguinea (Pers.) Hanst.
Pristimera nervosa (Miers) A.C. Sm.
Corytoplectus deltoideus (C.V. Morton) Wiehler
Salacia cordata (Miers) Mennega
Drymonia coccinea (Aubl.) Wiehler
Salacia elliptica (Mart.) G. Don
Drymonia serrulata (Jacq.) Mart.
Salacia gigantea Loes.
Episcia imbriata Fritsch
Salacia impressifolia (Miers) A.C. Sm.
Episcia reptans Mart.
Salacia juruana Loes.
Episcia xantha Leeuwenb.
Salacia macrantha A.C. Sm.
Episcia sp. A
Salacia multilora (Lam.) DC.
Episcia sp. B
Salacia opacifolia (J.F. Macbr.) A.C. Sm.
Koellikeria erinoides (DC.) Mansfeld
Tontelea coriacea A.C. Sm.
Kohleria hirsuta (H.B.K.) Regel
Tontelea laxilora (Benth.) A.C. Sm.
Nautilocalyx cataractarum Wiehler
Tontelea mauritioides A.C. Sm.
Nautilocalyx chimantensis L.E. Skog y Steyerm.
Tontelea ovalifolia (Miers) A.C. Sm.
Nautilocalyx cordatus (Gleason) L.E. Skog
HUGONIACEAE
Nautilocalyx fasciculatus L.E. Skog y Steyerm.
Hebepetalum humiriifolium (Planch.) Benth.
Nautilocalyx maguirei L.E. Skog y Steyerm.
Hebepetalum roraimense Secco y S.M.B. Silva
Nautilocalyx porphyrotrichus (Leeuwenb.) Wiehler
Roucheria calophylla Planch.
Nautilocalyx punctatus Wiehler
Roucheria laxilora H. Winkl.
Nautilocalyx resioides (Leeuwenb.) Wiehler
Roucheria schomburgkii Planch.
Nautilocalyx sp. A
Roucheria sp. A
Nautilocalyx sp. B
HUMIRIACEAE
Nautilocalyx sp. C
Humiria balsamifera Aubl.
Nautilocalyx sp. D
Humiria crassifolia Mart. ex Urb. .
Nautilocalyx sp. E
Humiria fruticosa Cuatrec.
Nautilocalyx sp. F
Humiria wurdackii Cuatrec.
Nautilocalyx sp. G
Humiriastrum colombianum Cuatrec.
Paradrymonia sp. B
Humiriastrum cuspidatum (Benth.) Cuatrec.
Paradrymonia sp. C
Humiriastrum liesneri Cuatrec.
Paradrymonia sp. E
Humiriastrum obovatum (Benth.) Cuatrec.
Rhoogeton viviparus Leeuwenb.
Humiriastrum piraparanense Cuatrec. .
Sinningia elatior (H.B.K.) Chautems
Sacoglottis amazonica Mart.
Sinningia incarnata (Aubl.) Denham
Sacoglottis ceratocarpa Ducke
Tylopsacas cuneatum (Gleason) Leeuwenb.
Sacoglottis cydonioides Cuatrec.
HERNANDIACEAE
Sacoglottis guianensis Benth.
Hernandia guianensis Aubl.
Sacoglottis maguirei Cuatrec.
Sparattanthelium tupiniquinorum Mart.
Sacoglottis mattogrossensis Malme
Sparattanthelium uncigerum (Meisn.) Kubitzki
Schistostemon auyantepuiensis Cuatrec.
HIPPOCRATEACEAE
Schistostemon fernandezii Cuatrec.
Anthodon decussatum Ruiz y Pav.
Schistostemon oblongifolium (Benth.) Cuatrec.
Cheiloclinium difusilorum (Miers) A.C. Sm.
Vantanea minor Benth.
Cheiloclinium habropodum A.C. Sm.
HYDROPHYLLACEAE
Cheiloclinium hippocrateoides (Peyr.) A.C. Sm.
Hydrolea spinosa L.
Cheiloclinium klugii A.C. Sm.
ICACINACEAE
Cheiloclinium obtusum A.C. Sm.
Casimirella ampla (Miers) R.A. Howard
Cuervea kappleriana (Miq.) A.C. Sm.
Dendrobangia boliviana Rusby
479
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Discophora guianensis Miers
Leonurus japonicus Houtt.
Emmotum acuminatum (Benth.) Miers
Marsypianthes chamaedrys (Vahl) Kuntze
Emmotum celiae R.A. Howard
Ocimum campechianum Mill.
Emmotum conjunctum R.A. Howard
Scutellaria purpurascens Sw.
Emmotum loribundum R.A. Howard
LAURACEAE
Emmotum fulvum R.A. Howard
Aiouea benthamiana Mez
Emmotum glabrum Benth. ex Miers
Aiouea guianensis Aubl.
Emmotum yapacanum R.A. Howard
Aiouea myristicoides Mez
Leretia cordata Vell.
Aniba canelilla (H.B.K.) Mez
Pleurisanthes emarginata Tiegh.
Aniba cinnamomilora C.K. Allen
Pleurisanthes sp. A.
Aniba citrifolia (Nees) Mez
Poraqueiba paraensis Ducke
Aniba excelsa Kosterm.
Poraqueiba sericea Tul.
Aniba guianensis Aubl.
IXONANTHACEAE
Aniba kappleri Mez
Cyrillopsis micrantha (Steyerm.) P.E. Berry y N. Ramírez
Aniba megaphylla Mez
Ochthocosmus attenuatus Steyerm. y Luteyn
Aniba panurensis (Meisn.) Mez
Ochthocosmus berryi Steyerm.
Aniba taubertiana Mez
Ochthocosmus loribundus Gleason
Beilschmiedia curviramea (Meisn.) Kosterm.
Ochthocosmus longipedicellatus Steyerm. y Luteyn
Cassytha iliformis L.
Ochthocosmus multilorus Ducke
Cinnamomum triplinerve (Ruiz y Pav.) Kosterm.
Ochthocosmus roraimae Benth.
Endlicheria anomala (Nees) Mez
KRAMERIACEAE
Endlicheria aruncilora (Meisn.) Mez
Krameria ixine Loel.
Endlicheria bracteolata (Meisn.) C.K. Allen
Krameria spartioides Klotzsch ex O. Berg
Endlicheria canescens Chanderbali
LACISTEMATACEAE
Endlicheria chalisea Chanderbali
Lacistema aggregatum (Bergius) Rusby
Endlicheria directonervia C.K. Allen
LAMIACEAE
Endlicheria dictifarinosa C.K. Allen
Eriope crassipes Benth
Endlicheria gracilis Kosterm.
E. crassipes subsp. crassipes
Endlicheria macrophylla (Meisn.) Mez
Hypenia salzmannii (Benth.) Harley
Endlicheria multilora (Miq.) Mez
Hyptidendron arboreum (Benth.) Harley
Endlicheria relectens (Nees) Mez
Hyptis atrorubens Poit.
Kubitzkia macrantha (Kosterm.) van der Werf
Hyptis brachiata Briq.
Licaria brasiliensis (Nees) Kosterm.
Hyptis brevipes Poit.
Licaria cannella (Meisn.) Kosterm.
Hyptis capitata Jacq.
Licaria chrysophylla (Meisn.) Kosterm. .
Hyptis colubrimontis Epling y Játiva
Licaria debilis (Mez) Kosterm.
Hyptis conferta Pohl ex Benth.
Licaria macrophylla (A.C. Sm.) Kosterm.
Hyptis dilatata Benth.
Licaria tomentosa van der Werf
Hyptis guanchezii Harley
Mezilaurus itauba (Meisn.) Taubl. ex Mez
Hyptis hirsuta H.B.K.
Mezilaurus lindaviana Schwacke y Mez
Hyptis huberi Harley
Mezilaurus sprucei (Meisn.) Taub. ex Mez
Hyptis laciniata Benth.
Mezilaurus maguireana C.K. Allen
Hyptis lacustris St.-Hil. ex Benth.
Nectandra aurea Rohwer
Hyptis lanceolata Poir.
Nectandra cuspidata Nees
Hyptis lantanifolia Poit.
Nectandra globosa (Aubl.) Mez
Hyptis luticola Epling
Nectandra hihua (Ruiz y Pav.) Rohwer
Hyptis microphylla Pohl ex Benth.
Nectandra lineata (H.B.K.) Rohwer
Hyptis mutabilis (Rich.) Briq.
Nectandra pearcei Mez.
Hyptis parkeri Benth.
Nectandra pichurim (H.B.K.) Mez
Hyptis pectinata (L.) Poit.
Nectandra reticulata (Ruiz y Pav.) Mez
Hyptis pyriformis Epling y Játiva
Nectandra ruforamula Rohwer
Hyptis recurvata Poit.
Nectandra sanguinea Rol. ex Rottb.
Hyptis suaveolens (L.) Poit.
Ocotea aciphylla (Nees y Mart. ex Nees) Mez
Leonotis nepetifolia (L.) R. Br.
Ocotea af. amazonica (Meisn.) Mez
480
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Ocotea atrata C.K. Allen
Persea maguirei Kopp Mem.
Ocotea basirecurva C.K. Allen
Persea perseiphylla (C.K. Allen) van der Werf
Ocotea bofo H.B.K.
Persea pseudofasciculata Kopp
Ocotea bracteosa (Meisn.) Mez
Persea steyermarkii C.K. Allen
Ocotea canaliculata (Rich.) Mez
Rhodostemonodaphne celiana (C.K. Allen) Rohwer
Ocotea ceanothifolia (Nees) Mez
Rhodostemonodaphne grandis (Mez) Rohwer
Ocotea cernua (Nees) Mez
Rhodostemonodaphne kunthiana (Nees) Rohwer
Ocotea cowaniana C.K. Allen
Rhodostemonodaphne steyermarkiana (C.K. Allen) van der Werf
Ocotea crassifolia (Nees) Mez .
LECYTHIDACEAE
Ocotea cujumary Mart.
Allantoma lineata (Mart. ex O. Berg) Miers
Ocotea cymbarum H.B.K.
Couratari guianensis Aubl.
Ocotea debilis Mez
Couratari multilora (Sm.) Eyma
Ocotea depauperata C.K. Allen
Couratari sandwithii Prance
Ocotea duidensis Moldenke
Couratari stellata A.C. Sm.
Ocotea erectifolia (C.K. Allen) van der Werf
Couroupita guianensis Aubl.
Ocotea esmeraldana Moldenke
Eschweilera alata A.C. Sm.
Ocotea fasciculata (Nees) Mezrb.
Eschweilera collina Eyma
Ocotea fendleri (Meisn.) Rohwer
Eschweilera coriacea (DC.) S.A. Mori
Ocotea lavantha van der Werf
Eschweilera decolorans Sandwith
Ocotea loribunda (Sw.) Mez
Eschweilera laevicarpa S.A. Mori
Ocotea glabra van der Werf
Eschweilera micrantha (O. Berg) Miers
Ocotea glaucophylla Moldenke
Eschweilera parvilora (Aubl.) Miers
Ocotea glomerata (Nees) Mez
Eschweilera parvifolia Mart. ex DC.
Ocotea gracilis (Meisn.) Mez.
Eschweilera pedicellata (Rich.) S.A. Mori
Ocotea guianensis Aubl.
Eschweilera subglandulosa (Steud. ex O. Berg) Miers
Ocotea huberi van der Werf
Eschweilera tenuifolia (O. Berg) Miers
Ocotea javitensis (H.B.K.) Pittier
Gustavia acuminata S.A. Mori
Ocotea julianii van der Werf
Gustavia augusta L.
Ocotea laticostata C.K. Allen
Gustavia coriacea S.A. Mori
Ocotea leucoxylon (Sw.) Laness.
Gustavia hexapetala (Aubl.) Sm.
Ocotea longifolia H.B.K.
Gustavia poeppigiana O. Berg.
Ocotea megacarpa van der Werf
Gustavia pulchra Miers
Ocotea neblinae C.K. Allen
Lecythis alutacea (A.C. Sm.) S.A. Mori
Ocotea nilssonii C.K. Allen
Lecythis chartacea O. Berg
Ocotea oblonga (Meisn.) Mez
Lecythis corrugata Poit.
Ocotea paucilora (Nees) Mez.
LENTIBULARIACEAE
Ocotea perrobusta (C.K. Allen) Rohwer
Genlisea iliformis A. St.-Hil.
Ocotea puberula (Rich.) Nees
Genlisea glabra P. Taylor
Ocotea revoluta Moldenke
Genlisea guianensis N.E. Br.
Ocotea roseopedunculata van der Werf
Genlisea pygmaea A. St.-Hil.
Ocotea sanariapensis Lasser
Genlisea repens Benj.
Ocotea schomburgkiana (Nees) Mez
Genlisea roraimensis N.E. Br.
Ocotea tillettsiana C.K. Allen
Genlisea sanariapoana Steyerm.
Ocotea tomentella Sandwith
Utricularia adpressa Salzm. ex A. St.-Hil. y Girard
Ocotea venosa Gleason
Utricularia alpina Jacq. Enum.
Ocotea wurdackiana C.K. Allen
Utricularia amethystina Salzm. ex A. St.-Hil. y Girard
Ocotea yutajensis C.K. Allen
Utricularia aureomaculata Steyerm.
Ocotea sp. A
Utricularia benjaminiana Oliv.
Persea americana Mill.
Utricularia breviscapa Wright ex Griseb.
Persea caerulea (Ruiz y Pav.) Mez
Utricularia calyciida Benj.
Persea croizatii van der Werf
Utricularia campbelliana Oliv.
Persea fastigiata Kopp
Utricularia chiribiquitensis A. Fern.
Persea luviatilis van der Werf
Utricularia costata P. Taylor
Persea jenmanii Mez
Utricularia cucullata A. St.-Hil. y Girard
481
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Utricularia erectilora A. St.-Hil. y Girard
Strychnos guianensis (Aubl.) Mart.
Utricularia imbriata H.B.K.
Strychnos jobertiana Bail.
Utricularia foliosa L.
Strychnos mattogrossensis S. Moore
Utricularia gibba L.
Strychnos mitscherlichii M.R. Schomb.
Utricularia guyanensis DC.
S. mitscherlichii var. mitscherlichii
Utricularia heterochroma Steyerm.
Strychnos panurensis Sprague y Sandwith
Utricularia hispida Lam.
Strychnos peckii B.L. Rob.
Utricularia humboldtii R.H. Schomb.
Strychnos rondeletioides Spruce ex Benth.
Utricularia hydrocarpa Vahl
Strychnos toxifera R.H. Schomb. ex Benth.
Utricularia jamesoniana Oliv.
LORANTHACEAE
Utricularia juncea Vahl
Cladocolea intermedia (Rizzini) Kuijt
Utricularia longeciliata DC.
Cladocolea micrantha (Eichler) Kuijt
Utricularia mirabilis P. Taylor
Gaiadendron punctatum (Ruiz y Pav.) G.Don
Utricularia myriocista A. St.-Hil. y Girard
Oryctanthus alveolatus (H.B.K.) Kuijt
Utricularia nana A. St.-Hil. y Girard
Oryctanthus lorulentus (Rich.) Tiegh
Utricularia naviculata P. Taylor
Oryctanthus phthirusoides Rizzini
Utricularia neottioides A. St.-Hil. y Girard
Phthirusa bisexualis Rizzini
Utricularia nervosa Weber ex Benj.
Phthirusa disjectifolia (Rizzini) Kuijt
Utricularia olivacea Wright ex Griseb.
Phthirusa guyanensis Eichler
Utricularia oliveriana Steyerm.
Phthirusa nitens (Mart.) Eichler
Utricularia pubescens Sm.
Phthirusa pyrifolia (H.B.K.) Eichler
Utricularia pusilla Vahl
Phthirusa stelis (L.) Kuijt
Utricularia quelchii N.E. Br.
Psittacanthus acinarius (Mart.) Mart.
Utricularia sandwithii P. Taylor
Psittacanthus biternatus (Hofmanns.) Blume
Utricularia schultesii A. Fern.
Psittacanthus collum-cygni Eichler
Utricularia simulans Pilg. Notizbl.
Psittacanthus cucullaris (Lam.) Blume
Utricularia spruceana Benth. ex Oliv.
Psittacanthus lasianthus Sandwith
Utricularia steyermarkii P. Taylor
Psittacanthus robustus (Mart.) Mart.
Utricularia subulata L.
Struthanthus dichotrianthus Eichler
Utricularia tenuissima Tutin
Struthanthus eichlerianus Rizzini
Utricularia trichophylla Spruce ex Oliv.
Struthanthus gracilis (Gleason) Steyerm.y Maguire
Utricularia tricolor A. St.-Hil.
Struthanthus syringifolius (Mart.) Eichler
Utricularia triloba Benj.
Struthanthus vulgaris Eichler
Utricularia viscosa Spruce ex Oliv.
Tripodanthus acutifolius (Ruiz y Pav.) Tiegh.
LIMNOCHARITACEAE
LYTHRACEAE
Hydrocleys nymphoides (Willd.) Buchenau
Crenea maritima Aubl.
Limnocharis laforestii Duchass. ex Griseb.
Cuphea anisoclada Lourteig
LISSOCARPACEAE
Cuphea annulata Koehne
Lissocarpa benthamii Gürke
C. antisyphilitica var. acutifolia Benth.
Lissocarpa stenocarpa Steyerm.
C. antisyphilitica var. antisyphilitica
LOGANIACEAE
Cuphea bolivariensis Lourteig
Antonia ovata Pohl
Cuphea cardonae Lourteig
Bonyunia aquatica Ducke
Cuphea carthagenensis (Jacq.) J.F. Macbr.
Bonyunia minor N.E. Br.
Cuphea cataractarum Spruce ex Koehne
Spigelia anthelmia L.
C. curiosa var. curiosa
Spigelia gracilis A. DC.
C. curiosa var. oresbia Lourteig
Spigelia multispica Steud.
Cuphea dactylophora Koehne
Strychnos brachiata Ruiz y Pav.
Cuphea distichophylla Lourteig
Strychnos bredemeyeri (Schult. y Schult.F.) Sprague y Sandwith
Cuphea elliptica Koehne
Strychnos cogens Benth.
Cuphea galeato-calcarata Lourteig
Strychnos davidsei Krukof y Barneby
Cuphea gracilis H.B.K.
Strychnos diaboli Sandwith
Cuphea maigualidensis Lourteig
Strychnos erichsonii M.R. Schomb. ex Progel
Cuphea melvilla Lindl.
Strychnos fendleri Sprague y Sandwith
Cuphea micrantha H.B.K.
482
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Cuphea odonellii Lourteig
Byrsonima macrostachya W.R. Anderson
Cuphea pleiantha Lourteig
Byrsonima nitidissima H.B.K.
Cuphea repens Koehne
Byrsonima punctulata A. Juss.
Cuphea rhodocalyx Lourteig
Byrsonima schomburgkiana Benth.
Cuphea rigidula Benth.
Byrsonima sp. A
Cuphea tenuissima Koehne.
Byrsonima spicata (Cav.) DC.
Lawsonia inermis L.
Byrsonima steyermarkii W.R. Anderson
Pehria compacta (Rusby) Sprague
Byrsonima verbascifolia (L.) DC., Prodr.
Rotala mexicana Cham. y Schltdl.
Byrsonima wurdackii W.R. Anderson
Rotala ramosior (L.) Koehne
Clonodia complicata (H.B.K.) W.R. Anderson
MAGNOLIACEAE
Diacidia ferruginea (Maguire y K.D. Phelps) W.R. Anderson
Dugandiodendron chimantense (Steyerm.y Maguire) Lozano
Diacidia galphimioides Griseb.
Dugandiodendron ptaritepuianum (Steyerm.) Lozano
Diacidia hypoleuca (Maguire) W.R. Anderson
MALPIGHIACEAE
Diacidia kunhardtii (Maguire) W.R. Anderson
B. martiniana var. martiniana
Diacidia steyermarkii (Maguire) W.R. Anderson
Banisteriopsis caapi (Griseb. in Mart.) C.V. Morton
Diacidia stipularis (Maguire y K.D. Phelps) W.R. Anderson
Banisteriopsis cristata (Griseb.) Cuatrec.
Diacidia vestita (Benth.) B.D. Jacks.
Banisteriopsis lucida (Rich.) Small
Diplopterys cabrerana (Cuatrec.) B. Gates
Banisteriopsis lyrata B. Gates
Excentradenia adenophora (Sandwith) W.R. Anderson
Banisteriopsis maguirei B. Gates
Glandonia williamsii Steyerm.
Banisteriopsis muricata (Cav.) Cuatrec.
Heteropterys atabapensis W.R. Anderson
Banisteriopsis wurdackii B. Gates
Heteropterys ayacuchensis W.R. Anderson
Blepharandra angustifolia (H.B.K.) W.R. Anderson
Heteropterys cristata Benth
Blepharandra imbriata MacBryde
Heteropterys cuatrecasasii W.R. Anderson
Blepharandra heteropetala W.R. Anderson
Heteropterys huberi W.R. Anderson
Blepharandra hypoleuca (Benth.) Griseb.
Heteropterys leona (Cav.) Exell
Bunchosia argentea (Jacq.) DC., Prodr.
Heteropterys macradena (DC.) W.R. Anderson
Bunchosia armeniaca (Cav.) DC.
Heteropterys macrostachya A. Juss.
Bunchosia decussilora W.R. Anderson
Heteropterys megaptera A. Juss.
Bunchosia glandulifera (Jacq.) H.B.K.
Heteropterys molesta W.R. Anderson
Bunchosia mollis Benth.
Heteropterys oblongifolia Gleason
Bunchosia petraea W.R. Anderson
Heteropterys orinocensis (H.B.K.) A. Juss.
Burdachia prismatocarpa A. Juss.
Heteropterys quetepensis Steyerm.
Byrsonima aerugo Sagot
Heteropterys siderosa Cuatrec.
Byrsonima baccae W.R. Anderson
Heteropterys steyermarkii W.R. Anderson
Byrsonima basiliana W.R. Anderson
Hiraea ainis Miq.
Byrsonima carraoana Steyerm
Hiraea apaporiensis Cuatrec.
Byrsonima chrysophylla H.B.K.
Hiraea celiana W.R. Anderson
Byrsonima coccolobifolia H.B.K.
Hiraea fagifolia (DC.) A. Juss.
Byrsonima concinna Benth.
Hiraea faginea (Sw.) Nied.
Byrsonima coniophylla A. Juss.
Hiraea imbriata W.R. Anderson
Byrsonima cowanii W.R. Anderson
Hiraea steyermarkii W.R. Anderson
Byrsonima crassifolia (L.) H.B.K.
Hiraea tepuiensis Steyerm.
Byrsonima crispa A. Juss.
Hiraea ternifolia (H.B.K.) A. Juss.
Byrsonima cuprea Griseb.
Lophanthera longifolia (H.B.K.) Griseb.
Byrsonima duidana W.R. Anderson
Lophopterys euryptera Sandwith
Byrsonima fernandezii Cuatrec.
Lophopterys inpana W.R. Anderson
Byrsonima huberi W.R. Anderson
Malpighia emarginata DC.
Byrsonima japurensis A. Juss.
Malpighia glabra L.
Byrsonima kariniana W.R. Anderson
Mascagnia castanea (Cuatrec.) W.R. Anderson
Byrsonima laevis Nied.
Mascagnia cynanchifolia Griseb.
Byrsonima leucophlebia Griseb.
Mascagnia dissimilis C.V. Morton y Moldenke
Byrsonima linguifera Cuatrec.
Mascagnia divaricata (H.B.K.) Nied.
Byrsonima luetzelburgii Steyerm.
Mascagnia eggersiana (Nied.) W.R. Anderson
483
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Mascagnia macrodisca (Triana y Planch.) Nied.
Pavonia angustifolia Benth.
Mascagnia ovatifolia (H.B.K.) Griseb.
Pavonia cancellata (L.) Cav.
Mascagnia poeppigiana (A. Juss.) W.R. Anderson
Pavonia castaneifolia A. St.-Hil. y Naud.
Mascagnia schunkei W.R. Anderson
Pavonia dasypetala Turcz.
Mascagnia sepium (A. Juss. in A. St.-Hil.) Griseb.
Pavonia fruticosa (Mill.) Fawcett y Rendle
Mascagnia sinemariensis (Aubl.) Griseb.
Pavonia imatacensis Steyerm.
Mascagnia stannea (Griseb.) Nied.
Pavonia malacophylla (Link y Otto) Garcke
Mascagnia surinamensis (Kosterm.) W.R. Anderson
Pavonia paludicola Nicolson ex Fryxell
Mezia curranii W.R. Anderson
Pavonia sidifolia H.B.K.
Mezia huberi W.R. Anderson
Peltaea sessililora (H.B.K.) Standl.
Mezia includens (Benth.) Cuatrec.
Peltaea speciosa (H.B.K.) Standl.
Pterandra lavescens Maguire
Peltaea surumuensis (Ulbr.) Krapov. y Cristóbal
Pterandra sericea W.R. Anderson
Peltaea trinervis (C. Presl) Krapov. y Cristóbal
S. adenodon var. adenodon
Pseudabutilon umbellatum (L.) Fryxell
Spachea elegans (G. Mey.) A. Juss.
Sida acuta Burm. F.
Stigmaphyllon bannisterioides (L.) C.E.
Sida aggregata C. Presl
Stigmaphyllon grenadense Nied.
Sida angustissima A. St.-Hil.
Stigmaphyllon puberum (Rich.) A. Juss.
Sida ciliaris L.
Stigmaphyllon sinuatum (DC.) A. Juss.
Sida cordifolia L.
Tetrapterys aristeguietae W.R. Anderson
Sida glomerata Cav.
Tetrapterys crispa A. Juss.
Sida jamaicensis L.
Tetrapterys discolor (G. Mey.) DC.
Sida linifolia Juss. ex Cav.
Tetrapterys imbripetala A. Juss.
Sida serrata Willd. ex Spreng.
Tetrapterys gracilis W.R. Anderson
Sida setosa Mart. ex Colla
Tetrapterys mucronata Cav.
Sida viarum A. St.-Hil.
Tetrapterys oleifolia (Benth.) Griseb.
Sidastrum micranthum (A. St.-Hil.) Fryxell
Tetrapterys phylladenophora
Urena lobata L.
Tetrapterys pusilla Steyerm.
Urena sinuata L.
Tetrapterys pusilla Steyerm.
Wissadula contracta (Link) R.E. Fries
Tetrapterys rhodopteron Oliv.
Wissadula excelsior (Cav.) C. Presl
Tetrapterys rhodopteron Oliv.
Wissadula hernandioides (L’Hér.) Garcke
Tetrapterys styloptera A. Juss.
Wissadula periplocifolia (L.) C. Presl ex hwaites
MALVACEAE
MARCGRAVIACEAE
Abelmoschus moschatus Medik.
Marcgravia coriacea Vahl
Briquetia spicata (H.B.K.) Fryxell
Marcgravia maguirei de Roon
Cienfuegosia ainis (H.B.K.) Hochr.
Marcgravia pedunculosa Triana y Planch.
Cienfuegosia heterophylla (Vent.) Garcke
Marcgravia punctifolia S. Dressler
Gaya gaudichaudiana A. St.-Hil.
Marcgravia purpurea I.W. Bailey
Gossypium barbadense L.
Marcgravia sororopaniana Steyerm.
Gossypium hirsutum L.
Marcgravia sprucei (Wittm.) Gilg
H. striatus subsp. lambertianus (H.B.K.) O.J. Blanch. ex Proctor
N. guianensis subsp. japurensis (Mart.) Bedell
Herissantia crispa (L.) Brizicky
Norantea guianensis subsp. guianensis
Hibiscus bifurcatus Cav.
S. guianensis subsp. cylindrica (Wittm.) de Roon
Hibiscus dimidiatus Schrank
S. tepuiensis subsp. coccinea de Roon y S. Dressler
Hibiscus furcellatus Desr.
S. tepuiensis subsp. tepuiensis
Hibiscus pernambucensis Arruda
Sarcopera lammifera de Roon y Bedell
Hibiscus peruvianus R.E. Fries
Souroubea dasystachya Gilg y Werderm.
Hibiscus radiatus Cav.
MELASTOMATACEAE
Hibiscus sabdarifa L.
Acanthella pulchra Gleason
Hibiscus sororius L.
Acanthella sprucei Hook F.
Malachra alceifolia Jacq.
Aciotis acuminifolia (Mart. ex DC.) Triana
Malachra fasciata Jacq.
Aciotis annua (Mart. ex DC.) Triana
Malachra palmata Moench
Aciotis caulialata (Ruiz y Pav.) Triana
Malachra radiata (L.) L.
Aciotis indecora (Bonpl.) Triana
484
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Aciotis ornata (Miq.) Gleason
Clidemia piperifolia Gleason
Aciotis polystachya (Bonpl.) Triana
Clidemia pustulata DC.
Aciotis purpurascens (Aubl.) Triana
Clidemia sericea D. Don
Aciotis sp. A
Clidemia silvicola Gleason
Acisanthera crassipes (Naudin) Wurdack
Clidemia stellipilis (Gleason) Wurdack
Acisanthera hedyotidea (C. Presl) Triana
Clidemia strigillosa (Sw.) DC.
Acisanthera limnobios (DC.) Triana
Clidemia tepuiensis Wurdack
Acisanthera nana Ule
Clidemia tococoidea (DC.) Gleason
Acisanthera quadrata Pers.
Clidemia trinitensis (Crueg.) Griseb.
Acisanthera unilora (Vahl) Gleason
Clidemia urceolata DC.
Adelobotrys adscendens (Sw.) Triana
Comolia coriacea Gleason}
Adelobotrys barbata Triana
Comolia leptophylla (Bonpl.) Naudin
Adelobotrys ciliata (Naudin) Triana
Comolia microphylla Benth.
Adelobotrys duidae (Gleason) Wurdack
Comolia montana Gleason
Adelobotrys fruticosa Wurdack
Comolia nummularioides (Bonpl.) Naudin
Adelobotrys linearifolia L. Uribe
Comolia prostrata Wurdack
Adelobotrys monticola Gleason
Comolia serpyllacea Wurdack
Adelobotrys rotundifolia Triana
Comolia smithii Wurdack
Adelobotrys spruceana Cogn.
Comolia vernicosa (Benth.) Triana
Adelobotrys stenophylla Wurdack
Comolia villosa (Aubl.) Triana
Bellucia grossularioides (L.) Triana
Desmoscelis villosa (Aubl.) Naudin
Bellucia huberi (Wurdack) S.S. Renner
E. tenella var. sprucei Cogn.
Bellucia pentamera Naudin
E. tenella var. tenella
Blakea rosea (Ruiz y Pav.) D. Don
Ernestia cataractae Tutin
C. hirta var. elegans (Aubl.) Griseb.
Ernestia cordifolia Berg. ex Triana
C. hirta var. hirta
Ernestia maguirei Wurdack
C. hirta var. tiliaefolia (DC.) J.F. Macbr.
Ernestia pullei Gleason
C. japurensis var. japurensis
G. polymera subsp. polymera
C. octona subsp. guayanensis Wurdack
G. sessilifolia subsp. A
C. octona subsp. octona
G. sessilifolia subsp. cardonae Wurdack
C. phelpsiae subsp. chimantensis Wurdack
G. sessilifolia subsp. occidentalis Wurdack
C. phelpsiae subsp. phelpsiae
G. sessilifolia subsp. sessilifolia
C. pycnaster subsp. pycnaster
Grafenrieda caryophyllea Triana
Chaetolepis anisandra Naudin
Grafenrieda cinnoides Gleason
Clidemia acurensis Wurdack
Grafenrieda fantastica R.E. Schult. y L.B. Sm.
Clidemia aphanantha (Naudin) Sagot
Grafenrieda hitchcockii Gleason
Clidemia attenuata (Naudin) Cogn.
Grafenrieda intermedia Triana
Clidemia bernardii Wurdack
Grafenrieda jauana Wurdack
Clidemia bullosa DC.
Grafenrieda kralii Wurdack
Clidemia capitata Benth.
Grafenrieda lanceolata Gleason
Clidemia conglomerata DC.
Grafenrieda miconioides Naudin
Clidemia debilis Crueg.
Grafenrieda obliqua Triana
Clidemia duidae Gleason
Grafenrieda pedunculata Gleason
Clidemia epibaterium DC.
Grafenrieda rotundifolia (Bonpl.) DC.
Clidemia heptamera Wurdack
Grafenrieda rufa Wurdack
Clidemia heteroneura (DC.) Cogn.
Grafenrieda rupestris Ducke
Clidemia involucrata DC.
Grafenrieda sipapoana Wurdack
Clidemia linearis (Gleason) Wurdack
Grafenrieda steyermarkii Wurdack
Clidemia marahuacensis Wurdack
Grafenrieda tricalcarata Gleason
Clidemia micrantha Sagot
Grafenrieda versicolor Gleason
Clidemia microthyrsa R.O. Williams
Grafenrieda weddellii Naudin
Clidemia minutilora (Triana) Cogn.
Henrietta granulata O. Berg ex Triana
Clidemia morichensis Wurdack
Henriettea maroniensis Sagot
Clidemia novemnervia (DC.) Triana
Henriettea martiusii (DC.) Naudin
485
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Henriettea mucronata (Gleason) Renner
Macrocentrum minus Gleason
Henriettea multilora Naudin
Macrocentrum neblinae Wurdack
Henriettea patrisiana DC.
Macrocentrum rubescens Gleason
Henriettea spruceana Cogn.
Maieta guianensis Aubl.
Henriettea succosa (Aubl.) DC.
Maieta poeppigii Mart.
Henriettella caudata Gleason
Mallophyton chimantense Wurdack
Henriettella duckeana Hoehne
Marcetia taxifolia (A. St.-Hil.) DC.
Henriettella heteroneura Gleason
Meriania crassiramis (Naudin) Wurdack
Henriettella ovata Cogn.
Meriania ornata Wurdack
Henriettella steyermarkii Wurdack
Meriania sclerophylla (Naudin) Triana
L. sanguinea subsp. tepuiensis Wurdack
Meriania urceolata Triana
Leandra aristigera (Naudin) Cogn.
Miconia abbreviata Markgr.
Leandra candelabra (J.F. Macbr.) Wurdack
Miconia acutifolia Ule
Leandra chaetodon (DC.) Cogn.
Miconia ainis DC.
Leandra divaricata (Naudin) Cogn.
Miconia aguitensis Gleason
Leandra edentula Gleason
Miconia alata (Aubl.) DC.
Leandra francavillana Cogn.
Miconia albicans (Sw.) Triana
Leandra gorzulae Wurdack
Miconia alborufescens Naudin
Leandra lindeniana (Naudin) Cogn.
Miconia alternans Naudin
Leandra phelpsiae Gleason
Miconia amacurensis Wurdack
Leandra polyadena Ule
Miconia ampla Triana
Leandra procumbens Ule
Miconia aplostachya (Bonpl.) DC.
Leandra purpurea Gleason
Miconia argyrophylla DC.
Leandra rufescens (DC.) Cogn.
Miconia aristata Gleason
Leandra solenifera Cogn.
Miconia biglandulosa Gleason
Loreya arborescens (Aubl.) DC.
Miconia biglomerata (Bonpl.) DC.
Loreya mespiloides Miq.
Miconia borjensis Wurdack
Loreya spruceana Benth. ex Triana
Miconia bracteata (DC.) Triana
M. curta subsp. curta
Miconia brevipes Benth.
M. curta subsp. ptariensis Wurdack
Miconia bubalina (D. Don) Naudin
M. impetiolaris var. spruceana Cogn.
Miconia campestris (Benth.) Triana
M. laterilora subsp. laterilora
Miconia cautis Wurdack
M. laterilora subsp. monticellensis Wurdack
Miconia centrodesma Naudin
M. myrtilloides subsp. orinocensis Morley
Miconia ceramicarpa (DC.) Cogn.
Macairea cardonae Wurdack
Miconia chrysophylla (Rich.) Urb.
Macairea chimantensis Wurdack
Miconia ciliata (Rich.) DC.
Macairea duidae Gleason
Miconia crassinervia Cogn.
Macairea lanata Gleason
Miconia decurrens Cogn.
Macairea lasiophylla (Benth.) Wurdack
Miconia dioica Wurdack
Macairea linearis Gleason
Miconia dispar Benth.
Macairea multinervia Benth.
Miconia dodecandra (Desr.) Cogn.
Macairea neblinae Wurdack
Miconia egensis Cogn.
Macairea pachyphylla Benth.
Miconia elaeoides Naudin
Macairea parvifolia Benth.
Miconia elata (Sw.) DC.
Macairea rigida Benth.
Miconia eugenioides Triana
Macairea thyrsilora DC.
Miconia fallax DC.
Macrocentrum angustifolium Gleason
Miconia fragilis Naudin
Macrocentrum anychioides Gleason
Miconia fragrans Cogn.
Macrocentrum brevipedicellatum Wurdack
Miconia gratissima Benth. ex Triana
Macrocentrum chimantense Wurdack
Miconia grossidentata Wurdack
Macrocentrum droseroides Triana
Miconia guaiquinimae Wurdack
Macrocentrum huberi Wurdack
Miconia holosericea (L.) DC.
Macrocentrum longidens (Gleason) Wurdack
Miconia hypoleuca (Benth.) Triana
Macrocentrum maguirei Wurdack
Miconia ibaguensis (Bonpl.) Triana
486
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Miconia iluensis Wurdack
Miconia undata Triana
Miconia inaequalifolia Triana
Miconia wittii Ule
Miconia kavanayensis Wurdack
Microlicia benthamiana Triana ex Cogn.
Miconia lasseri Gleason
Microlicia guanayana Wurdack
Miconia lepidota DC.
Monochaetum bonplandii (Kunth) Naudin
Miconia longifolia (Aubl.) DC.
Mouriri acutilora Naudin
Miconia longispicata Triana
Mouriri angulicosta Morley
Miconia lourteigiana Wurdack
Mouriri brevipes Hook.
Miconia macrothyrsa Benth.
Mouriri collocarpa Ducke
Miconia macrotis Cogn.
Mouriri densifoliata Ducke
Miconia marginata Triana
Mouriri icoides Morley
Miconia mariae Wurdack
Mouriri grandilora DC.
Miconia matthaei Naudin
Mouriri guianensis Aubl.
Miconia minutilora (Bonpl.) DC.
Mouriri huberi Cogn.
Miconia mirabilis (Aubl.) L.O. Williams
Mouriri longifolia H.B.K.
Miconia myriantha Benth
Mouriri myrtifolia Spruce ex Triana
Miconia perturbata Wurdack
Mouriri nervosa Pilg.
Miconia phaeophylla Triana
Mouriri nigra (DC.) Morley
Miconia pileata DC.
Mouriri sagotiana Triana
Miconia pilgeriana Ule
Mouriri sideroxylon Sagot ex Triana
Miconia plukenetii Naudin
Mouriri subumbellata Triana
Miconia poeppigii Triana
Mouriri vernicosa Naudin
Miconia polita Gleason
Myriaspora egensis DC.
Miconia prasina (Sw.) DC.
Nepsera aquatica (Aubl.) Naudin
Miconia pseudoaplostachya Cogn.
Opisthocentra clidemioides Hook. F.
Miconia pseudocapsularis Wurdack
Ossaea micrantha (Sw.) Macfad.
Miconia pubipetala Miq.
Pachyloma huberioides (Naudin) Triana
Miconia punctata (Desr.) D. Don
Pachyloma pusillum Wurdack
Miconia pyrifolia Naudin
Pachyloma setosum Wurdack
Miconia racemosa (Aubl.) DC.
Phainantha laxilora (Triana) Gleason
Miconia radulaefolia (Benth.) Naudin
Phainantha maguirei Wurdack
Miconia roraimensis Ule
Phainantha steyermarkii Wurdack
Miconia rubiginosa (Bonpl.) DC.
Poteranthera pusilla Bong.
Miconia rufescens (Aubl.) DC.
Pterogastra divaricata (Bonpl.) Naudin
Miconia ruicalyx Gleason
Pterogastra minor Naudin
Miconia rugosa Triana
Pterolepis glomerata (Rottb.) Miq.
Miconia rupestris Ule
Pterolepis trichotoma (Rottb.) Cogn.
Miconia serialis DC
Rhynchanthera dichotoma (Desr.) DC.
Miconia serrulata (DC.) Naudin
Rhynchanthera grandilora (Aubl.) DC.
Miconia silicicola Gleason
Rhynchanthera serrulata (Rich.) DC.
Miconia solmsii Cogn.
Salpinga glandulosa (Gleason) Wurdack
Miconia splendens (Sw.) Griseb.
Salpinga maguirei Gleason
Miconia stenostachya DC.
Salpinga pusilla (Gleason) Wurdack
Miconia stephananthera Ule
Siphanthera cordifolia (Benth.) Gleason
Miconia steyermarkii Gleason
Siphanthera cowanii Wurdack
Miconia superba Ule
Siphanthera dawsonii Wurdack
Miconia tetraspermoides Wurdack
Siphanthera duidae (Gleason) Wurdack
Miconia theaezans (Bonpl.) Cogn.
Siphanthera fasciculata (Gleason) Almeda y O.R. Rob.
Miconia tillettii Wurdack
Siphanthera foliosa (Naudin) Wurdack
Miconia tinifolia Naudin
Siphanthera hostmannii Cogn.
Miconia tomentosa (Rich.) D. Don ex DC.
T. aspera var. asperrima Cogn.
Miconia trinervia (Sw.) D. Don ex Loudon
T. bolivarensis subsp. bolivarensis
Miconia truncata Triana
T. bolivarensis subsp. occidentalis Wurdack
Miconia undata Triana
T. fraterna subsp. fraterna
487
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
T. fraterna subsp. paruana Wurdack
Trichilia mazanensis J.F. Macbr.
T. obovata subsp. obovata
Trichilia micrantha Benth.
T. tepuiensis subsp. glabrata Wurdack
Trichilia pallida Sw.
T. tepuiensis subsp. tepuiensis
Trichilia pleeana (A. Juss.) C. DC.
Tateanthus duidae Gleason
Trichilia rubra C. DC.
Tibouchina aspera var. aspera
T. schomburgkii subsp. javariensis T.D. Penn.
Tibouchina bipenicillata (Naudin) Cogn.
T. schomburgkii subsp. schomburgkii.
Tibouchina catharinae Pittier
Trichilia septentrionalis C. DC.
Tibouchina cryptadena Gleason
Trichilia tetrapetala C. DC.
Tibouchina dissitilora Wurdack
MENDONCIACEAE
Tibouchina duidae Gleason
Mendoncia bivalvis (L. F.) Merr.
Tibouchina geitneriana (Schltdl.) Cogn.
Mendoncia cardonae Leonard
Tibouchina gracilis (Bonpl.) Cogn.
Mendoncia hofmannseggiana Nees
Tibouchina huberi Wurdack
Mendoncia phalacra Leonard
Tibouchina kunhardtii Gleason
Mendoncia sprucei Lindau
Tibouchina llanorum Wurdack
MENISPERMACEAE
Tibouchina longifolia (Vahl) Baill.
Abuta grandifolia (Mart.) Sandw.
Tibouchina sipapoana Gleason
Abuta grisebachii Triana y Planch.
Tibouchina spruceana Cogn.
Abuta imene (Mart.) Eichler
Tibouchina steyermarkii Wurdack
Abuta obovata Diels
Tibouchina striphnocalyx (DC.) Gleason
Abuta pahni (Mart.) Krukof y Barneby
Tococa aristata Benth.
Abuta rufescens Aubl.
Tococa ciliata Triana
Abuta velutina Gleason
Tococa coronata Benth.
Anomospermum steyermarkii Krukof y Barneby
Tococa erythrophylla (Ule) Wurdack
Borismene japurensis (Mart.) Barneby
Tococa guianensis Aubl.
Cissampelos andromorpha DC.
Tococa lancifolia Spruce ex Triana
Cissampelos ovalifolia DC.
Tococa macrophysca Spruce ex Triana
Cissampelos pareira L.
Tococa macrosperma Mart.
Cissampelos tropaeolifolia DC.
Tococa nitens (Benth.) Triana
Curarea candicans (Rich. ex DC.) Barneby y Krukof
Tococa oligantha Gleason
Curarea toxicofera (Wedd.) Barneby y Krukof
Tococa rotundifolia (Triana) Wurdack
Disciphania ernstii var. ernstii
Topobea ferruginea Gleason
O. tamoides var. tamoides
Votomita orinocensis Morley
Odontocarya sp. A
Votomita ventuarensis Morley
Odontocarya tamoides var. canescens (Miers) Barneby
MELIACEAE
Orthomene schomburgkii (Miers) Barneby y Krukof
Carapa guianensis Aubl.
MENYANTHACEAE
Cedrela issilis Vell.
Nymphoides indica (L.) Kuntze
Cedrela odorata L.
MIMOSACEAE
G. macrophylla subsp. pachycarpa (C. DC.) T.D. Penn.
Abarema acreana (J.F. Macbr.) L. Rico
G. macrophylla subsp. pendulispica (C. DC.) T.D. Penn.
Abarema barbouriana var. arenaria (Ducke) Barneby y J.W. Grimes
G. pubescens subsp. pubescens
Abarema jupunba var. trapezifolia (Vahl) Barneby y J.W. Grimes
G. pubescens subsp. pubilora (A. Juss.) T.D. Penn.
Abarema levelii (R.S. Cowan) Barneby y J.W. Grimes
Guarea glabra Vahl
Abarema longipedunculata (H.S. Irwin) Barneby y J.W. Grimes
Guarea gomma Pulle
microcalyx var. microcalyx
Guarea guidonia (L.) Sleumer
Abarema villifera (Ducke) Barneby y J.W. Grimes
Guarea truncilora C. DC.
Acacia alemquerensis Huber
Melia azedarach L.
Acacia farnesiana (L.) Willd.
T. elegans subsp. elegans
Acacia glomerosa Benth.
T. lepidota subsp. leucastera (Sandwith) T.D. Penn.
Acacia macracantha Humb. y Bonpl. ex Willd.
T. quadrijuga subsp. quadrijuga
Acacia paniculata Willd.
Trichilia acuminata (Humb. y Bonpl. ex Roem. y Schult.) A. DC. y C. DC.
Acacia podadenia (Britton y Killip) L. Cárdenas
Trichilia cipo (A. Juss.) C. DC.
Acacia tamarindifolia (L.) Willd.
Trichilia inaequilatera T.D. Penn.
Albizia barinensis L. Cárdenas
488
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Albizia glabripetala (H.S. Irwin) G.P. Lewis y P.E. Owen
Inga stipularis DC.
Albizia subdimidiata (Splitg.) Barneby y J.W. Grimes
Inga thibaudiana subsp. thibaudiana
Anadenanthera peregrina var. peregrina
Inga umbellifera (Vahl) Steud. ex DC.
Balizia pedicellaris (DC.) Barneby y J.W. Grimes
Inga umbratica Poepp.
C. laxa var. urimana Barneby
Inga vera subsp. ainis
C. mangense var tetrazyx Barneby y J.W. Grimes
Inga vera subsp. vera
C. trinervia var. pilosifolia (R.S. Cowan) Barneby
Leucaena leucocephala (subsp. glabrata (Rose) S. Zárate
C. trinervia var. trinervia
M. debilis var. debilis
C. vaupesiana var. oligandra Barneby
M. microcephala subsp. cataractae var. lumaria Barneby
Calliandra cruegeri Griseb
M. microcephala subsp. microcephala var. communis Barneby
Calliandra glomerulata var. glomerulata
M. microcephala subsp. microcephala var. microcephala
Calliandra laxa var. laxa
M. pellita var. pellita
Calliandra laxa var. stipulacea (Benth.) Barneby
M. pubiramea var. lindsaeifolia (Spruce ex Benth.) Barneby y J.W. Grimes
Calliandra pakaraimensis R.S. Cowan
M. pudica var. tetrandra (Humb. y Bonpl. ex Willd.) DC.
Calliandra riparia Pittier
M. pudica var. unijuga (Walp. y Duchass.) Griseb.
Calliandra surinamensis Benth.
M. quadrivalvis var. leptocarpa (DC.) Barneby
Calliandra tergemina (L.) Benth.
M. rufescens var. rufescens
Calliandra tsugoides R.S. Cowan
M. schrankioides var. sagotiana (Benth.) Barneby
Cedrelinga cateniformis (Ducke) Ducke
M. schrankioides var. schrankioides
Chloroleucon eurycyclum Barneby y J.W. Grimes
M. somnians subsp. somnians var. deminuta Barneby
Entada polystachya (L.) DC.
M. somnians subsp. somnians var. somnians
Enterolobium barinense L. Cárdenas y H. Rodr.
M. xanthocentra subsp. xanthocentra var. xanthocentra
Enterolobium schomburgkii (Benth.) Benth.
Macrosamanea discolor (Humb. y Bonpl. ex Willd.) Britton y Rose
H. marginata var. panurensis (Spruce ex Benth.) Barneby y J.W. Grimes
Macrosamanea simabifolia (Spruce ex Benth.) Pittier
H. marginata var. scheryi Barneby y J.W. Grimes
Macrosamanea spruceana (Benth.) Killip
Hydrochorea corymbosa (Rich.) Barneby y J.W. Grimes
Mimosa brachycarpoides Barneby
Hydrochorea gonggrijpii (Kleinhoonte) Barneby y J.W. Grimes
Mimosa camporum Benth.
Inga alba (Sw.) Willd
Mimosa casta L.
Inga bijuga Schery
Mimosa colombiana Britton y Killip
Inga bourgonii (Aubl.) DC.
Mimosa dormiens Humb. y Bonpl. ex Willd.
Inga capitata Desv.
Mimosa guanchezii Barneby
Inga cayennensis Sagot ex Benth.
Mimosa hirsutissima Mart.
Inga edulis Mart.
Mimosa huberi Barneby
Inga fastuosa (Jacq.) Willd.
Mimosa myriadenia (Benth.) Benth.
Inga gracilifolia Ducke
Mimosa orinocoënsis Barneby
Inga heterophylla Willd.
Mimosa orthocarpa Spruce ex Benth.
Inga huberi Ducke
Mimosa piscatorum Barneby
Inga ingoides (Rich.) Willd.
Mimosa polydactyla Humb. y Bonpl. ex Willd.
Inga laterilora Miq.
Mimosa sensitiva L.
Inga laurina (Sw.) Willd.
Mimosa surumuënsis Harms
Inga leiocalycina Benth.
Mimosa velloziana Mart
Inga lomatophylla (Benth.) Pittier
Neptunia plena (L.) Benth.
Inga melinonis Sagot
P. ulei var. surinamensis Kleinhoonte
Inga micradenia Spruce ex Benth.
Parkia barnebyana H.C. Hopkins
Inga multijuga subsp. multijuga
Parkia discolor Spruce ex Benth.
Inga nobilis subsp. nobilis
Parkia nitida Miq.
Inga paraensis Ducke
Parkia panurensis Benth. ex H.C. Hopkins
Inga pezizifera Benth.
Parkia pendula (Willd.) Benth. ex Walp.
Inga pilosula (Rich.) J.F. Macbr.
Parkia velutina Benoist
Inga rubiginosa (Rich.) DC.
Pentaclethra macroloba (Willd.) Kuntze
Inga sapindoides Willd.
Piptadenia leucoxylon Barneby y J.W. Grimes
Inga sertulifera subsp. sertulifera
Piptadenia moniliformis Benth.
Inga splendens Willd.
Piptadenia viridilora (Kunth) Benth
Inga stenoptera Benth.
Pithecellobium roseum (Vahl) Barneby y J.W. Grimes
489
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Pithecellobium unguis-cati (L.) Benth.
Ficus eximia Schott
Pseudopiptadenia suaveolens (Miq.) J.W. Grimes
Ficus gomelleira Kunth y Bouché
Pseudosamanea guachapele (H.B.K.) Harms
Ficus guianensis Desv. ex Ham.
Samanea inopinata (Harms) Barneby y J.W. Grimes
Ficus hebetifolia Dugand
Samanea saman (Jacq.) Merr
Ficus insipida subsp. insipid
Stryphnodendron guianense subsp. guianense
Ficus insipida subsp. scabra C.C. Berg
Stryphnodendron levelii R.S. Cowan
Ficus malacocarpa Standl.
Stryphnodendron microstachyum Poepp.
Ficus mathewsii (Miq.) Miq.
Stryphnodendron polystachyum (Miq.) Kleinhoonte
Ficus maxima Mill.
Stryphnodendron pulcherrimum (Willd.) Hochr.
Ficus mollicula Pittier
Z. latifolia var. communis Barneby y J.W. Grimes
Ficus nymphaeifolia Mill.
Z. latifolia var. lasiopus (Benth.) Barneby y J.W. Grimes
Ficus obtusifolia H.B.K.
Z. latifolia var. latifolia
Ficus pakkensis Standl.
Z. portoricensis subsp. lavida (Urb.) H. Hernández
Ficus paludica Standl.
Zapoteca formosa subsp. formosa
Ficus panurensis Standl.
Zygia basijuga (Ducke) Barneby y J.W. Grimes
Ficus paraensis (Miq.) Miq.
Zygia cataractae (H.B.K.) L. Rico
Ficus pertusa L. F.
Zygia clavilora (Spruce ex Benth.) Barneby y J.W. Grimes
Ficus schumacheri (Liebm.) Griseb.
Zygia collina (Sandwith) Barneby y J.W. Grimes
Ficus sphenophylla Standl.
Zygia inaequalis (Humb. y Bonpl. ex Willd.) Pittier
Ficus tepuiensis C.C. Berg y Simonis
Zygia potaroënsis Barneby y J.W. Grimes
Ficus trigona L. F.
Zygia racemosa (Ducke) Barneby y J.W. Grimes
Helicostylis elegans (J.F. Macbr.) C.C. Berg
Zygia ramilora (Benth.) Barneby y J.W. Grimes
Helicostylis tomentosa (Poepp. y Endl.) Rusby
Zygia unifoliolata (Benth.) Pittier
Maclura tinctoria subsp. tinctoria
MOLLUGINACEAE
Maquira calophylla (Poepp. y Endl.) C.C. Berg
Glinus radiatus (Ruiz y Pav.) Rohrb.
Maquira coriacea (H. Karst.) C.C. Berg
Mollugo verticillata L.
M. guianensis subsp. costaricana (Standl.) C.C. Berg
MONIMIACEAE
Maquira sclerophylla (Ducke) C.C. Berg
Mollinedia killipii J.F. Macbr.
Pseudolmedia laevigata Trécul
Mollinedia ovata Ruiz y Pav.
Pseudolmedia laevis (Ruiz y Pav.) J.F. Macbr.,
Mollinedia repanda Ruiz y Pav.
Sorocea muriculata subsp. uaupensis (Baill.) C.C. Berg
MONOTACEAE
S. pubivena subsp. hirtella (Mildbr.) C.C. Berg
Pakaraimaea dipterocarpácea subsp. nitida Maguire y Steyerm.
S. sprucei subsp. sprucei
MORACEAE
Trymatococcus amazonicus Poepp. y Endl.
Brosimum alicastrum subsp. bolivarense (Pittier) C.C. Berg
MORINGACEAE
Brosimum guianense (Aubl.) Huber
Moringa oleifera Lam.
Brosimum lactescens (S. Moore) C.C. Berg
MYRICACEAE
Brosimum potabile Ducke
Myrica rotundata Steyerm. y Maguire
Brosimum rubescens Taub.
MYRISTICACEAE
B. utile subsp. ovatifolium (Ducke) C.C. Berg
Iryanthera hostmannii (Benth.) Warb.
Castilla elástica subsp. elastica
Iryanthera juruensis Warb.
Clarisia bilora Ruiz y Pav.
Iryanthera laevis Markgr.
Clarisia ilicifolia (Spreng.) Lanj. y G. Rossberg
Iryanthera lancifolia Ducke
Clarisia racemosa Ruiz y Pav.
Iryanthera macrophylla (Benth.) Warb.
Dorstenia brasiliensis Lam.
Iryanthera obovata Ducke
Ficus albert-smithii Standl.
Iryanthera paradoxa (Schwacke) Warb.
Ficus amazonica (Miq.) Miq.
Iryanthera paraensis Huber
Ficus americana Aubl.
Iryanthera tricornis Ducke
Ficus broadwayi Urb.
Osteophloeum platyspermum (Spruce ex A. DC.) Warb.
Ficus caballina Standl.
Virola duckei A.C. Sm.
Ficus catappifolia Kunth y Bouché
Virola elongata (Benth.) Warb.
Ficus crocata (Miq.) Miq.
Virola pavonis (A. DC.) A.C. Sm.
Ficus dendrocida H.B.K.
Virola sebifera Aubl.
Ficus donnell-smithii Standl.
Virola surinamensis (Rol. ex Rottb.) Warb.
490
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Virola theiodora (Spruce ex Benth.) Warb.
Calycolpus bolivarensis Landrum
Virola venosa (Benth.) Warb.
Calycolpus calophyllus (H.B.K.) O. Berg
Virola sp. A
Calycolpus geotheanus (DC.) O. Berg
MYRSINACEAE
Calycolpus roraimensis Steyerm.
Ardisia guianensis (Aubl.) Mez
Calyptranthes fasciculata O. Berg
Cybianthus agostinianus Pipoly
Calyptranthes macrophylla O. Berg
Cybianthus amplus (Mez) G. Agostini
Calyptranthes multilora O. Berg
Cybianthus apiculatus (Steyerm.) G. Agostini
Calyptranthes nigrescens B. Holst
Cybianthus breweri G. Agostini
Calyptranthes pulchella DC.
Cybianthus cardonae G. Agostini
Calyptranthes pullei Mc Vaugh
Cybianthus crotonoides (R.M. Schomb. ex Mez) G. Agostini
Calyptranthes ruiziana O. Berg
Cybianthus deltatus Pipoly
Campomanesia aromatica (Aubl.) Griseb
Cybianthus duidae (Gleason y Moldenke) G. Agostini
Campomanesia grandilora (Aubl.) Sagot
C. fulvopulverulentus subsp. fulvopulverulentus
Eugenia amblyosepala McVaugh
C. fulvopulverulentus subsp. magnoliifolius (Mez) Pipoly
Eugenia anastomosans DC.
Cybianthus grandifolius (Mez) G. Agostini
Eugenia baileyi Britton
C. guyanensis subsp. multipunctatus (A. DC.) Pipoly
Eugenia bilora (L.) DC.
C. guyanensis subsp. pseudoicacoreus (Miq.) Pipoly
Eugenia callichroma Mc Vaugh
Cybianthus holstii Pipoly
Eugenia chrysophyllum Poir.
Cybianthus huberi Pipoly
Eugenia citrifolia Poir.
Cybianthus julianii Pipoly
Eugenia cribata McVaugh
Cybianthus lepidotus (Gleason) G. Agostini,
Eugenia cuaoensis Mc Vaug
Cybianthus lineatus (Benth.) Pipoly
Eugenia egensis DC.
Cybianthus multicostatus Miq.
Eugenia emarginata (H.B.K.) DC.
Cybianthus pendulilorus Mart.
Eugenia feijoi O Berg
Cybianthus potiaei (Mez) G. Agostini
Eugenia ferreiraeana O. Berg
Cybianthus prieurei A. DC.
Eugenia lavescens DC.
Cybianthus ptariensis (Steyerm.) Pipoly
Eugenia lorida DC.
Cybianthus punctatus (Mez) G. Agostini
Eugenia kaietreurensis Amshof
Cybianthus quelchii (N.E. Br.) G. Agostini
Eugenia lambertiana
Cybianthus resinosus Mez
Eugenia ligustrina (Sw.) Willd
Cybianthus reticulatus (Benth. ex Mez) G. Agostini
Eugenia longiracemosa (Rusby) McVaugh
Cybianthus roraimae (Steyerm.) G. Agostini
Eugenia magna B. Holst
Cybianthus sipapoensis Pipoly y G. Agostini
Eugenia monticola (Sw.) DC.
Cybianthus spathulifolius G. Agostini ex Pipoly
Eugenia moritziana H. Karst.
Cybianthus spicatus (H.B.K.) G. Agostini
Eugenia omisa Mc Vaugh
Cybianthus steyermarkianus (G. Agostini) G. Agostini
Eugenia pachystachya Mc Vaugh
Cybianthus surinamensis (Spreng.) G. Agostini
Eugenia patrisii Mc Vaugh
Cybianthus venezuelanus Mez
Eugenia protenta Mc Vaugh
Cybianthus wurdackii G. Agostini ex Pipoly
Eugenia pseudopsidium Jacq.
Myrsine coriácea subsp. coriacea
Eugenia pubescens (H.B.K.) DC.
M. coriacea subsp. reticulata (Steyerm.) Pipoly
Eugenia punicifolia (H.B.K.) DC.
Myrsine guianensis (Aubl.) Kuntze
Eugenia roseilora Mc Vaugh
Myrsine maguireana Pipoly
Eugenia tapacumensis O. Berg
Myrsine minima (Steyerm.) Pipoly
Eugenia trinervia Vahl
Myrsine nitida (Mez) Pipoly
Eugenia umbonata Mc Vaugh
Myrsine pellucida (Ruiz y Pav.) Spreng.
Eugenia yatuae (Mc Vaugh) B. Holst
Myrsine resinosa (A.C. Sm.) Pipoly
Eugenia sp. B.
Stylogyne lasseri (Lundell) Pipoly
Marlieria convexivenia B. Holst
Stylogyne micrantha (H.B.K.) Mez
Marlieria ferruginea (Poir.) McVaugh
Stylogyne orinocensis (H.B.K.) Mez
Marlieria karuaiensis (Steyerm.) McVaugh
MYRTACEAE
Marlieria ligustrina McVaugh
Blepharocalyx eggersii (Kiaersk.) Landrum
Marlieria lituatinervia (O. Berg) McVaugh
Calycolpus alternifolius (Gleason) Landrum
Marlieria maguirei McVaugh
491
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Marlieria montana (Aubl.) Amshof
Myrcia sp. D
Marlieria pudica McVaugh
Myrcianthes fragrans (Sw.) Mc Vaugh
Marlieria rugosior McVaugh
Myrcianthes prodigiosa Mc Vaugh
Marlieria schomnurgkiana O. Berg
Myrcianthes rhopaloides (H.B.K.) Mc Vaugh
Marlieria spruceana O. Berg
Myrciaria dubia (H.B.K.) Myrciaria
Marlieria suborbicularis McVaugh
Myrciaria loribunda (West ex Willd.) O. Berg.
Marlieria summa McVaugh
Myrciaria puberulenta B. Holst
Marlieria umbraticola (H.B.K.) O. Berg
Myrciaria tenella (DC.) O. Berg
Marlieria unilora McVaugh
Myrteola nummularia (Poir.) O. Berg
Myrcia albido-tomentosa (Amshof) Mc Vaugh
Plinia involucrata (O. Berg) Mc Vaugh
Myrcia aliena Mc Vaugh
Plinia pinnata L.
Myrcia amazonica DC
Plinia rivularis (Cambess.) Rotman
Myrcia bolivarensis (Steyerm.) Mc Vaugh
Plinia sp. A
Myrcia bonnetiasylvestris (Steyerm.) Steyerm.
Plinia sp. B
Myrcia bracteata (Rich.) DC.
Pseudanamomis umbellulifera (H.B.K.) Kausel
Myrcia citrifolia (Aubl.) Urb.
Psidium acutangulum DC.
Myrcia clusiifolia (H.B.K.) DC.
Psidium cinereum DC.
Myrcia compta Mc Vaugh
Psidium densicomum DC.
Myrcia crispa Mc Vaugh
Psidium guajava L.
Myrcia decorticans DC.
Psidium guineense Sw.
Myrcia delexa (Poir.) DC.
Psidium laruotteanum Cambess.
Myrcia dichasialis Mc Vaugh
Psidium maribense DC.
Myrcia ehrenbergiana (O. Berg) Mc Vaugh
Psidium salutare (H.B.K.) O. Berg
Myrcia exploratoria Mc Vaugh
Psidium sartorianum (O. Berg) Nied.
Myrcia fallax (Rich.) DC.
Psidium striatulum DC.
Myrcia fenzliana O. Berg
Siphoneugena dussii (Krug y Urb,) Proenca
Myrcia grandis Mc Vaugh
Syzygium cumini (L.) Skeels
Myrcia guianensis (Aubl.) DC.
Syzygium jambos (L.) Alston
Myrcia inaequiloba (DC.) Legrand
Syzygium malaccense (L.) Merr. y Perry
Myrcia intonsa (Mc Vaugh) B. Holst
Ugni myricoides (H.B.K.) O. Berg
Myrcia kylistophylla B. Holst
NYCTAGINACEAE
Myrcia liesneri B. Holst
Boerhavia coccinea Mill.
Myrcia lucida Mc Vaugh
Boerhavia difusa L.
Myrcia magnoliifolia DC.
Bougainvillea buttiana Holttum y Standl.
Myrcia minutilora Sagot
Bougainvillea spectabilis Willd.
Myrcia multilora (Lam.) DC.
Guapira amacurensis Steyerm.
Myrcia nubicola McVaugh
Guapira bolivarensis Steyerm.
Myrcia paivae O. Berg
Guapira cuspidata (Heimerl) Lundell
Myrcia pistrinalis Mc Vaugh
Guapira ferruginea (Klotsch ex Choisy) Lundell
Myrcia platyclada DC.
Guapira fragrans (Dum.-Cours.) Little
Myrcia ptariensis (Steyerm.) Mc Vaugh
Guapira guianensis Aubl.
Myrcia pyrifolia (Desv. Ex Ham.) Nied.
Guapira marcano-bertii Steyerm.
Myrcia revolutifolia Mc Vaugh
Guapira microphylla (Heimerl) Lundell
Myrcia rotundata (Amshof) Mc Vaugh
Guapira rusbyana (Heimerl ex Standl.) Lundell
Myrcia salticola (Steyerm.) Mc Vaugh
Guapira sipapoana Steyerm.
Myrcia sessililora Mc Vaugh
Mirabilis jalapa L.
Myrcia sipapensis Mc Vaugh
Neea amaruayensis Steyerm.
Myrcia sororopanensis Steyerm.
Neea bernardii Steyerm.
Myrcia splendens (Sw.) DC.
Neea bracteosa Steyerm.
Myrcia subsessilis O. Berg
Neea brevipedunculata Steyerm.
Myrcia sylvatica (G. Mey.) DC.
Neea davidsei Steyerm.
Myrcia tepuiensis Steyerm.
Neea guaiquinimae Steyerm.
Myrcia tomentosa (Aubl.) DC.
Neea ignicola Steyerm.
Myrcia sp. C
Neea marahuacae Steyerm.
492
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Neea neblinensis Maguire y Steyerm.
Ouratea megaphylla Sastre
Neea obovata Spruce ex Heimerl
Ouratea multibracteata Steyerm. ex Sastre
Neea ovalifolia Spruce ex Schmidt
Ouratea orisina Sastre
Neea robusta Steyerm.
Ouratea ornata Maguire y Steyerm.
Neea subglabrata Steyerm.
Ouratea papillata Maguire y Steyerm.
Neea tepuiensis Steyerm.
Ouratea paratatei Sastre
Neea tristis Heimerl
Ouratea paruensis Maguire y Steyerm.
Pisonia aculeata L.
Ouratea pisiformis Engl.
NYMPHACEAE
Ouratea polyantha (Triana y Planch.) Engl.
Nymphaea amazonum Mart y Zucc.
Ouratea pseudoguildingii Sastre
Nymphaea conardii Wiersema
Ouratea ptaritepuiensis Steyerm.
Nymphaea garderiana Planch.
Ouratea pulverulente Sastre
Nymphaea glandulifera Rodschied
Ouratea ramosissima Maguire y Steyerm.
Nymphaea potamophila Wiersema
Ouratea rigida Engl.
Nymphaea pulchella DC.
Ouratea roraimae Engl.
Nymphaea rudgeana G. Mey.
Ouratea rorida Sastre
OCHNACEAE
Ouratea rotundipetala Maguire y Steyerm.
Adenanthe bicarpellata Maguire
Ouratea sipapoensis Maguire y Steyerm.
Adenarake macrocarpa Sastre
Ouratea soderstomii Sastre
Blastemanthus gemmilorus (Mart.) Planch. Subsp. sprucei (Tiegh.) Sastre
Ouratea spruceana Engl.
Cespedesia spathulata (Ruix y Pav.) Planch.
Ouratea squamata Sastre
Elvasia brevipedicellata Ule
Ouratea steyermarkii Sastre
Elvasia canescens (Tiegh.) Gilg
Ouratea superba Engl.
Elvasia elvasioides (Planch.) Gilg
Ouratea attei Gleason
Elvasia quinqueloba Spruce ex Engl.
Ouratea yapacanae Sastre
Ouratea angulata Tiegh.
Perissocarpa steyermarkii (Maguire) Maguire y Steyerm.
Ouratea (H.B.K.) Engl.
Perissocarpa umbellifera Maguire y Steyerm.
Ouratea arbobrevicalyx Sastre
Philacra duidae (Gleason) Dwyer
Ouratea articulata Sastre
Philacra longifolia (Gleason) Dwyer
Ouratea asisae Maguire y Steyerm.
Philacra steyermarkii Maguire
Ouratea brevicalyx Maguire y Steyerm.
Poecilandra pumila Steyerm.
Ouratea castaneifolia (DC.) Engl.
Poecilandra retusa Tul.
Ouratea chafanjonii (Tiegh.) Sastre
Sauvagesia aliciae Sastre
Ouratea culminicola Maguire y Steyerm.
Sauvagesia amoena Ule
Ouratea davidsii Sastre
Sauvagesia angustifolia Ule
Ouratea deminuta Maguire y Steyerm.
Sauvagesia delexifolia Gardner
Ouratea discophora Ducke
Sauvagesia elata Benth.
Ouratea duidae Steyerm.
Sauvagesia erecta L.
Ouratea evoluta Maguire y Steyerm.
Sauvagesia erioclada Maguire y K.D. Phelps
Ouratea ferruginea Engl.
Sauvagesia fruticosa Mart.
Ouratea fusiformis Sastre
Sauvagesia guianensis (Eichler) Sastre
Ouratea grandilora (DC.) Engl.
Sauvagesia imthurniana (Oliv.) Dwyer
Ouratea grosourdyi (Tiegh.) Steyerm.
Sauvagesia linearifolia A. St.-Hil.
Ouratea guaiquinimensis Sastre
Sauvagesia longifolia Eichler
Ouratea guianensis Aubl.
Sauvagesia longipes Steyerm.
Ouratea guriensis Sastre
Sauvagesia nudicaulis Maguire y Wurdack
Ouratea huberi Maguire y Steyerm.
Sauvagesia ramosissima Spruce ex Eichler
Ouratea lajaensis Sastre
Sauvagesia roraimensis Ule
Ouratea leblondii (Tiegh.) Lemmée
Sauvagesia rubiginosa A. St.-Hil.
Ouratea liesneri Sastre
Sauvagesia sprengelli A. St.-Hil.
Ouratea maguirei Sastre
Sauvagesia tenella Lam.
Ouratea maigualidae Sastre
Tyleria apiculata Sastre
Ouratea marahuacensis Maguire y Steyerm.
Tyleria breweriana Steyerm.
Ouratea medinae Maguire y Steyerm.
Tyleria loribunda Gleason
493
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Tyleria grandilora Gleason
OXALIDACEAE
Tyleria linearis Gleason
Biophytum callophyllum (Progel) Guillaumin
Tyleria phelpsiana Maguire y Steyerm.
Biophytum cardonaei Pittier
Tyleria spathulata Gleason
Biophytum sp. A
Tyleria terrae-humilis Sastre
Biophytum sp. B
Wallacea insignis Spruce ex. Benth. y Hook
Biophytum sp. C
Wallacea multilora Ducke
Oxalis barrelieri L.
OLACACEAE
Oxalis frutescens L.
Aptandra liriosmoides Spruce ex. Miers
Oxalis juruensis Diels
Aptandra tubicina (Poepp.) Benth. Ex. Miers
PASSIFLORACEAE
Cathedra acuminata (Benth.) Miers.
Passilora acuminata DC.
Chaunochiton angustifolium Sleumer
Passilora adenopoda DC.
Chaunochiton loranthoides Benth.
Passilora amicorum Wurdack
Dulacia candida (Poepp.) Kuntze
Passilora auriculata H.B.K.
Dulacia cyanocarpa Sleumer
Passilora capparidifolia Killip
Dulacia guianensis (Engl.) Kuntze
Passilora cardonae Killip
Dulacia inopilora (Miers) Kuntze
Passilora caulilora Harms
Dulacia macrophylla (Benth.) Kuntze
Passilora coccinea Aubl.
Dulacia redmondii Steyerm.
Passilora costata Mast.
Dulacia tepuiensis (Steyerm.) Sleumer y Steyerm.
Passilora edulis Sims
Heisteria acuminata (Bonpl.) Engl.
Passilora foetida L.
Heisteria barbata Cuatrec.
Passilora fuschiilora Hemsl.
Heisteria duckei Sleumer
Passilora garckei Mast.
Heisteria maytenoides Spruce ex Engl.
Passilora glandulosa Cav.
Heisteria ovata Benth.
Passilora gleasonii Killip
Heisteria pentandra (Benth. Ex Reisseck) Engl.
Passilora guazumaefolia Juss.
Heisteria scandens Ducke
Passilora laurifolia L.
Heisteria spruceana Engl.
Passilora longiracemosa Ducke
Minquartia guianensis Aubl.
Passilora maguirei Killip
Schoepia brasiliensis A. DC.
Passilora maliformis L.
Schoepia tepuiensis Steyerm.
Passilora misera H.B.K.
Kimenia americana L.
Passilora multiformis Jacq.
OLEACEAE
Passilora nitida H.B.K.
Chionanthus compactus Sw.
Passilora ovata Martin
Chionanthus implicatus (Rusby) P.S. Green
Passilora pedata L.
ONAGRACEAE
Passilora picturata Ker Gawl
Ludwigia ainis (DC.) Hara
Passilora pulchella H.B.K
Ludwigia decurrens Walter
Passilora pyrrhantha Harms
Ludwigia densilora (Micheli) Hara
Passilora quadrangularis L.
Ludwigia erecta (L.) Hara
Passilora quadriglandulos Rodschied
Ludwigia foliobracteolata (Munz) Hara
Passilora retipetala Mast.
Ludwigia helminthorrhiza (mart.) Hara
Passilora rubra L.
Ludwigia hyssopifolia (G. Don) Exell
Passilora sclerophylla Harms
Ludwigia inclinata (L. F.) M. Gómez
Passilora securiclata Mast.
Ludwigia latifolia (Benth.) Hara
Passilora seemannii Griseb.
Ludwigia leptocarpa (Nutt.) Hara
Passilora serrulata Jacq.
Ludwigia nervosa (Poir.) Hara
Passiloraspinosa (Poepp. y Endl.) Mast.
Ludwigia octovalvis (Jacq.) Raven
Passilora suberosa L.
Ludwigia quadrangularis (Micheli) Hara
Passilora tuberosa Jacq.
Ludwigia rigida (Miq.) Sanwith
Passilora variolata Poepp. y Endl.
Ludwigia sedoides (Bonpl.) Hara
Passilora vespertilio L:
Ludwigia torulosa (Arn.) Hara
Passilora sp. B
OPILIACEAE
PEDALIACEAE
Agonandra brasiliensis Miers ex Benth.
Craniolaria annua L.
494
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Sesamum orientale L.
Peperomia venezueliana C. DC.
PERIDISCACEAE
Peperomia venusta Yunck.
Peridiscus lucidus Benth.
Peperomia yutajensis Steyerm.
PHYTOLACCACEAE
Piper adenamdrum (Miq.) C. DC.
Microtea debilis Sw.
Piper aduncum L.
Microtea maypurensis (H.B.K.) G. Don
Piper aequale Vahl
Petiveria alliacea L.
Piper alatabaccum Trel. y Yunck.
Phytolacca rivinoides Kunth y Bouché
Piper alamago L.
Phytolacca rugosa A. Braun y Bouché
Piper anonifolium (Kunth.) C. DC.
Phytolacca thyrsolora Fenzl ex J.A. Schmidt
Piper arboreum Aubl.
Rivina humilis L.
Piper augustum Rudge
Phytolacca acueleata Jacq.
Piper avellanum (Miq.) C. DC.
Phytolacca macrophylla Benth.
Piper baccans (MIq.) C. DC.
Trichostigma octandrum (L.) H. Walter 10
Piper bolivarianum Yunck.
PIPERACEAE
Piper cernum Vell.
Peperomia acuminata Ruiz y Pav.
Piper cililimbum Yunck.
Peperomia alata Ruiz y Pav.
Piper consanguineum (Kunth.) C. DC.
Peperomia alpina (Sw.) A Dietr.
Piper corunscans H.B.K.
Peperomia abgustata H.B.K.
Piper crassinervium H.B.K.
Peperomia blanda (Jacq.) H.B.K.
Piper cumanense H.B.K.
Peperomia celiae Yunk.
Piper demeraranum (Kunth.) C. DC.
Peperomia delascioi Steyerm.
Piper dilatatum Rich.
Peperomia dendrophila Schlecht.
Piper divaricatum G. Mey.
Peperomia duidana Trel.
Piper laveolatum Kunth. ex C. DC.
Peperomia elongata H.B.K.
Piper francovilleanum C. DC.
Peperomia emarginella (Sw. Ex Wikstrom) C. DC.
Piper hispidum Sw.
Peperomia fundacionensis Steyerm.
Piper holtii Trel. y Yunck.
Peperomia galioides H.B.K.
Piper hostmannianum (Micq.) C. DC.
Peperomia glabella (Sw.) A. Dietr.
Piper jauaense Steyerm.
Peperomia guaiquinimana Trel. Yunk.
Piper javitense H.B.K.
Peperomia haematolepis Trel.
Piper julianii Callejas
Peperomia hernandifolia (Vahl) A. Dietr.
Piper marginatum Jacq.
Peperomia lanceolato-peltata C. DC.
Piper neblinanum Steyerm.
Peperomia lancifolia Hook.
Piper nigrum L.
Peperomia loxensis H.B.K.
Piper obliquum Ruiz y Pav.
Peperomia macrostachya (Vahl) A. Dietr.
Piper otto-huberi Steyerm.
Peperomia maculosa (L.) Hook.
Piper ovatum Vahl.
Peperomia magnolifolia (Jacq.) A. Dietr.
Piper parapeltobryon Steyerm.
Peperomia marahuacensis Steyerm.
Piper peltatum L.
Peperomia maypurensis H.B.K.
Piper piscatorum Trel. y Yunck.
Peperomia neblinana Yunk.
Piper politii Yunck.
Peperomia obtusifolia (L.) A. Dietr.
Piper pseudoglabrescens Trel. y Yunck.
Peperomia ouabianae C. DC.
Piper reticulatum L.
Peperomia pellucida (L.) H.B.K.
Piper sabanense Yunck.
Peperomia pernambucensis Miq.
Piper steyermarkii Yunck.
Peperomia purpurinervis C. DC.
Piper tamayoanum Steyerm.
Peperomia quadrangularis (J.V. homps.) A. Dietr.
Piper tepuiense Steyerm.
Peperomia quaesita Trel.
Piper toronotepuiense Steyerm.
Peperomia rotundata H.B.K.
Piper trigonum C. DC.
Peperomia rotundifolia (L.) H.B.K.
Piper tubreculatum Jacq.
Peperomia striata Ruiz y Pav.
Piper umbellatum L.
Peperomia tenella (Sw.) A. Dietr.
PLATAGINACEAE
Peperomia tetraphylla (G. Forst.) Hook. y Arn.
Plantago major L.
Peperomia uaupesensis Yunk.
PLUMBAGINACEAE
495
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Plumbago zeylanica L.
P. glochidiata var. glochidiata.
PODOSTEMONACEAE
Polygala hygrophila Kunth
Apinagia brevicaulis Mildbr. Endémica
Polygala longicaulis Kunth
Apinagia corymbosa (Tul.) Engl. corymbosa var. corymbosa
Polygala microspora S.F. Blake
Apinagia exilis (Tul.) P. Royen
Polygala paniculata L.
Apinagia guyanensis (Pulle) P. Royen
Polygala sanariapoana Steyerm.
Apinagia kochii (Engl.) P. Royen
Polygala savannarum Chodat
Apinagia longifolia (Tul.) P. Royen
Polygala sipapoana Wurdack Endémica
Apinagia multibranchiata (Matthiesen) P. Royen
Polygala spectabilis DC.
Apinagia richardiana (Tul.) P. Royen
Polygala spruceana A.W. Benn.
Apinagia ruppioides (Kunth) Tul.
Polygala subtilis Kunth
Apinagia staheliana (Went) P. Royen
Polygala tenella Willd.
Jenmaniella ceratophylla Engl.
Polygala timoutoides Chodat
J. ceratophylla var. parva P. Royen
P. timoutoides var. maguirei (Wurdack) Marques
Marathrum aeruginosum P. Royen Endémica
Polygala timoutou Aubl.
Marathrum capillaceum (Pulle) P. Royen
Polygala trichosperma L.
Marathrum utile Tul.
Polygala violacea Aubl
Mourera luviatilis Aubl.
Securidaca bialata Benth.
Rhyncholacis applanata K.I. Goebel
Securidaca cacumina Wurdack
R. applanata var. applanata K.I. Goebel
Securidaca coriacea Bonpl.
Rhyncholacis coronata P. Royen
Securidaca divaricata Nees y Mart.
Rhyncholacis divaricata Matthiesen
Securidaca diversifolia (L.) S.F. Blake
Rhyncholacis hydrocichorium Tul.
Securidaca fruticans Wurdack Endémica
Rhyncholacis oligandra Wedd.
Securidaca longifolia Poepp. y Endl.
Rhyncholacis penicillata Matthiesen
Securidaca maguirei Wurdack
Tristicha trifaria (Bory ex Willd.) Spreng.
Securidaca marginata Benth.
Weddellina squamulosa Tul.
Securidaca paniculata Rich
POLYGALACEAE
S. paniculata var. lasiocarpa Oort
Barnhartia loribunda Gleason
S. paniculata var. paniculada
Bredemeyera altissima (Poepp. y Endl.) A.W. Benn.
Securidaca pendula Bonpl.
Bredemeyera densilora A.W. Benn.
Securidaca prancei Wurdack
B. densilora var. glabra A.W. Benn.
Securidaca pubescens DC.
Bredemeyera loribunda Willd.
Securidaca pyramidalis Sprague
Bredemeyera lucida (Benth.) Klotzsch ex Hassk.
Securidaca retusa Benth
Bredemeyera myrtifolia A.W. Benn.
Securidaca savannarum Wurdack Endémica
Bredemeyera sp. A
Securidaca scandens Jacq.
Diclidanthera bolivarensis Pittier
Securidaca speciosa Wurdack Endémica
Diclidanthera octandra Gleason
Securidaca tenuifolia Chodat
Diclidanthera wurdackiana Aymard y P.E. Berry
Securidaca unilora Oort
Monnina cacumina N.E. Br.
Securidaca volubilis L.
Moutabea aculeata (Ruiz y Pav.) Poepp. y Endl.
Securidaca warmingiana Chodat
Moutabea af. chodatiana Huber
POLYGONACEAE
Moutabea guianensis Aubl.
Antigonon leptopus Hook. y Arn.
Moutabea sp. A.
Coccoloba ascendens Duss ex Lindau
Moutabea sp. B Endémica
Coccoloba caracasana Meisn.
Polygala adenophora DC.
Coccoloba charitostachya Standl.
Polygala appressa Benth.
Coccoloba coronata Jacq.
Polygala asperuloides Kunth
Coccoloba declinata (Vell.) Mart.
Polygala brevialata Chodat
Coccoloba dugandiana A. Fernández
Polygala caracasana Kunth
Coccoloba excelsa Benth.
Polygala exigua A.W. Benn.
Coccoloba fallax Lindau
P. exigua var. fendleri (Chodat) Marques
Coccoloba gymnorrhachis Sandw.
Polygala galioides Poir.
Coccoloba latifolia Poir.
Polygala glochidiata Kunth
Coccoloba llewelynii R.A. Howard
496
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Coccoloba lucidula Benth.
Roupala montana Aubl.
Coccoloba marginata Benth.
Roupala obtusata Klotzsch
Coccoloba mollis Casar.
Roupala paruensis Steyerm. Endémica
Coccoloba obtusifolia Jacq.
Roupala sororopana Steyerm.
Coccoloba ochreolata Wedd.
Roupala suaveolens Klotzsch
Coccoloba orinocana R.A. Howard
QUIINACEAE
Coccoloba ovata Benth.
Froesia gereauana J.V. Schneid. y Zizka Endémica
Coccoloba schomburgkii Meisn.
Froesia tricarpa Pires
Coccoloba spruceana Lindau
Lacunaria crenata (Tul.) A.C. Sm.
Coccoloba striata Benth.
Lacunaria jenmanii (Oliv.) Ducke
Coccoloba uvifera Salzm. ex Lindau,
Lacunaria macrostachya (Tul.) A.C. Sm.
Coccoloba sp. B
Lacunaria oppositifolia Pires
Coccoloba sp. C
Quiina cruegeriana Griseb.
Coccoloba sp. D
Quiina lorida Tul.
Polygonum acuminatum Kunth
Quiina guianensis Aubl.
Polygonum ferrugineum Wedd.
Quiina indigofera Sandwith
Polygonum glabrum Willd.
Quiina longifolia Spruce ex Planch. y Triana
Polygonum hydropiperoides Michx.
Quiina macrophylla Tul.
Polygonum punctatum Elliott
Quiina obovata Tul.
Ruprechtia howardiana Aymard y P.E. Berry Endémica
Quiina oiapocensis Pires
Ruprechtia laxilora Meisn.
Quiina pteridophylla (Radlk.) Pires
Ruprechtia ramilora (Jacq.) C.A. Mey.
Quiina rhytidopus Tul.
Ruprechtia tangarana Standl.
Quiina tinifolia Planch. y Triana
Ruprechtia tenuilora Benth.
Quiina wurdackii Pires Endémica
Symmeria paniculata Benth.
Touroulia guianensis Aubl.
Triplaris americana L.
RAFFLESIACEAE
Triplaris cumingiana Fisch. y C.A. Mey. ex C.A. Mey.
Apodanthes caseariae Poit.
Triplaris weigeltiana (Rchb.) Kuntze
RANUNCULACEAE
PORTULACACEAE
Clematis populifolia Turcz.
Portulaca elatior Mart. ex Rohrb.
RHAMNACEAE
Portulaca insignis Steyerm. Endémica
Ampelozizyphus amazonicus Ducke
Portulaca mucronata Link
Colubrina glandulosa Perkins
Portulaca pilosa L.
Gouania blanchetiana Miq.
Portulaca pusilla Kunth
Gouania colurnifolia Reiss.
Portulaca pygmaea Steyerm. Endémica
Gouania cornifolia Reiss.
Portulaca sedifolia N.E. Br.
Gouania discolor Benth.
Portulaca teretifolia Kunth
Gouania frangulifolia (Willd. ex Roem. y Schult.) Radlk.
Portulaca umbraticola Kunth
Gouania polygama (Jacq.) Urb.
Talinum fruticosum (L.) Juss.
Gouania wurdackii Steyerm. Endémica
Talinum paniculatum (Jacq.) Gaertn.
Rhamnus chimantensis Steyerm. y Maguire Endémica
PRIMULACEAE
Rhamnus longipes Steyerm. Endémica
Anagallis pumila Sw.
Rhamnus marahuacensis Steyerm. y Maguire Endémica
PROTEACEAE
Rhamnus sipapoenis Steyerm. Endémica
Euplassa chimantensis Steyerm. Endémica
Rhamnus ulei Pilger Endémica
Euplassa venezuelana Steyerm. Endêmica
Zizyphus cinnamomum Triana y Planch.
Panopsis ornatinervia Steyerm. Endémica
Zizyphus mauritiana Lam.
Panopsis parimensis Steyerm. Endémica
Zizyphus saeri Pittier
Panopsis ptariana Steyerm. Endémica
RHIZOPHORACEAE
Panopsis rubescens (Pohl) Pittier
Cassipourea guianensis Aubl.
Panopsis sessilifolia Rich.
Rhizophora harrisonii Leechm.
Panopsis tepuiana Steyerm. Endémica
Rhizophora mangle L.
Roupala chimantensis Steyerm.
Rhizophora racemosa G. Mey.
Roupala griotii Steyerm. Endémica
Sterigmapetalum chrysophyllum Aymard y Cuello Endémica
Roupala minima Steyerm.
Sterigmapetalum exappendiculatum Steyerm y Liesner Endémica
497
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Sterigmapetalum guianense Steyerm.
C. nitida var. nitida.
Sterigmapetalum resinosum Steyerm. y Liesner
Chiococca pubescens Humb. y Bonpl. ex Roem. y Schult.
ROSACEAE
Chomelia caurensis (Standl.) Steyerm. Endémica.
Hesperomeles obtusifolia (Pers.) Lindl.
Chomelia glabricalyx Steyerm. Endémica.
H. obtusifolia var. obtusifolia
Chomelia malaneoides Müll. Arg.
Prunus accumulans (Koehne) C.L. Li y Aymard
Chomelia monachinoi Steyerm.
Prunus amplifolia Pilger
Chomelia polyantha S.F. Blake.
Prunus espinozana C.L. Li
Cinchonopsis amazonica (Standl.) L. Andersson.
Prunus lichoana Aymard
Coccochondra laevis (Steyerm.) Rauschert. Endémica.
Prunus myrtifolia (L.) Urb.
Coccocypselum aureum (Spreng.) Cham. y Schltdl.
Prunus wurdackii C.L. Li
Coccocypselum condalia Pers.
Rubus loribundus Kunth
Coccocypselum guianense (Aubl.) K. Schum.
Rubus guyanensis Focke
Coccocypselum hirsutum Bartl. ex DC.
Rubus urticifolius Poir
Coccocypselum huberi Steyerm. Endémica.
RUBIACEAE
Coccocypselum lanceolatum (Ruiz y Pav.) Pers.
Alibertia bertierifolia K. Schum.
Cofea arabica L.
Alibertia edulis (Rich.) A. Rich.
Cofea liberica Bull ex Hiern.
A. edulis var. edulis.
Cordiera myrciifolia (Spruce ex K. Schum.) C. Perss. y Delprete
A. edulis var. obtusiuscula (Steyerm.) Delprete y C. Perss.
Coryphothamnus auyantepuiensis (Steyerm.) Steyerm. Endémica.
Alibertia latifolia (Benth.) K. Schum.
Cosmibuena grandilora (Ruiz y Pav.) Rusby.
Alseis labatioides H. Karst.
Coussarea hirticalyx Standl.
Amaioua corymbosa Kunth.
Coussarea lasseri Steyerm. Endémica.
Amaioua guianensis Aubl.
Coussarea paniculata (Vahl) Standl.
Aphanocarpus steyermarkii (Standl.) Steyerm.
Coussarea revoluta Steyerm. Endémica.
Bathysa bathysoides (Steyerm.) Delprete
Coussarea violacea Aubl.
Bertiera diversiramea Steyerm.
Coutarea hexandra (Jacq.) K. Schum.
Bertiera guianensis Aubl.
Declieuxia fruticosa (Willd. ex Roem. y Schult.) Kuntze.
Borreria capitata (Ruiz y Pav.) DC.
Declieuxia tenuilora (Willd. ex Roem. y Schult.) Steyerm. y J.H. Kirkbr.
Borreria cataractarum Steyerm.
Dendrosipanea revoluta Steyerm. Endémica.
Borreria confertifolia Steyerm.
Didymochlamys connellii N.E. Br.
Borreria densilora DC.
Diodia apiculata (Willd. ex Roem. y Schult.) K. Schum. H
Borreria hispida Spruce ex K. Schum.
Diodia hyssopifolia (Willd. ex Roem. y Schult.) Cham. y Schltdl.
Borreria intricata Steyerm.
Diodia kuntzei K. Schum.
Borreria jangouxii Steyerm. Endémica.
Diodia multilora DC.
Borreria latifolia (Aubl.) K. Schum.
Diodia ocymifolia (Willd. ex Roem. y Schult.) Bremek.
Borreria macrocephala Standl. y Steyerm.
Diodia radula (Willd. y Hofmanns. ex Roem. y Schult.) Cham. y Schltdl.
Borreria prostrata (Aubl.) Miq.
Diodia sarmentosa Sw.
Borreria pygmaea Spruce ex K. Schum.
Diodia spicata Miq.
Borreria remota (Lam.) Bacigalupo y E.L. Cabral.
Diodia teres Walter.
Borreria repens DC.
Duidania montana Standl. Endémica.
Borreria verticillata (L.) G. Mey.
Duroia bolivarensis Steyerm. Endémica.
Borreria wurdackii Steyerm.). Endémica.
Duroia eriopila L.F.
Botryarrhena pendula Ducke.
Duroia fusifera Hook. F. ex K. Schum.
Botryarrhena venezuelensis Steyerm.
Duroia genipoides Hook. F. ex K. Schum.
Calycophyllum venezuelense Steyerm. Endémica.
Duroia gransabanensis Steyerm. Endémica.
Capirona decorticans Spruce.
Duroia maguirei Steyerm.
Chalepophyllum guianense Hook. F.
Duroia micrantha (Ladbr.) Zarucchi y J.H. Kirkbr.
Chimarrhis microcarpa Standl.
Duroia nitida Steyerm.
Chiococca alba (L.) A.S. Hitchc.
Duroia paruensis Steyerm.
Chiococca auyantepuiensis Steyerm. Endémica.
Duroia strigosa Steyerm. Endémica.
Chiococca lucens Standl. y Steyerm. Endémica.
Elaeagia maguirei Standl.
Chiococca nitida Benth.
E. maguirei var. maguirei.
C. nitida var. amazonica Müll.
E. maguirei var. pubens Steyerm. Endémica.
C. nitida var. chimantensis Steyerm. Endémica.
Emmeorhiza umbellata (Spreng.) K. Schum.
498
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Faramea angustifolia Spruce ex Müll. Arg.
Ixora yavitensis Steyerm.
Faramea anisocalyx Poepp. y Endl.
Kutchubaea longiloba Steyerm. Endémica.
Faramea berryi Steyerm.
Kutchubaea micrantha Steyerm.
Faramea boomii Steyerm.
Kutchubaea morilloi Steyerm. Endémica.
Faramea capillipes Müll. Arg.
Kutchubaea sericantha Standl.
Faramea cardonae Standl. y Steyerm. Endémica.
Ladenbergia amazonensis Ducke.
Faramea crassifolia Benth.
Ladenbergia lambertiana (A. Braun ex Mart.) Klotzsch.
Faramea morilloi Steyerm.
Ladenbergia sp. A
Faramea multilora A. Rich. ex DC.
Limnosipanea palustris (Seem.) Hook. F.
Faramea occidentalis (L.) A. Rich.
Limnosipanea spruceana Hook. F.
Faramea orinocensis Standl.
Machaonia brasiliensis (Hofmanns. ex Humb.) Cham. y Schltdl.
Faramea parvibractea Steyerm.
Maguireothamnus speciosus (N.E. Br.) Steyerm.
Faramea sessilifolia (Kunth) DC.
M. speciosus subsp. jauaensis Steyerm.
Faramea stenopetala Mart.
M. speciosus subsp. speciosus
Faramea tamberlikiana Müll. Arg.
Maguireothamnus tatei (Standl.) Steyerm. Endémica.
Faramea torquata Müll. Arg.
Malanea auyantepuiensis Steyerm. Endémica.
Faramea yavitensis Steyerm. Endémica.
Malanea chimantensis Steyerm. Endémica.
Faramea yutajensis Steyerm. Endémica.
Malanea gabrielensis Müll. Arg.
Ferdinandusa boomii Steyerm. Endémica.
Malanea guaiquinimensis Steyerm. Endémica.
Ferdinandusa goudotiana K. Schum.
Malanea jauaensis Steyerm. Endémica.
F. goudotiana var. eciliata Steyerm.
Malanea macrophylla Griseb.
F. goudotiana var. goudotiana.
Malanea microphylla Standl. y Steyerm. Endémica.
F. goudotiana var. psilocarpa Steyerm.
Malanea obovata Hochr.
Galium hypocarpium (L.) Endl. ex Griseb.
Malanea ptariensis Steyerm. Endémica.
Genipa americana L.
Malanea sarmentosa Aubl.
G. americana var. americana.
Malanea sipapoensis Steyerm. Endémica
G. americana var. caruto (Kunth) K. Schum. D
Malanea ueiensis Steyerm.
Genipa spruceana Steyerm.
Manettia alba (Aubl.) Wernham.
Geophila cordifolia Miq.
Manettia calycosa Griseb.
Geophila orbicularis (Müll. Arg.) Steyerm.
Manettia coccinea (Aubl.) Willd.
Geophila repens (L.) I.M. Johnst.
Manettia reclinata Mutis ex L.
Geophila tenuis (Müll. Arg.) Standl.
Merumea coccocypseloides Steyerm. Endémica.
Gleasonia duidana Standl. Endémica.
Mitracarpus difusus (Willd. ex Roem. y Schult.) Cham. y Schltdl.
G. duidana var. latifolia Steyerm. Endémica.
Mitracarpus frigidus (Willd. ex Roem. y Schult.) K. Schum. Endémica.
Gonzalagunia dicocca Cham. y Schltdl.
Mitracarpus hirtus (L.) DC.
Guettarda acreana K. Krause.
Mitracarpus microspermus K. Schum.
Guettarda divaricata (Humb. y Bonpl. ex Roem. y Schult.) Standl.
Mitracarpus parvulus K. Schum.
Guettarda macrantha Benth.
Mitracarpus sp. A Endémica.
Guettarda malacophylla Standl.
Morinda longipedunculata Steyerm.
Guettarda spruceana Müll.
Morinda peduncularis Kunth.
Hamelia axillaris Sw. Shrub
Morinda tenuilora (Benth.) Steyerm.
Hamelia patens Jacq.
Notopleura aligera (Steyerm.) C.M. Taylor.
Henriquezia nitida Spruce ex Benth.
Notopleura crassa (Benth.) C.M. Taylor.
Hillia foldatsii Steyerm. Endémica.
Notopleura multiramosa (Steyerm.) C.M. Taylor.
Hillia illustris (Vell.) K. Schum.
Notopleura perpapillifera (Steyerm.) C.M. Taylor.
Hillia parasitica Jacq.
Notopleura sandwithiana (Steyerm.) C.M. Taylor. Endémica.
Hillia psammophila Steyerm. Endémica.
Notopleura tapajozensis (Standl.) Bremek.
Hillia rivalis C.M. Taylor. Endémica.
Notopleura uliginosa (Sw.) Bremek.
Holstianthus barbigularis Steyerm. Endémica.
Oldenlandia corymbosa L.
Isertia hypoleuca Benth.
Oldenlandia ilicaulis K. Schum.
Isertia parvilora Vahl.
Oldenlandia lancifolia (Schumach.) DC.
Isertia rosea Spruce ex K. Schum.
Oldenlandia tenuis K. Schum.
Ixora acuminatissima Müll. Arg.
Pagamea anisophylla Standl. y Steyerm. Endémica.
Ixora panurensis Müll. Arg.
Pagamea capitata Benth.
499
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Pagamea coriacea Spruce ex Benth.
Posoqueria williamsii Steyerm. Endémica.
Pagamea diceras Steyerm. Endémica.
Psychotria acuminata Benth.
Pagamea duidana Standl. y Steyerm. Endémica.
Psychotria adderleyi Steyerm.
Pagamea guianensis Aubl.
Psychotria adenophora Steyerm.
Pagamea hirsuta Spruce ex Benth.
Psychotria alba Ruiz y Pav.
Pagamea jauaensis Steyerm. Endémica.
Psychotria amplectans Benth.
Pagamea magnilora Steyerm. Endémica.
Psychotria anceps Kunth
Pagamea montana Gleason y Standl.
Psychotria apoda Steyerm.
Pagamea paucilora Standl. y Steyerm. Endémica.
Psychotria astrellantha Wernham
Pagamea plicata Spruce ex Benth.
Psychotria aubletiana Steyerm.
Pagamea plicatiformis Steyerm.
Psychotria berryi WingF. Endémica.
Pagamea standleyana Steyerm. Endémica.
Psychotria berteroana DC.
Pagamea thyrsilora Spruce ex Benth.
Psychotria blakei Standl. y Steyerm.
Pagamea velutina Steyerm. Endémica.
Psychotria bolivarensis (Standl. y Steyerm.) Steyerm.
Pagameopsis garryoides (Standl.) Steyerm. Endémica.
Psychotria boliviana Standl.
Pagameopsis maguirei Steyerm.
Psychotria borjensis Kunth
Palicourea bracteosa Standl.,
Psychotria bostrychothyrsus Sandwith
Palicourea calophylla DC.
Psychotria bracteocardia (DC.) Müll. Arg.
Palicourea corymbifera (Müll. Arg.) Standl.
Psychotria campyloneura Müll. Arg.
Palicourea crocea (Sw.) Roem. y Schult.
Psychotria campylopoda Standl.
Palicourea croceoides Desv. ex Ham.
Psychotria capitata Ruiz y Pav.
Palicourea fastigiata Kunth.
Psychotria cardiomorpha C.M. Taylor y A. Pool
Palicourea foldatsii Steyerm.
Psychotria carrenoi Steyerm. Endémica.
Palicourea glabrilora Steyerm. Endémica.
Psychotria carthagenensis Jacq.
Palicourea grandilora (Kunth) Standl.
Psychotria casiquiaria Müll. Arg.
Palicourea grandifolia (Willd. ex Roem. y Schult.) Standl.
Psychotria ceratantha Standl.
Palicourea guianensis Aubl.
Psychotria cerronis Steyerm. Endémica.
Palicourea huberi Steyerm.
Psychotria colorata (Willd. ex Roem. y Schult.) Müll. Arg.
Palicourea lancigera (Standl.) Steyerm. Endémica.
Psychotria concinna Oliv.
Palicourea longilora DC.
Psychotria cornigera Benth.
Palicourea longistipulata (Müll. Arg.) Standl.
Psychotria coussareoides Standl.
Palicourea nitidella (Müll. Arg.) Standl.
Psychotria crocochlamys Sandwith
Palicourea obtusata K. Krause.
Psychotria cupularis (Müll. Arg.) Standl.
Palicourea ottohuberi J.H. Kirkbr. Endémica.
Psychotria delexa DC.
Palicourea pensilis J.H. Kirkbr. Endémica.
Psychotria deinocalyx Sandwith
Palicourea perquadrangularis Wernham
Psychotria duidana Standl. Endémica
Palicourea quadrifolia (Rudge) DC.)
Psychotria duricoria Standl. y Steyerm.,
Palicourea rigida Kunth.
Psychotria egensis Müll. Arg.
Palicourea tepuicola Steyerm. Endémica.
Psychotria ernestii K. Krause
Palicourea triphylla DC.
Psychotria everardii Wernham
Palicourea wurdackiana J.H. Kirkbr.
Psychotria glandulicalyx Steyerm.
Perama dichotoma Poepp.
Psychotria gracilenta Müll. Arg.
Perama galioides (Kunth) Poir.
Psychotria guanchezii Steyerm. Endémica.
Perama hirsuta Aubl.
Psychotria hemicephaelis Wernham
Perama plantaginea (Kunth) Hook. F.
Psychotria hofmannseggiana (Willd. ex Roem. y Schult.) Müll. Arg.
Platycarpum negrense Ducke. Endémica.
Psychotria horizontalis Sw.
Platycarpum orinocense Bonpl.
Psychotria humboldtiana (Cham.) Müll. Arg.
Platycarpum rhododactylum Woodson y Steyerm.
Psychotria imthurniana Oliv.
Platycarpum rugosum Steyerm.
Psychotria iodotricha Müll. Arg.
Platycarpum schultesii Steyerm.
Psychotria irwinii Steyerm.
P. schultesii var. zarucchii G.K. Rogers.
Psychotria jauaensis Steyerm. Endémica.
Posoqueria latifolia (Rudge) Roem. y Schult.
Psychotria longicuspis Müll. Arg.
Posoqueria longilora Aubl.
Psychotria lourteigiana Steyerm. Endémica.
Posoqueria panamensis (Walp. y Duchass.) Walp.
Psychotria lupulina Benth.
500
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Psychotria mapourioides DC.
Remijia marahuacensis Steyerm.
Psychotria medusula Müll. Arg.
Remijia morilloi Steyerm.
Psychotria microbotrys Ruiz ex Standl.
Remijia pacimonica Standl.
Psychotria microdon (DC.) Urb.
Remijia pedunculata (H. Karst.) Flueck.
Psychotria nana K. Krause.
Remijia pilosinervula Steyerm.,
Psychotria oblonga (DC.) Steyerm.
Remijia reducta Steyerm. Endémica.
Psychotria occidentalis Steyerm.
Remijia roraimae (Benth.) K. Schum.
Psychotria paniculata (Aubl.) Raeusch.,
Remijia sipapoensis Steyerm.
Psychotria paupertina Standl. y Steyerm. Endémica.
Remijia steyermarkii Standl.
Psychotria phaneroloma Standl. y Steyerm.
Remijia ulei K. Krause.
Psychotria phelpsiana Steyerm. Endémica.
Remijia unilora C.M. Taylor. Endémica.
Psychotria pilosa Ruiz y Pav.
Remijia wurdackii Steyerm.
Psychotria platypoda DC.
Retiniphyllum chloranthum Ducke
Psychotria podocephala (Müll. Arg.) Standl.
Retiniphyllum concolor (Spruce ex Benth.) Müll. Arg.
Psychotria poeppigiana Müll. Arg.
Retiniphyllum discolor (Spruce ex Benth.) Müll. Arg.
Psychotria polycephala Benth.
Retiniphyllum laxilorum (Benth.) N.E. Br.
Psychotria racemosa Rich.
Retiniphyllum paucilorum Kunth ex K. Krause
Psychotria remota Benth.
Retiniphyllum scabrum Benth.
Psychotria rosea (Benth.) Müll. Arg.
Retiniphyllum schomburgkii (Benth.) Müll. Arg.
Psychotria schomburgkii Benth.
Retiniphyllum secundilorum Bonpl.
Psychotria sipapoensis Steyerm. Endémica.
Retiniphyllum tepuiense Steyerm.). Endémica.
Psychotria spadicea (Pittier) Standl. y Steyerm.
Retiniphyllum truncatum Müll. Arg.
Psychotria speluncae Standl. y Steyerm.
Richardia scabra L.
Psychotria sphaerocephala Müll. Arg.
Ronabea latifolia Aubl.
Psychotria stipulosa Müll. Arg.
Rondeletia orinocensis Steyerm.
Psychotria subundulata Benth.
Rosenbergiodendron densilorum (K. Schum.) Fagerl.
Psychotria tatei Standl. Endémica.
Rosenbergiodendron formosum (Jacq.) Fagerl.
Psychotria tepuiensis (Steyerm.) Steyerm.
Rudgea cornifolia (Kunth ex Roem. y Schult.) Standl.
Psychotria transiens Wernham.
Rudgea crassiloba (Benth.) B.L. Rob.
Psychotria trichotoma M. Martens y Galeotti
Rudgea hostmanniana Benth.
Psychotria turbinella Müll. Arg.
Rudgea klugii Standl.
Psychotria ulviformis Steyerm.
Rudgea lanceifolia Salisb.
Psychotria vareschii Steyerm. Endémica.
Rudgea phaneroneura Steyerm. Endémica.
Psychotria variegata Steyerm.
Rudgea sclerocalyx (Müll. Arg.) Zappi
Psychotria vellosiana Benth.
Rudgea stipulacea (DC.) Steyerm.
Psychotria ventuariana Standl. y Steyerm.
Rudgea woronowii Standl.
Psychotria venulosa Müll. Arg.
Rudgea wurdackii Steyerm. Endémica.
Psychotria vichadensis Standl.
Sabicea amazonensis Wernham
Psychotria wurdackii Steyerm.
Sabicea brachycalyx Steyerm.
Psychotria yapacanensis Steyerm. Endémica.
Sabicea glabrescens (K. Schum.) Benth.
Randia aculeata L.
Sabicea tillettii Steyerm. Endémica.
Randia amazonasensis Steyerm. Endémica.
Sabicea velutina Benth.
Randia armata (Sw.) DC.
Sabicea venezuelensis Steyerm.
Randia brevipes Steyerm.
Sabicea villosa Willd. ex Roem. y Schult.
Randia dioica H. Karst.
Schradera brevipes Steyerm. Endémica.
Randia hebecarpa Benth.
Schradera maguirei Steyerm. Endémica.
Randia venezuelensis Steyerm.
Schradera nilssonii Steyerm.
Remijia amazonica K. Schum.
Schradera polycephala A. DC.
Remijia argentea Steyerm.
Schradera yutajensis Steyerm. Endémica.
Remijia delascioi Steyerm. Endémica.
Simira ignicola Steyerm.
Remijia densilora Benth.
Simira rubescens (Benth.) Bremek. ex Steyerm.
Remijia irmula (Mart.) Wedd.
Sipanea carrenoi Steyerm. Endémica.
Remijia hispida Spruce ex K. Schum.
Sipanea galioides Wernham
Remijia longifolia Benth. ex Standl.
Sipanea glomerata Kunth
501
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Sipanea hispida Benth. ex Wernham.
Raveniopsis sericea R.S. Cowan
S. hispida var. hispida
Raveniopsis stelligera (R.S. Cowan) R.S. Cowan.
Sipanea pratensis Aubl.
Raveniopsis steyermarkii R.S. Cowan
S. pratensis var. dichotoma (Kunth) Steyerm.
Raveniopsis tomentosa Gleason
Sipanea veris S. Moore
Spathelia jauaensis R.S. Cowan
Sipaneopsis foldatsii Steyerm. Endémica.
Spiranthera guianensis Sandwith
Sipaneopsis maguirei Steyerm.
Spiranthera parvilora Sandwith
Sipaneopsis morichensis Steyerm.
Zanthoxylum amapaense (Albuq.) P.G. Waterman
Sipaneopsis rupicola (Spruce ex K. Schum.) Steyerm.
Zanthoxylum apiculatum Sandwith
Sphinctanthus striilorus (DC.) Hook. F.
Zanthoxylum caribaeum Lam.
Stachyarrhena duckei Standl.
Zanthoxylum compactum (Huber ex. Albuq.) P.G. Waterman
Stachyarrhena pendulilora K. Schum.
Zanthoxylum ekmanii (Urb.) Alain
Stachyarrhena reticulata Steyerm. Endémica.
Zanthoxylum fagara (L.) Sarg.
Stachyarrhena spicata Hook.
Zanthoxylum huberi P.G. Waterman
Tobagoa maleolens Urb.
Zanthoxylum juniperinum Poepp.
Tocoyena brevifolia Steyerm. Endémica.
Zanthoxylum martinicense (Lam.) DC.
Tocoyena guianensis K. Schum.
Zanthoxylum pentandrum (Aubl.) R.A. Howard
Tocoyena neglecta N.E. Brown
Zanthoxylum rhoifolium Lam.
Tocoyena orinocensis Standl. y Steyerm.
Zanthoxylum sp. B
Uncaria guianensis (Aubl.) J.F. Gmel.
Zanthoxylum syncarpum Tul.
Uncaria tomentosa (Willd. ex Roem. y Schult.) DC.
SABIACEAE
Warszewiczia coccinea (Vahl) Klotzsch
Meliosma af. meridensis Lasser
Warszewiczia elata Ducke
Meliosma herbertii Rolfe
Warszewiczia schwackei K. Schum.
hesium tepuiense Steyerm.
RUTACEAE
SAPINDACEAE
Adiscanthus fuscilorus Ducke
Allophylus punctatus (Poepp. y Endl.) Radlk.
Angostura trifoliata (Willd.) T.S.
Allophylus racemosus Sw.
Apocaulon carnosum R.S. Cowan
Cardiospermum corindum L.
Conchocarpus heterophyllus (A. St.- Hil.)
Cardiospermum grandilorum Sw.
Conchocarpus longifolius (A. St.-Hil.)
Cardiospermum halicacabum L.
Conchocarpus ucayalinus (Huber) Kallunki
Cupania cinerea Poepp. y Endl.
Decagonocarpus cornutus R.S. Cowan
Cupania hirsuta Radlk.
Decagonocarpus oppositifolius Spruce ex Engl.
Cupania hispida Radlk.
Ertela trifolia (L.) Kuntze
Cupania kukenanica Steyerm.
Erythrochiton brasiliensis Nees y Mart.
Cupania latifolia Kunth
Esenbeckia grandilora Mart.
Cupania rubiginosa (Poir.) Radlk.
Esenbeckia pilocarpoides Kunth
Cupania scrobiculata Rich.
Esenbeckia venezuelensis Engl.
Cupania tepuiensis Steyerm. y Maguire
Galipea davisii Sandwith
Dilodendron costaricense (Radlk.) Gentry y Steyerm.
Hortia regia Sandwith.
Dilodendron elegans (Radlk.) Gentry y Steyerm
Murraya exotica L.
Dodonaea viscosa Jacq.
Pilocarpus racemosus Vahl
Houssayanthus macrolophus (Radlk.) Hunz.
Raputia maroana (R.S. Cowan) Kallunki
Matayba adenanthera Radlk.
Raputia szczerbanii (Steyerm.) Kallunki
Matayba arborescens (Aubl.) Radlk.
Rauia spicata Haye
Matayba atropurpurea Radlk.
Rauia subtruncata Steyerm.
Matayba elegans Radlk.
Raveniopsis breweri Steyerm.
Matayba inelegans Spruce ex Radlk.
Raveniopsis capitata R.S. Cowan
Matayba kavanayena (Steyerm.) Steyerm.
Raveniopsis fraterna R.S. Cowan
Matayba opaca Radlk.
Raveniopsis jauaensis Steyerm.
Matayba peruviana Radlk
Raveniopsis linearis (Gleason) R.S. Cowan
Matayba ptariana Steyerm.
Raveniopsis paruana (R.S. Cowan) R.S. Cowan
Matayba reducta Steyerm.
Raveniopsis peduncularis Pittier y Lasser
Matayba robusta Radlk.
Raveniopsis ruellioides (Oliv.) R.S. Cowan.
Matayba spruceana (Benth.) Radlk
502
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Matayba yutajensis Steyerm.
Ecclinusa orinocoensis Aubrév
Melicoccus bijugatus Jacq.
Ecclinusa parvilora T.D. Penn.
Melicoccus oliviformis Kunth
Ecclinusa ramilora Mart.
Paullinia alsmithii Macbr.
Ecclinusa ulei (Krause) Gilly ex Cronquist.
Paullinia anisoptera Turcz.
Elaeoluma crispa T.D. Penn
Paullinia bracteosa Radlk.
Elaeoluma glabrescens (Mart. y Eich.) Aubrév.
Paullinia caloptera Radlk.
Elaeoluma nuda (Baehni) Aubrév.
Paullinia cupana Kunth
Elaeoluma schomburgkiana (Miq.) Baill.
Paullinia cururu L.
Manilkara bidentata (A. DC.) Chev.
Paullinia fuscescens Kunth
Manilkara bolivarensis T.D. Penn.
Paullinia ingaefolia Rich.
Manilkara huberi (Ducke) Chev
Paullinia leiocarpa Griseb.
Micropholis casiquiarensis Aubrév.
Paullinia micrantha Cambess.
Micropholis egensis (A. DC.) Pierre in Urb.
Paullinia nuriensis Steyerm.
Micropholis guyanensis (A. DC.) Pierre
Paullinia paullinioides Spruce ex Radlk.
Micropholis humboldtiana (Roem. y Schult.) T.D. Penn.
Paullinia pinnata L.
Micropholis maguirei Aubrév.
Paullinia rubiginosa Cambess.
Micropholis melinoniana Pierre
Paullinia rufescens Rich.
Micropholis mensalis (Baehni) Aubrév.
Paullinia rugosa Benth.
Micropholis obscura T.D. Penn.
Sapindus saponaria L.
Micropholis spectabilis (Steyerm.) T.D. Penn.
Serjania adusta Radlk.
Micropholis splendens Gilly ex Aubrév.
Serjania caracasana (Jacq.) Willd.
Micropholis suborbicularis Aubrév
Serjania clematidea Triana y Planch.
Micropholis venamoensis (Steyerm.) T.D. Penn.
Serjania grandifolia Sagot ex Radlk.
P. cuspidata subsp. dura (Eyma) T.D. Penn.
Serjania membranacea Splitg.
Pouteria af. engleri Eyma
Serjania paucidentata DC.
Pouteria ambelaniifolia (Sandwith) T.D. Penn.
Serjania pyramidata Radlk.
Pouteria amygdalicarpa (Pittier) T.D. Penn.
Serjania rhombea Radlk.
Pouteria anomala (Pires) T.D. Penn.
Talisia caudata Steyerm.
Pouteria atabapoensis (Aubrév.) T.D. Penn.
Talisia chartacea Acev.-Rodr.
Pouteria caimito (Ruiz y Pav.) Radlk.
Talisia irma Radlk.
Pouteria canaimaensis T.D. Penn.
Talisia glandulifera Steyerm.
Pouteria crassilora Pires y T.D. Penn.
Talisia hexaphylla Vahl
Pouteria cuspidata (A. DC.) Baehni
Talisia laevigata Acev.-Rodr.
Pouteria egregia Sandwith, Kew l.
Talisia macrophylla (Mart.) Radlk.
Pouteria elegans (A. DC.) Baehni
Talisia nervosa Radlk.
Pouteria eugeniifolia (Pierre) Baehni
Talisia obovata A.C.
Pouteria glomerata (Miq.) Radlk.
Talisia retusa R.S. Cowan
Pouteria gomphiifolia (Mart.) Radlk.
Toulicia guianensis Aubl.
Pouteria guianensis Aubl.
Toulicia petiolulata Radlk.
Pouteria hispida Eyma
Toulicia pulvinata Radlk
Pouteria laevigata (Mart.) Radlk.
Vouarana anomala (Steyerm.) Acev.-Rodr.
Pouteria maguirei (Aubrév.) T.D. Penn.
SAPOTACEAE
Pouteria pimichinensis T.D. Penn.
Chromolucuma rubrilora Ducke
Pouteria plicata T.D. Penn.
Chrysophyllum amazonicum T.D. Penn.
Pouteria reticulata (Engl.) Eyma
Chrysophyllum argenteum Jacq.
Pouteria rigida (Mart. y Eich.) Radlk.
Chrysophyllum lucentifolium Cronquist.
Pouteria scrobiculata Monach. ex T.D. Penn.
Chrysophyllum pomiferum (Eyma) T.D. Penn.
Pouteria sipapoensis T.D. Penn.
Chrysophyllum prieurii A. DC.
Pouteria sp. nov. af. gonggrijpi Eyma
Chrysophyllum sanguinolentum (Pierre) Baehni
Pouteria stipitata Cronquist
Chrysophyllum sparsilorum Klotzsch ex Miq.
Pouteria surumuensis Baehni
Ecclinusa atabapoensis (Aubrév.) T.D. Penn.
Pouteria torta (Mart.) Radlk.
Ecclinusa bullata T.D. Penn.
Pouteria trilocularis Cronquist.
Ecclinusa guianensis Eyma
Pouteria venosa (Mart.) Baehni
503
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Pradosia caracasana (Pittier) T.D. Penn.
Picrolemma sprucei Hook. F.
Pradosia grisebachii (Pierre) T.D. Penn.
Quassia amara L.
Pradosia schomburgkiana (A. DC.) Cronquist
Simaba cedron Planch.
Pradosia surinamensis (Eyma) T.D. Penn.
Simaba guianensis Aubl.
Sideroxylon obtusifolium (Roem. y Schult.) T.D. Penn.
Simaba monophylla (Oliv.) Cronquist
SARRACENIACEAE
Simaba obovata Spruce ex Engl.
Heliamphora chimantensis Wistuba, Carow y Harbath
Simaba orinocensis Kunth
Heliamphora elongata Nerz
Simaba sp. A.
Heliamphora folliculata Wistuba, Harbath y Carow
Simarouba amara Aubl.
Heliamphora heterodoxa Steyerm.
PICRAMNIACEAE
Heliamphora ionasii Maguire
Picramnia guianensis (Aubl.) Jans.
Heliamphora minor Gleason
Picramnia juniniana J.F. Macbr.
Heliamphora nutans Benth.
Picramnia latifolia Tul.
Heliamphora sarracenioides Wistuba, Harbath y Carow
Picramnia magnifolia Macbride,
H. tatei var. neblinae (Maguire) Steyerm.
Picramnia nuriensis Steyerm.
SCROPHULARIACEAE
Picramnia pentandra Sw.
Achetaria guianensis Pennell,
SIPARUNACEAE
Achetaria scutellarioides (Benth.) Wettst.
Siparuna biida (Poepp. y Endl.) A. DC.
Alectra aspera (Cham. y Schltdl.) L.O. Williams
Siparuna cristata (Poepp. y Endl.) A. DC.
Alectra stricta Benth.
Siparuna cuspidata (Tul.) A. DC.
Bacopa aquatica Aubl.
Siparuna decipiens (Tul.) A. DC.
Bacopa callitrichoides (Kunth) Pennell
Siparuna guianensis Aubl.
Bacopa gratioloides (Cham.) Chodat y Hassl.
Siparuna obstipa J.F. Macbr.
Bacopa innominata (M. Gómez) Alain
Siparuna reginae (Tul.) A. DC.
Bacopa monnierioides (Cham.) B.L. Rob.
SOLANACEAE
Bacopa repens (Sw.) Wettst.
Brunfelsia imatacana Plowman
Bacopa reptans (Benth.) Wettst. ex Edwall
Brunfelsia unilora (Pohl) D. Don
Bacopa salzmannii (Benth.) Wettst. ex Edwall
Capsicum frutescens L.
Bacopa serpyllifolia (Benth.) Pennell
Cestrum alternifolium (Jacq.) O.E.
Bacopa sessililora (Benth.) Pulle
Cestrum glabrescens (C.V. Morton) Steyerm. y Maguire
Bacopa stricta (Schrad.) Wettst. ex Edwall
Cestrum latifolium Lam.
Benjaminia relexa (Benth.) D’Arcy
Cestrum neblinense D’Arcy y Benítez
Buchnera longifolia Kunth
Cestrum racemosum Ruiz y Pav.
Buchnera pusilla Kunth
Cestrum relexum Sendtn.
Buchnera rosea Kunth
Cestrum schlechtendahlii G. Don
Buchnera spruceana Philcox
Cestrum schulzianum Francey
Buchnera ternifolia Kunth
Cestrum strigilatum Ruiz y Pav.
Buchnera weberbaueri Diels
Cestrum subunilorum Dunal.
Capraria bilora L.
Cestrum tuosum Sendtn.
Castilleja arvensis Schltdl. y Cham.
Datura inoxia Mill.
Conobea aquatica Aubl.
Deprea orinocensis (Kunth) RaF.
Conobea scoparioides (Cham. y Schltdl.) Benth.
Lycianthes paucilora (Vahl) Bitter
Escobedia grandilora (L. F.) Kuntze
Markea formicarum Dammer
Lindernia brachyphylla Pennell
Markea longilora Miers
Lindernia crustacea (L.) F. Muell.
Markea reticulata Steyerm. y Maguire
Lindernia difusa (L.) Wettst.
Markea sessililora Ducke.
Lindernia dubia (L.) Pennell
Melananthus ulei Carvalho
Mecardonia procumbens (Mill.) Small
Nicotiana tabacum L.
Micranthemum umbrosum (J.F. Gmel.) S.F. Blake
Physalis angulata L.
Scoparia dulcis L.
Physalis cordata Mill.
Stemodia foliosa Benth.
Physalis lagascae Roem. y Schult.
Torenia thouarsii (Cham. y Schltdl.) Kuntze
Physalis pubescens L.
Vellosiella spathacea (Oliv.) Melch.
Schwenckia americana L.
SIMAROUBACEAE
Schwenckia elegans Carvalho
504
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Schwenckia glabrata Kunth
Byttneria piresii Cristóbal
Schwenckia grandilora Benth.
Byttneria rhamnifolia Benth.
Schwenckia heterantha Carvalho
Byttneria scabra L.
Schwenckia huberi Benítez
Byttneria uaupensis Spruce ex K. Schum.
Schwenckia micrantha Benth.
Guazuma ulmifolia Lam.
Solandra grandilora Sw.
Helicteres baruensis Jacq.
Solandra longilora Tussac
Helicteres brevispira A. St.-Hil.
Solanum acerifolium Dunal
Helicteres guazumifolia Kunth
Solanum adhaerens Roem.
Helicteres heptandra L.B. Sm.
Solanum allophyllum (Miers) Standl.
Helicteres pentandra L.
Solanum altissimum Benítez
Herrania camargoana R.E. Schult.
Solanum americanum Mill.
Herrania lemniscata (M.R. Schomb.) R.E. Schult.
Solanum arboreum Dunal
Melochia arenosa Benth.
Solanum asperum Rich.
Melochia graminifolia A. St.-Hil.
Solanum aturense Dun
Melochia manducata C. Wright
Solanum badilloi Benítez
Melochia melissifolia Benth.
Solanum bicolor Roem. y Schult.
Melochia nodilora Sw.
Solanum campaniforme Roem.
M. tomentosa var. frutescens DC.
Solanum caripense Dunal
Melochia ulmifolia Benth.
Solanum coriaceum Dunal
Melochia villosa (Mill.) Fawc. y Rendle
Solanum crinitum Lam.
Sterculia abbreviata E.L. Taylor ex Mondragón
Solanum davidsei Carvalho
Sterculia amazonica E.L. Taylor ex Mondragón
Solanum hirtum Vahl
Sterculia apetala (Jacq.) H. Karst
Solanum jamaicense Mill.
Sterculia kayae P.E. Berry
Solanum lanceifolium Jacq.
Sterculia pruriens (Aubl.) K. Schum
Solanum leucocarpon Dunal
Sterculia rugosa R. Br.
Solanum mammosum L.
heobroma cacao L.
Solanum monachophyllum Dunal
heobroma grandilorum (Willd. ex Spreng.) K. Schum
Solanum nuricum M. Nee
heobroma microcarpum Mart.
Solanum oocarpum Sendtn.
heobroma subincanum Mart.
Solanum oppositifolium Ruiz y Pav.
Uladendron codesuri Marc.-Berti
Solanum paludosum Moric.
Waltheria albicans Turcz.
Solanum pensile Sendtn.
Waltheria berteroi (Spreng.) J.G. Saunders
Solanum schlechtendalianum Walp.
Waltheria carmensarae J.G. Saunders
Solanum schomburgkii Sendtn.
Waltheria collina K. Schum
Solanum seaforthianum Andrews
Waltheria indica L.
Solanum sessililorum Dunal
Waltheria involucrata Benth.
Solanum stramonifolium Jacq.
Waltheria operculata Rose
Solanum subinerme Jacq.
Waltheria viscosissima A. St.-Hil
Solanum swartzianum Roem. y Schult.
STYRACACEAE
Solanum tepuiense S. Knapp
Styrax duidae Steyerm.
Solanum umbratile I.M. Johnst.
Styrax glaber Sw.
Solanum velutinum Dunal
Styrax glabratus Schott
Solanum vestissimum Dunal
Styrax guaiquinimae (Maguire y Steyerm.) P.W. Fritsch
Witheringia solanacea L’Hér.
Styrax guanayanus Maguire y K.D. Phelps
SPHENOCLEACEAE
Styrax guyanensis A. DC.
Sphenoclea zeylanica Gaertn.
Styrax longipedicellatus Steyerm.
STERCULIACEAE
Styrax neblinae (Maguire) P.W. Fritsch
Ayenia magna L.
Styrax sipapoanus Maguire
Byttneria aristeguietae Cristóbal
Styrax wurdackiorum Steyerm.
B. catalpifolia subsp. catalpifolia
Styrax yutajensis (Maguire) P.W. Fritsch
Byttneria divaricata Benth.
Styrax sp. nov. af. guaiquinimae (Maguire y Steyerm.) P.W. Fritsch
Byttneria genistella Triana y Planch.
SYMPLOCACEAE
Byttneria obliqua Benth.
Symplocos acananensis Steyerm.
505
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Symplocos chimantensis Steyerm. y Maguire
Bonnetia jauaensis Maguire
Symplocos guianensis (Aubl.) Gurcke
Bonnetia kathleenae Lasser
Symplocos jauaensis Steyerm. y Maguire
Bonnetia lanceifolia Kobuski
Symplocos martinicensis Jacq.
Bonnetia liesneri Steyerm.
Symplocos neblinae Maguire y Steyerm.
Bonnetia maguireorum Steyerm.
Symplocos nitens (Pohl) Benth.
Bonnetia multinervia (Maguire) Steyerm.
S. nitens var. claussenii Brand
Bonnetia neblinae Maguire.
Symplocos pycnophylla Sleumer
Bonnetia paniculata Spruce ex Benth.
Symplocos roraimensis Steyerm.
Bonnetia ptariensis Steyerm.
Symplocos schomburgkii Klotsch ex Brand
Bonnetia roraimae Oliv.
Symplocos ulei Brand
Bonnetia roseilora Maguire
Symplocos yapacanensis Steyerm.
Bonnetia rubicunda (Sastre) A.L. Weitzman y P.F. Stevens
TEPUIANTHACEAE
Bonnetia sessilis Benth.
Tepuianthus auyantepuiensis Maguire y Steyerm.
Bonnetia steyermarkii Kobuski
Tepuianthus sarisariñamensis Maguire y Steyerm.
Bonnetia tepuiensis Kobuski y Steyerm.
Tepuianthus savannensis Maguire y Steyerm.
Bonnetia tristyla Gleason.
Tepuianthus yapacanensis Maguire y Steyerm.
Bonnetia wurdackii Maguire
TERNSTROEMIACEAE
THEOPHRASTACEAE
Freziera calophylla Triana y Planch.
Clavija imatacae Ståhl
Freziera carinata Weitzman
Clavija lancifolia Desf
Freziera roraimensis Tul.
Jacquinia armillaris Jacq.
Ternstroemia brevistyla Kobuski
THYMELAEACEAE
Ternstroemia campinicola B.M. Boom
Daphnopsis americana (Mill.) J.R. Johnst
Ternstroemia crassifolia Benth.
Daphnopsis dircoides Steyerm.
Ternstroemia discoidea Gleason
Daphnopsis guaiquinimae Steyerm.
Ternstroemia distyla Kobuski
Daphnopsis longipedunculata Gilg ex Ule y Domke
Ternstroemia duidae Gleason.
Daphnopsis nevlingiana Steyerm.
Ternstroemia dura Gleason.
Daphnopsis steyermarkii Nevling.
Ternstroemia guanchezii B.M. Boom
Lasiadenia rupestris Benth.
Ternstroemia laevigata Wawra
Lophostoma amoenum Nevling
Ternstroemia maguirei B.M. Boom
TILIACEAE
Ternstroemia punctata (Aubl.) Sw.
Apeiba albilora Ducke
Ternstroemia pungens Gleason.
Apeiba glabra Aubl.
Ternstroemia retusifolia Kobuski.
Apeiba macropetala Ducke.
Ternstroemia tristyla Gleason.
Apeiba membranacea Spruce ex Benth.
Ternstroemia verticillata Klotsch ex Wawra
Apeiba petoumo Aubl.
Ternstroemia sp. A
Apeiba schomburgkii Szyszyl.
Ternstroemia sp. B
Apeiba tibourbou Aubl.
TETRAMERISTACEAE
Apeiba uittienii Jans.
Pentamerista neotropica Maguire
Christiana africana DC.
THEACEAE
Corchorus aestuans L.
Gordonia fruticosa (Schrad.) H. Keng .
Corchorus hirtus L.
BONNETIACEAE
Corchorus orinocensis Kunth
Archytaea angustifolia Maguire
Luehea alternifolia (Mill.) Mabb.
Archytaea trilora Mart
Luehea candida (DC.) Mart.
Bonnetia ahogadoi (Steyerm.) A.L. Weitzman y P.F. Stevens
Luehea cymulosa Spruce ex Benth.
Bonnetia bolivarensis Steyerm.
Lueheopsis duckeana Burret
Bonnetia celiae Maguire.
Lueheopsis rosea (Ducke) Burret
Bonnetia chimantensis Steyerm.
Mollia glabrescens Benth.
Bonnetia cordifolia Maguire
Mollia lepidota Spruce ex Benth.
Bonnetia crassa Gleason.
Mollia speciosa Mart.
Bonnetia euryanthera Steyerm.
Mollia tomentosa Spruce ex Benth.
Bonnetia fasciculata A.L. Weitzman y P.F. Stevens
Mollia ulei Burret
Bonnetia huberiana Steyerm.
Triumfetta bogotensis DC.
506
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Triumfetta lappula L.
VALERIANACEAE
Triumfetta rhomboidea Jacq.
Valeriana scandens L.
Triumfetta semitriloba Jacq.
VERBENACEAE
Vasivaea alchorneoides Baill.
Aegiphila bracteolosa Moldenke
MUNTINGIACEAE
Aegiphila elata Sw.
Muntingia calabura L.
Aegiphila ilipes Mart. y Schauer ex Schauer
TRIGONIACEAE
Aegiphila glandulifera Moldenke
Trigonia microcarpa Sagot ex Warm.
Aegiphila hystricina Aymard y Cuello
Trigonia nivea Cambess.
Aegiphila hoehnei Moldenke
Trigonia sericea Kunth
Aegiphila integrifolia (Jacq.) B.D. Jacks.
Trigonia spruceana Benth.
Aegiphila intermedia Moldenke
Trigonia villosa Aubl.
Aegiphila laevis (Aubl.) J.F. Gmel.
TROPAEOLACEAE
Aegiphila laxilora Benth.
Tropaeolum orinocense P.E. Berry
Aegiphila lewisiana Moldenke
TURNERACEAE
Aegiphila macrantha Ducke
Piriqueta cistoides (L.) Griseb
Aegiphila membranacea Turcz.
Piriqueta undulata Urb.
Aegiphila mollis Kunth
Piriqueta viscosa Griseb.
Aegiphila parvilora Moldenke
Turnera acuta Willd.
Aegiphila pendula Moldenke
Turnera annectens Arbo
Aegiphila perplexa Moldenke
Turnera argentea Arb
Aegiphila racemosa Vell.
Turnera brevilora Moura
Aegiphila roraimensis Moldenke
Turnera castilloi Arbo
Aegiphila spruceana Moldenke
Turnera cicatricosa Arbo
Aegiphila venezuelensis Moldenke
Turnera guianensis Aubl.
Amasonia campestris (Aubl.) Moldenke
Turnera huberi Arbo
Amasonia obovata Gleason.
Turnera lineata Urb.
Avicennia germinans (L.) L.
Turnera macrophylla Urb.
Avicennia schaueriana Stapf y Leechm.
Turnera odorata Rich.
Bouchea prismatica (L.) Kuntze
Turnera paruana Arbo
Citharexylum macrophyllum Poir.
Turnera pumilea L.
Citharexylum poeppigii Walp.
Turnera scabra Millsp.
Citharexylum spinosum L.
Turnera schomburgkiana Urb.
Citharexylum sp. A.
Turnera steyermarkii Arbo
Clerodendrum philippinum Schauer
Turnera venosa Urb.
Clerodendrum ternifolium Kunth
Turnera waltherioides Urb.
Clerodendrum thomsonae BalF.
ULMACEAE
Duranta erecta L.
Ampelocera edentula Kuhlm.
Duranta obtusifolia Kunth
Celtis iguanaea (Jacq.) Sarg.
Lantana achyranthifolia DesF.
Trema integerrima (Beurl.) Standl.
Lantana camara L.
Trema micrantha (L.) Blume
Lantana canescens Kunth
URTICACEAE
Lantana cujabensis Schauer
Boehmeria cylindrica (L.) Sw.
Lantana fucata Lindl.
Laportea aestuans (L.) Chew
Lantana glutinosa Poepp.
Phenax sonneratii (Poir.) Wedd.
Lantana radula Sw.
Pilea dauciodora Pav.
Lantana ruiz-teranii López-Pal. y Steyerm.
Pilea fendleri Killip
Lantana trifolia L.
Pilea involucrata (Sims) Urb.
Lippia alba (Mill.) N.E. Br.
Pilea microphylla (L.) Liebm.
Lippia micromera Schauer
Pilea pubescens Liebm.
Lippia origanoides Kunth
Pouzolzia occidentalis (Liebm.) Wedd.
Petrea blanchetiana Schauer
Urera baccifera (L.) Gaudich.
Petrea bracteata Steud.
Urera caracasana (Jacq.) Gaudich. ex Griseb.
Petrea macrostachya Benth.
Urera laciniata Goudot ex Wedd.
Petrea pubescens Turcz.
507
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Petrea volubilis L.
Dendrophthora macbridei (Standl. ex J.F. Macbr.) Kuijt
Phyla betulifolia (Kunth) Greene
Dendrophthora microsoma Rizzini
Priva lappulacea (L.) Pers.
Dendrophthora nitidula (Rizzini) Kuijt
Stachytarpheta angustifolia (Mill.) Vahl
Dendrophthora obliqua (C. Presl) Wiens
Stachytarpheta cayennensis (Rich.) Vahl
Dendrophthora oligantha Kuijt
Stachytarpheta jamaicensis (L.) Vahl
Dendrophthora roraimae (Oliv.) Ule
Stachytarpheta lopez-palacii Moldenke
Dendrophthora tenuilora (Steyerm. y Maguire) Kuijt
Stachytarpheta mutabilis (Jacq.) Vahl
Dendrophthora tepuiana (Steyerm.) Kuijt
Stachytarpheta sprucei Moldenke
Phoradendron aphyllum Steyerm.
Tamonea spicata Aubl.
Phoradendron berryi Rizzini
Vitex calothyrsa Sandwith.
Phoradendron bilineatum Urb.
Vitex capitata Vahl
Phoradendron chrysocladon A. Gray
Vitex compressa Turcz.
Phoradendron crassifolium (Pohl ex DC.) Eichler
Vitex klugii Moldenke
Phoradendron diminutivum E.A. Kellogg
Vitex orinocensis Kunth
Phoradendron dipterum Eichler
Vitex sprucei Briq.
Phoradendron exiguum Trel.
Vitex stahelii Moldenke
Phoradendron haughtii Kuijt
Vitex trilora Vahl
Phoradendron herbert-smithii Trel.
VIOLACEAE
Phoradendron hexastichum (DC.) Griseb.
Amphirrhox longifolia (A. St.-Hil.) Spreng
Phoradendron inaequidentatum Rusby.
Corynostylis carthagenensis H. Karst.
Phoradendron kelloggii Kuijt
Corynostylis pubescens S. Moore
Phoradendron longipetiolatum Urb.
Corynostylis volubilis L.B. Sm. y A. Fernández
Phoradendron mairaryense Ule
Gloeospermum sphaerocarpum Triana y Planch.
Phoradendron membranifolium Kuijt
Hybanthus calceolaria (L.) Schulze
Phoradendron microstachyum Kuijt
Hybanthus oppositifolius (L.) Taub.
Phoradendron morsicatum Rizzini
Hybanthus phyllanthoides (Planch. y Linden) L.B. Sm. y A. Fernández
Phoradendron mucronatum (DC.) Krug y Urb.
Leonia cymosa Mart.
Phoradendron northropiae Urb.
Leonia glycycarpa Ruiz y Pav.
Phoradendron obtusissimum (Miq.) Eichler
Paypayrola grandilora Tul.
Phoradendron perrottetii (DC.) Eichler
Paypayrola guianensis Aubl.
Phoradendron platycaulon Eichler
Paypayrola longifolia Tul.
Phoradendron pteroneuron Eichler
Rinorea camptoneura (Radlk.) Melch.
Phoradendron pulleanum E.H.L.
Rinorea endotricha Sandwith.
Phoradendron quadrangulare (Kunth) Griseb.
Rinorea falcata (Mart. ex Eichler) Kuntze
Phoradendron racemosum (Aubl.) Krug y Urb.
Rinorea lavescens (Aubl.) Kuntze
Phoradendron scariosum Rizzini
Rinorea lindeniana (Tul.) Kuntze
Phoradendron schultesii Kuijt
Rinorea macrocarpa (Mart. ex Eichler) Kuntze
Phoradendron steyermarkii Rizzini in Luces y Steyerm.
Rinorea melanodonta S.F. Blake
Phoradendron trilorum E.A. Kellogg
Rinorea ovalifolia (Britton) S.F. Blake
Phoradendron trinervium (Lam.) Griseb.
Rinorea paniculata (Mart.) Kuntze
Phoradendron tunaeforme (DC.) Eichler
Rinorea pubilora (Benth.) Sprague y Sandwith.
Phoradendron undulatum (Pohl ex DC.) Eichler
Rinorea racemosa (Mart.) Kuntze
VITACEAE
Rinorea riana Kuntze
Cissus alata Jacq.
Rinorea sprucei (Eichler) Kuntze
Cissus descoingsii J.A. Lombardi
Rinoreocarpus ulei (Melch.) Ducke
Cissus erosa Rich.
VISCACEAE
Cissus gongylodes (Baker) Planch.
Dendrophthora crispula (Rizzini) Kuijt
Cissus haematantha Miq.
Dendrophthora decipiens Kuijt
Cissus palmata Poir.
Dendrophthora densifrons (Ule) Kuijt
Cissus spinosa Cambess.
Dendrophthora elliptica (Gardner) Krug y Urb.
Cissus trianae Planch.
Dendrophthora fendleriana (Eichler) Kuijt
Cissus venezuelensis Steyerm.
Dendrophthora intermedia (Rizzini) Kuijt
Cissus verticillata (L.) Nicolson y C.E. Jarvis
Dendrophthora jauana Rizzini
VOCHYSIACEAE
508
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Erisma blancoa Marc.-Berti
Vochysia tetraphylla (G. Mey.) DC.
Erisma calcaratum (Link) Warm.
Vochysia tilletii Marc.-Berti
Erisma loribundum Rudge
Vochysia tomentosa (G. Mey.) DC.
Erisma japura Spruce ex Warm.
Vochysia venezuelana Staleu
Erisma laurifolium Spruce ex Warm.
Vochysia vismiifolia Spruce ex Warm.
Erisma micranthum Spruce ex Warm.
WINTERACEAE
Erisma splendens Staleu
Drimys roraimensis (A.C. Sm.) Ehrend. y Gottsb.
Erisma uncinatum Warm.
ZYGOPHYLLACEAE
Qualea cyanea Ducke
Guaiacum oicinale L.
Qualea decorticans Ducke
Kallstroemia maxima (L.) Hook. y Arn.
Qualea dinizii Ducke
Kallstroemia pubescens (G. Don) Dandy
Qualea homosepala Ducke
Trius zeyheri Sond.
Qualea polychroma Staleu
II. ANGIOSPERMAE-Monocotyledoneae
Qualea psidiifolia Spruce ex Warm.
AGAVACEAE
Qualea pulcherrima Spruce ex Warm.
Furcraea cabuya Trel.
Qualea rupicola Ducke
ALISMATACEAE
Qualea schomburgkiana Warm.
Echinodorus bolivianus (Rusby) Holm-Niels.
Qualea sprucei Warm.
Echinodorus grisebachii Small
Qualea suprema Ducke
Echinodorus horizontalis Rataj
Qualea themistoclesii Ducke
Echinodorus paniculatus Micheli
Qualea tuberculata Staleu
Echinodorus tenellus (Mart.) Buchenau
Qualea wurdackii Marc.-Berti
Sagittaria guayanensis H.B.K. subsp. guayanensis
Ruizterania cassiquiarensis (Spruce ex Warm.) Marc.-Berti
Sagittaria rhombifolia Cham.
Ruizterania esmeraldae (Standl.) Marc.-Berti
Sagittaria sprucei Micheli
Ruizterania ferruginea (Steyerm.) Marc.-Berti
ARACEAE
Ruizterania obtusata (Briq.) Marc.-Berti
Anthurium bonplandii G.S. Bunting subsp. bonplandii
Ruizterania retusa (Spruce ex Warm.) Marc.-Berti
Anthurium cataniapoense Croat
Ruizterania rigida (Staleu) Marc.-Berti
Anthurium clavigerum Poepp.
Ruizterania trichanthera (Spruce ex Warm.) Marc.-Berti
Anthurium corocoroense G.S. Bunting
Vochysia angustifolia Ducke
Anthurium digitatum (Jacq.) Schott
Vochysia apopetala Ule.
Anthurium eminens Schott
Vochysia bautistae Marc.-Berti
Anthurium expansum Gleason
Vochysia calophylla Spruce ex Warm.
Anthurium gracile (Rudge) Schott
Vochysia cassiquiarensis Staleu
Anthurium guaiquinimae G.S. Bunting
Vochysia catingae Ducke.
Anthurium guanchezii G.S. Bunting
Vochysia complicata Ducke.
Anthurium guayanum G.S. Bunting
Vochysia costata Warm.
Anthurium hookeri Kunth
Vochysia crassifolia Warm.
Anthurium iramirezae G.S. Bunting
Vochysia elegans Staleu
Anthurium jenmanii Engl.
Vochysia expansa Ducke.
Anthurium kunthii Poepp.
Vochysia ferruginea Mart.
Anthurium ptarianum Steyerm.
Vochysia glaberrima Warm.
Anthurium roraimense N.E. Br.
Vochysia grandis Mart.
Anthurium scandens (Aubl.) Engl.
Vochysia jonkeri Marc. Berti
Anthurium subscriptum G.S. Bunting
Vochysia af. laxilora Staleu
Anthurium tatei G.S. Bunting
Vochysia obscura Warm.
Anthurium trinerve Miq.
Vochysia ortegae Marc.-Berti y Bautista
Anthurium vinillense G.S. Bunting
Vochysia punctata Spruce ex Warm.
Anthurium wurdackii G.S. Bunting
Vochysia rubiginosa Staleu
Anthurium yutajense G.S. Bunting
Vochysia saccata Staleu
Caladium bicolor (Aiton) Vent.
Vochysia spathiphylla Staleu
Caladium macrotites Schott
Vochysia splendens Spruce ex Warm.
Caladium picturatum K. Koch y Bouché
Vochysia steyermarkiana Marc. Berti
Caladium schomburgkii Schott
Vochysia surinamensis Staleu
Colocasia esculenta (L.) Schott
509
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Diefenbachia duidae (Steyerm.) G.S. Bunting
Philodendron pedatum (Hook.) Kunth
Diefenbachia parvifolia Engl.
Philodendron peperomioides G.S. Bunting
Diefenbachia seguine (Jacq.) Schott
Philodendron peraiense G.S. Bunting
Dracontium asperum K. Koch
Philodendron remifolium subsp. sabulosum (G.S. Bunting) G.S. Bunting
Dracontium changuango G.S. Bunting
Philodendron rudgeanum Schott
Heteropsis lexuosa (H.B.K.) G.S. Bunting var. lexuosa
Philodendron samayense G.S. Bunting
Heteropsis spruceana var. robusta G.S. Bunting.
Philodendron scandens K. Koch y Sellow
H. spruceana Schott var. spruceana
Philodendron scitulum G.S. Bunting
Heteropsis steyermarkii G.S. Bunting
Philodendron solimoesense A.C. Sm.
Heteropsis tenuispadix G.S. Bunting
Philodendron steyermarkii G.S. Bunting
Monstera adansonii var. klotzschiana (Schott) Madison
Philodendron surinamense (Miq.) Engl.
Monstera adansonii var. laniata (Schott) Madison
Philodendron tatei subsp. melanochlorum (G.S. Bunting) G.S. Bunting
Monstera dubia (H.B.K.) Engl. y K. Krause
Philodendron tatei K. Krause subsp. tatei
Monstera gracilis Engl.
Philodendron yutajense G.S. Bunting
Monstera obliqua Miq.
Pistia stratiotes L.
Monstera spruceana (Schott) Engl.
Rhodospatha bolivarana G.S. Bunting
Montrichardia arborescens (L.) Schott
Rhodospatha brachypoda G.S. Bunting
Montrichardia linifera (Arruda) Schott
Rhodospatha venosa Gleason
Philodendron acutatum Schott
Schismatoglottis bolivarana G.S. Bunting y Steyerm.
Philodendron anaadu G.S. Bunting
Schismatoglottis spruceana (Schott) G.S. Bunting
Philodendron auyantepuiense G.S. Bunting
Spathiphyllum cannaefolium (Dryand.) Schott
Philodendron barrosoanum G.S. Bunting
Spathiphyllum cuspidatum Schott
Philodendron bipennifolium Schott
Spathiphyllum jejunum G.S. Bunting
Philodendron brevispathum subsp. holmquistii (G.S. Bunting) G.S. Bunting
Spathiphyllum monachinoi G.S. Bunting var. monachinoi
Philodendron callosum subsp. ptarianum (Steyerm.) G.S. Bunting
S. monachinoi var. perangustum G.S. Bunting
Philodendron canaimae G.S. Bunting
Spathiphyllum schomburgkii Schott
Philodendron cataniapoense G.S. Bunting
Stenospermation ammiticum G.S. Bunting
Philodendron chimantae G.S. Bunting
Stenospermation multiovulatum (Engl.) N.E. Br.
Philodendron delexum Poepp. ex Schott
Stenospermation spruceanum Schott
Philodendron delascioi G.S. Bunting
Stenospermation ulei K. Krause
Philodendron dunstervilleorum G.S. Bunting
Syngonium vellozianum Schott
Philodendron dyscarpium R.E. Schult. var. dyscarpium
Urospatha sagittifolia (Rudge) Schott
Philodendron dyscarpium var. ventuarianum G.S. Bunting
Urospathella wurdackii (G.S. Bunting) G.S. Bunting
Philodendron englerianum subsp. duidae (Steyerm.) G.S. Bunting
Xanthosoma akkermansii (G.S. Bunting) Croat
Philodendron englerianum Steyerm. subsp. englerianum
Xanthosoma caulotuberculatum G.S. Bunting
Philodendron fendleri K. Krause
Xanthosoma contractum G.S. Bunting
Philodendron fragrantissimum (Hook.) G. Don
Xanthosoma helleborifolium (Jacq.) Schott
Philodendron goeldii G.M. Barroso
Xanthosoma orinocense G.S. Bunting
Philodendron grandifolium (Jacq.) Schott
Xanthosoma sagittifolium (L.) Schott
Philodendron guaiquinimae G.S. Bunting
Xanthosoma striatipes (Kunth y Bouché) Madison
Philodendron guttiferum Kunth
Xanthosoma trilobum G.S. Bunting
Philodendron hederaceum (Jacq.) Schott
Xanthosoma undipes (K. Koch y Bouché) K. Koch
Philodendron holstii G.S. Bunting
ARECACEAE
Philodendron hylaeae G.S. Bunting
Acrocomia aculeata (Jacq.) Lodd. ex Mart.
Philodendron insigne Schott
Astrocaryum acaule Mart.
Philodendron krauseanum Steyerm.
Astrocaryum aculeatum G. Mey.
Philodendron liesneri G.S. Bunting
Astrocaryum gynacanthum Mart.
Philodendron linnaei Kunth var. linnaei
Astrocaryum jauari Mart.
Philodendron marahuacae G.S. Bunting
Attalea butyracea (Mutis ex L. F.) Wess. Boer
Philodendron melinonii Brongn. ex Regel
Attalea luetzelburgii (Burret) Wess. Boer
Philodendron multinerve G.S. Bunting
Attalea maripa (Aubl.) Mart.
Philodendron muricatum Willd. ex Schott
Bactris acanthocarpa Mart.
Philodendron nebulense G.S. Bunting
Bactris balanophora Spruce
Philodendron ornatum Schott
Bactris brongniartii Mart.
510
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Bactris campestris Mart.
Aechmea castelnavii Baker
Bactris corossilla H. Karst.
Aechmea lingulata (L.) Baker
Bactris gasipaes H.B.K.
Aechmea longifolia (Rudge) L.B. Sm. y M.A. Spencer
Bactris guineensis (L.) H.E. Moore
Aechmea mertensii (G. Meyer) Schult. F.
Bactris hirta Mart.
Aechmea nudicaulis (L.) Griseb.
Bactris major Jacq.
Aechmea pendulilora André
Bactris maraja Mart.
Aechmea rubiginosa Mez
Bactris oligoclada Burret
Aechmea setigera Mart. ex Schult. F.
Bactris ptariana Steyerm.
Aechmea tillandsioides (Mart. ex Schult. F.) Baker
Bactris setulosa H. Karst.
Aechmea tocantina Baker
Bactris simplicifrons Mart.
Ananas comosus (L.) Merr.
Cocos nucifera L.
Ananas lucidus Mill.
Copernicia tectorum (H.B.K.) Mart.
Ananas parguazensis Camargo y L.B. Sm.
Desmoncus mitis Mart.
Araeococcus lagellifolius Harms
Desmoncus orthacanthos Mart.
Araeococcus micranthus Brongn.
Desmoncus phoenicocarpus Barb. Rodr.
Ayensua uaipanensis (Maguire) L.B. Sm.
Desmoncus polyacanthos Mart.
Billbergia macrolepis L.B. Sm.
Dictyocaryum ptarianum (Steyerm.) H.E. Moore y Steyerm.
Brewcaria brocchinioides (L.B. Sm.) B. Holst
Euterpe catinga Wallace var. catinga
Brewcaria duidensis L.B. Sm., Steyerm. y H. Rob.
Euterpe catinga var. roraimae (Dammer) A. Hend. y Galeano
Brewcaria hechtioides (L.B. Sm.) B. Holst
Euterpe longebracteata Barb. Rodr.
Brewcaria hohenbergioides (L.B. Sm.) B. Holst
Euterpe oleracea Mart.
Brewcaria marahuacae L.B. Sm., Steyerm. y H. Rob.
Euterpe precatoria Mart.
Brocchinia acuminata L.B. Sm.
Geonoma appuniana Spruce
Brocchinia cowanii L.B. Sm.
Geonoma baculifera (Poit.) Kunth
Brocchinia delicatula L.B. Sm.
Geonoma deversa (Poit.) Kunth
Brocchinia hechtioides Mez
Geonoma interrupta var. euspatha (Burret) A. Hend.
Brocchinia hitchcockii L.B. Sm.
Geonoma leptospadix Trail
Brocchinia maguirei L.B. Sm.
Geonoma macrostachys
Brocchinia melanacra L.B. Sm.
Geonoma maxima (Poit.) Kunth var. maxima
Brocchinia paniculata Schult. F.
Geonoma oligoclona Trail
Brocchinia prismatica L.B. Sm.
Hyospathe elegans Mart.
Brocchinia reducta Baker
Iriartea deltoidea Ruiz y Pav.
Brocchinia steyermarkii L.B. Sm.
Iriartella setigera (Mart.) H. Wendl.
Brocchinia tatei L.B. Sm.
Leopoldinia major Wallace
Brocchinia vestita L.B. Sm.
Leopoldinia piassaba Wallace
Brocchinia sp. A
Leopoldinia pulchra Mart
Bromelia chrysantha Jacq.
Manicaria saccifera Gaertn.
Bromelia goeldiana L.B. Sm.
Mauritia lexuosa L. F.
Bromelia plumieri (E. Morren) L.B. Sm.
Mauritiella armata (Mart.) Burrett
Bromelia tubulosa L.B. Sm.
Oenocarpus bacaba Mart.
Catopsis berteroniana (Schult. F.) Mez
Oenocarpus balickii Kahn
Catopsis sessililora (Ruiz y Pav.) Mez
Oenocarpus bataua Mart
Connellia augustae (M.R. Schomb.) N.E. Br.
Prestoea tenuiramosa (Dammer) H.E. Moore
Connellia caricifolia L.B. Sm.
Roystonea oleracea (Jacq.) O.F. Cook
Connellia nutans L.B. Sm.
Sabal mauritiiformis (H. Karst.) Griseb. y H. Wendl.
Connellia quelchii N.E. Br.
Socratea exorrhiza (Mart.) H. Wendl.
Connellia varadarajanii L.B. Sm. y Steyerm.
Syagrus orinocensis (Spruce) Burret
Guzmania altsonii L.B. Sm.
Syagrus sancona H. Karst.
Guzmania brasiliensis Ule
BROMELIACEAE
Guzmania lingulata (L.) Mez
Aechmea angustifolia Poeppig y Endl.
Guzmania monostachia (L.) Rusby ex Mez
Aechmea aquilega (Salisb.) Griseb.
Guzmania patula Mez y Wercklé
Aechmea brevicollis L.B. Sm.
Guzmania retusa L.B. Sm.
Aechmea bromeliifolia (Rudge) Baker
Guzmania roezlii (E. Morren) Mez
511
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Guzmania squarrosa (Mez y Sodiro) L.B. Sm. y Pittendr.
Navia igneosicola L.B. Sm. Steyerm. y H. Rob.
Guzmania terrestris L.B. Sm. y Steyerm.
Navia immersa L.B. Sm.
Hohenbergia stellata Schult. F.
Navia incrassata L.B. Sm. y Steyerm.
Lindmania arachnoidea (L.B. Sm., Steyerm. y H. Rob.) L.B. Sm.
Navia intermedia L.B. Sm. y Steyerm.
Lindmania argentea L.B. Sm.
Navia involucrata L.B. Sm.
Lindmania atrorosea (L.B. Sm., Steyerm. y H. Rob.) L.B. Sm.
Navia jauana L.B. Sm. Steyerm. y H. Rob.
Lindmania aurea L.B. Sm., Steyerm. y H. Rob.
Navia lactea L.B. Sm. Steyerm. y H. Rob.
Lindmania brachyphylla L.B. Sm.
Navia lanigera L.B. Sm.
Lindmania candelabriformis B. Holst
Navia lasiantha L.B. Sm. y Steyerm.
Lindmania cylindrostachya L.B. Sm.
Navia latifolia L.B. Sm.
Lindmania guianensis (Beer) Mez
Navia lindmanioides L.B. Sm.
Lindmania holstii Steyerm. y L.B. Sm.
Navia linearis L.B. Sm. Steyerm. y H. Rob.
Lindmania huberi L.B. Sm., Steyerm. y H. Rob.
Navia luzuloides L.B. Sm. Steyerm. y H. Rob.
Lindmania imitans L.B. Sm., Steyerm. y H. Rob.
Navia mima L.B. Sm.
Lindmania longipes (L.B. Sm.) L.B. Sm.
Navia mosaica B. Holst
Lindmania marahuacae (L.B. Sm., Steyerm. y H. Rob.) L.B. Sm.
Navia navicularis L.B. Sm. y Steyerm.
Lindmania minor L.B. Sm.
Navia nubicola L.B. Sm.
Lindmania navioides L.B. Sm.
Navia ocellata L.B. Sm.
Lindmania oliva-estevae L.B. Sm. y Steyerm ex B. Holst
Navia octopoides L.B. Sm.
Lindmania phelpsiae L.B. Sm.
Navia ovoidea L.B. Sm., Steyerm. y H. Rob.
Lindmania riparia L.B. Sm. Steyerm. y H. Rob.
Navia paruana B. Holst
Lindmania saxicola L.B. Sm. Steyerm. y H. Rob.
Navia paucilora L.B. Sm.
Lindmania serrulata L.B. Sm.
Navia phelpsiae L.B. Sm.
Lindmania smithiana (Steyerm. y Luteyn) L.B. Sm.
Navia pulvinata L.B. Sm.
Lindmania stenophylla L.B. Sm.
Navia pungens L.B. Sm.
Lindmania steyermarkii L.B. Sm.
Navia robinsonii L.B. Sm.
Lindmania subsimplex L.B. Sm.
Navia saxicola L.B. Sm.
Lindmania thyrsoidea L.B. Sm.
Navia scirpilora L.B. Sm. Steyerm. y H. Rob.
Lindmania tillandsioides L.B. Sm.
Navia scopulorum L.B. Sm.
Lindmania wurdackii L.B. Sm.
Navia semiserrata L.B. Sm.
Lindmania sp. C
Navia serrulata L.B. Sm.
Mezobromelia capituligera (Griseb.) J.R. Grant
Navia splendens L.B. Sm.
Mezobromelia pleiosticha (Griseb.) Utley y H. Luther
Navia stenodonta L.B. Sm.
Navia aliciae L.B. Sm., Steyerm. y H. Rob.
Navia steyermarkii L.B. Sm.
Navia arida L.B. Sm. y Steyerm.
Navia subpetiolata L.B. Sm.
Navia aurea L.B. Sm.
Navia tentaculata B. Holst
Navia berryana L.B. Sm., Steyerm. y H. Rob.
Navia trichodonta L.B. Sm.
Navia brachyphylla L.B. Sm.
Navia umbratilis L.B. Sm.
Navia breweri L.B. Sm. y Steyerm.
Navia viridis L.B. Sm.
Navia cardonae L.B. Sm.
Navia wurdackii L.B. Sm.
Navia caricifolia L.B. Sm.
Navia xyridilora L.B. Sm.
Navia caurensis L.B. Sm.
Navia sp. A
Navia colorata L.B. Sm.
Navia sp. C
Navia connata L.B. Sm. y Steyerm.
Pitcairnia agavifolia L.B. Sm.
Navia cretacea L.B. Sm.
Pitcairnia armata Maury
Navia crispa L.B. Sm.
Pitcairnia brittoniana Mez
Navia cucullata L.B. Sm.
Pitcairnia bulbosa L.B. Sm.
Navia duidae L.B. Sm.
Pitcairnia cana B. Holst
Navia emergens L.B. Sm., Steyerm. y H. Rob.
Pitcairnia ctenophylla L.B. Sm.
Navia geaster L.B. Sm., Steyerm. y H. Rob.
Pitcairnia echinata Hook.
Navia glandulifera B. Holst
Pitcairnia ilispina L.B. Sm.
Navia glauca L.B. Sm.
Pitcairnia graniticola B. Holst
Navia gleasonii L.B. Sm.
Pitcairnia heterophylla Lindl. Beer
Navia huberiana L.B. Sm. Steyerm. y H. Rob.
Pitcairnia juncoides L.B. Sm.
512
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Pitcairnia kunhardtiana L.B. Sm.
Vriesea rubra (Ruiz y Pav.) Beer
Pitcairnia leopoldii (W. Till y S. Till) B. Holst
Vriesea sanguinolenta Cogn. y Marchand
Pitcairnia maguirei L.B. Sm.
Vriesea simplex (Vell.) Beer
Pitcairnia maidifolia (E. Morren) Decne. ex Planch y Linden
Vriesea splendens (Brongn.) Lem.
Pitcairnia nematophora L.B. Sm. y Read
Vriesea sulcata L.B. Sm.
Pitcairnia orchidifolia Mez
Vriesea viridilora (Regel) Wittm. ex Mez
Pitcairnia patentilora L.B. Sm.
Vriesea wurdackii L.B. Sm.
Pitcairnia phelpsiae (L.B. Sm.) B. Holst y L.B. Sm.
BURMANNIACEAE
Pitcairnia pruinosa H.B.K.
Apteria aphylla (Nutt.) Barnhart ex Small
Pitcairnia sp. A
Burmannia bicolor Mart
Pitcairnia sp. C
Burmannia capitata (Walter ex J.F. Gmel.) Mart.
Puya loccosa (Linden) E. Morren ex Mez
Burmannia dasyantha Mart.
Puya graii Rauh
Burmannia lava Mart.
Racinaea jenmanii (Baker) M.A. Spencer y L.B. Sm.
Burmannia foliosa Gleason
Racinaea spiculosa (Griseb.) M.A. Spencer y L.B. Sm.
Burmannia kalbreyeri Oliv.
Racinaea tetrantha (Ruiz y Pav.) M.A. Spencer y L.B. Sm
Burmannia sanariapoana Steyerm.
Steyerbromelia delexa L.B. Sm. y H. Rob.
Burmannia tenella Benth.
Steyerbromelia discolor L.B. Sm. y H. Rob.
Campylosiphon purpurascens Benth.
Steyerbromelia ramosa (L.B. Sm.) B. Holst
Dictyostega orobanchoides (Hook.) Miers
Tillandsia adpressilora Mez
Gymnosiphon brachycephalus Snelders y Maas
Tillandsia anceps Lodd.
Gymnosiphon brevilorus Gleason
Tillandsia balbisiana Schult. F.
Gymnosiphon cymosus (Benth.) Benth. y Hook. F.
Tillandsia brachycaulos Schltdl.
Gymnosiphon divaricatus (Benth.) Benth. y Hook. F.
Tillandsia bulbosa Hook.
Gymnosiphon minutus Snelders y Maas
Tillandsia clavigera Mez
Hexapterella steyermarkii Maas y H. Maas
Tillandsia compacta Griseb.
Miersiella umbellata (Miers) Urb.
Tillandsia complanata Benth.
CANNACEAE
Tillandsia coninis L.B. Sm.
Canna glauca L.
Tillandsia elongata var. subimbricata (Baker) L.B. Sm.
Canna indica L.
Tillandsia fasciculata Sw.
COMMELINACEAE
Tillandsia fendleri Griseb.
Aneilema brasiliense C.B. Clarke
Tillandsia lexuousa Sw.
Callisia iliformis (M. Martens y Galeotti) D.R. Hunt
Tillandsia gardneri Lindl.
Commelina difusa Burm. F.
Tillandsia juncea (Ruiz y Pav.) Poir.
Commelina erecta L.
Tillandsia kegeliana Mez
Commelina ruipes Seub.
Tillandsia monadelpha (E. Morren) Baker
Dichorisandra hexandra (Aubl.) Standl.
Tillandsia paraënsis Mez
Murdannia nudilora (L.) Brenan
Tillandsia polystachia (L.) L.
Tinantia umbellata (Vahl) Urb.
Tillandsia pruinosa Sw.
Tradescantia zanonia (L.) Sw.
Tillandsia pyramidata André
Tripogandra serrulata (Vahl) Handlos
Tillandsia recurvata (L.) L.
COSTACEAE
Tillandsia schiedeana Steud.
Costus arabicus L.
Tillandsia turneri var. orientalis L.B. Sm.
Costus congestilorus Rich. ex Gagnep.
Tillandsia usneoides (L.) L.
Costus guanaiensis Rusby
Vriesea amazonica (Baker) Mez
Costus scaber Ruiz y Pav.
Vriesea bibeatricis Morillo
Costus spiralis (Jacq.) Roscoe var. spiralis
Vriesea duidae (L.B. Sm.) Gouda
Costus villosissimus Jacq.
Vriesea ibrosa L.B. Sm.
Dimerocostus strobilaceus subsp. gutierrezii (Kuntze) Maas
Vriesea glutinosa Lindl.
CYCLANTHACEAE
Vriesea heliconioides (H.B.K.) Hook. ex Walp.
Asplundia lavovaginata Harling
Vriesea incurva (Griseb.) Read
Asplundia maguirei Harling
Vriesea melgueiroi I. Ramírez y Carnevali
Asplundia moritziana (Klotzsch) Harling
Vriesea platynema Guadich.
Asplundia vaupesiana Harling
Vriesea procera (Mart. ex Schult. F.) Wittm.
Asplundia venezuelensis Harling
513
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Asplundia xiphophylla Harling
Cyperus croceus Vahl
Cyclanthus bipartitus Poit.
Cyperus cuspidatus H.B.K.
Dicranopygium bolivarense Harling
Cyperus digitatus Roxb.
Dicranopygium imeriense Harling
Cyperus distans L. F.
Dicranopygium nanum (Gleason) Harling
Cyperus esculentus L.
Dicranopygium omichlophilum R.E. Schult. ex Harling
Cyperus felipponei Kük.
Dicranopygium yacu-sisa Harling
Cyperus iliformis Sw.
Evodianthus funifer (Poit.) Lindm.
Cyperus lavescens L.
Ludovia lancifolia Brongn.
Cyperus lavicomus Michx.
Sphaeradenia duidae Harling
Cyperus gardneri Nees
Stelestylis stylaris (Gleason) Harling
Cyperus giganteus Vahl
horacocarpus bissectus (Vell.) Harling
Cyperus grandisimplex C.B. Clarke
CYPERACEAE
Cyperus haspan L.
Abildgaardia ovata (Burm. F.) Kral
Cyperus hermaphroditus (Jacq.) Standl.
Ascolepis brasilensis (Kunth) Benth. ex C.B. Clarke
Cyperus hoppiifolius Uittien
Becquerelia cymosa Brogn.
Cyperus imbricatus Retz.
Becquerelia tuberculata (Boeck.) H. PfeifF.
Cyperus kappleri Hochst. ex Steud.
Bulbostylis aturensis (Maury) C.B. Clarke
Cyperus laxus Lam.
Bulbostylis capillaris (L.) C.B. Clarke
Cyperus ligularis L.
Bulbostylis conifera (Kunth) C.B. Clarke
Cyperus luzulae (L.) Rottb. ex Retz.
Bulbostylis luviatilis Kral y Davidse
Cyperus meridionalis Barros
Bulbostylis hirta (hunb.) Svenson
Cyperus meyenianus Kunth
Bulbostylis junciformis (H.B.K.) C.B. Clarke
Cyperus miliifolius Poepp. y Kunth
Bulbostylis juncoides (Vahl.) Kük. ex Osten
Cyperus odoratus L.
Bulbostylis lanata (H.B.K.) Lindm.
Cyperus polystachyos Rottb.
Bulbostylis leucostachya (H.B.K.) C.B. Clarke
Cyperus prolixus H.B.K.
Bulbostylis paradoxa (Spreng.) Lindm.
Cyperus rotundus L.
Bulbostylis schomburgkiana (Steud.) M.T. Strong
Cyperus simplex H.B.K.
Bulbostylis svensoniana Steyerm.
Cyperus sphacelatus Rottb.
Bulbostylis tenuifolia (Rudge) J.F. Macbr.
Cyperus surinamensis Rottb.
Bulbostylis truncata (Nees) M.T. Strong
Cyperus swartzii (A. Dietr.) Boeck. y Kük.
Bulbostylis vestita (Kunth) C.B. Clarke
Cyperus tenuis Sw.
Bulbostylis sp. A [Ha sido publicada como Bulbostylis medusa Camelbeke,
Goetgh. y Huber]
Cyperus tenuispica Steud.
Calyptrocarya bicolor (H. PfeifF.) T. Koyama
Cyperus traillii C.B. Clarke
Calyptrocarya glomerulata (Brongn.) Urb.
Cyperus unicolor Boeck.
Calyptrocarya luzuliformis T. Koyama
Cyperus unioloides R. Br.
Calyptrocarya monocephala Hochst. ex Steud.
Cyperus virens Michx.
Calyptrocarya poeppigiana Kunth
Didymiandrum stellatum (Boeck.) Gilly
Carex marahuacana Reznicek
Diplacrum capitatum (Willd.) Boeck.
Carex polystachya Sw. ex Wahlenb.
Diplacrum guianense (Nees) T. Koyama
Carex roraimensis Steyerm.
Diplasia karatifolia Rich.
Carex tamana Steyerm.
Eleocharis acutangula (Roxb.) Schult.
Cephalocarpus confertus Gilly
Eleocharis alveolatoides S. González y Reznicek
Cephalocarpus dracaenula Nees
Eleocharis amazonica C.B. Clarke
Cephalocarpus rigidus Gilly ex Gleason y Killip
Eleocharis atrospiculata S. González y Reznicek
Cladium costatum Steyerm.
Eleocharis ayacuchensis S. González y Reznicek
Cyperus aggregatus (Willd.) Endl.
Eleocharis capillacea Kunth
Cyperus amabilis Vahl
Eleocharis debilis Kunth
Cyperus articulatus L.
Eleocharis eglerioides S. González y Reznicek
Cyperus bipartitus Torr.
Eleocharis elegans (H.B.K.) Roem. y Schult.
Cyperus camphoratus Liebm.
Eleocharis iliculmis Kunth
Cyperus compressus L.
Eleocharis lavescens (Poir.) Urb.
Cyperus cornelii-ostenii Kük.
Eleocharis geniculata (L.) Roem. y Schult.
Cyperus thyrsilorus Jungh.
514
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Eleocharis interstincta (Vahl) Roem. y Schult.
Kyllinga brevifolia Rottb.
Eleocharis jelskiana Boeck.
Kyllinga odorata Vahl
Eleocharis liesnerii S. González y Reznicek
Kyllinga pumila Michx.
Eleocharis maculosa (Vahl) Roem. y Schult.
Lagenocarpus celiae T. Koyama y Maguire
Eleocharis minima Kunth var. minima
Lagenocarpus eriopodus T. Koyama y Maguire
Eleocharis cf. minima C.
Lagenocarpus glomerulatus Gilly
Eleocharis mitrata (Griseb.) C.B. Clarke
Lagenocarpus guianensis Nees subsp. guianensis
Eleocharis montana (H.B.K.) Roem. y Schult.
Lagenocarpus rigidus (Kunth) Nees
Eleocharis mutata (L.) Roem. y Schult.
Lagenocarpus sabanensis Gilly
Eleocharis nana Kunth
Lagenocarpus venezuelensis Davidse
Eleocharis nigrescens (Nees) Steud.
Lipocarpha humboldtiana Nees
Eleocharis pachystyla (C. Wright) C.B. Clarke
Lipocarpha mexicana Liebm.
Eleocharis plicarhachis (Griseb.) Svenson
Lipocarpha micrantha (Vahl) G.C. Tucker
Eleocharis retrolexa (Poir.) Urb.
Lipocarpha schomburgkii (Friedland) G.C. Tucker
Eleocharis sellowiana Kunth
Mapania aturensis D.A. Simpson
Eleocharis squamigera Svenson subsp. straminea S. González y Reznicek
Mapania efusa (C.B. Clarke.) T. Koyama
Eleocharis steyermarkii S. González y Reznicek
Mapania imeriensis (R. Gross) T. Koyama
Eleocharis af. steyermarkii Steyermark y Nilsson
Mapania maguireana T. Koyama y Steyerm.
Eleocharis subfoliata C.B. Clarke
Mapania pycnocephala (Benth.) Benth.
Eleocharis sp. A
Mapania steyermarkii T. Koyama
Eleocharis sp. B
Mapania sylvatica Aubl. subsp. sylvatica
Eleocharis sp. C
Mapania tepuiana (Steyerm.) T. Koyama
Everardia angusta N.E. Brown
Oxycaryum cubense (Poepp. y Kunth) Lye
Everardia debilis T. Koyama y Maguire
Pleurostachys puberula Boeck.
Everardia difusa T. Koyama y Maguire
Rhynchocladium steyermarkii (T. Koyama) T. Koyama
Everardia disticha T. Koyama y Maguire
Rhynchospora agostiniana T. Koyama
Everardia lexifolia (Gilly) T. Koyama y Maguire
Rhynchospora albescens (Miq.) Kük.
Everardia lanata T. Koyama y Maguire
Rhynchospora albida (Nees) Boeck.
Everardia longifolia Gilly ex Gleason y Killip
Rhynchospora albomarginata Kük.
Everardia montana Ridl.
Rhynchospora amazonica Poepp. y Kunth
Everardia recurvigluma T. Koyama y Maguire
Rhynchospora armerioides J. Presl y C. Presl
Everardia surinamensis Gilly
Rhynchospora barbata (Vahl) Kunth
Everardia vareschii Maguire
Rhynchospora bilora Boeck.
Exochogyne amazonica C.B. Clarke
Rhynchospora bolivarana Steyerm.
Fimbristylis aestivalis (Retz.) Vahl
Rhynchospora brasiliensis Boeck.
Fimbristylis annua (All.) Roem. y Schult
Rhynchospora brevirostris Griseb.
Fimbristylis autumnalis (L.) Roem. y Schult.
Rhynchospora brownii Roem. y Schult.
Fimbristylis complanata (Retz.) Link
Rhynchospora cajennensis Boeck.
Fimbristylis cymosa R. Br.
Rhynchospora candida (Nees) Boeck.
Fimbristylis dichotoma (L.) Vahl
Rhynchospora capillifolia W.W. homas
Fimbristylis dipsacea (Rottb.) C.B. Clarke
Rhynchospora capitata (H.B.K.) Roem. y Schult.
Fimbristylis miliacea (L.) Vahl
Rhynchospora caracasana (Kunth) Boeck.
Fimbristylis quinquangularis (Vahl) Kunth
Rhynchospora cariciformis Nees
Fimbristylis spadicea (L.) Vahl
Rhynchospora cephalotes (L.) Vahl
Fimbristylis squarrosa Vahl
Rhynchospora chimantensis W.W. homas
Fimbristylis vahlii (Lam.) Link
Rhynchospora comata (Link) Roem. y Schult.
Fuirena umbellata Rottb.
Rhynchospora contracta (Nees) J. Raynal
Hypolytrum amplum Poepp. y Kunth
Rhynchospora corymbosa (L.) Britton
Hypolytrum jenmannii C.B. Clarke subsp. jenmannii
Rhynchospora curvula Griseb.
Hypolytrum laxum Kunth
Rhynchospora dentinux Clarke
Hypolytrum longifolium (Rich.) Nees
Rhynchospora duidae Steyerm.
Hypolytrum pulchrum (Rudge) H. PfeifF.
Rhynchospora eburnea Kral y W.W. homas
Hypolytrum schraderianum Nees
Rhynchospora elegantula Maury
Hypolytrum spongiosum T. Koyama
Rhynchospora emaciata (Nees) Boeck.
515
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Rhynchospora exaltata Kunth
Scleria grandis Core
Rhynchospora eximia (Nees) Boeck.
Scleria interrupta Rich.
Rhynchospora iliformis Vahl
Scleria latifolia Sw.
Rhynchospora lexuosa C.B. Clarke
Scleria lithosperma (L.) Sw.
Rhynchospora globosa (Kunth) Roem. y Schult.
Scleria macrogyne C.B. Clarke
Rhynchospora graminea Uittien
Scleria macrophylla J. Presl y C. Presl
Rhynchospora hieronymi Boeck.
Scleria melaleuca Rchb. ex Schltdl. y Cham.
Rhynchospora hirsuta (Vahl) Vahl
Scleria microcarpa Nees ex Kunth
Rhynchospora holoschoenoides (Rich.) Herter
Scleria mitis Bergius
Rhynchospora junciformis (Kunth) Boeck.
Scleria parallela C.B. Clarke
Rhynchospora lechleri Steud. ex Boeck.
Scleria purdiei C.B. Clarke
Rhynchospora longibracteata Boeck.
Scleria ramosa C.B. Clarke
Rhynchospora macrochaeta Steud. ex Boeck.
Scleria reticularis Michx.
Rhynchospora maguireana T. Koyama
Scleria scabra Willd.
Rhynchospora marisculus Nees ex Lindley y Nees
Scleria secans (L.) Urb.
Rhynchospora mexicana (Liebm.) Steud.
Scleria stipularis Nees
Rhynchospora nervosa (Vahl) Boeck.
Scleria tenacissima Steud.
Rhynchospora pilosa (Kunt) Boeck.
Scleria tepuiensis Core
Rhynchospora polyphylla Vahl
Scleria verticillata Muhl. ex Willd.
Rhynchospora pubera (Vahl) Boek.
Trilepis kanukensis Gilly
Rhynchospora rigidifolia (Gilly) T. Koyama
Uncinia hamata (Sw.) Urb.
Rhynchospora riparia (Nees) Boeck.
Websteria confervoides (Poir) S.S. Hooper
Rhynchospora robusta (Kunth) Boeck.
DIOSCOREACEAE
Rhynchospora roraimae Kük.
Dioscorea alata L.
Rhynchospora rugosa (Vahl) Gale
Dioscorea altissima Lam.
Rhynchospora ruiziana Boeck.
Dioscorea amazonum Mart. ex Griseb.
Rhynchospora sanariapensis Steyerm.
Dioscorea aspera Humb. y Bonpl. ex Willd.
Rhynchospora schomburgkiana (Boeck.) T. Koyama
Dioscorea atrescens R. Knuth
Rhynchospora steyermarkii T. Koyama
Dioscorea bolivarensis Steyerm.
Rhynchospora subdicephala T. Koyama
Dioscorea cayenensis Lam.
Rhynchospora subplumosa C.B. Clarke
Dioscorea crotalariifolia Uline
Rhynchospora tenella (Nees) Boeck.
Dioscorea cuspidata Humb. y Bonpl. ex Willd
Rhynchospora tenerrima Nees ex Spreng.
Dioscorea decorticans C. Presl
Rhynchospora tenuis Link
Dioscorea holmioidea Maury
Rhynchospora trichochaeta C.B. Clarke
Dioscorea nitida R. Knuth
Rhynchospora trichodes C.B. Clarke
Dioscorea panamensis R. Knuth
Rhynchospora trichophora Nees
Dioscorea pilosiuscula Bertero
Rhynchospora trilora Vahl
Dioscorea piperifolia Humb. y Bonpl. ex Willd.
Rhynchospora trispicata (Nees) Schrad. ex Steud.
Dioscorea pittieri R. Knuth
Rhynchospora unilora Boeck.
Dioscorea polygonoides Humb. y Bonpl. ex Willd.
Rhynchospora unisetosa T. Koyama
Dioscorea scabra Humb. y Bonpl. ex Willd.
Rhynchospora velutina (Kunth) Boeck.
Dioscorea sororopana Steyerm.
Rhynchospora sp. A
Dioscorea trichanthera Gleason
Rhynchospora sp. B
Dioscorea triida L. F.
Rhynchospora sp. D
Dioscorea trifoliata H.B.K.
Schoenoplectus robustus (Pursh) M.T. Strong
Dioscorea sp. A
Scleria amazonica Camelbeke, M. Strong y Goetgh.
ERIOCAULACEAE
Scleria bracteata Cav.
Eriocaulon cinereum R. Br.
Scleria camaratensis Core
Eriocaulon dimorphopetalum Mold.
Scleria cyperina Kunth
Eriocaulon guyanense Körn.
Scleria cyperinoides C.B. Clarke
Eriocaulon humboldtii Kunth
Scleria distans Poir.
Eriocaulon jauense Mold.
Scleria eggersiana Boeck.
Eriocaulon melanocephalum Kunth
Scleria lagellum-nigrorum Bergius
Eriocaulon spongiola Hensold
516
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Eriocaulon steyermarkii Mold.
Syngonanthus cowanii Mold.
Eriocaulon tenuifolium Klotzsch ex Körn.
Syngonanthus duidae Mold.
Leiothrix celiae Mold.
Syngonanthus fenestratus Hensold
Leiothrix lavescens (Bong.) Ruhland
Syngonanthus gracilis (Bong.) Ruhland
Paepalanthus apacarensis Mold.
Syngonanthus humboldtii (Kunth) Ruhland
Paepalanthus aristatus Mold.
Syngonanthus jenmanii (Gleason) Giul. y Hensold
Paepalanthus auyantepuiensis Mold.
Syngonanthus kegelianus (Körn.) Ruhland
Paepalanthus biidus (Schrad.) Kunth
Syngonanthus longipes Gleason
Paepalanthus cardonae Mold.
Syngonanthus macrocephalus (Mold.) Hensold
Paepalanthus chimantensis Hensold
Syngonanthus minutus (Mold.) Hensold
Paepalanthus convexus Gleason
Syngonanthus nitens (Bong.) Ruhland
Paepalanthus cristatus Mold.
Syngonanthus oblongus (Körn.) Ruhland
Paepalanthus cumbricola Mold.
Syngonanthus ottohuberi Hensold
Paepalanthus dichotomus Klotzsch ex Körn.
Syngonanthus pakaraimensis Mold.
Paepalanthus fasciculatus (Rottb.) Kunth
Syngonanthus relexus Gleason
Paepalanthus fasciculoides Hensold
Syngonanthus setifolius Hensold
Paepalanthus formosus Mold.
Syngonanthus simplex (Miq.) Ruhland
Paepalanthus fraternus N.E. Br.
Syngonanthus tenuis (H.B.K.) Ruhland
Paepalanthus fulgidus Mold.
Syngonanthus tiricensis Mold.
Paepalanthus gleasonii Mold.
Syngonanthus trichophyllus Mold.
Paepalanthus holstii Steyerm.
Syngonanthus umbellatus (Lam.) Ruhland
Paepalanthus kunhardtii Mold.
Syngonanthus williamsii (Mold.) Hensold
Paepalanthus lamarckii Kunth
Syngonanthus xeranthemoides (Bong.) Ruhland
Paepalanthus oyapockensis Herzog
Tonina luviatilis Aubl.
Paepalanthus parvicephalus (Mold.) Hensold
HAEMODORACEAE
Paepalanthus phelpsiae Mold.
Schiekia orinocensis (H.B.K.) Meisn.
Paepalanthus polytrichoides Kunth
Xiphidium caeruleum Aubl.
Paepalanthus roraimensis Mold.
HELICONIACEAE
Paepalanthus schomburgkii Klotzsch ex Körn.
Heliconia acuminata subsp. acuminata
Paepalanthus scopulorum Mold.
H. acuminata subsp. occidentalis L. Andersson
Paepalanthus sessililorus Körn.
Heliconia bihai (L.) L. Mant.
Paepalanthus squamuliferus Mold.
Heliconia chartacea Lane ex Barreiros
Paepalanthus stegolepoides Mold.
Heliconia densilora B. Verl.
Paepalanthus subcaulescens N.E. Br.
Heliconia episcopalis Vell.
Paepalanthus subtilis Miq.
Heliconia hirsuta L. F.
Paepalanthus sulcatus Hensold
Heliconia julianii Barreiros
Paepalanthus tortilis (Bong.) Körn.
Heliconia lourteigiae Emygdio y Santos
Paepalanthus turbinatus (Gleason) Hensold
Heliconia marginata (Griggs) Pittier
Paepalanthus venustus Mold.
Heliconia platystachys Baker
Paepalanthus yapacanensis (Mold.) Hensold
Heliconia psittacorum L. f
Philodice hofmannseggii Mart.
Heliconia richardiana Miq.
Rondonanthus acopanensis (Mold.) Hensold y Giul.
Heliconia spathocircinada Aristeg.
Rondonanthus capillaceus (Klotzsch ex Körn.) Hensold y Giul.
HYDROCHARITACEAE
Rondonanthus caulescens (Mold.) Hensold y Giul.
Elodea granatensis Bonpl.
Rondonanthus duidae (Gleason) Hensold y Giul.
Limnobium laevigatum (Humb. y Bonpl. ex Willd.) Heine
Rondonanthus labelliformis (Mold.) Hensold y Giul.
IRIDACEAE
Rondonanthus roraimae (Oliv.) Herzog
Cipura paludosa Aubl.
Syngonanthus albopulvinatus (Mold.) Mold.
Cipura rupicola Goldblatt y Henrich .
Syngonanthus amapensis Mold.
Cipura sp. A
Syngonanthus amazonicus Mold.
Cypella linearis (H.B.K.) Baker
Syngonanthus anomalus (Körn.) Ruhland
Sisyrinchium tinctorium H.B.K.
Syngonanthus biformis (N.E. Br.) Gleason
Sisyrinchium vaginatum Spreng.
Syngonanthus bisumbellatus (Steud.) Ruhland
Trimezia chimantensis Steyerm.
Syngonanthus caulescens (Poir.) Ruhland
Trimezia fosteriana Steyerm.
517
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Trimezia martinicensis (Jacq.) Herb.
Maranta linearis L. Andersson
JUNCACEAE
Maranta protracta Miq.
Juncus densilorus H.B.K.
Maranta rupicola L. Andersson
LEMNACEAE
Monotagma laxum (Poepp. y Endl.) K. Schum.
Lemna aequinoctialis Welw.
Monotagma plurispicatum (Körn.) K. Schum.
Spirodela intermedia W. Koch
Monotagma rhodanthum Maguire y Wurdack
Woliella welwitschii (Hegelm.) Monod
Monotagma secundum (Petersen) K. Schum.
LILIACEAE
Monotagma spicatum (Aubl.) J.F. Macbr.
Alstroemeria amazonica Ducke
Monotagma tomentosum K. Schum. ex Loes.
Bomarea edulis (Tussac) Herb.
Monotagma yapacanensis Steyerm. y Bunting
Crinum erubescens Aiton
Myrosma cannifolia L. F.
Curculigo scorzonerifolia (Lam.) Baker
Stromanthe jacquinii (Roem. y Schult.) H. Kenn. y Nicolson
Eccremis coarctata (Ruiz y Pav.) Baker
Stromanthe tonckat (Aubl.) Eichler
Echeandia bolivarensis Cruden
halia geniculata L.
Hippeastrum elegans (Spreng.) H. Moore
MAYACACEAE
Hippeastrum puniceum (Lam.) Kuntze
Mayaca luviatilis Aubl.
Hymenocallis tubilora Salisb
Mayaca longipes Mart. ex Seub.
Isidrogalvia duidae (Steyerm.) Cruden
Mayaca sellowiana Kunth
Isidrogalvia schomburgkiana (Oliv.) Cruden
MUSACEAE
Nietneria corymbosa Klotzsch y M.R. Schomb. ex B.D.
Musa paradisiaca L.
Nietneria paniculata Steyerm.
NADAJACEAE
MARANTACEAE
Najas wrightiana A. Braun
Calathea acuminata Steyerm.
ORCHIDACEAE
Calathea altissima (Poepp. y Endl.) Körn.
Acacallis cyanea Lindl.
Calathea cyclophora Baker
Acineta alticola C. SchweinF.
Calathea densa (K. Koch) Regel
Aganisia pulchella Lindl.
Calathea elliptica (Roscoe) K. Schum.
Aracamunia Liesneri Carnevali y I. Ramírez
Calathea erecta L. Andersson y H. Kenn.
Aspasia variegata Lindl.
Calathea fragilis Gleason
Aspidogyne confusa (C. SchweinF.) Garay
Calathea grandis Petersen
Aspidogyne pumila (Cong.) Garay
Calathea inocephala (Kuntze) H. Kenn. y Nicolson
Aspidogyne robusta (C. SchweinF.) Garay
Calathea lasseriana Steyerm.
Barbosella orbicularis Luer
Calathea latifolia (Willd. ex Link) Klotzsch
Baskervilla colombiana Garay
Calathea liesneri H. Kenn.
Batemannia colleyi Lindl.
Calathea lutea (Aubl.) Schult.
Bifrenaria longicornis Lindl
Calathea micans (Mathieu) Körn.
Bifrenaria venezuelana C. SchweinF.
Calathea mishuyacu J.F. Macbr.
Bletia stenophylla Schltr.
Calathea panamensis Rowlee ex Standl.
Bollea hemixantha Rchb. F.
Calathea variegata Linden ex Körn.
Brachionidium brevicaudatum Rolfe
Calathea villosa Lindl.
Brachionidium julianii Carnevali y I. Ramírez
Calathea zingiberina Körn.
Brachionidium caudatum Ames y C. SchweinF.
Ctenanthe compressa (A. Dietr.) Eichler
Brachionidium parvum Cogn.
Hylaeanthe unilateralis (Poepp. y Endl.) A.M.E. Jonker y Jonker
Brachystele guayanensis (Lindl.) Schltr.
Ischnosiphon arouma (Aubl.) Körn.
Braemia vittata (Lindl.) Jenny
Ischnosiphon cannoideus L. Andersson
Brassavola cucullata (L.) R. Br.
Ischnosiphon enigmaticus L. Andersson
Brassavola martiana Lindl.
Ischnosiphon gracilis subsp. gracilis
Brassia bidens Lindl.
Ischnosiphon leucophaeus subsp. leucophaeus
Brassia caudata (L.) Lindl.
Ischnosiphon longilorus subsp. angustifolius L. Andersson
Brassia forgetiana hort. ex C. SchweinF.
Ischnosiphon obliquus (Rudge) Körn.
Brassia lanceana Lindl.
Ischnosiphon puberulus Loes.
Brassia lawrenceana Lindl.
Maranta arundinacea L.
Brassia macrostachya Lindl.
Maranta gibba Sm.
Brassia neglecta Rchb. F.
Maranta humilis Aubl.
Bulbophyllum exaltatum Lindl.
518
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Bulbophyllum meridense Rchb. F.
Cochleanthes labelliformis (Sw.) R.E. Schutl. y Garay
Bulbophyllum meristorhachis Garay y Dunst.
Coryanthes albertinae H. Karst.
Bulbophyllum oerstedii (Rchb. F.) Hemsl.
Coryanthes cataniapoënsis G.A. Romero y Carnevali
Bulbophyllum roraimense Rolfe
Coryanthes feildingii Lindl.
Bulbophyllum setigerum Lindl.
Coryanthes gomezii G.A. Romero y G. Gerlach
Campylocentrum fasciola (Lindl.) Cogn.
Coryanthes macrantha (Hook.) Hook.
Campylocentrum hondurense Ames
Coryanthes maculata Hook.
Campylocentrum huebneri MansF.
Coryanthes rutkisii Foldats
Campylocentrum lansbergii (Rchb. F.) Schltr.
Cranichis diphylla Sw.
Campylocentrum micranthum (Lindl.) Rolfe
Cryptarrhena kegelii Rchb. F.
Campylocentrum pachyrrhizum (Rchb. F.) Rolfe
Cryptocentrum dunstervilleorum Carnevali y G.A. Romero
Campylocentrum panamense Ames
Cryptocentrum peruvianum (Cogn.) C. ScweinF.
Campylocentrum poeppigii (Rchb. F.) Rolfe
Cycnoches chlorichilon Klotzsch.
Catasetum barbatum (Lindl.) Lindl.
Cycnoches haagii Barb.
Catasetum bergoldianum Foldats
Cycnoches loddigesii Lindl.
Catasetum bicallosum Cogn.
Cycnoches lusiae G.A. Romero y Garay
Catasetum bicolor Klotzsch
Cyrtopodium andersonii (Lamb. ex Andrews) R. Br.
Catasetum callosum Lindl.
Cyrtopodium cristatum Lindl.
Catasetum collare Cogn.
Cyrtopodium fowliei L.C. Menezes
Catasetum costatum Rchb. F.
Cyrtopodium graniticum G.A. Romero y Carnevali
Catasetum cristatum Lindl.
Cyrtopodium parvilorum Lindl.
Catasetum discolor (Lindl.) Lindl.
Diadenium barkeri (Lindl.) Benth. y Hook. F.
Catasetum dunstervillei G.A. Romero y Carnevali
Dichaea ancoraelabia C. ScweinF.
Catasetum gomezii G.A. Romero
Dichaea camaridioides Schltr.
Catasetum longifolium Lindl.
Dichaea hooketi Garay y Sweet
Catasetum macrocarpum Rich. ex Kunth
Dichaea hystricina Rchb. F.
Catasetum maroaënse G.A. Romero
Dichaea kegelii Rchb. F.
Catasetum merchae G.A. Romero
Dichaea latifolia Lindl.
Catasetum parguazense G.A. Romero
Dichaea panamensis Lindl.
Catasetum pileatum Rchb. F.
Dichaea pendula (Aubl.) Cogn.
Catasetum planiceps Lindl.
Dichaea picta Rchb. F.
Catasetum rivularium Barb. Rodr.
Dichaea robusta Schltr.
Catasetum roseo-album (Hook.) Lindl.
Dichaea splitgerberi Rchb. F.
Catasetum tapiricaps Rchb. F.
Dichaea tachirensis G.A. Romero
Catasetum wendlingeri Foldats
Dichaea trinitensis Gleason
Catasetum yavitaënse G.A. Romero
Dichaea trulla Rchb. F.
Cattleya jenmanii Rolfe
Dichaea venezuelensis Carnevalli y I. Ramírez
Cattleya lawrenceana Rchb. F.
Dimerandra elegans (F. Focke) Siegerist
Cattleya violacea (H.B.K.) Rolfe
Dimerandra emarginata (G. Mey.) Hoehne
Caularthron bicornutum (Hook) RaF.
Discyphus scopulariae (Rchb. F.) Schltr.
Caularthro bilamellatum (Rchb. F.) R.E. Schult.
Dryadella lueriana Carnevalli y G.A. Romero
Chaubardia surinamensis Rchb. F.
Duckeella alticola C. SchweinF.
Chaubardiella tigrina (Garay y Dunst.) Garay
Duckeella paucilora Garay
Cheiradenia cuspidata Lindl.
Dunstervillea mirabilis Garay
Chelyorchis ampliata (Lindl.) Dressler y N.H. Williams
Elleanthus arpophyllostachys (Rchb. F.) Rchb. F.
Cleistes huberi Carnevali y I. Ramirez
Elleanthus caravata (Aubl.) Rchb. F.
Cleistes lepida (Rchb. F.) Schltr.
Elleanthus columnaris (Lindl.) Rchb. F.
Cleistes parvilora Lindl.
Elleanthus gracilis (Rchb. F.) Rchb. F.
Cleistes rosea Lindl.
Elleanthus graminifolius (Barb. Rodr.) Lojtn.
Cleistes stricta (C. ScheinF.) Garay y Dunst.
Elleanthus norae Garay y Dunst.
Cleistes tenuis (Rchb. F.) Schltr.
Elleanthus wagneri (Rchb. F.) Rchb. F.
Cleistes trilora (C. ScheinF.) Carnevali y I. Ramírez
Eloyella panamensis (Dressler) Dodson
Cleistes unifoliata (C. ScheinF.) Carnevali y I.
Eltroplectris calcarata (Sw.) Garay y Sweet
Clowesia warczewiczii (Lindl. y Paxton) Dodson
Encyclia auyantepuiensis Carnevali y I. Ramírez
519
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Encyclia chloroleuca (Hook.) Neumann
Epidendrum urbanianum Cogn.
Encyclia conchaechila (Barb. Rodr.) Porto y Brade
Epidendrum vincentinum Lindl.
Encyclia cordigera (H.B.K.) Dressler
Epidendrum violascens Ridl. ex. hurn
Encyclia ivonae Carnevali y G.A. Romero
Epistephium cruegeri Rchb. F. ex Griseb.
Encyclia pachyantha (Lindl.) Hoehne
Epistephium duckei Huber
Encyclia pilosa (C. SchweinF.) Carnevali y I. Ramírez
Epistephium elatum H.B.K.
Encyclia remotilora (C. SchweinF.) Carnevali y I. Ramírez
Epistephium ellipticum L.O. Williams y Summerh.
Epidendrum agathoscomium Rchb. F.
Epistephium hernandii Garay
Epidendrum amazonicoriifolium Hágsater
Epistephium sclerophyllum Lindl.
Epidendrum anceps Jacq.
Epistephium subrepens Hoehne
Epidendrum apuahuense MansF.
Eriopsis biloba Lindl.
Epidendrum attenuatum Lindl.
Eriopsis sprucei Rchb. F.
Epidendrum calanthum Rchb. F. y Warsz.
Erycina glossomystax (Rchb. F.) N.H. Will
Epidendrum carpophorum Barb. Rodr.
Erycina pusilla (L.) N.H. Williams y M.W. Chase
Epidendrum caurense Carnevali y G.A. Romero
Erythrodes arietina (Rchb. F. y Warm.) Ames
Epidendrum chiimentense Hágsater y Carnevali
Erythrodes paleacea (Schltr.) Ames
Epidendrum churuense Garay y Dunst.
Eulophia alta (L.) Fawc. y Rendle
Epidendrum ciliare Schnee
Eurystyles cotyledon Wawra
Epidendrum compressum Griseb.
Galeandra badia Garay y G.A. Romero
Epidendrum coronatum Ruiz y Pav.
Galeandra carnevaliana G.A. Romero y Warford
Epidendrum cristatum Ruiz y Pav.
Galeandra devoniana R.H. Schomb. ex Lindl.
Epidendrum densilorum Hook.
Galeandra duidensis Garay y G.A. Romero
Epidendrum durum Lindl.
Galeandra macroplectra G.A. Romero y Warford
Epidendrum lexuosum G. Mey.
Galeandra minax Rchb. f
Epidendrum hombersleyi Summerh.
Galeandra stangeana Rchb. F.
Epidendrum ibaguense H.B.K.
Galeottia burkei (Rchb. F.) Dressler y Christenson
Epidendrum imthurnii Ridl. ex hurn
Galeottia jorisiana (Rolfe) Schltr.
Epidendrum klotzscheanum Rchb. F.
Gomphichis costaricensis (Schltr.) Ames
Epidendrum leucochilum Klotzsch.
Gongora atropurpurea Hook.
Epidendrum longicolle Lindl.
Gongora pleiochroma Rchb. F.
Epidendrum macrocarpum Rich.
Guanchezia maguirei (C. SchweinF.) G.A. Romero y Carnevali
Epidendrum micronocturnum Carnevali y G.A. Romero
Habenaria caldensis Kraenzl.
Epidendrum microphyllum Lindl.
Habenaria culmiformis Schltr.
Epidendrum miserrimum Rchb. F.
Habenaria distans Griseb.
Epidendrum nocturnum Jacq.
Habenaria dusenii Schltr.
Epidendrum norae Carnevali y G.A. Romero
Habenaria ernestii Schltr.
Epidendrum orchidifolium Salzm.
Habenaria loribunda Lindl.
Epidendrum pachyphyton Garay
Habenaria heptadactyla Rchb. F.
Epidendrum pseudoramosum Schltr.
Habenaria huberi Carnevali y Morillo
Epidendrum purpurascens H. Focke
Habenaria lehmanniana Kraenzl.
Epidendrum ramosum Jacq.
Habenaria longicauda Hook.
Epidendrum repens Cogn.
Habenaria mesodactyla Griseb.
Epidendrum rigidum Jacq.
Habenaria monorrhiza (Sw.) Rchb. F.
Epidendrum saxatile Lindl.
Habenaria nilssonii Foldat
Epidendrum secundum Jacq.
Habenaria obtusa Lindl.
Epidendrum sertorum Garay y Dunst.
Habenaria parvilora Lindl.
Epidendrum smaragdinum Lindl.
Habenaria pratensis (Lindl.) Rchb. F.
Epidendrum splendens Schltr.
Habenaria quadrata Lindl.
Epidendrum stalyi Carnevali y G.A. Romero
Habenaria quinqueseta (Michx.) Sw.
Epidendrum stanfordianum Bateman
Habenaria repens Nutt.
Epidendrum strobiliferum Rchb. F.
Habenaria roraimensis Rolfe
Epidendrum tumuc-humaciense (Veyret) Carnevali y G.A. Romero
Habenaria schomburgkii Lindl
Epidendrum ulei Schltr.
Habenaria triida H.B.K.
Epidendrum unguiculatum (C. SchweinF.) Garay y Dunst.
Habenaria sp. B
520
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Helonoma americana (C. SchweinF. y Garay) Garay
Masdevallia wendlandiana Rchb. f
Helonoma biida (Ridl. ex hurn) Garay
Maxillaria alba (Hook.) Lindl.
Helonoma chiropterae (Szlach.) Carnevali y G.A. Romer
Maxillaria albilora Ames y C. Schweinf
Hexisea bidentata Lindl.
Maxillaria alpestris Lindl.
Hexisea imbricata (Lindl.) Rchb. F.
Maxillaria alticola C. SchweinF.
Houlletia odoratissima Linden ex Lindl.
Maxillaria aurea (Poepp. y Endl.) L.O. Williams
Houlletia roraimensis Rolfe
Maxillaria auyantepuiensis Foldats
Huntleya meleagris Lindl.
Maxillaria bolivarensis C. SchweinF.
Hylaeorchis petiolaris (Schltr.) Carnevali
Maxillaria brachybulbon Schltr.
Ionopsis satyrioides (Sw.) Rchb. F.
Maxillaria camaridii Rchb. F.
Ionopsis utricularioides (Sw.) Lindl.
Maxillaria chlorantha Lindl.
Isochilus linearis (Jacq.) R. Br.
Maxillaria conferta (Griseb.) C. SchweinF. ex León
Jacquiniella globosa (Jacq.) Schltr.
Maxillaria connellii Rolfe
Jacquiniella steyermarkii Carnevali y Dressle
Maxillaria desvauxiana Rchb. F.
Jacquiniella teretifolia (Sw.) Britton y P. Wilson
Maxillaria discolor (Lodd. ex Lindl.) Rchb. F.
Kegeliella orientalis G. Gerlach
Maxillaria eburnea Lindl.
Koellensteinia carraöensis Garay y Dunst.
Maxillaria foldatsiana Carnevali y I. Ramírez
Koellensteinia graminea (Lindl.) Rchb. F.
Maxillaria grobyoides Garay y Dunst.
Koellensteinia hyacinthoides Schltr
Maxillaria guadalupensis Cogn.
Koellensteinia lilijae Foldats
Maxillaria guareimensis Rchb. F.
Koellensteinia tricolor (Lindl.) Rchb.F.
Maxillaria imbricata Barb. Rodr.
Leochilus labiatus (Sw.) Kuntze
Maxillaria lasallei Foldats,
Lepanthes aithalos Carnevali y I. Ramírez
Maxillaria longipetiolata Ames y C. SchweinF.
Lepanthes duidensis Ames y C. SchweinF.
Maxillaria loretoensis C. Schweinf
Lepanthes exilis C. SchweinF.
Maxillaria luteoalba Lindl.
Lepanthes helicocephala Rchb. F.
Maxillaria mapiriensis (Kraenzl.) L.O. Williams
Lepanthes marahuacensis Carnevali y I. Ramírez
Maxillaria marmoliana Dodson
Lepanthes pectinata Luer
Maxillaria meridensis Lindl.
Lepanthopsis loripecten (Rchb. F.) Ames
Maxillaria nasuta Rchb. F.
Lepanthopsis obliquipetala (Ames y C. SchweinF.) Luer
Maxillaria notylioglossa Rchb. F.
Lepanthopsis pulchella Garay y Dunst.
Maxillaria ochroleuca Lodd. ex Lindl.
Lepanthopsis vinacea C. SchweinF.
Maxillaria parkeri Hook.
Leucohyle mutica (Lindl.) Schltr.
Maxillaria porrecta Lindl
Ligeophila amazonica Garay
Maxillaria proboscidea Rchb. F.
Ligeophila stigmatoptera (Rchb. F.) Garay
Maxillaria pterocarpa Barb. Rodr.
Liparis jamaicensis Lindl. ex Griseb.
Maxillaria quelchii Rolfe
Liparis nervosa (hunb.) Lindl.
Maxillaria ramosa Ruiz y Pav.
Lockhartia acuta (Lindl.) Rchb. F.
Maxillaria reichenheimiana Endres y Rchb. F.
Lockhartia imbricata (Lam.) Hoehne
Maxillaria rigida Barb. Rodr.
Lockhartia latilabris C. Schweinf
Maxillaria rufescens Lindl.
Lueddemannia pescatorei (Lindl.) Linden y Rchb. F.
Maxillaria santanae Carnevali y I. Ramírez
Lycaste fulvescens Hook.
Maxillaria scorpioidea Kraenzl.
Lycaste macrophylla (Poepp. y Endl.) Lindl.
Maxillaria setigera Lindl
Lyroglossa grisebachii (Cogn.) Schltr.
Maxillaria splendens Poepp. y Endl.
Macradenia brassavolae Rchb. F.
Maxillaria squamata Barb. Rodr.
Macradenia lutescens R. Br.
Maxillaria stenophylla Rchb. F.
Macradenia rubescens Barb. Rodr.
Maxillaria superlua Rchb. F.
Macroclinium mirabile (C. SchweinF.) Dodson
Maxillaria uncata Lindl.
Macroclinium wullschlaegelianum (H. Focke) Dodson
Maxillaria violaceopunctata Rchb. F.
Malaxis maguirei C. Schweinf
Maxillaria xylobiilora Schltr
Masdevallia manarana Carnevali y I. Ramírez,
Mesadenella angustisegmenta Garay
Masdevallia norae Luer
Mormodes vernixioidea Pabst
Masdevallia picturata Rchb. F.
Myoxanthus parvilabius (C. SchweinF.) Luer
Masdevallia sprucei Rchb. f
Myoxanthus reymondii (H. Karst.) Luer
521
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Myoxanthus simplicicaulis (C. SchweinF.) Luer
Otostylis lepida (Linden y Rchb. F.) Schltr.
Myoxanthus speciosus (Luer) Lue
Paphinia cristata (Lindl.) Lindl.
Myoxanthus trachyclamys Schltr.
Paphinia dunstervillei Dodson y G.A. Romero
Nidema ottonis (Rchb. F.) Britton y Millsp
Paphinia lindeniana Rchb. F.
Notylia angustifolia Cogn.
Pelexia callifera (C. SchweinF.) Garay
Notylia aromatica Barker y Lindl.
Peristeria aspersa Rolfe
Notylia fragrans H. Focke
Phragmipedium klotzschianum (Rchb. F.) Rolfe
Notulia laxa Rchb. F.
Phragmipedium lindleyanum (R.H. Schomb. ex Lindl.) Rolfe
Notylia microchila Cogn.
Pinelianthe alticola (Garay y Dunst.) S. Rauschert
Notylia peruviana (Schltr.) C. Schweinf
Platystele oxyglossa (Schltr.) Garay
Notylia platyglossa Schltr.
Plectrophora iridifolia H. Focke
Notylia rhombilabia C. SchweinF.
Pleurothallis aondae Carnevali y G.A. Romero
Notylia yauaperyensis Barb. Rodr.
Pleurothallis archidiaconi Ames
Octomeria anomala Garay y Dunst
Pleurothallis arenicola (Carnevali y I. Ramirez) Carnevali y I. Ramirez
Octomeria apiculata (Lindl.) Garay y Sweet
Pleurothallis aristata Hook.
Octomeria cordilabia C. SchweinF.
Pleurothallis aspasicens Rchb. F.
Octomeria dentifera C. SchweinF.
Pleurothallis barbulata Lindl.
Octomeria erosilabia C. SchweinF.
Pleurothallis callifera C. SchweinF.
Octomeria exigua C. SchweinF.
Pleurothallis coriacardia Rchb. F.
Octomeria ilifolia C. SchweinF.
Pleurothallis corniculata Lindl.
Octomeria gemmula Carnevali y I. Ramírez
Pleurothallis deborana Carnevali y I. Ramírez
Octomeria integrilabia C. SchweinF.
Pleurothallis discophylla Luer y Carnevali
Octomeria lancipetala C. SchweinF.
Pleurothallis erebatensis Carnevali y G.A. Romero
Octomeria nana C. SchweinF.
Pleurothallis erinacea Rchb. F.
Octomeria parvifolia Rolfe
Pleurothallis loribunda Poepp. y Endl.
Octomeria parvula C. SchweinF.
Pleurothallis fockei Lindl.
Octomeria rhizomatosa C. SchweinF.
Pleurothallis funerea (Barb. Rodr.) Cogn.
Octomeria romerorum Carnevali y I. Ramírez
Pleurothallis galeata Lindl.
Octomeria scirpoidea (Poepp. y Endl.) Rchb. F.
Pleurothallis garciae Luer
Octomeria spathulata Rchb. F.
Pleurothallis geographica Luer
Octomeria splendida Garay y Dunst.
Pleurothallis granitica Luer y Carnevali
Octomeria steyermarkii Garay y Dunst.
Pleurothallis grobyi Bateman ex. Lindl.
Octomeria surinamensis H. Focke
Pleurothallis hexandra Garay y Dunst.
Octomeria taracuana Schltr.
Pleurothallis hitchcockii Ames
Octomeria yauaperyensis Barb. Rodr.
Pleurothallis holstii Carnevali y I. Ramírez
Octomeria sp. A.
Pleurothallis humilis C. SchweinF.
Oeceoclades maculata (Lindl.) Lindl.
Pleurothallis imraei Lindl.
Oncidium baueri Lindl.
Pleurothallis ionantha Rchb. F.
Oncidium citrinum Lindl.
Pleurothallis kerrii Braga
Oncidium orthostates Ridl. ex hurn
Pleurothallis lanceana Lodd.
Ondidium pardalis Rchb. F.
Pleurothallis lappiformis A.H. Heller y L.O. Williams
Oncidium sphacelatum Lindl.
Pleurothallis longisepala Barb.
Oncidium warmingii Rchb. F.
Pleurothallis mentosa Cogn.
Ophidion pleurothallopsis (Kraenzl.) Luer
Pleurothallis minima C. SchweinF.
Orleanesia amazonica Barb. Rodr.
Pleurothallis miqueliana (H. Focke) Lindl.
Orleanesia maculata Garay
Pleurothallis morilloi Carnevali y I. Ramírez
Orleanesia yauaperyensis (Schltr.) Barb. Rodr.
Pleurothallis moritzii Rchb. F.
Ornithocephalus brachyceras G.A. Ro mero y Carnevali
Pleurothallis nanifolia Foldats
Ornithocephalus falcatus H. Focke
Pleurothallis parvilora Lindl.
Ornithocephalus kruegeri Rchb. F.
Pleurothallis pemonum Carnevali y I. Ramírez
Otoglossum arminii (Rchb. F.) Garay y Dunst.
Pleurothallis phoenicoptera Carnevali y I. Ramírez
Otoglossum globuliferum (H.B.K.) N.H. Williams y M.W. Chase
Pleurothallis picta Lindl.
Otoglossum scansor (Rchb.F.) Carnevali y I. Ramirez
Pleurothallis prolifera Herb. ex. Lindl.
Otostylis brachystalix (Rchb. F.) Schltr.
Pleurothallis pruinosa Lindl.
522
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Pleurothallis revoluta (Ruiz y Pavón) Garay
Schomburgkia undulata Lindl.
Pleurothallis ruscifolia (Jacq.) R. Br.
Scuticaria steelei (Hook.) Lindl.
Pleurothallis samacensis Ames
Selenipedium steyermarkii Foldats
Pleurothallis sarcosepala Carnevali y I. Ramírez
Sobralia candida (Poeep. y Endl.) Rchb. F.
Pleurothallis sclerophylla Lindl.
Sobralia imbriata Poepp. y Endl.
Pleurothallis steinbuchiae Carnevali y G.A. Romero
Sobralia granitica G.A. Romero y Carnevali
Pleurothallis tepuiensis Carnevali y I. Ramírez
Sobralia infundibuligera Garay y Dunst.
Pleurothallis trinitensis (Griseb.) Carnevali y G.A. Romero
Sobralia liliastrum Lindl.
Pleurothallis zephyrina Rchb. F.
Sobralia macrophylla Rchb. F.
Polycycnis surinamensis C. SchweinF.
Sobralia sessilis Lindl.
Polyotidium huebneri (MansF.) Garay
Sobralia stenophylla Lindl.
Polystachya amazonica Schltr.
Sobralia suaveolens Rchb. F.
Polystachya cavanayensis Garay y Dunst.
Sobralia valida Rolfe
Polystachya concreta (Jacq.) Garay y Sweet
Sobralia violaceae Linden ex Lindl.
Polystachya foliosa (Hook.) Rchb. F.
Solenidium lunatum (Lindl.) Kraenzl.
Prescottia auyantepuiensis Carnevali y G.A. Romero
Stanhopea grandilora (Lodd.) Lindl.
Prescottia carnosa C. SchweinF.
Stelis alata Linl.
Prescottia oligantha (Sw.) Lindl.
Stelis argentata Lindl.
Prescottia stachyodes (Sw.) Lindl.
Stelis aviceps Lindl.
Prescottia tepuyensis Carnevali y C.A Vargas
Stelis bangii Rolfe
Prosthechea aemula (Lindl.) W.E. Higgins
Stelis cucullata Ames
Prosthechea crassilabia (Poepp. y Endl.) Carnevali y I. Ramírez
Stelis efusa Schltr.
Prosthechea jauana (Carnevali y I. Ramírez) W.E. Higgins
Stelis fendleri Lindl.
Prosthechea tigrina (Linden y Lindl.) W.E. Higgins
Stelis fraterna Lindl.
Prosthechea vespa (Vell.) W.E. Higgins
Stellis garayi (Dunst.) Carnevali y I. Ramírez
Psilochilus dusenianus Kraenzl. ex. Garay y Dunst.
Stelis intermedia Poepp.y Endl.
Psilochilus macrophyllus (Lindl.) Ames
Stelis latisepala C. SchweinF.
Pterichis galeata Lindl.
Stelis maxima Lindl.
Quekettia microscopica Lindl.
Stelis obovata C. SchweinF.
Reichenbachanthus modestus Barb. Rodr.
Stelis ophioglossoides (Jacq.) Jacq.
Restrepiopsis tubulosa (Lindl.) Luer
Stelis pusila H.B.K.
Rodriguezia batemanii Poepp. y Endl.
Stelis santiagoensis MansF.
Rodriguezia candida Bateman ex. Lindl.
Stelis schomburgkii Fawc. y Rendle
Rodriguezia lanceolata Ruiz y Pav.
Stelis tridentata Lindl.
Rodriguezia leeana Rchb. F.
Stelis zonata Rchb. F.
Rudoliella aurantiaca (Lindl.) Hoehne
Stenia pallida Lindl.
Sacoila lanceolata (Aubl.) Garay
Stictophyllorchis pygmaea (Cogn.) Carnevali y Dodson
Sarcoglottis acaulis (Sm.) Schltr.
Trichocentrum cebolleta (Jacq.) M.W. Chase y N.H. Williams
Sarcoglottis simplex (Griseb.) Schltr.
Trichocentrum fuscum Lindl.
Scaphosepalum breve (Rchb. F.) Rolfe
Trichocentrum lanceanum (Lindl.) M.W. Chase y N.H. Williams
Scaphyglottis biida (Rchb. F.) C. Schweinf
Trichocentrum nanum (Lindl.) M.W. Chase y N.H. Williams
Scaphyglottis boliviensis (Rolfe) B.R Adams
Trichopilia aenigma Garay
Scaphyglottis fusiformis (Griseb.) R.E. Schult.
Trichosalpinx cedralensis (Ames) Luer
Scaphyglottis graminifolia (Ruiz y Pav.) Poepp. y Endl.
Trichosalpinx dura (Lindl.) Luer
Scaphyglottis grandilora Ames y C. Schweinf
Trichosalpinx intricata (Lindl.) Luer
Scaphyglottis michelangeliorum Carnevali y Steyerm
Trichosalpinx menor (Rchb. F.) Luer
Scaphyglottis modesta (Rchb. F.) Schltr.
Trichosalpinx orbicularis (Lindl.) Luer
Scaphyglottis prolifera Cogn.
Trichosalpinx oxychilos Carnevali y G.A. Romero
Scaphyglottis sessilis (Rchb. F.) Foldats,
Trichosalpinx patula Luer
Scaphyglottis sickii Pabst
Trichosalpinx roraimensis (Rolfe) Luer
Scaphyglottis stellata Lodd. ex Lindl.
Trichosalpinx steyermarkii Luer
Scelochilus paraguaensis Garay y Dunst.
Trigonidium acuminatum Batemann ex Lindl.
Schomburgkia heidii Carnevali
Trigonidium obtusum Lindl.
Schomburgkia marginata Lindl.
Triphora surinamensis (Lindl. Ex Betnh.) Britton
523
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Trizaeuxis falcata Lindl.
Arthrostylidium sp. D
Uleiorchis liesneri Carnevali y I. Ramírez
Arundinella hispida (Humb. y Bonpl. ex Willd.) Kuntze
Uleiorchis ulaei (Cogn.) Handro
Aulonemia chimantaensis Judz. y Davidse. Endémica
Vanilla gardneri Rolfe
Aulonemia delexa (N.E. Br.) McClure
Vanilla mexicana Mill.
Aulonemia jauaensis Judz. y Davidse Endémica
Vanilla odorata C. Presl
Aulonemia af. subpectinata (Kuntze) McClure
Vanilla palmarum (Salzm. Ex Lindl.) Lindl.
Aulonemia sp. A Endémica
Vanilla penicillata Garay y Dunst.
Aulonemia sp. C Endémica
Vanilla planifolia Andrews
Axonopus anceps (Mez) Hitchc.
Vanilla pompona Schiede
Axonopus arundinaceus G.A. Black. Endémica
Vargasiella venezuelana C. SchweinF.
Axonopus aureus P. Beauv.
Wullschlaegelia calcarata Benth.
Axonopus canescens (Nees ex Trin.) Pilg.
Xerorchis amazonica Schltr.
Axonopus capillaris (Lam.) Chase
Xerorchis trichorhiza (Kraenzl.) Garay
Axonopus casiquiarensis Davidse
Xylobium calleyi (Batemann ex Lindl.) Rolfe
Axonopus caulescens (Mez) Henrard
Xylobium pallidilorum (Hook.) G. Nicholson
Axonopus chimantensis Davidse Endémica
Zygosepalum angustilabium (C. SchweinF.) Garay
Axonopus compressus (Sw.) P. Beauv.
Zygosepalum labiosum (Rich.) Garay
Axonopus cuatrecasasii G.A. Black
Zygosepalum tatei (Ames y C. SchweinF.) Garay y Dunst.
Axonopus eminens (Nees) G.A. Black
POACEAE
Axonopus equitans Hitchc. y Chase
Acroceras excavatum (Henrard) Zuloaga y Morrone
Axonopus excavatus (Nees ex Trin.) Henrard
Acroceras zizanioides (Kunth) Dandy
Axonopus issifolius (Raddi) Kuhlm
Aegopogon cenchroides Humb. y Bonpl. ex Willd
Axonopus labelliformis Swallen
Andropogon angustatus (J. Presl) Steud.,
Axonopus gracilis G.A. Black
Andropogon bicornis L.
Axonopus iridifolius (Poepp.) G.A. Black
Andropogon carinatus Nees
Axonopus leptostachyus (Flüggé) Hitchc.
Andropogon fastigiatus Sw.
Axonopus longispicus (Döll) Kuhlm.
Andropogon hypogynus Hack.
Axonopus magallanesiae Giraldo-Cañas. Endémica
Andropogon insolitus Sohns.
Axonopus pennellii G.A. Black
Andropogon leucostachyus Kunth
Axonopus purpusii (Mez) Chase
Andropogon longiramosus Sohns Endémica
Axonopus ramosus Swallen
Andropogon selloanus (Hack.) Hack.
Axonopus schultesii G.A. Black
Andropogon vetus Sohns
Axonopus steyermarkii Swallen. Endémica
Andropogon virgatus Desv.
Axonopus sufultiformis G.A. Black.
Anthephora hermaphrodita (L.) Kuntze
A. sufultiformis var. sufultiformis.
Arberella af. bahiensis Soderstr. y Zuloaga
A. sufultiformis var. A
Arberella venezuelae Judz. y Davidse
Axonopus surinamensis (Hochst. ex Steud.) Henrard
Aristida adscensionis L.
Axonopus triglochinoides (Mez) Dedecca
Aristida capillacea Lam.
Axonopus villosus Swallen
Aristida gibbosa (Nees) Kunth
Axonopus yutajensis G.A. Black
Aristida longifolia Trin.
Axonopus sp. A Endémica
Aristida moritzii Henrard
Axonopus sp. B Endémica
Aristida recurvata Kunth
Bouteloua americana (L.) Scribn.
Aristida riparia Trin.
Brachiaria fasciculata (Sw.) Parodi
Aristida setifolia Kunth
Brachiaria mollis (Sw.) Parodi
Aristida ternipes Cav.
Brachiaria mutica (Forssk.) Stapf
Aristida torta (Nees) Kunth
Brachiaria plantaginea (Link) Hitchc.
Arthrostylidium pubescens Rupr.
Cenchrus brownii Roem. y Schult.
Arthrostylidium scandens McClure
Cenchrus echinatus L.
Arthrostylidium schomburgkii (Benn.) Munro Endémica
Chloris barbata Sw.
Arthrostylidium venezuelae (Steud.) McClure
Chloris elata Desv.
Arthrostylidium sp. A .
Chloris radiata (L.) Sw.
Arthrostylidium sp. B
Chusquea linearis N.E. Br.
Arthrostylidium sp. C
Chusquea sp. A
524
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Coelorachis aurita (Steud.) A. Camus
Hackelochloa granularis (L.) Kuntze
Coix lacryma-jobi L.
Heteropogon contortus (L.) P. Beauv. ex Roem. y Schult.
Cortaderia roraimensis (N.E. Br.) Pilg.
Homolepis aturensis (Kunth) Chase
Cynodon dactylon (L.) Pers.
Homolepis glutinosa (Sw.) Zuloaga y Soderstr
Dactyloctenium aegyptium (L.) Willd.
Homolepis isocalycia (G. Mey.) Chase
Dichanthelium aequivaginatum (Swallen) Zuloaga
Hymenachne amplexicaulis (Rudge) Nees
Dichanthelium davidsei (Zuloaga y Morrone) Zuloaga
Hymenachne donacifolia (Raddi) Chase
Dichanthelium hebotes (Trin.) Zuloaga
Hyparrhenia bracteata (Willd.) Stapf
Dichanthelium pycnoclados (Tutin) Davidse
Hyparrhenia rufa (Nees) Stapf
Dichanthelium telmatum (Swallen) Zuloaga. Endémica
Ichnanthus breviscrobs Döll
Digitaria ciliaris (Retz.) Koeler
Ichnanthus calvescens (Nees) Döll
Digitaria fuscescens (J. Presl) Henrard
Ichnanthus ephemeroblepharis G.A. Black y Fróes ex G.A. Black y Pires
Digitaria horizontalis Willd.
Ichnanthus lancifolius Mez I. lancifolius var. weberbaueri (Mez) Stieber
Digitaria insularis (L.) Mez ex Ekman
Ichnanthus nemoralis (Schrad. ex Schult.) Hitchc. y Chase
Digitaria nervalis Henrard
Ichnanthus pallens (Sw.) Munro ex Benth.
Digitaria nuda Schumach.
Ichnanthus panicoides P. Beauv.
Digitaria tenuis (Nees) Henrard
Ichnanthus procurrens (Nees ex Trin.) Swallen
Echinochloa colona (L.) Link Bolívar
Ichnanthus ruprechtii Döll
Echinochloa crus-pavonis (Kunth) Schult.
Ichnanthus tenuis (J. Presl) Hitchc. y Chase
Echinochloa polystachya (Kunth) Hitchc.
Imperata brasiliensis Trin.
Echinolaena gracilis Swallen
Imperata contracta (Kunth) Hitchc.
Echinolaena inlexa (Poir.) Chase
Isachne polygonoides (Lam.) Döll
Eleusine indica (L.) Gaertn.
Isachne rigens (Sw.) Trin.
Elionurus muticus (Spreng.) Kuntze
Ischaemum arenosum Sohns
Enteropogon mollis (Nees) Clayton
Ischaemum guianense Kunth ex Hack.
Eragrostis acutilora (Kunth) Nees
Ischaemum latifolium (Spreng.) Kunth,
Eragrostis amabilis (L.) Wight y Arn. ex Nees
Ischaemum rugosum Salisb
Eragrostis atrovirens (DesF.) Trin. ex Steud.
Lasiacis anomala Hitchc.
Eragrostis ciliaris (L.) R. Br. E. ciliaris var. ciliaris
Lasiacis ligulata Hitchc. y Chase
Eragrostis gangetica (Roxb.) Steud.
Lasiacis procerrima (Hack.) Hitchc.
Eragrostis guianensis A. Hitchc.
Lasiacis ruscifolia (Kunth) Hitchc.
Eragrostis hypnoides (Lam.) Britton
Lasiacis scabrior Hitchc.
Eragrostis japonica (hunb.) Trin.
Lasiacis sloanei (Griseb.) Hitchc.
Eragrostis maypurensis (Kunth) Steud.
Lasiacis sorghoidea (Desv. ex Ham.) Hitchc. y Chase
Eragrostis pectinacea (Michx.) Nees E. pectinacea var. pectinacea
Leersia hexandra Sw.
Eragrostis pilosa (L.) P. Beauv.
Leersia ligularis Trin.
Eragrostis polytricha Nees
Leptochloa iliformis (Lam.) P. Beauv.
Eragrostis unioloides (Retz.) Nees ex Steud.
Leptochloa scabra Nees
Eragrostis viscosa (Retz.) Trin.
Leptochloa virgata (L.) P. Beauv.
Eriochloa distachya Kunth
Leptocoryphium lanatum (Kunth) Nees
Eriochloa punctata (L.) Desv. ex Ham.
Luziola bahiensis (Steud.) Hitchc.
Eriochrysis cayennensis P. Beauv.
Luziola doelliana Prodoehl
Eriochrysis af. holcoides (Nees) Kuhlm.
Luziola subintegra Swallen
Gouinia latifolia (Griseb.) Vasey
Melinis minutilora P. Beauv.
Guadua angustifolia Kunth,
Merostachys maguireorum Endémica
Guadua ciliata Londoño y Davidse
Merostachys retrorsa McClure
Guadua fascicularis Döll. Endémica
Mesosetum cayennense Steud.
Guadua af. glomerata Munro
Mesosetum chaseae Luces
Guadua latifolia (Bonpl.) Kunth
Mesosetum ilifolium Hubb.
Guadua venezuelae Munro
Mesosetum loliiforme (Hochst. ex Steud.) Chase
Gymnopogon fastigiatus Nees.
Mesosetum rottboellioides (Kunth) Hitchc.
Gymnopogon foliosus (Willd.) Nees
Myriocladus cardonae Swallen Endémica
Gymnopogon spicatus (Spreng.) Kuntze
Myriocladus distantilorus Swallen Endémica
Gynerium sagittatum (Aubl.) P. Beauv.
Myriocladus exsertus Swallen Endémica
525
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Myriocladus grandifolius Swallen Endémica
Panicum micranthum Kunth
Myriocladus involutus Judz. y Davidse Endémica
Panicum millegrana Poir
Myriocladus longiramosus Swallen Endémica
Panicum olyroides Kunth
Myriocladus neblinaensis Swallen
Panicum orinocanum Luces
Myriocladus simplex Swallen Endémica
Panicum pandum Swallen
Myriocladus steyermarkii Swallen Endémica
Panicum pantrichum Hack.
Myriocladus virgatus Swallen
Panicum parvifolium Lam.
Myriocladus sp. A Endémica
Panicum petrense Swallen
Neurolepis angusta Swallen
Panicum pilosum Sw.
Neurolepis glomerata Swallen
Panicum polycomum Trin.
Neurolepis pittieri McClure
Panicum pulchellum Raddi
Olyra caudata Trin.
Panicum pyrularium Hitchc. y Chase
Olyra ciliatifolia Raddi
Panicum rivale Swallen
Olyra ecaudata Döll
Panicum rudgei Roem. y Schult.
Olyra latifolia L.
Panicum scabridum Döll
Olyra longifolia Kunth
Panicum sellowii Nees
Olyra micrantha Kunth
Panicum sipapoense Swallen Endémica
Olyra standleyi Hitchc.
Panicum stenodes Griseb.
Olyra wurdackii Swallen
Panicum steyermarkii Swallen Endémica
Oplismenus burmannii (Retz.) P. Beauv.
Panicum stoloniferum Poir
Oplismenus hirtellus (L.) P. Beauv.
Panicum tepuianum Davidse y Zuloaga Endémica
Orthoclada laxa (Rich.) P. Beauv.
Panicum trichoides Sw.
Oryza latifolia Desv.
Panicum tricholaenoides Steud.
Oryza ruipogon Grif.
Panicum yavitaense Swallen.
Oryza sativa L.
Pappophorum mucronulatum Nees
Otachyrium grandilorum Send. y Soderstr.
Paratheria prostrata Griseb.
Otachyrium versicolor (Döll) Henrard
Pariana radicilora Sagot ex Döll
Panicum altum Hitchc. y Chase
Parodiolyra lateralis (Nees) Soderstr. y Zuloaga
Panicum arctum Swallen Bolívar
Parodiolyra luetzelburgii (Pilg.) Soderstr. y Zuloaga
Panicum caricoides Nees
Paspalidium geminatum (Forssk.) Stapf
Panicum cayennense Lam.
Paspalum altsonii Chase
Panicum cervicatum Chase
Paspalum ammodes Trin.
Panicum chnoodes Trin.
Paspalum apiculatum Döll
Panicum cordovense E. Fourn
Paspalum aspidiotes Trin.
Panicum cyanescens Nees ex Trin.
Paspalum atabapense Davidse y Zuloaga Endémica
Panicum deciduum Swallen Endémica
Paspalum carinatum Humb. y Bonpl. ex Flüggé
Panicum dichotomilorum Michx.
Paspalum chafanjonii Maury
Panicum discrepans Döll
Paspalum clavuliferum C. Wright
Panicum elephantipes Nees ex Trin.
Paspalum conjugatum P.J. Bergius
Panicum eligulatum N.E. Br.
Paspalum conspersum Schrad
Panicum fontanale Swallen Endémica
Paspalum convexum Humb. y Bonpl. ex Flüggé
Panicum fonticolum Swallen Endémica
Paspalum corcovadense Raddi
Panicum grande Hitchc. y Chase
Paspalum coryphaeum Trin.
Panicum granuliferum Kunth
Paspalum decumbens Sw.
Panicum haenkeanum J. Presl
Paspalum delicatum Swallen
Panicum hirsutum Sw.
Paspalum densum Poir
Panicum hirtum Lam.
Paspalum fasciculatum Willd. ex Flüggé
Panicum hispidifolium Swallen
Paspalum gardnerianum Nees
Panicum hylaeicum Mez
Paspalum hyalinum Nees ex Trin.
Panicum ichunense Swallen Endémica
Paspalum intermedium Munro ex Morong y Britton
Panicum jauanum Davidse Endémica
Paspalum lancilorum Trin.
Panicum ligulare Nees ex Trin.
Paspalum maculosum Trin.
Panicum maximum Jacq.
Paspalum melanospermum Desv
Panicum mertensii Roth
Paspalum millegrana Schrad.
526
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Paspalum morichalense Davidse
Setaria tenax (Rich.) Desv.
Paspalum multicaule Poir
Setaria vulpiseta (Lam.) Roem. y Schult.
Paspalum nudatum Luces
Sorghastrum setosum (Griseb.) Hitchc.
Paspalum nutans Lam.
Sorghum bicolor (L.) Moench
Paspalum orbiculatum Poir.
Spartina alternilora Loisel.
Paspalum paniculatum L.
Sporobolus cubensis Hitchc.
Paspalum parvilorum Rhode ex Flüggé
Sporobolus jacquemontii Kunth
Paspalum pectinatum Nees ex Trin.
Steinchisma decipiens (Nees ex Trin.) W.V. Br.
Paspalum petilum Chase
Steinchisma laxa (Sw.) Zuloaga,
Paspalum pictum Ekman
Steinchisma stenophylla (Hack.) Zuloaga y Morrone
Paspalum pilosum Lam.
Steirachne barbata (Trin.) Renvoize
Paspalum plicatulum Michx.
Steyermarkochloa angustifolia (Spreng.) Judz.
Paspalum pulchellum Kunth
Streptogyna americana C.E. Hubb.
Paspalum repens P.J. Bergius
Streptostachys asperifolia Desv.
Paspalum stellatum Humb. y Bonpl. ex Flüggé
hrasya axillaris (Swallen) A.G. Burm.
Paspalum subciliatum Chase
hrasya paspaloides Kunth . Endémica
Paspalum vaginatum Sw. Delta Amacuro
hrasya petrosa (Trin.) Chase
Paspalum virgatum L.
hrasya stricta A.G. Burm. Endémica
Pennisetum polystachion (L.) Schult.
hrasya trinitensis Mez
Pennisetum purpureum Schumach.
Trachypogon spicatus (L. F.) Kuntze
Pharus lappulaceus Aubl.
Tridens laccidus (Döll) Parodi
Pharus latifolius L.
Tripogon spicatus (Nees) Ekman
Pharus mezii Prodoehl
Tripsacum australe Cutler y E.S. Anderson
Pharus parvifolius Nash
Zeugites sp. A
P. parvifolius subsp. parvifolius
PONTEDERIACEAE
Pharus virescens Döll
Eichhornia azurea (Sw.) Kunth
Phragmites australis (Cav.) Trin. ex Steud.
Eichhornia crassipes (Mart.) Solms
Piresia sympodica (Döll) Swallen
Eichhornia diversifolia (Vahl) Urb.
Raddiella esenbeckii (Steud.) C.E. Calderón y Soderstr.
Eichhornia heterosperma Alexander
Raddiella af. kaieteurana Soderstr.
Heteranthera multilora (Griseb.) C.N. Horn
Raddiella af. potaroensis Soderstr.
Pontederia rotundifolia L.
Reimarochloa acuta (Flügge) Hitchc.
Pontederia trilora (Endl. ex Seub.) G. Agostini, D. Velásquez y Velásquez
Rhipidocladum af. racemilorum (Steud.) McClure
RAPATEACEAE
Rhipidocladum sibilans Davidse
Amphiphyllum rigidum Gleason Endémica
Rhipidocladum sp. A
Cephalostemon ainis Körn.
Rhipidocladum sp. B
Cephalostemon microglochin Sandwith
Rhynchelytrum repens (Willd.) C.E. Hubb.
Duckea cyperaceoidea (Ducke) Maguire
Rhytachne guianensis (Hitchc.) Clayton
Duckea lava (Link) Maguire
Rhytachne rottboellioides Desv. ex Ham.
Duckea junciformis Maguire
Rhytachne subgibbosa (Winkl. ex Hack.) Clayton
Duckea squarrosa (Willd.) Maguire
Saccharum trinii (Hack.) Renvoize
Epidryos sp. A Endémica
Sacciolepis angustissima (Hochst. ex Steud.) Kuhlm.
Guacamaya superba Maguire
Sacciolepis myuros (Lam.) Chase
Kunhardtia radiata Maguire y Steyerm. Endémica
Sacciolepis otachyrioides Judz.
Kunhardtia rhodantha Maguire
Sacciolepis striata (L.) Nash
Marahuacaea schomburgkii (Maguire) Maguire
Sacciolepis vilvoides (Trin.) Chase
Monotrema aemulans Körn.
Schizachyrium brevifolium (Sw.) Nees ex Büse
Monotrema aine Maguire
Schizachyrium condensatum (Kunth) Nees
Monotrema bracteatum Maguire
Schizachyrium sanguineum (Retz.) Alston
Monotrema xyridoides Gleason
Schizachyrium tenerum Nees
Phelpsiella ptericaulis Maguire Endémica
Setaria macrostachya Kunth
Rapatea aracamuniana Steyerm. Endémica
Setaria parvilora (Poir.) Kerguélen
Rapatea chimantensis Steyerm.
Setaria poiretiana (Schult.) Kunth
Rapatea circasiana García-Barr. y L.E. Mora
Setaria tenacissima Schrad. ex Schult
Rapatea fanshawei Maguire
527
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Rapatea longipes Spruce ex Körn
Smilax triplinervia Humb. y Bonpl.
Rapatea paludosa Aubl.
STRELITZIACEAE
Rapatea scabra Maguire Endémica
Phenakospermum guyannense (Rich.) Endl.
Rapatea spruceana Körn.
TACCACEAE
Rapatea steyermarkii Maguire
Tacca parkeri Seem.
Rapatea yapacana Maguire
THURNIACEAE
Saxofridericia compressa Maguire
hurnia polycephala Schnee
Saxofridericia duidae Maguire Endêmica
hurnia sphaerocephala (Rudge) Hook.
Saxofridericia grandis Maguire Endémica
TRIURIDACEAE
Saxofridericia petiolata Maguire
Sciaphila albescens Benth.
Saxofridericia regalis R.H. Schomb.
Sciaphila purpurea Benth.
Saxofridericia spongiosa Maguire
Sciaphila rubra Maas
Saxofridericia sp. A Endémica
Soridium spruceanum Miers.
Schoenocephalium cucullatum Maguire
Triuris hyalina Miers.
Schoenocephalium teretifolium Maguire
TYPHACEAE
Spathanthus bicolor Ducke
Typha domingensis Pers.
Spathanthus unilateralis (Rudge) Desv.
XYRIDACEAE
Stegolepis albilora Steyerm. Endémica
Abolboda acaulis Maguire.
Stegolepis angustata Gleason
Abolboda acicularis Idrobo y L.B. Sm.
Stegolepis breweri Maguire Endémica
Abolboda americana (Aubl.) Lanj
Stegolepis cardonae Maguire
Abolboda bella Maguire
Stegolepis celiae Maguire
Abolboda dunstervillei Maguire ex Kral
Stegolepis choripetala Maguire Endémica
Abolboda ebracteata Maguire y Wurdack.
Stegolepis gleasoniana Steyerm. Endémica
Abolboda grandis Griseb.
Stegolepis grandis Maguire Endémica
Abolboda killipii Lasser
Stegolepis guianensis Klotzsch ex Körn.
Abolboda linearifolia Maguire
Stegolepis hitchcockii Maguire
Abolboda macrostachya Spruce ex Malme.
Stegolepis huberi Steyerm.
Abolboda paniculata Maguire
Stegolepis humilis Steyerm. Endémica
Abolboda pulchella Bonpl.
Stegolepis jauaensis Maguire
Abolboda scabrida Kral
Stegolepis ligulata Maguire Endémica
Abolboda sprucei Malme
Stegolepis linearis Gleason
Abolboda unilora Maguire
Stegolepis maguireana Steyerm. Endémica
Aratitiyopea lopezii (L.B. Sm.) Steyerm. y P.E. Berry
Stegolepis membranacea Maguire Endémica
Orectanthe ptaritepuiana (Steyerm.) Maguire
Stegolepis microcephala Maguire
Orectanthe sceptrum (Oliv.) Maguire
Stegolepis parvipetala Steyerm.
Xyris albescens Steyerm.
Stegolepis paucilora Gleason
Xyris aquatica Idrobo y L.B.
Stegolepis perligulata Maguire
Xyris aracamunae Kral
Stegolepis ptaritepuiensis Steyerm.
Xyris arachnoidea Maguire y L.B.
Stegolepis pulchella Maguire
Xyris atriceps Malme.
Stegolepis pungens Gleason Endémica
Xyris bicephala Gleason
Stegolepis squarrosa Maguire
Xyris bicostata Maguire y L.B. Sm.
Stegolepis terramarensis Steyerm Endémica
Xyris byssacea Kral
Stegolepis vivipara Maguire
Xyris carinata Maguire y L.B. Sm.
Stegolepis wurdackii Maguire
Xyris chimantae Kral y L.B. Sm.,
SMILACACEAE
Xyris concinna N.E. Br.
Smilax cumanensis Humb. y Bonpl.
Xyris consolida Kral y L.B. Sm.
Smilax lappacea Humb. y Bonpl.
Xyris cryptantha Maguire y L.B. Sm.
Smilax maypurensis Humb. y Bonpl.
Xyris culmenicola Steyerm.
Smilax pittieriana Steyerm.
Xyris cyperoides Gleason.
Smilax poeppigii Kunth
Xyris decussata Gleason.
Smilax schomburgkiana Kunth
Xyris delicatula Maguire y L.B. Sm.
Smilax siphilitica Humb. y Bonpl.
Xyris esmeraldae Steyerm
Smilax staminea Griseb.
Xyris fallax Malme
528
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Xyris frequens Maguire y L.B. Sm.
Xyris surinamensis Spreng.
Xyris frondosa Maguire y L.B. Sm.
Xyris tatei Malme.
Xyris fuliginea Kral y L.B. Sm.
Xyris teinosperma Idrobo y L.B. Sm.
Xyris globosa Nilsson
Xyris tenella Kunth
Xyris gongylospica Kral
Xyris thysanolepis Maguire y L.B.
Xyris graniticola Kral
Xyris toronoana Kra
Xyris guianensis Steud.
Xyris uleana Malme
Xyris huberi Kral y L.B. Sm.
Xyris witsenioides Oliv. ex hurn
Xyris hymenachne Mart.
Xyris wurdackii Maguire y L.B. Sm.
Xyris involucrata Nees
Xyris xiphophylla Maguire y L.B. Sm.
Xyris juncifolia Maguire y L.B. Sm.
ZINGIBERACEAE
Xyris jupicai Rich.
Renealmia alpinia (Rottb.) Maas
Xyris kukenaniana Kral
Renealmia aromatica (Aubl.) Griseb.
Xyris lacerata Pohl ex Seub.
Renealmia loribunda K. Schum.
Xyris lanulobractea Steyerm.
Renealmia guianensis Maas
Xyris laxifolia Mart.
Renealmia monosperma Miq.
Xyris liesneri Kral
Renealmia orinocensis Rusby
Xyris lithophila Kral y L.B. Sm.
Renealmia thyrsoidea (Ruiz y Pav.) Poepp.
Xyris lomatophylla Mart.
III. GYMNOSPERMAE
Xyris lugubris Malme
GNETACEAE
Xyris malmeana L.B. Sm.
Gnetum camporum (Markgr.) D.W. Stev. y T. Zanoni
Xyris melanovaginata Kral y L.B. Sm
Gnetum leyboldii Tul.
Xyris mima L.B. Sm. y Downs
Gnetum melinonii Benoist
Xyris oblata Kral y L.B. Sm.
Gnetum nodilorum Brongn
Xyris oxylepis Idrobo y L.B. Sm.
Gnetum paniculatum Spruce ex Benth.
Xyris paraensis Poepp. ex Kunth
Gnetum schwackeanum Taub ex Markgr
Xyris pratensis Maguire y L.B. Sm.
Gnetum thoa Brongn.
Xyris proliicans Kral
Gnetum urens (Aubl.)
Xyris ptariana Steyerm.
PODOCARPACEAE
Xyris riparia Maguire y L.B. Sm.
Podocarpus acuminatus Laubenf
Xyris roraimae Malme
Podocarpus aracensis Laubenf y Silba
Xyris savanensis Miq.
Podocarpus brasiliensis Laubenf
Xyris schneeana L.B. Sm. y Steyerm.
Podocarpus buchholzii Laubenf
Xyris setigera Oliv. ex hrun
Podocarpus celatus Laubenf
Xyris seubertii Nilsson
Podocarpus magnifolius J. Buchholz y N.E. Gray
Xyris spathacea Lanj.
Podocarpus roraimae Pilger
Xyris stenophylloides Malme.
Podocarpus steyermarkii J. Buchholz y N.E. Gray
Xyris stenostachya Steyerm.
Podocarpus tepuiensis J. Buchholz y N.E. Gray
Xyris subglabrata Malme.
ZAMIACEAE
Xyris subunilora Malme
Zamia amazonum D.W. Stev.
Xyris sulcatifolia Kral
Zamia lecointei Ducke
529
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Anexo 2.
Lista de plantas acuáticas de los llanos inundables del Estado Apure. Orinoco. Venezuela. Basado en Rial (2009).
CHAROPHYTA - Algas
Cyperus surinamensis Rottb.
CHARACEAE
Cyperus virens Michaux
Nitella sp.
Eleocharis acutangula (Roxb.) Schultes
BRIOPHYTA (Hepaticae)
Eleocharis capillacea Kunth
RICCIACEAE
Eleocharis elegans (Kunth) Roem. y Schult.
Ricciocarpus natans (L.)
Eleocharis interstincta (Vahl. ) Roem. y Schult.
PTERIDOPHYTA - Helechos
Eleocharis microcarpa Torr.
AZOLLACEAE
Eleocharis mitrata (Griseb) C.B. Clarke
Azolla iliculoides Lam.
Eleocharis mutata (L.) Roem. y Schult.
MARSILEACEAE
Fimbristylis aestivalis (Retz.) Vahl
Marsilea delexa A. Braun
Fimbristylis miliacea (L.) Vahl
Marsilea polycarpa Hook. y Grev.
Fimbristylis vahlii (Lam.) Link
PARKERIACEAE
Oxycaryum cubense (Poepp. y Kunth) Palla
Ceratopteris pteridoides (Hooker) Hieron
Rhyncospora nervosa (Vahl) Boeck.
Ceratopteris richardii Brongn.
Scleria interrupta Rich.
PTERIDACEAE
Websteria confervoides (Poir.) S.S. Hoper
Pityrogramma calomelanos (L.) Link
HELICONIACEAE
SALVINIACEAE
Heliconia psittacorum L.
Salvinia auriculata Aublet
HYDROCHARITACEAE
Salvinia sprucei Kuhn
Limnobium laevigatum (Humb. y Bonpl. ex Willd.) Heine
LILIOPSIDA - Monocotiledóneas
LEMNACEAE
ALISMATACEAE
Landoltia punctata (G. Mey.) Les y D.J. Crawford
Echinodorus grandilorus (Cham. y Schltdl.) Micheli
Lemna spp.
Echinodorus paniculatus Micheli
LIMNOCHARITACEAE
Echinodorus tenellus (Mart.) Buchenau
Hydrocleys parvilora Seub.
Echinodorus trialatus Fasset
Limnocharis lava (L.) Buchenau
Sagittaria guayanensis Kunth
Limnocharis laforestii Duchass. ex. Griseb.
Sagittaria planitiana G. Agostini
MARANTACEAE
Montrichardia arborescens (L.)
halia geniculata L.
Pistia stratiotes L.
NAJADACEAE
Xanthosoma striatipes (Kunth y Bouché) Madison
Najas arguta Kunth
COMMELINACEAE
Najas guadalupensis (Spreng.) Magnus
Commelina difusa Burm
ORCHIDACEAE
Commelina erecta L.
Habenaria repens Nutts
Murdannia nudilora (L.) Brenan
POACEAE
CYPERACEAE
Acroceras zizanioides (Kunth) Dandy
Ascolepis brasiliensis (Kunth) Benth ex C.B. Clarke
Andropogon bicornis L.
Cyperus articulatus L.
Cynodon dactylon (L.)
Cyperus celluloso-reticulatus Boeck.,
Digitaria ciliaris (Retz.) Koeler
Cyperus lavicomus Michx.
Echinochloa colona (L.) Link
Cyperus imbricatus Retz.
Echinochloa crus-pavonis (Kunth) Schult.
Cyperus iria L.
Echinochloa polystachya (Kunth) Hitchc.
Cyperus laxus Lam.
Eragrostis hypnoides (Lam.) Britton
Cyperus luzulae (L.) Rottb. ex Retz.
Eragrostis japonica (hunb.) Trin.
Cyperus mutisii (Kunth) Andersson.
Hymenachne amplexicaulis (Rudge) Nees
Cyperus ochraceus Vahl
Leersia hexandra Sw.
Cyperus odoratus L.
Luziola brasiliana Moric.
530
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Luziola subintegra Swallen
BEGONIACEAE
Oplismenus burmanni (Retz.) P. Beauv.
Begonia patula Haw.
Oryza ruipogon Grif.
BIGNONIACEAE
Otachyrium versicolor (Döll) Henrard
Clytostoma binatum (hunb.) Sandwith
Panicum dichotomilorum Michx.
BORAGINACEAE
Panicum elephantipes Nees ex Trin.
Heliotropium procumbens Mill.
Panicum hylaeicum Mez
CABOMBACEAE
Panicum laxum Sw.
Cabomba furcata Schult. y Schult.
Panicum tricholaenoides Steud.
CAESALPINACEAE
Paratheria prostrata Griseb.
Senna aculeata (Benth.) H.S. Irwin y Barneby
Paspalum fasciculatum Willd. ex Flüggé
CAMPANULACEAE
Paspalum orbiculatum Poir.
Lobelia L.
Paspalum repens P.J. Bergius.
CAPPARACEAE
Reimarochloa acuta (Flügge) Hitchc.
Cleome spinosa Jacq
Sacciolepis myuros (Lam.) Chase
CONVOLVULACEAE
Setaria parvilora (Poir.) Kerguélen
Evolvulus nummularius (L.) L.
Urochloa brizantha (Hochst. ex A. Rich.) R.D. Webster
Ipomoea asarifolia (Desr.) Roem. y Schult.
Urochloa fasciculata (Sw.) R.D. Webster
carnea subsp. istulosa (Mart. ex Choisy) D. F. Austin
Urochloa mutica (Forssk.) T.Q. Nguyen
Ipomoea pittieri O’Donell
Urochloa plantaginea (Link) R.D. Webster
Ipomoea triida (Kunth.) G. Don
PONTEDERIACEAE
CUCURBITACEAE
Eichhornia azurea (Swartz) Kunth
Cayaponia metensis Cuatrec.
Eichhornia crassipes (Mart.) Solms.
Melothria trilobata Congn.
Eichhornia diversifolia (Vahl) Urb
EUPHORBIACEAE
Eichhornia heterosperma Alexander
Caperonia palustris (L.) A. St. Hill.
Heteranthera limosa (Sw.) Willd.
Croton trinitatis Millsp.
Heternathera reniformis Ruiz y Pav.
Chamaesyce thymifolia (L.) Millsp
Pontederia subovata (Seub.) Lowden
Phyllanthus luitans Benth. ex Müll.
XYRIDACEAE
FABACEAE (PAPILIONACEAE )
Xyris laxifolia Mart.
Aeschynomene evenia C. Wright
MAGNOLIOPSIDAE - Dicotiledóneas
Aeschynomene rudis Benth.
ACANTHACEAE
Calopogonium mucunoides Desv.
Blechum pyramidatum (Lam.) Urb.
Macroptilium lathyroides (L.) Urb.
Justicia carthaginensis Jacq.
Sesbania exasperata Kunth
Justicia laevilinguis (Nees) Lindau
GENTIANACEAE
AIZOACEAE
Schultesia guianensis (Aubl.) Malme
Trianthema portulacastrum L.
HYDROPHYLLACEAE
AMARANTHACEAE
Hydrolea elatior Schott
Alternanthera sessilis (L.) R. Br.
Hydrolea spinosa L.
ASTERACEAE
LAMIACEAE (Labiatae)
Ambrosia peruviana Willd.
Hyptis brevipes Poit
Eclipta prostrata (L.) L.
Hyptis microphylla Pohl ex. Benth
Egletes lorida Shinners
Hyptis pulegioides Pohl. ex Benth
Erechtites hieraciifolius (L.) Raf. ex D.C.
Marsypianthes chamaedrys (Vahl) Kuntze
Eupatorium sp.
LENTIBULARIACEAE
Mikania congesta DC.
Utricularia foliosa L.
Pacourina edulis Aublet.
Utricularia hydrocarpa Vahl
Spilanthes ocymifolia (Lam. ) A.H. Moore
Utricularia breviscapa Wright ex Griseb
Trichospira verticillata (L.) S.F. Blake
LYTHRACEAE
Lista de plantas acuáticas
Ammania latifolia L.
Sphagneticola trilobata (L.) Pruski
Cuphea carthagenensis (Jacq.) J.F. Macbr.
531
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Cuphea melvilla Lindl.
Ludwigia sedoides (Bonpl.) H. Hara
Rotala mexicana Cham. y Schltdl.
Ludwigia af. quadrangularis (Micheli) Hara
MALPIGHIACEAE
POLYGONACEAE
No identiicada
Coccoloba obtusifolia Jacq.
MALVACEAE
Polygonum punctatum Elliott
Peltaea trinervis (C. Presl.) Krapov. y Cristóbal
PORTULACACEAE
Malachra radiata (L.) L.
Portulaca oleracea L.
Sida serrata Willd. ex Spreng.
Talinum sp.
MELASTOMATACEAE
RUBIACEAE
Acisanthera quadrata Pers.
Diodia kuntzei K. Schum
MENYANTHACEAE
Mitracarpus difusus (Willd ex Roem. y Schult.) Cham. y Schlecht.
Nymphoides indica (L.) Kuntze
Spermacoce scabiosoides (Cham. y Schlechtend.) Kuntze
MIMOSACEAE
Spermacoce verticillata L.
Mimosa arenosa (Willd.) Poir.
Oldenlandia lancifolia (Schumach.) DC.
Mimosa dormiens Humb. y Bompl. ex. Willd.
SAPINDACEAE
Lista de plantas acuáticas
Cardiospermun halicacabum L.
Mimosa pigra L.
Urvillea ulmaceae Kunth
Neptunia oleracea Lour
SCROPHULARIACEAE
MOLLUGINACEAE
Bacopa af. laxilora (Benth.) Wettst. ex. Edwall,
Glinus radiatus (Ruiz y Pav.) Rohrb.
Bacopa salzmannii (Benth.) Wettst. ex Edwall
Mollugo cf. verticillata L.
Lindernia crustacea (L.) F. Muell
NYMPHAEACEAE
Scoparia dulcis L.
Nymphaea novogranatensis Wiersema.
SOLANACEAE
ONAGRACEAE
Solanum hirtum Vahl,
Ludwigia decurrens Walter,
Solanum sp.
Ludwigia erecta (L.) Hara.
STERCULIACEAE
Ludwigia helminthorrhiza (C. Mart.) H. Hara
Melochia manducata C. Wright
Ludwigia hyssopifolia (G. Don.) Exell
Melochia parvifolia Kunth
Ludwigia inclinata (L. f) M. Gómez
VERBENACEAE
Ludwigia octovalvis (Jacq.) Raven
Phyla betulifolia (Kunth) Greene
Ludwigia peploides (Kunth.) Raven
Stachytarpheta cayennensis (Rich.) Vahl
532
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Anexo 3.
Listado lorístico de los corredores ribereños del cauce principal del Orinoco y las tierras bajas de sus mayores aluentes en la
Guayana Venezolana.
Judith Rosales
Este listado forma parte del trabajo de ascenso (aún no presentado ni publicado) del autor sobre los aspectos ecohidrológicos de los corredores ribereños de la Orinoquia y ha sido cedido para sumar al listado de plantas de la Orinoquia.
FAMILIA
ACANTHACEAE
ESPECIE Y AUTOR
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
Total
1
Barleria lupulina Lindl
1
Blechnum pyramidatum (Lam.) Urb.
1
Anaxagorea acuminata (Dunal) A.DC.
1
Justicia kunhardtii Leonard.
1
Anaxagorea brevipes Benth.
1
Anaxagorea
Sandw.
Justicia secunda Vahl.
1
Mendoncia cardonae Leonard
1
Mendoncia phalacra Leonard
1
Odontonema bracteolatum (Jacq.) Kuntze
1
Pachystachys spicata (Ruiz y Pav.) Wassh.
1
ANACARDIACEAE
1
Ruellia menthoides (Nees) Hiern in Warm
1
1
14
Glinus radiatus (RyP) Rohrb.
Total AIZOACEAE
1
1
Alternanthera brasiliana (L.) Kuntze.
1
Alternanthera canescens H.B.K.
1
Alternanthera halimifolia (Lam) Standl
1
Alternanthera polygonoides (L.)R.Br.
1
Alternanthera pulchella H. B. K.
1
Amaranthus australis (A. Gray) Sauer
1
Amaranthus dubius Mart.
1
Amaranthus spinosus L.
Amaranthus viridis L.
Total AMARANTHACEAE
Anacardium giganteum Hancock ex Engler
Anacardium occidentale L.
1
1
9
1
1
Anacardium spruceanum Benth.
1
Astronium lecointei Ducke
1
Campnosperma gummiferum (Benth.) Marchand
Spondias mombin L.
1
Tapirira guianensis Aubl.
1
Total ANACARDIACEAE
1
Ruellia malaca Leonard
Staurogyne spraguei Wacsh.
ANACARDIACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Asystasia gangyica (L.)T.Anderson.
Total ACANTHACEAE
AMARANTHACEAE
FAMILIA
1
Ruellia geminilora H.B.K.
AIZOACEAE
GRUPO
Total
Aphelandra scabra (Vahl) Sm.
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
1
ANNONACEAE
15
dolichocarpus
Sprague
y
1
Anaxagorea gigantophylla R.E. Fr.
1
Anaxagorea rufa Timmerman
1
Annona atabapensis H.B.K.
1
Annona jahnii Saf
1
Annona squamosa L.
1
Bocageopsis multilora (Mart.) R.E.Fries
1
Cymbopyalum brasiliense ( Vell. ) Benth.
1
Duguyia caulilora R.E.Fries
1
Duguyia lepidota (Miq.) Pulle
1
Duguyia lucida Urb.
1
Duguyia pycnastera Sandw.
1
Duguyia riberensis Arist. ex Maas
1
Fusaea longifolia (Aubl.) Saf.
1
Guatteria blepharophylla Mart.
1
Guatteria cardoniana R.E Fr.
1
Guatteria inundata Mart.
1
Guatteria maypurensis H.B.K.
1
Guatteria recurvisepala R.E.Fries
1
Guatteria riparia R.E. Fr.
1
Guatteria rubrinervis R.F.R. Maas
1
Guatteria schomburgkiana Martius
1
Guatteria stenopyala R.E.Fr.
1
Oxandra espintada (Spruce ex Benth.) Baill.
1
Oxandra xylopioides Diels
1
Pseudoxandra coriacea R. E. Fr.
1
Pseudoxandra polyphleba (Diels) R.E. Fr.
1
Celosia argentea L.
1
Rollinia exsucca (DC. ex Dunal) A.DC.
1
Chamissoa altissima (Jacq) H.B.K.
1
Unonopsis guatterioides (A.DC.) R.E.Fr.
1
Chromolaena polygonoides (R.Br) Moq.
1
Unonopsis stipitata Diels
1
Cyathula achyranthoides (H.B.K..) Jacq.
1
Xylopia amazonica R. E. Fr.
1
Cyathula prostrata (L.) Blume.
1
Xylopia aromatica Lam.
1
Gomphrena globosa L.
1
Xylopia benthamii R.E. Fr.
1
Iresine difusa H.B.K.ex Willd.
1
Xylopia calophylla R.E.Fries
1
Pfaia iresinoides (H.B.K.) Spreng.
1
Xylopia discrya (L.f.) Sprague y Hutchinson
1
533
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
FAMILIA
ANNONACEAE
ESPECIE Y AUTOR
FAMILIA
ESPECIE Y AUTOR
Total
Rauvolia ligustrina Willd.
Xylopia nitida Dunal
1
Rauvolia polyphyla Benth.
1
Xylopia pittieri Diels
1
Rhabdadenia macrostoma (Benth) Müll.
1
Xylopia sericea A. St.-Hil.
1
Rhabdadenia pohlii Müll. Arg.
1
Xylopia spruceana Benth. ex Spruce
1
Rhigospira
Miers
42
Allamanda cathartica L.
1
Ambelania acida Aubl.
1
Aspidosperma excelsum Benth.
1
Aspidosperma leucocymosum Kuhlm.
1
Aspidosperma marcgravianum Wood.
1
Aspidosperma megalocarpon Muell. Arg.
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
1
Total ANNONACEAE
APOCYNACEAE
1
Bonafousia macrocalyx (Muell. Arg.) Boit.
y Allorge
1
1
(Müll.Arg.)
quadrangularis
1
Stenosolen hyerophyllus (M.Vah.) Markgraf
1
Tabernaemontana hyerophylla Vahl
1
Tabernaemontana macrocalyx Müll. Arg.
1
Tabernaemontana palustris Markgr.
1
Tabernaemontana
Leeuwenb.
siphilitica
(L.
1
f.)
Tabernaemontana undulata Vahl
1
Couma catingae Ducke
1
Couma macrocarpa Barb. Rodr.
1
Couma utilis (Mart.) Müll. Arg. in Mart.
1
Forsteronia laurifolia (Benth.) A.DC.
1
Galactophora crassifolia (Müll. Arg.) Woodson
1
Himatanthus articulatus (Vahl.) Woodson
1
Himatanthus attenuatus (Benth.) Woodson
1
1
Lacmellea microcarpa (Müll. Arg.) Markgr.
1
1
Ilex jenmanii Loes.
1
Ilex laureola Triana y Planch.
1
Total AQUIFOLIACEAE
ARALIACEAE
1
Himatanthus semilunatus Markgr.
50
Ilex diospyroides Reissek in Mart.
AQUIFOLIACEAE
1
1
Total APOCYNACEAE
Bonafousia sananho (Ruiz y Pavon ) Markgraf
1
Spongiosperma cataractarum Zarucchi
Tabernaemontana sananho Ruiz y Pavon
1
Aspidosperma pachypterum Müll. Arg.
Himatanthus bracteatus var. bracteatus
(A.DC.) Woodson
APOCYNACEAE
Total
Xylopia emarginata Mart.
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
3
Dendropanax
yPlanch.
arboreum
(L.)
Decne.
Schelera morototoni (Aubl.) Maguire, Steyerm y Frodin
Total ARALIACEAE
1
1
2
Blepharodon glauscescens (Dcne)
1
Blepharodon nitidus (Vell).Macbr.
1
Calotropis gigantea (L.) Dryand.
1
Cynanchum berterianum (Spreng.) Morillo.
1
Cynanchum montevidense Spreng.
1
Malouyia calva Markgr.
1
Malouyia glandulifera Miers
1
Malouyia naias M.E. Endres
1
Malouyia tamaquarina (Aubl.) A. DC.
1
Malouyia virescens Spruce ex Müll. Arg. in
Mart.
1
Mandevilla lancifolia Woodson
1
Mandevilla scabra (Hofmanns ex Roem. y
Schult) K.Schum.in Rngl. y Prantl.
1
Mandevilla steyermarkii Woodson
1
Tassadia berteriana (Spreng.) Stevens
1
Tassadia ivonae Morillo
1
Mandevilla symphitocarpa (G. Mey.) Woods.
1
Mesechites triida (Jacq.) Müll. Arg.
1
Microplumeria anomala (Müll. Arg.) Markgr.
1
Molongum laxum (Benth.) Pichon
ASCLEPIADACEAE
Funastrum clausum (Jacq.) Schltr.
1
Marsdenia rubofusca Benth. ex E.Fourn
1
Marsdenia undulata (Jacq.) Dugand
1
Marsdenia xerohylica Dugard
1
Matelea amazonica Morillo
1
Matelea maritima (Jacq.) Woodson
1
Sarcostemma clausum (Jacq.) Schult.
1
Total ASCLEPIADACEAE
ASPLENIACEAE
1
1
Asplenium macilentum Kunze ex Klotzsch.
1
Asplenium serryum L.
1
Total ASPLENIACEAE
Odontadenia macrantha (Roem.ySchult.)
Markgr.in Pulle
1
Odontadenia nítida (Vahl) Müll. Arg.
14
Asplenium cirrhatum Rich ex Willd.
3
Acanthospermum australe (Loel.)
1
1
Achyrocline vargasiana D.C.
1
Odontadenia verrucosa (Roem. y Schult.)
Markgr.
1
Acmella ciliata (H.B.K.) Cass.
1
Ageratum conizoides L.
1
ASTERACEAE
Parahancornia negroensis Monach.
1
Parahancornia oblonga (Benth. ex Müll.
Arg.) Monach.
Ambrosia peruviana Willd.
1
1
Calea divaricata Benth.
1
Prestonia acutifolia (Benth ex Mull.Arg)
K.Schum.
1
Chromolaena odorata (L). King ot Robinson
1
534
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
FAMILIA
ASTERACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Total
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
ESPECIE Y AUTOR
Total
Jacaranda obtusifolia Bonpl.
1
Mikania congesta DC.
1
Lundia corymbifera (Vahl) Sandw.
1
Mikania cordifolia (L.f.) Willd.
1
Lundia densilora A.DC.
1
Mikania lucida S.F.Blake
1
Mansoa kerere (Aubl.) A.H.Gentry
1
Mikania micrantha H.B.K.
1
1
Mikania parvilora (Aubl.) H.Karst.
1
Martinella obovata (Kunth) Bureau y
K.Schum.
Mikania psylostachya DC.
1
Melloa quadrivalvis (Jacq.) A.H.Gentry.
1
Piptocarpha frilara (Aubl)Benn ex Baker.
1
Piptocarpha gutierrezii Cuatrec
1
Piptocarpha opaca (Benth.) Baker in Mart.
1
Piptocarpha trilora (Aubl.) Benn. ex Baker
1
Piptocoma schomburgkii (Sch. Bip.) Pruski
1
Tessaria integrifolia R. y P.
1
Tilesia baccata (L.) Pruski.
1
Tuberculocarpus ruber (Aristeg.) Pruski
1
Wedelia ambigens S.F.Blake
1
Wulia baccata (L. f.) Kuntze
1
Xiphochaya aquatica Poepp.
1
BIGNONIACEAE
25
Helosis cayennensis (Sw.) DC.
1
Total BALANOPHORACEAE
1
Adenocalymna apurense (H.B.K.) Sandw.
1
Adenocalymna purpurascens Rusby
1
Anemopaegma alatum A. Gentry.
1
Anemopaegma
Sandwith
chrysoleucum
(Kunth)
Anemopaegma
A.K.Schum.
karstenii
Bureau
1
1
Memora patula Miers
1
Memora pseudopatula A.H.Gentry
1
Memora schomburgkii (DC.) Miers
1
Mussatia prieurei (DC.) Bur. ex K.Schum.
1
Pachira nitida Kunth
1
Paragonia pyramidata (Rich.) Bur.
1
Phryganocidia corymbosa (Vent.) Baill.
1
Pleonotoma jasminifolia (Kunth) Miers
1
Potamoganos microcalyx (G.Mey.) Sandwith
1
Roentgenia sordida (Burean y Schum)Spraque y Sandw.
1
Tabebuia barbata (E. Mey.) Sandwith
1
Tabebuia capitata (Bureau y K. Schum.)
Sandwith
1
Tabebuia chrysanths (Jacq.) Nichols.
1
Tabebuia luviatilis (Aubl.) A. DC.
1
Tabebuia insignis (Miq.) Sandw.
1
Tabebuia stenocalyx Sprague y Stapf
1
Tanaecium jaroba Sw.
Total BIGNONIACEAE
BIXACEAE
1
47
Bixa urucurana Willd.
Total BIXACEAE
1
1
Anemopaegma laeve DC.
1
Catostemma commune Sandw.
1
Arrabidaea bilabiata (Sprague) Sandwith
1
Catostemma ebracteolatum Steyerm.
1
Arrabidaea carichanensis (H.B.K.) Bureau
y K. Schum.
1
Ceiba pentandra (L.) Gaertn.
1
Arrabidaea chica (Humb.yBonpl.) Verlot
1
Matisia ochrocalyx K. Schum. in Mart.
1
Arrabidaea fanshawei Sandw.
Arrabidaea inaequalis (DC. ex Splitg.)
K.Schum.
BIGNONIACEAE
FAMILIA
1
Total ASTERACEAE
BALANOPHORACEAE
GRUPO
Eglyes lorida Shinner.
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
1
1
Arrabidaea japurensis (A.DC.) Bureau
yK.Schum.
1
Arrabidaea lachnaea (Bureau ex Bureau y
K.Schum.) Sandwith
1
Arrabidaea nigrescens Sandwith
Arrabidaea oxycarpa Urb.
1
1
1
Callichlamys latifolia (L.Rich).K.Schum
1
Catostemma ebracteolatum Steyerm.
1
Clytostoma binatum (hunb.) Sandw.
1
Crescentia amazonica Ducke
1
Cydista aequinoctialis (L.) Miers
1
Distictella arenaria A.H.Gentry
1
Jacaranda copaia subsp. spectabilis (Mart.
ex DC.) A.H. Gentry
Pachira aquatica Aubl.
1
Pachira humilis Spruce ex Decne.
1
Pachira minor (Sims) Hemsl.
1
Pachira nitida Kunth
1
Total BOMBACACEAE
Arrabidaea pubescens (L.) A.Gentry
Distictella magnoliifolia (Kunth) Sandwith
BOMBACACEAE
BORAGINACEAE
1
1
535
8
Cordia bicolor A.DC.
1
Cordia calva Gaviria
1
Cordia dentata Poir.
1
Cordia grandilora (Desv.) H.B.K.
1
Cordia nodosa L.
1
Cordia scabrifolia A. DC.
1
Cordia sericicalyx A.DC.
1
Cordia tyrandra Aubl.
1
Cordia williamsii G.Agostini
1
Heliotropium angiospermum Murray.
1
Heliotropium iliforme Lehm.
1
Heliotropium indicum L.
1
Heliotropium lagoense (Warm.) Gurke
1
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
FAMILIA
BORAGINACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Total
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
Total
1
Heliotropium ternatum Vahl.
1
Cassia moschata H.B.K.
1
15
Chamaecrista rotundifolia (Pers.) E.Greene
1
Copaifera oicinalis (Jacq.) L.
1
Crudia oblonga Benth.
1
rhoifolium
(Benth.)
1
Dacryodes peruviana (Loesn.) Lam
1
Protium aracouchini (Aubly) Marchand
1
Crudia tomentosa (Aubl.) Macbr.
1
Cynomyra bauhiniifolia Benth.
1
1
Protium crassipyalum Cuatr.
1
Protium crenatum Sandw.
1
Cynomyra bauhiniifolia var. bauhiniifolia
Benth.
Protium guianense (Aubly) Marchand, s.s.
1
Cynomyra marginata Benth.
1
Protium heptaphyllum (Aubly) Marchand
1
Dialium guianense (Aubl.) Steud.
1
Protium heptaphyllum (Aubly) Marchand
ssp. Heptaphyllum
1
Protium llanorum Cuatrec.
1
Protium nitidifolium (Cuatr.) Daly
Dimorphandra macrostachya Benth.
1
Dimorphandra unijuga Tul.
1
1
Eperua jenmanii Oliv. ssp. sandwithii
Cowan
1
1
Eperua venosa R.S. Cowan
1
Protium sagotianum Marchand
1
Hyerostemon mimosoides Desf.
1
Protium tenuifolium (Engler) Engler
1
Hymenaea courbaril L.
1
Protium trifoliolatum Engl.
1
Macrolobium acaciifolium (Benth.) Benth.
Protium unifoliatum Engl.
1
Macrolobium
Cowan
Trattinnickia burserifolia Mart.
1
Trattinnickia glaziovii Swart
1
Trattinnickia lawrancei Standl. ex Swart
1
Trattinnickia rhoifolia Willd.
1
Protium paniculatum Engl. in Mart.
Total BURSERACEAE
19
angustifolium
(Benth.)
1
1
Macrolobium bifolium (Aubl.) Pers.
1
Macrolobium discolor Benth. var. discolor
1
Macrolobium gracile var. confertum (Gleason) R.S. Cowan
1
Macrolobium longipes R.S. Cowan
1
Macrolobium microcalyx Ducke.
1
Cereus hexagonus (L.) Mill.
1
Epiphyllum phyllanthus (L.)Haw.
1
Hylocereus lemairei (Hook) Britten y Rose.
1
Nopalea cochenillifera (L.)Salm-Diyck
1
Pilosocereus kanukuensis (Alexander) Leuenb.
1
Macrolobium rubrum R.S. Cowan
1
5
Macrolobium suaveolens Spruce ex Benth.
1
1
Peltogyne paniculata Benth.
1
Apuleia lonchocarpa (Voy.) Benth.
1
Peltogyne venosa (Vahl) Benth.
1
Bauhinia guianensis Aubl.
1
Sclerolobium chrysophyllum Poepp.y Endl.
1
Bauhinia rutilans Spruce ex Benth.
1
Sclerolobium guianense Benth.
1
Bauhinia ungulata L.
1
Senna bicapsularis (L.) Roxb.
1
Senna multijuga (Rich.) I.yB.
1
Senna occidentalis (L.) Link
1
Senna pendula (Humb. y Bonpl.) H.S.Irwin
y Barneby.
1
Total CACTACEAE
Apuleia leiocarpa (Vogel) J.F.Macbr.
CAESALPINIACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Cassia grandis L. f.
Crepidospermum
Tr.yPl.
CACTACEAE
FAMILIA
1
Total BORAGINACEAE
BURSERACEAE
GRUPO
Heliotropium procumbens Mill.
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
Brownea coccinea (Jacq.) ssp. capitella Velazquez y Agostini
1
Brownea coccinea Jacq.
1
Brownea longipedicellata Huber
1
Brownea similis Cowan
1
Caesalpiniaceae coriara (Jacq.) Willd.
1
Campsiandra angustifolia Spr. ex Benth.
1
Campsiandra comosa Benth.
CAESALPINIACEAE
Macrolobium molle (Benth.) R.S.Cowan
1
Macrolobium multijugum (DC.) Benth.
1
Macrolobium multijugum var. multijugum
(DC.) Benth. in Mart.
1
Senna
quinquangulata
H.Irwin y R.Barneby
(L.C.Richard)
Senna ryiculata (Willd.) H.S. Irwin y Barneby
1
1
1
Senna silvestris (Vell.) I.yB. var. silvestris
1
Senna silvestris (Vell.) Irwin y Barneby
1
Campsiandra implexicaulis Stergios
1
Campsiandra laurifolia Benth. sin. C. comosa var. Laurifolia
1
Campsiandra macrocarpa Cowan var. Macrocarpa
1
Swartzia argentea Spruce ex Benth. in Mart.
1
Campsiandra taphornii Sterg.
1
Swartzia argentea Spruce ex Benth. var.
argentea
1
Campsiandra wurdackiana Stergios
1
Swartzia cardiosperma Benth.
1
536
Senna spectabilis (DC.) Irwing y Barneby.
1
Swartzia arborescens (Aubl.) Pittier
1
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
FAMILIA
Total
Swartzia grandifolia Bong. ex Benth.
1
Swartzia laevicarpa Amshof
1
Swartzia laxilora Bong. ex Benth.
1
Goupia glabra Aubl.
1
Swartzia leptopyala Benth.
1
Maytenus iciformis Reissek
1
Swartzia macrocarpa Spruce ex Benth. in
Mart.
1
CECROPIACEAE
Coussapoa asperifolia Trecul
1
Coussapoa orthoneura Standl.
1
Coussapoa trinervia Spruce ex Mildbr.
Total CECROPIACEAE
CELASTRACEAE
1
8
Maytenus guyanensis Klotzsch.ex Reissek
1
Maytenus laevis Reissek.
1
Chrysobalanus icaco L.
1
Swartzia microcarpa Spruce ex Benth.,
1
Swartzia panacoco (Aubl.) Cowan
1
Swartzia panacoco var. cardonae (R.S.
Cowan) R.S. Cowan
1
Couepia canescens (Gleason) Prance.
1
Swartzia picta Benth.
1
1
Swartzia picta Spruce ex Benth. var. picta
1
Couepia guianensis subsp. divaricata (Huber) Prance
Swartzia polyphylla DC.
1
Couepia guianensis
(Miq.) Prance
Swartzia sericea Vogel
1
Couepia guianensis subsp. guianensis Aubl.
1
Swartzia steyermarkii R.S. Cowan
1
1
Tachigali cavipes (Spruce ex Benth.) J.F.
Macbr.
Couepia paraensis ssp. glaucescens (Spr. ex
Hook f.) Prance
1
Couepia paraensis (Mart.yZucc.) Benth.
1
Tachigali chrysophylla (Poepp.) Zarucchi y
Herend.
1
Couepia paraensis subsp. paraensis (Spruce
ex Hook. f.) Prance
1
Tachigali davidsei Zaruchi y Herend.
1
Exellodendron barbatum (Ducke) Prance
1
Tachigali guianensis (Benth.) Zarucchi y
Hoor.
1
Exellodendron coriaceum (Benth.) Prance
1
Tachigali odoratissima (Spruce ex Benth.)
Zarucchi y Herend.
1
Tachigali paniculata Aubl.
1
Tachigali rigida Ducke
1
Total CELASTRACEAE
84
Capparis lexuosa L.
1
Capparis frondosa Jacq.
1
Capparis sola J.F. Macbr.
1
Cleome pilosa Benth.
1
Crateva tapia L.
1
Morisonia americana L.
1
6
Anthodiscus mazarunensis Gilly.
1
Caryocar glabrum (Aubl.) Pers.
1
Caryocar microcarpum Ducke
1
Caryocar pallidum A.C.Smith
1
Polycarpaea corymbosa (L.) Lam.
1
Polycarpon apurense H.B.K.
1
6
Anthodiscus obovatus Benth. ex Wittm.
1
Polycarpea corymbosa (L.) Lam.
1
Polycarpon apurense H.B.K.
1
4
subsp.
glandulosa
1
Hirtella brachystachya Spruce ex. Hook. F.
1
Hirtella bullata Benth.
1
Hirtella castillana Prance
1
Hirtella elongata Mart. y Zucc.
1
Hirtella glandulosa Spreng.
1
Hirtella hispidula Miq.
1
Hirtella paniculata Swartz
1
Hirtella racemosa var. hexandra (Willd. ex
Roem. y Schultz) Prance
1
Hirtella racemosa Lam.
1
Licania alba (Bernoulli) Cuatr.
1
Licania apyala (E. Mey.) Fritsch
1
Licania apyala (E.Mey.) Fritsch. var. aperta
1
Licania apyala (E.Mey.) Fritsch. var. apyala
1
Licania boyanii Tutin.
1
Licania canescens Benoist
1
Licania coriacea Benth.
1
Licania egleri Prance
1
Licania gracilipes Taub.
1
Licania hyeromorpha (C. Mart. ex Hook.
f.) Benth.
1
Licania hyeromorpha Benth.
(mart. y Hook.f.) Prance.
1
var. glabra
3
Licania hyeromorpha Benth. var. hyeromorpha
1
1
Licania hypoleuca Benth. var. hypoleuca
1
Cecropia latiloba Miq.
1
1
Licania intrapyiolaris Spruce ex Hook. f.
in Mart.
1
Cecropia peltata L.
Total CARYOPHYLLACEAE
Cecropia distachya Huber.
CECROPIACEAE
ESPECIE Y AUTOR
1
Total CARYOCARACEAE
CARYOPHYLLACEAE
FAMILIA
Swartzia dipyala Willd. ex Vogel
Total CAPPARIDACEAE
CARYOCARACEAE
GRUPO
1
Total CAESALPINIACEAE
CAPPARIDACEAE
Total
CHRYSOBALANACEAE
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
CAESALPINIACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Swartzia cupavenensis R.S. Cowan
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
Cecropia sciadophylla Mart.
Coussapoa asperifolia subsp. magnifolia
(Trecul) Akk. y CC.Berg
1
1
537
Licania kunthiana Hook. f. in Mart.
1
Licania lata Macbr.
1
Licania licaniilora (Sagot) S.F.Blake
1
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
FAMILIA
ESPECIE Y AUTOR
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
FAMILIA
ESPECIE Y AUTOR
Total
1
Tovomita stergiosii N. Cuello
1
Licania micrantha Miq. subsp. Micrantha
1
Vismia cayennensis (Jacq.)Pers.
1
Licania mollis Benth.
1
Vismia guianensis (Aubl.) Choisi
1
CLUSIACEAE
Licania octandra (Hoforgg ex R.yS.) Kuntze
1
Licania pallida Spruce ex Bentham
1
Licania parvilora Benth.
1
Licania polita Spruce ex Hook.f.
1
COCHLOSPERMACEAE
Licania pyrifolia Griseb.
1
Total COCHLOSPERMACEAE
Licania savannarum Prance
1
Buchenavia congesta Ducke.
1
Licania steyermarkii Maguire
1
Buchenavia grandis Ducke
1
Licania wurdackii Prance
1
Buchenavia oxycarpa (Mart.) Eichl.
1
Parinari excelsa Sabine
1
Buchenavia ryiculata Eichler
1
Parinari sprucei Hook. f. in Mart.
1
Buchenavia suaveolens Eichler
1
1
Total CHRYSOBALANACEAE
CLUSIACEAE
Total
Licania micrantha Miq.
Vismia japurensis Reich. in Mart.
1
Vismia macrophylla Kunth
1
Total CLUSIACEAE
39
Cochlospermum
Steud.
orinocense
(H.B.yK.)
1
1
49
Buchenavia viridilora Ducke
Callophyllum brasiliense Cambess.
1
Combryum decandrum Jacq
1
Caraipa densifolia Mart. subsp. densifolia
1
Combryum frangulifolium H.B.K.
1
Caraipa hyerocarpa Ducke
1
Combryum fruticosum (Loel.) Stuntz
1
Caraipa llanorum Cuatrec.
1
Caraipa llanorum Cuatrec. subsp. llanorum
Cuatrec.
1
Caraipa longipedicellata Steyerm.
1
Caraipa parvielliptica Cuatrec.
1
Caraipa richardiana Cambess.
1
Caraipa savannarum Kubitzki
1
Caraipa teryicaulis Tul.
1
Chrysochlamys membranacea Pl.y.Tr.
1
Clusia amazonica Planch. Triana
1
Clusia candelabrum Planch. y Triana
1
Clusia chiribiquyensis Maguire
1
Clusia columnaris Engl. in Mart.
COMBRYACEAE
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
CHRYSOBALANACEAE
GRUPO
Combryum laurifolium C.Mart.
1
Combryum laxum Jacq.
1
Combryum rotundifolium Rich.
1
Terminalia amazonica (J.Gmelin) Exell
1
Terminalia crispialata (Ducke) Alwan y
Stace
1
Terminalia oblonga (R. y P.) Steudel
1
Terminalia ramatuella Alwan y Stace
1
Terminalia virens (Spruce ex Eichler)
Alwan y Stace
1
Total COMBRYACEAE
17
Connarus lambertii (DC.) Sagot.
1
1
Connarus punctatus Planch.
1
Clusia grandilora Splitg.
1
Connarus rigidus Forero
1
Clusia lopezii Maguire
1
Connarus ruber (Poepp.) Planch.
1
Clusia microstemon Planch. y Triana
1
Connarus ruber (Poepp.) Planch. var. ruber
1
Clusia obovata (Spruce ex Planch. y Triana)
Pipoly
1
Connarus venezuelanus var. venezuelanus
1
Clusia octandra (Poepp.) Pipoly
1
Connarus venezuelanus Baillon var. orinocensis Forero
1
Clusia renggerioides Planch. y Triana
1
Clusia schomburgkiana (Planch. y Triana)
Benth. ex Engl. in Mart.
1
Garcinia macrophylla Mart.
1
CONNARACEAE
Pseudosonnarus
Radlk.
macrophyllus
(Poepp.)
1
Rourea cuspidata Benth. ex Baker var. cuspidata
1
1
Garcinia madruno (H.B.yK.) Hammel
1
Rourea glabra H.B.K. var. glabra
Havyiopsis lexilis Planch.yTriana
1
Rourea krukovii Steyerm.
Mahurea exstipulata Benth.
1
Total CONNARACEAE
1
11
Moronobea riparia Planch. y Triana
1
Aniseia minor (Choisy) J.A. McDonald
Platonia insignis Mart.
1
Dicranostyles scandens Benth.
1
Symphonia globulifera L. f.
1
Ipomoea batatas (L.) Lam.
1
Ipomoea cf. squamosa Choisy in A.DC.
1
Tovomita brevistaminea Engl.
1
Tovomita foldatsii N. Cuello
1
Tovomita longifolia (Rich.) Hoch.
CONVOLVULACEAE
1
Ipomoea hederifolia L.
1
1
Ipomoea mauritiana Jacq.
1
Tovomita macrophylla (Poepp.) Walp.
1
Ipomoea quamoclit L.
1
Tovomita spruceana Planch. y Triana
1
Ipomoea schomburgkii Choisy in A. Dc.
1
538
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
FAMILIA
1
Jacquemontia tamnifolia (L.) Griseb
1
Maripa densilora Benth.
1
Maripa paniculata Barb.Rodr.
1
Maripa violacea (Aubl.) Ostr. ex Lanj. y
Uittien
1
Total CONVOLVULACEAE
COSTACEAE
1
Costus scaber Ruiz y Parón.
1
Costus spiralis spiralis var. spiralis.
1
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
1
Sloanea oppositifolia Spruce ex Benth.
1
Sloanea pubescens (PyE) Benth.
1
Sloanea stipitata Spruce ex. Benth.
1
Sloanea synandra Spruce ex. Benth.
1
Satyria panurensis (Benth. ex Meisn.) Benth. y Hook.f. ex Nied.
Total ERICACEAE
9
1
1
Cayaponia cruegeri (Naudin) Cogn.
1
Erythroxylum citrifolium A. St.-Hil.
1
1
Erythroxylum divaricatum Peyr. in Mart.,
1
Cayaponia guianensis C.Jefrey
1
Cayaponia myensis Cuatrec
1
Gurania acuminata Cogn.
1
Gurania spinulosa (Poepp. y Endl.) Cogn.
1
Melochia trilobata Cogn.
1
Melothria pendula L.
1
Momordica charantia L.
1
Psiguria umbrosa (Kunth.) C.Jefrey
1
1
1
Tapura amazonica var. amazonica Poepp.
1
1
3
1
Erythroxylum havanense Jacq.
1
Erythroxylum kapplerianum Peyr. in Mart.
1
Erythroxylum mucronatum Benth.
1
Erythroxylum orinocense H.B.K.
1
Erythroxylum roraimae Klotzsch ex O.E.
Schulz in Engl.
1
Erythroxylum steyermarkii Plowm.
1
Total ERYTHROXYLACEAE
11
Dichapyalum pedunculatum (DC.) Baill.
Tapura capitulifera Spruce ex Baill.
Acalypha alopecuroides Jacq.
9
1
Acalypha macrostachya Jacq.
1
Alchornea castaneifolia (Willd.) Ad. Juss.
1
Alchornea discolor Poepp.
1
Alchornea schomburgkii Kl.
1
Alchornea triplinervia (Spreng.) M.Arg.
1
Amanoa almerindae Leal
1
Amanoa glaucophylla Müll.Arg.
1
Curatella americana L.
1
Davila nitida (Vahl) Kubitzki
1
Davilla kunthii St.Hil.
1
Doliocarpus brevipedicellatus Gercke subsp.
brevipedicellatus
1
Caperonia castaneifolia (L.) A.St.Hil.
1
Doliocarpus carnevaliorum Aymard
1
Caperonia palustris (L.) St. Hill.
1
Doliocarpus dentatus (Aubl.) Standl.
1
Cathedra acuminata Benth.
1
Doliocarpus dentatus (Aubl.)Standl. subsp.
latifolius Kubitzki
1
Chayocarpus schomburgkianus (Kuntze)
Pax. y K.Hofmm. In Engl.
1
EUPHORBIACEAE
Amanoa guianensis Aubl.
1
Amanoa oblongifolia Müll. Arg.
1
Doliocarpus spraguei Cheesm.
1
Chamaesyce hirta (L.)Millsp.
1
Pinzona coriacea Mart. y Zucc.
1
Chamaesyce hyssopifolia (L.)Smoll.
1
1
Tyracera surinamensis Miq.
1
Chamaesyce thimifolia (L.) Millsp.
Tyracera tigarea DC.
1
Cnidoscolus urens (L.) Arthur.
1
Tyracera volubilis L.
1
Conceveiba guianensis Aubl.
1
Tyracera volubilis L. subsp. volubilis
1
Conceveiba latifolia Benth.
1
Tyracera willdenowiana Steudel
1
Croton argyrophyllus H.B.K.
1
14
Croton bolivarensis Croizat
1
Diospyros lissocarpoides Sandw.
1
Croton cuneatus Kl.
1
Diospyros poeppigiana A. DC.
1
Croton essequiboensis Kl.
1
Diospyros sericea A.CD.
1
Croton lobatus L.
1
Total DILLENIACEAE
Total EBENACEAE
ELAEOCARPACEAE
1
Sloanea laxilora Spruce ex Benth.
Total ELAEOCARPACEAE
ERICACEAE
Total
Cayaponia granatensis Cogn.
Total DICHAPYALACEAE
EBENACEAE
ELAEOCARPACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Sloanea latifolia (Rich.) Schumann
3
Rytidostylis amazonica (Mart.) Spruce.
DILLENIACEAE
FAMILIA
Erythroxylum cataractarum Spruce ex Peyr.
in Mart.,
Total CUCURBITACEAE
DICHAPYALACEAE
GRUPO
13
Costus arabicus L.
Total COSTACEAE
CUCURBITACEAE
Total
ERYTHROXYLACEAE
CONVOLVULACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Jacquemontia guyanensis (Aubl.) Meisn. in
Mart.
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
3
Croton mollis Benth.
1
Sloanea davidsei Steyerm.
1
Croton palanostigma Kl.
1
Sloanea grandilora Smith in Rees
1
Croton potaroensis Lanj.
1
Sloanea guianensis (Aubl.) Benth.
1
Croton trinitatis Millsp.
1
539
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
FAMILIA
EUPHORBIACEAE
ESPECIE Y AUTOR
GRUPO
FAMILIA
ESPECIE Y AUTOR
Total EUPHRONIACEAE
Total
1
1
Gavarryia terminalis (Muell.Arg.) Baill.
1
Acosmium nitens (Vog.) Yakov.
1
Glycydendron amazonicum Ducke
1
1
Hevea benthamiana Müll.Arg.
1
Aeschynomene luminensis Vell. var. luminensis
Hevea paucilora (Spruce ex Benth.) Müll.
Arg.
Aeschynomene rudis Benth.
1
1
Aldina kunhardtiana R.S. Cowan
1
Hevea paucilora var. coriacea Ducke
1
Aldina latifolia Spruce ex Benth.
1
Aldina latifolia Spruce ex Benth. in Mart.
var. latifolia
1
Alexa canaracunensis Pittier
1
Hieronyma cf. duquei Cuatr.
1
Hura crepitans L.
1
Hyeronima alchorneoides Allemão
1
Hyeronima oblonga (Tul.) Muell.Arg.
1
Mabea anomala Müll Arg. in Mart.
1
Mabea montana Müll. Arg. in A. DC.
1
Andira surinamensis
Pulle
Mabea nitida Spruce ex Benth.
1
Centrolobium orinocense (Benth.) Pitt.
Mabea occidentalis Benth.
1
Centrosema biidum Benth.
1
Mabea piriri Aubl.
1
Centrosema brasilianum (L.) Benth.
1
Mabea taquari Aubly
1
Centrosema pascuorum Mart. ex Benth.
1
Manihot brachyloba Müill. Arg.in Mart.
1
Centrosema pubescens Benth.
1
Maprounea amazonica Esser
1
Clathrotropis brachypyala (Tul.) Kleinh.
1
Maprounea guianensis Aubl.
1
Clathrotropis brunnea Amsh.
1
Margaritaria nobilis L.f.
1
Clathrotropis nitida (Benth.) Harms
1
Micranda inundata P.E. Berry
1
Clitoria javitensis (Kunth) Benth.
1
Micrandra minor Benth.
1
1
Micrandra rossiana R.E. Schult.
1
Clitoria javitensis var. javitensis (H.B.K.)
Benth.
Micrandra siphonoides Benth.
1
Crotalaria incana L.
1
Pera decipiens (Muell.Arg.) Muell. Arg.
1
Crotalaria ryusa L.
1
Pera distichophylla (Mart.) Baill.
1
Cymbosena roseum Benth.
1
Pera glabrata (Schott) Baill.
1
Dalbergia amazonica (Radlk. ex Kopf)
Ducke
1
Pera nitida (Benth.) Jablonski
1
Phyllanthus atabapoensis Jabl.
1
Phyllanthus caroliniensis Walter subsp.
guianensis (KL.) G.
1
Phyllanthus elsiae Urb.
1
Phyllanthus luitans Benth. Ex Mull. Arg.
1
Phyllanthus myrsinites H.B.K. subsp. Myrsinites
1
Phyllanthus myrsinites Kunth
1
Phyllanthus niruri L.
1
Phyllanthus paezensis Jabl.
1
Phyllanthus rupestris Kunth
1
Phyllanthus vacciniifolius (Müll.) Arg.)
Müll. Arg. in DC.
FABACEAE
Alexa confusa Pittier
1
Andira inermis (Wright.) Kunth ex DC.
1
(Bondt.) Splitg. ex
1
1
Dalbergia ecatosphyllum (L.) Taub.
1
Dalbergia foliosa (Benth.) A.M. Carvalho
1
Dalbergia glauca (Desv.) Amsh.
1
Dalbergia hygrophylla (Mart.) Hoeme.
1
Dalbergia inundata Spruce ex Benth.
1
Dalbergia monyaria L. f.
1
Dalbergia monyaria var. hygrophylla (Mart.
ex Benth.) Macbr.
1
Dalbergia revoluta Ducke
1
Dalbergia riedelii (Benth.) Sandwith
1
Derris amazonica Killip
1
Derris moniliformis (L.f.) Ducke
1
1
Derris moniliformis (L.f.) Ducke.
1
Piranhea trifoliata Baill.
1
Derris negrensis Benth.
1
Podocalyx loranthoides Klotzsch
1
Derris pterocarpus (DC.) Killip
1
Pogonophora schomburgkiana Miers. Ex
Benth.
1
Richeria grandis Vahl
1
Sagotia racemosa Baill.
1
Senefelderopsis chiribiquyensis (R. Schult. y
Croizat) Steyerm.
1
Total EUPHORBIACEAE
EUPHRONIACEAE
Total
Drypyes variabilis Uitt. vel. sp. af.
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
Euphronia guianensis (R.H.Schomb.) Hallier.
73
1
540
Dioclea guianensis Benth.
1
Dioclea macrocarpa Huber
1
Dioclea malacocarpa Ducke
1
Dioclea rudii R.H.Maxwell
1
Diplotropis martiusii Benth.
1
Diplotropis purpurea (Rich.) Amsh.
1
Diplotropis racemosa (Hoehne) Amshof,
1
Dipteryx odorata (Aubl.) Willd.
1
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
FAMILIA
ESPECIE Y AUTOR
FAMILIA
ESPECIE Y AUTOR
Total
Erythrina fusca Lour.
1
Erythrina poeppigiana (Walp.) Cook
1
Yaballia dubia (H.B.K.) Rudd.
1
Yaballia guianensis Benth.
1
Banara guianensis Aubl.
1
Hymenolobium hyerocarpum Ducke
1
Banara nitida Spruce ex Benth.
1
Indigofera sufruticosa Mill.
1
Banara orinocensis (Cuatrec.) Sleumor
1
Lecointea amazonica Ducke,
1
Caesaria commersoniana Camb.
1
Lonchocarpus crucisrubierae Pittier
1
Casearia aculeata Jacq.
1
Lonchocarpus densilorus Benth.
1
Casearia arborea (Rich.) Urb.
1
Lonchocarpus fendleri Benth.
1
Casearia hirsuta Swartz
1
Lonchocarpus hedyosmus Miq.
1
Casearia javitensis H.B.yK.
1
Lonchocarpus utilis AC. Smith.
1
Casearia mariguitensis H.B.K.
1
Machaerium inundatum (Mart. ex Benth.)
Ducke
1
Casearia piitumba Sleumer
1
Machaerium aristulatum (Benth.) Ducke
1
Machaerium biovulatum Mich.
1
Machaerium dubium (H.B.K.) Rudd.
1
Machaerium leiophyllum var. latifolium
(Benth.) Rudd
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
1
Machaerium ferox (Mart.ex Benth.) Ducke.
FABACEAE
Total
Dipteryx punctata (S.F.Blacke) Amshof
FABACEAE
FLACOURTIACEAE
1
1
Machaerium madeirense Pittier
1
Machaerium multifoliolatum Ducke
1
Machaerium myrianthum Spruce ex Benth.
1
Machaerium quinatum (Aubl.) Sandwich
1
Machaerium striatum Johnston
1
Macroptilium lathyroides (L.) Urb.
1
Mucuna pruriens (L.)DC.
1
Mucuna rostrata Benth. in Mart.,
1
Muellera frutescens (Aubl.) Standl.,
1
Ormosia bolivarensis (Rudd.) Stirton.
1
Ormosia lignivalvis Rudd
1
Ormosia macrocalyx Ducke
1
Poecilanthe amazonica (Ducke) Ducke
1
1
Zollernia grandifolia Schery
1
Zornia diphylla (L.) Pers.
1
Machaerium leiophyllum var. latifolium
(Benth.) Rudd f. cristacastrensi (Mart. Ex
Benth.) Rudd
Vigna luteola (Jacq.) Benth.
Total FABACEAE
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
1
96
Casearia spruceana Benth. ex Eichler
1
Casearia sylvestris Sw.
1
Casearia sylvestris Sw. var sylvestris
1
Casearia ulmifolia Vahl ex Ventenat
1
Hecatostemon complectus (Jacq.) Sleumer
1
Homalium guianense (Aubl.) Oken
1
Homalium racemosum Jacq.
1
Layia cupulata Spruce ex Benth.
1
Layia procera (Poeppig.) Eichler
1
Layia suaveolens (Poepp.) Benth.
1
Lindackeria paludosa (Benth.) Gilg.
1
Ryania angustifolia (Turcz.) Monach.
1
Ryania dentata (H.B.K.) Miq.
1
Ryania dentata (Kunth) Miq. var. dentata
1
Ryania speciosa subsp. subulilora (Sandwith) Monach
1
Ryania speciosa Vahl
1
Ryania speciosa var. bicolor (A. DC.) Monach.
1
Ryania spruceana Monach.
1
Ximenia americana L
Total FLACOURTIACEAE
1
29
Pterocarpus acapulcensis Rose.
1
Pterocarpus amazonum (Benth.) Amshof.
1
Adenolisianthus arboreus (Spruce ex Progel.) Gilg in Engl. y Prantl
1
Pterocarpus oicinalis Jacq.,
1
Chelonanthus alatus (Aubl.)Pulle.
1
Pterocarpus rohrii Vahl, s.l.
1
Coutoubea ramosa Aubly
1
Pterocarpus santalinoides L’Her. ex DC.
1
Coutoubea spicata Aubl.
1
Rhynchosia phaseoides (Sw.) DC
1
Curtia obtusifolia (Benth.) Knobl.
1
Samanea inopinata (Harms) Barneby y J.W.
Grimes
1
Irlbachia nemorosa (Willd. ex Roem. y
Schult.) Merrill,
1
Sesbania sericea (Willd.) Link.
1
1
Stylosanthes angustifolia Vogel
1
Irlbachia poeppigii (Griseb.) L. Cobb y
Maas,
Tachigali davidsei Zarucchi y Herend.
1
Taralea oppositifolia Aubl.
1
Vatairea guianensis Aubl.
1
Vigna adenantha (Mey) Marechal, Mascherpa y Stainer.
Vigna lasiocarpa (Mart.ex Benth.) Verdc.
GENTIANACEAE
Irlbackia alata (Aubl.) Maas
1
Potalia elegans L.
1
Voyria aphylla (Jacq.) Pers.
1
Voyria corymbosa Splitg. alba (Stdl.) Ruyters y Maas.
1
Total GENTIANACEAE
1
541
1
11
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
FAMILIA
GESNERIACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Besleria laxilora Benth.
1
Total ICACINACEAE
Chrysothemis pulchella (Donn ex Sims)
Dcne
1
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
1
Heliconia acuminata L.C.Rich.
1
Heliconia acuminata Rich. var. acuminata
1
Heliconia bihai (L.) L.
1
Heliconia hirsuta L.f.
1
Heliconia psittacorum L.f.
1
Cheiloclinium belicense (Standl.) A.C.Sm.
1
Cuervea kappleriana (Miq.) A.C.Smith
1
Elachyptera loribunda (Benth.)A.C.Smith
1
Hippocrataea volubilis L.
1
Hylenaea comosa (Sw.) Miers
1
Peritassa compta Miers.
1
Peritassa laevigata (Hofmanns.) A.C.Sm.
1
Prionostemma aspera (Lam.) Miers
1
Pristimera nervosa (Miers) A.C.Sm.
1
Salacia amplectens A.C.Sm.
1
Salacia elliptica (C.Mart.) G.Don
1
Salacia impressifolia (Miers) A.C.Sm.
1
Salacia juruana Loes.,
1
Salacia multilora (Lam.)DC. subsp. multilora
1
Tontelea attenuata Miers
1
Tontelea coriacea A.C.Sm.
1
Tontelea ovalifolia (Miers) A.C.Sm.
1
17
HUGONIACEAE
1
Total HUGONIACEAE
Ochthocosmus roraimae Benth.
Humiria balsamifera (Aubl.) St. Hil.
1
Humiria wurdackii Cuatrec.
1
Humiriastrum cuspidatum (Benth.) Cuatrec.
Lacistema aggregatum (Berg.) Rusby
Hyptis capitata Jacq.
LAMIACEAE
1
1
1
1
1
1
Hyptis parkeri Benth.
1
Hyptis suaveolens (L.) Poit
1
4
Aniba ainis (Meisn.) Mez
LAURACEAE
1
Hyptis luticola Epling
Total LAMIACEAE
1
1
Aniba citrifolia (Nees) Mez.
1
Aniba panurensis (Meisn.) Mez
1
Aniba taubertiana Mez
1
Cassytha iliformis L.
1
Endlicheria anomala (Nees) Mez
1
Endlicheria aruncilora (Meisn.) Mez, Jahrb.
1
Endlicheria bracteolata (Meissn.) Allen
1
Endlicheria dictifarinosa Allen
1
Endlicheria multilora (Miq.) Mez
1
Licaria brasiliensis (Nees) Kostermans
1
Licaria cannella (Meisn.) Kosterm.
1
Licaria chrysophylla (Meissner) Kostermans
1
Mezilaurus sprucei (Meisn.) Taub. ex Mez
1
Nectandra aurea Rohwer
1
Nectandra cissilora (Nees) Mez
1
Nectandra cuspidata Nees
1
Nectandra globosa (Aubl.) Mez
1
Nectandra pearcei Mez
1
Nectandra pichurim (H.B.K.) Mez
1
Nectandra ryiculata (R. y P.) Mez
1
Ocotea aciphylla (Nees) Mez
1
Ocotea amazonica (Meissn.) Mez
1
1
Ocotea bofo Kunth
1
Humiriastrum piraparanense Cuatrec.
1
Ocotea cernua (Nees) Mez
1
Sacoglottis amazonica Mart.
1
Ocotea cymbarum H.B.K.
1
Sacoglottis ceratocarpa Ducke
1
Ocotea esmeraldana Moldenke
1
Sacoglottis guianensis Benth.,s.l.
1
Ocotea fasciculata (Nees) Mez
1
Ocotea loribunda (Sar.) Mez
1
Ocotea myriantha (Meisn.) Mez
1
Schitostemon oblongifolium (Benth.) Cuatrec.
Total HUMIRIACEAE
1
8
Ocotea neesiana (Miq.) Kosterm.
1
1
Ocotea paucilora (Nees) Mez
1
1
Ocotea schomburgkiana (Nees) Mez.
1
1
Persea luviatilis van der Werf,
1
Discophora guianensis Miers
1
Rhodostemonodaphne grandis (Nees) Rohwer
1
Emmotum acuminatum (Benth.) Miers,
1
Emmotum loribundum R.A. Howard
1
Pleurisanthes lava Sandw
1
Hydrolea spinosa L.
Total HYDROPHYLLACEAE
Dendrobangia boliviana Rugby
ICACINACEAE
LACISTEMATACEAE
Total
6
Total LACISTEMATACEAE
5
Roucheria calophylla Planch.
ESPECIE Y AUTOR
Poraqueiba sericea Tul.
Total IXONANTHACEAE
Total HIPPOCRATACEAE
HYDROPHYLLACEAE
IXONANTHACEAE
4
Total HELICONIACEAE
HUMIRIACEAE
FAMILIA
ICACINACEAE
Codonanthe crassifolia (Focke) Morton
HIPPOCRATACEAE
GRUPO
1
Total GESNERIACEAE
HELICONIACEAE
Total
Allopectus tyragonoides Mansf.
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
Rhodostemonodaphne kunthiana (Nees)
Rower
Total LAURACEAE
542
1
36
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
FAMILIA
LECYTHIDACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Total
Allantoma lineata (Mart. ex O. Berg) Miers
1
Blepharandra imbriata Mac Bryde.
Couratari guianensis Aubl.
1
Bunchosia argentea (Jacq.) DC.
1
Eschweilera coriacea (DC.) S.A. Mori
1
Bunchosia mollis Benth.
1
Eschweilera decolorans Sandw.
1
1
Burdachia prismatocarpa C. Martius ex
Adr. Jussieu
1
Eschweilera parvilora (Aubl.) Miers
Eschweilera parvifolia Mart. ex DC.
1
Burdachia sphaerocarpa A. Juss.
1
Eschweilera pedicellata (Richard) Mori
1
Eschweilera subglandulosa (Steud. ex Berg)
Miers
1
Byrsonima coniophylla A. Juss.
1
Eschweilera tenuifolia (Berg.) Miers
1
Byrsonima cuprea Griseb
1
Gustavia augusta L.
1
Byrsonima japurensis Adr. Juss
1
Gustavia coriacea Mori
1
Byrsonima laevis Nied.
1
Gustavia hexapyala (Aubl.) Sm. in Rees,
1
Byrsonima leucophlebia Griseb.
1
Gustavia poeppigiana Berg.
1
Byrsonima stipulacea Adr. Juss.
1
Gustavia pulchra Miers
1
1
Clonodia
complicata
(H.B.K.)
W.R.Anderson (coll. lvs for DNA!)
1
Lecythis chartacea O.Berg
Lecythis corrugata Poit ssp. rosea (Spuce ex
Berg.) Mori
1
Lecythis corrugata Poit.
1
Ocotea neesiana (Miq.) Kosterm.
1
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
Byrsonima bronweniana W.R. Anderson
1
Byrsonima concinna Benth.
1
Glandonia williamsii Steyerm.
Hyeropterys
(CHECK!)
MALPIGHIACEAE
Hyeropterys
W.R.Anderson
1
(L.)
laurifolia
Adr.Juss
(DC.)
macradena
1
1
1
Hyeropterys nervosa A. Juss. in A. St.-Hil.
1
Utricularia neottioides A. St.-Hil. y Girard
1
Lissocarpa benthamii Gürke in Engl. y
Prantl
2
1
1
Hyeropterys orinocensis (H.B.yK.) Juss.
1
Hyeropterys orinocensis (Kunth) Adr.Juss.
1
Hiraea apaporiensis Cuatrec.
1
Hiraea faginea (Sw.) Nied.
1
Hiraea imbriata W.R. Anderson
1
Malpighia glabra L.
1
Bonyunia aquatica Ducke
1
Bonyunia minor N.E. Br.
1
Spigelia anthelmia L.
1
Spigelia humilis Benth.
1
Mascagnia dissimilis Morton y Moldenke
Strychnos bredemeyeri (Schult. y Schult.f.)
Sprague y Sandwith
1
Pterandra sericea W.R.Anderson (coll.
again!)
1
Strychnos guianensis Aubl.
1
Stigmaphyllon sinuatum (DC.) Adr.Juss
1
Strychnos mattogrossensi S. Moore
1
Tyrapteris aristiguiyae W.R. Anderson
1
Strychnos panurensis Sprague y Sandw.
1
Tyrapteris styloptera A. Juss.
1
Strychnos peckii B.L.Robinson
1
Tyrapterys imbripyala Adr. Juss
1
Strychnos ramentifera Ducke
Mascagnia
W.R.Anderson
(Cuatrec.)
castanea
Tyrapterys mucronata Cav.
1
1
1
1
Total MALPIGHIACEAE
10
35
Oryctanthus alveolatus (H.B.K.) Kuijt
1
Hibiscus bifurcatus Cav.
1
Oryctanthus lorulentus (Rich.) Tiegh.
1
Hibiscus furcellatus Desv.
1
Phoradendron tyragonum Ule.
1
Hibiscus peruvianus R.E.frios
Phthirusa guyanensis Eichler.
1
Phthirusa pyrifolia (H.B.K.) Eichler
1
Hibiscus striatus subsp.
(H.B.K.) O.J. Blanch.
MALVACEAE
1
Lambertianus
1
Pavonia castaneifolia A.s.t.H.ll y Naud.
1
Sida ciliris L.
1
Phthirusa stelis (L.) Kuijt
1
Psittacanthus julianus Rizzini
1
Psittacanthus robustus (Mart.) Mart.
1
Struthanthus gracilis (Gleason) Steyerm y
Maguire
1
Marcgravia sprucei (Wittm.) Gilg.
1
9
Norantea guianensis Aubl.
1
Total LORANTHACEAE
MALPIGHIACEAE
1
1
Total LOGANIACEAE
LORANTHACEAE
Total
Utricularia foliosa L.
Total LISSOCARPACEAE
LOGANIACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Hyeropterys macrostachya Adr.Juss.
Total LENTIBULARIACEAE
LISSOCARPACEAE
FAMILIA
18
Total LECYTHIDACEAE
LENTIBULARIACEAE
GRUPO
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
Banisopteris martiniana (Adr. Juss.) Cuatr.
var. martiniana
Banisteriopsis lucida (Rich.) Small.
Sida serrata Willd.
1
Total MALVACEAE
MARCGRAVIACEAE
7
subsp.
1
Norantea guianensis
(Mart.) Bedell
1
Souroubea dasystachya Gilg y Werderm.
543
japurensis
1
1
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
FAMILIA
ESPECIE Y AUTOR
Souroubea guianensis Aubl.
Souroubea guianensis subsp. cylindrica
(Wittm.) de Roon
Total MARCGRAVIACEAE
Acantella sprucei Hook f.
1
Aciotis acuminifolia (Mart.ex DC.J Triana
1
Aciotis indecora (Bonpl.) Triana.
1
ESPECIE Y AUTOR
Miconia pubipyala Miquel
6
1
Total
1
Miconia serialis DC
1
Miconia solmsii Cogn.
1
Miconia splendens (Sw.) Grieseb.
1
Miconia tomentosa (L.C.Rich) Don ex DC
1
Miconia trinervia (Sw.) D.Don ex Loud.
1
Miconia truncata Triana
1
Mouriri acutilora Naudim
1
Aciotis ornata (Miq.) Gleason.
1
Aciotis purpurascens (Aubl.) Triana
1
Mouriri c.f. myrtilloides
Curier
Acisanthera crassipes (Naudin) Wurdack
1
Mouriri cf. nigra (DC.) Marley
Adelobotrys permixta Wurdack.
1
Mouriri collocarpa Ducke
1
Mouriri grandilora DC.
1
1
Bellucia pentamera Naudim
1
Clidemia cf. capitellata (Bonpl.) D.Don
1
Clidemia novemnervia (DC.) Triana
1
Comolia microphylla Benth.
1
Comolia villosa (Aubl.) Triana.
1
Gafenrieda weddelii Naudin
MELASTOMATACEAE
FAMILIA
1
Acantella pulchra Gleason
Bellucia grossularioides (L.) Triana
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
1
1
Grafenrieda caryophyllea Triana
1
Grafenrieda rupestris Ducke
1
Henriytea granulata Berg ex Triana.
1
Henriytea martiussi (DC.) Naudin
1
Henriytea spruceana Cogn.
1
Henriytea succosa (Aubl.) DC
1
Loreya mespiloides Miq.
Macairea stylosa Triana
1
1
Maiya guianensis Aubl.
1
Maiya poeppigii Mart.ex Cogn.
1
Meriania urceolata Triana.
Miconia ainis DC
Miconia albicans (SW) Triana.
MELASTOMATACEAE
MARCGRAVIACEAE
Total
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
1
1
1
Miconia barjensis Wurdack.
1
Miconia borjensis Wurdack
1
Miconia bubalina (D. Don) Naudin
1
Miconia campestris (Benth.) Triana
1
Mouriri guianensis Aubl.
1
Mouriri nigra (DC.) Morley
1
Mouriri sagotiana Triana
1
Mouriri vernicosa Naudin
1
Myriaspora egensis DC.
1
Pachyloma huberioides (Naudin) Triana
1
Pterogastra minor Naudin
1
Tibouchina aspera Aybl.
1
Tibouchina spruceana Cogn.
1
Tibouchinia aspera var. aspera Aubl.
1
Tococa aristata Benth.
1
Tococa coronata Benth.
1
Tococa guianensis Aubl.
1
Tococa lancifolia Spruce ex Triana
1
Tococa subciliata (DC) Triana
1
73
MELIACEAE
Guarea guidonia (L.) Sleumer
1
Guarea pubescens (Rich.) A.Vuss
1
1
Miconia aplostachya (Bonpl.) DC
1
1
Total MELASTOMATACEAE
1
Miconia alternans Naudin.
(Sw.) Poiry in
Guarea truncilora C.DC. in A.DC.
1
Melia azedarach L.
1
Trichilia inaequilatera Penn.
1
Trichilia mazanensis Macbr.
1
Trichilia micrantha Benth.
1
Trichilia pleeana (Juss.) C.DC.
1
Trichilia quadrijuga Kunth ssp. quadrijuga
1
Trichilia rubra C.DC.
1
Trichilia schomburgkii C.DC. ssp. schomburgkii
1
Miconia ciliata (L.C. Rich.) DC.
1
Miconia dodecandra (Desr.) Cogniaux
1
Miconia egensis Cogn.
1
Miconia gratissima Benth. ex Triana
1
Total MELIACEAE
Miconia holosericea (L.) DC
1
MENDONCIACEAE
Miconia lepidota DC.
1
Total MENDONCIACEAE
Miconia marginata Triana.
1
Abuta grandifolia (Mart.) Sandw.
1
Miconia myriantha Benth.
1
Abuta grisebachii Triana y Planch.
1
Miconia nervosa (Smith) Triana
1
Abuta imene (Mart.) Eichler
1
Miconia pilgeriana Ule
1
Abuta obovata Diels.
1
Miconia prasina (Sw.) DC
1
Abuta pahnii (Mart.) Kruk.y Barneby.
1
Miconia pseudoaplostachya Cogn.
1
Abuta rufescens Aubl.
1
Trichilia trifolia L.
MENISPERMACEAE
544
1
12
Mendoncia cardonae Leonard
1
1
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
FAMILIA
MENISPERMACEAE
ESPECIE Y AUTOR
FAMILIA
ESPECIE Y AUTOR
Total
Inga ulei Harms.
1
Cissampelos andromorpha DC.
1
Inga umbellifera (Vahl) Steud.
1
Cissampelos pareira L.
1
Inga vera Willd.
1
Orthomene schomburgkii (Miers) B.y K.
1
Macrosamanea discolor (Humb. y Bonpl. ex
Willd.) Britton y Rose
1
1
1
10
Abarema adenophora (Ducke) BarnebyyGrimes val sp.af.
1
Macrosamanea pubiramea (Steud.) Barneby
y Grimes var. lindsaefolia Spruce ex. Benth.
Barneby y Grimes
Abarema jupunpa (Willd.) Briton y Killip
Sin. (Pithecellobium jupunba (Willd.) Urb.)
1
Mimosa arenosa Willd.
Abarema microcalyx var. microcalyx (Spruce ex Benth.) Barneby y J.W. Grimes
Mimosa camporum Benth.
1
1
Mimosa debilis Humb.yBonpl. ex Willd.
1
Acacia articulata Ducke.
1
Mimosa dormiens H. y B.
1
Acacia macracantha H. y B.
1
1
Acacia podadenia (Britton y Killip) L. Cardenas.
Mimosa microcephala subsp. cataractae var.
lumaria Barneby
1
Mimosa miriadenia Benth. var. miriadenia
1
Albizia corymbosa
Owen.
(Rich.) G.P.Lewis y
1
Mimosa pellita Humb. y Bonp.
1
Mimosa pellita Humb. y Bonp. Ex Willd
var. pellita
1
Mimosa pudica var. hispida Brenan
1
Albizia subdimidiata (Splitq.) Barn y Grimes.
1
Calliandra laxa Benth.
1
Newtonia suaveolens (Miq.) Brenan
1
Entada polyphylla Benth.
1
Parkia discolor Spruce ex Benth.
1
Entada polystachia (L.) DC.
chya.
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
1
Total MENISPERMACEAE
ssp. polysta-
1
Entada polystachya (L.) DC.
1
Enterolobium cydocarpum Griseb.
1
Enterolobium schomburgkii Benth.
MIMOSACEAE
Total
Abuta velutina Gleason
MIMOSACEAE
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
1
Hydrochorea corymbosa (Rich.) Barn. y
Grimes
1
Hydrochorea marginata var. panurensis
(Spruce ex Benth.) Barneby y J.W. Grimes
1
Inga alba (Sw.) Willd
1
Inga bourgoni Scop
1
Inga capitata Desv.
1
Inga coruscans Humb.y Bonpl. ex Willd.
1
Inga crocephala Steud.
1
Inga densilora Benth.
1
Parkia panurensis Benth. ex H.C. Hopkins
1
Parkia pendula (Willd.) Benth. ex Walp.
1
Pentaclyhra macroloba (Willd.) O.Kuntze
1
Piptadenia viridifolia (Kunth.)Benth.
1
Pithecellobium divaricatum Benth. Sin. Zygia divaricata Benth.
1
Pithecellobium caulilorum C.Martius.
1
Pithecellobium pistaciifolium Standl.
1
Pithecellobium roseum (Vahl) Bernaby
1
Pithecellobium unifoliolatum Benth.
1
Stryphnodendron guianense (Aubl.) Benth.
1
Stryphnodendron pulcherrimum (Willd.)
Hochr.
1
Zygia cataractae (Kunth.) L. Rico
1
1
Inga dumosa Benth.yHook
1
Zygia clavilora (Spruce ex Benth.) Barneby
y J.W. Grimes
Inga edulis Mart.
1
1
Inga fagifolia (L.) Wild.ex Benth.
1
Zygia inaequalis Humb. y Bonpl.ex Willd)
Pittier.
Inga gracilifolia Ducke
1
Zygia latifolia (L.) Fawc. y Rendle.
1
Inga hyerophylla Willd.
1
Zygia latifolia var. communis Barneby y
Grimes
1
Inga ingoides (Rich.) Willd.
1
Zygia unifoliolata (Benth.) Pittier
1
Inga laurina (Sw.) Willd.
1
1
Inga leiocalycina Benth.
1
Zygia unifoliolata Benth. Pitt. Sin. Pithecellobium unifoliolatum Benth.
Inga meissneriana Miq.
1
Inga nobilis Willd.
1
Inga oerstediana Benth. ex Seem
1
Inga pezizifera Benth.
1
Inga pilosula (Rich.) Macbr.
1
Inga quaternata Poepp.yEndl.
1
Inga sertulifera DC.
1
Zygia unifoliolatum (Willd.)Benth.
Total MIMOSACEAE
MONIMIACEAE
Siparuna guianensis Aubl.
Total MONIMIACEAE
MORACEAE
1
75
1
1
Brosimum guianense (Aubl.) Huber
1
Brosimum lactescens (S.Moore) C.C.Berg
1
Brosimum rubescens Taub.
1
1
Inga splendens Willd.
1
Brosimum utile (Kunth) Pittier subsp. ovatifolium (Ducke) C.C.Berg
Inga stenoptera Benth.
1
Clarisia ilicifolia (Spreng.) Lanj. y Rossb.
1
Inga thibaudiana D.C.
1
Ficus amazonica (Miq.) Miq.
1
545
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
FAMILIA
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
MORACEAE
ESPECIE Y AUTOR
ESPECIE Y AUTOR
Stylogyne micrantha (H.B.K.) Mez
Total
1
1
Ficus maxima Mill.
1
Ficus pakkensis Standl.
1
Calycolpus calophyllus (Kunth.) O. Berg
1
Ficus panurensis Standley
1
Calycolpus goyheanus (DC.) O.Berg
1
Ficus paraensis (Miq.) Miq.
1
Calyptranthes fasciculata Berg
1
Ficus schumacherii (Liebm.) Griseb
1
Calyptranthes forsteri O. Berg
1
Ficus trigonata L. vel af.
1
Calyptranthes multilora Berg.
1
Helianthostylis sprucei C.C.Berg
1
Calyptranthes pulchella DC.
1
Helicostylis scabra (Macbr.) C.C.Berg
1
Calyptranthes pullei var. immaculata Mc
Vaugh
1
Calyptranthes pullei Burry ex. Amshof
1
Helicostylis tomentosa
cher) J.F.Macbride
(Poeppig.yEndli-
MYRSINACEAE
Stylogyne orinocensis (HBK) Mez in Engl.
Total MYRSINACEAE
1
1
9
Maquira coriacea (Karst.) C.C.Berg
1
Calyptranthes pullei Burry.
1
Pourouma bicolor Mart. subsp. bicolor
1
Calyptranthes ruiziana O. Berg.
1
Pourouma guianensis Aubl. val sp. af.
2
Campomanesia aromatica Aubly
1
Pourouma minor Benoist
1
Eugenia amblyiosepala Mac Vaugh
1
Pourouma minor Benoist
3
Eugenia bilora (L.)DC.
1
Pourouma mollis Trecul ssp. mollis
1
Eugenia cachoeirensis O. Berg in Martius
1
Pseudolmedia laevigata Trecul
1
Eugenia chrysophyllum Poir. in Lam.
1
Pseudolmedia laevis (R.y P.) Macbr.
1
Eugenia cribata McVaugh
1
Sorocea muriculata Miq.
1
Eugenia egensis DC.
1
1
Eugenia feijoi Berg.
1
30
Compsoneura debilis (Spruce ex A. DC.)
Warb.
1
Compsoneura sprucei (A.DC.) Warb.
1
Heliconia acuminata L.C.Rich subsp. occidentalis L.Anderson
1
Heliconia acuminata L.C.Rich.
1
Total MUSACEAE
4
MYRTACEAE
Eugenia ferreiraeana O. Berg.
1
Eugenia lavescens DC.
1
Eugenia lorida DC.
1
Eugenia lambertiana DC.
1
Eugenia lambertiana var. lambertiana DC.
1
Eugenia pachystachya McVaugh
1
Eugenia patrisii Vahl
1
1
Eugenia pseudopsidium Jacq.
1
Iryanthera laevis Markgr.
1
Eugenia pubescens (H.B.K.) DC.
1
Iryanthera macrophylla (Benth.) Warb.
1
Eugenia punicifolia (H.B.K.) DC.
1
Iryanthera ulei Warb.
Iryanthera hostmanii Warb.
1
Eugenia roseilora McVaugh
1
Osteophloeum platyspermum (Spruce ex
A.DC.) Warb.
1
Eugenia tapacumensis Berg
1
Virola calophylla (Spruce) Warb.
1
Virola duckei A.C. Sm.
1
Virola elongata (Benth.) Warb., s.l.
1
Virola pavonis (A.DC.) A.C.Sm.
1
Virola sebifera Aubl.
1
Virola surinamensis (Rol.) Warb.
1
Total MYRISTICACEAE
MYRSINACEAE
FAMILIA
Ficus mathewsii (Miq.) Miq.
Trymatococcus amazonicus Poepp. y Endl.
MYRISTICACEAE
GRUPO
1
Total MORACEAE
MUSACEAE
Total
Ficus guianensis Desv. in Ham.
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
11
Marlierea karuaiensis (Steyerm.) Mc Vaugh
1
Marlierea spruceana O.Berg
1
Marlierea suborbicularis McVaugh
1
Marlierea umbraticola (H.B.K.) O. Berg
1
Marlierea unilora McVaugh
1
Myrcia inaequiloba (DC.) Legrand
1
Myrcia bracteata (Rich.) DC.
1
Myrcia brucelata (Rich.) DC.
1
Cybianthus amplus (Mez) G. Agostini
1
Cybianthus fulvopulverulentus subsp. magnolifolius (Mez) Pipoly
1
Cybianthus guyanensis subsp. pseudoicacoreus (Miq.) Pipoly
1
Cybianthus prieurei A. DC.
1
Cybianthus ryiculatus (Benth. ex Miq.) G.
Agostini
1
Myrcia guianensis (Aubl.) DC.
1
Cybianthus spicatus (H.B.K.) G. Agostini
1
Myrcia paivae O. Berg.
1
Stylogyne longifolia (Mart. y Miq) Mez.
1
Myrcia pyrifolia (Desv. ex Ham.) Nied.
1
546
Myrcia citrifolia (Aubl.) Urb.
1
Myrcia delexa (Poir.) DC.
1
Myrcia dichasialis McVaugh
1
Myrcia fallax (Rich.) DC.
1
Myrcia grandis Mc Vaugh
1
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
FAMILIA
ESPECIE Y AUTOR
Total
Myrcia splendens (Sw.) DC.
1
Myrciaria dubia (H.B.K.) Mc Vaugh
1
Myrciaria loribunda (West ex Willd.) O.
Berg.
1
Pseudanamomis
Kause
umbellulifera
(H.B.K.)
Psidium acutangulum DC
MYRTACEAE
Psidium maribense Mart. ex DC.
1
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
Total
1
Heisteria spruceana Engler
1
Minquartia guianensis Aubl.
1
ONAGRACEAE
10
Ludwigia ainis (DC.) Hara
1
Ludwigia decurrens Walter
1
Ludwigia elegans (Canb.) Hara
1
Ludwigia erecta (L.) Hara
1
Ludwigia helminthorrhiza (Mart.) Hara
1
Psidium ovatifolium Berg. ex. Descr.
1
Psidium persoonii McVaugh
1
Ludwigia hyssopifolia (G. Don.) Exell
1
Psidium salutare (H.B.K.) O. Berg.
1
Ludwigia latifolia (Benth.) Hara
1
1
Ludwigia octovalis (Jacq.) Raven
57
Total ONAGRACEAE
Boerhavia coccinea Mill.
1
OPILIACEAE
Guapira sipapoana Steyerm.
1
Total OPILIACEAE
Neea davidsei Steyerm.
1
OXALIDACEAE
Total NYCTAGINACEAE
1
8
Agonandra brasiliensis Miers ex Benth.
1
Biophytum calophyllum (Progel.) Guill.
1
Ceratopteris pteridoides (Hook) Hieron.
1
1
3
Total OXALIDACEAE
Blastemanthus gemmilorus (Mart.) Planch.
1
PARKERIACEAE
Blastemanthus gemmilorus subsp. sprucei
(Tieghen) Sastre
1
Total PARKERIACEAE
Elvasia canescens (Tiegh.) Gilg
1
Dilkea acuminata Mast.
Elvasia elvasioides (Planch.) Gilg.
1
Dilkea wallisii Mart.
1
Passilora auriculata H.B.K.
1
Elvasia quinqueloba Spruce ex Engler in
Mart.
1
Ouratea acuminata (DC.) Engl.
1
Ouratea af. discophora Ducke
1
Ouratea castaneaefolia (DC.) Engler
1
Ouratea evoluta Maguire y Steyermark
1
Ouratea ferruginea Engl.
1
Ouratea grandilora (DC.) Engl.
1
Ouratea guianensis Aubl.
1
Ouratea guildingii (Planchan)Urban
1
Ouratea polyantha (Triana y Planch.) Engl.
1
Ouratea spruceana Engl.
1
Ouratea steyermarkii Sastre
1
Ouratea superba Engl.
1
Ouratea thyrsoidea Engl.
1
Sauvagesia aliciae Sastre.
1
Sauvagesia angustifolia Ule.
1
Sauvagesia erecta L.
1
Sauvagesia ramosissima Spruce ex Eichl.
in Mart.
Wallacea insignis Spruce ex Benth.
Total OCHNACEAE
OLACACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Heisteria maytenoides Spruce ex Engl. in
Mart.
Total OLACACEAE
1
1
Syzygium cumini (L.) Skeels.
OCHNACEAE
FAMILIA
OLACACEAE
1
Psidium densicomum DC. (=P. ovatifolium
Berg.)
Total MYRTACEAE
NYCTAGINACEAE
GRUPO
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
PASSIFLORACEAE
1
1
Passilora capparidifolia Killip
1
Passilora cardonae Killip
1
Passilora costata Mast.
1
Passilora foyida L.
1
Passilora misera H.B.K.
1
Passilora nitida H.B.K.
1
Passilora securiclata Mart.
Total PASSIFLORACEAE
PEDALIACEAE
1
10
Byttneria rhammifolia Benth.
1
Craniolaria annua L.
1
Pyiveria alliacea L.
1
Sesamum orientale L.
Total PEDALIACEAE
PHYTOLACACEAE
1
1
4
Phytolacca rivinoides Kunth.ex Bouché.
1
Rivina humilis L.
1
Total PHYTOLACACEAE
2
Peperomia difolia (L.) H.B.K.
1
1
Peperomia elongata H.B.K.
1
1
Peperomia glabella (Vahl.)A. Diyrich.
1
23
Peperomia macrostachya (Vahl.) A. Diyr.
1
Peperomia maypurensis H.B.K.
1
Cathedra acuminata (Benth.) Miers
1
Chaunochiton loranthoides Benth.
1
Dulacia candida (Poepp.) Kuntze.
PIPERACEAE
Peperomia rotundifolia (L.)H.B.K.
1
1
Piper adenandrum (Miq.) C.DC.
1
Dulacia guianensis (Engl.) Kuntze
1
Piper amalago L.
1
Heisteria acuminata (Humb.) Engl.
1
Piper arboreum Aubl.
1
Heisteria barbata Cuatrec.
1
Piper bartlingianum (Miq.) C. DC.
1
Heisteria duckei Sleumer
1
Piper cf. arboreum Aubl.
1
547
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
FAMILIA
PIPERACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Total
Piper coruscans H.B.y K. var. membranaceum (C.DC.) Steyerm.
1
Piper coruscans Kunth.
1
Piper demeraranum (Miq.) C.DC.
1
Piper dilatatum Rich.
1
Piper glabrescens (Miq.) C.DC.
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
Microgramma
C.Presl.
POLYPODIACEAE
persicariifolia
(Schrad.)
1
1
Piper hispidum Sw.
1
Niphidium crassifolium (L.) Lellinger.
1
Piper marginatum Jacq.
1
Polypodium triseriale Sw.
1
Total POLYPODIACEAE
18
Plumbago scandens L.
9
1
Portulaca halimoides L.
1
1
1
1
Portulaca oleracea L.
Apinagia longifolia (Tul.) Van Sogen
1
Portulaca pusilla H.Bok.
Apinagia richarcliana (Tul.) P. Royer.
1
Portulacca sedifolia N.E.Br.
1
Mourera luviatilis Aubl.
1
Talinum paniculatum (Jacq.) Gaertner.
1
Oenone alcicornis (Tul.) Wedd.
1
Weddellina squamulosa Tul.
1
PORTULACACEAE
Talinum triangulare (Jacq.) Willd.
Total PORTULACACEAE
5
Bredemeyera lucida (Benth.) Klotzsch ex
Hassk.
1
Diclidanthera bolivarensis Pittier.
1
PROTEACEAE
1
6
Panopsis rubescens (Pohl) Rusby
1
Roupala montana Aubl.
1
Roupala obtusata Klotzsch
Total PROTEACEAE
1
3
Diclidanthera cf. pendulilora Mart.
1
Quiina guianensis Aubl.
Moutabea guianensis Aubl
1
Quiina longifolia Spruce ex Planch. y Triana
1
Polygala appressa Benth.
1
Quiina rhytidopus Tul.
1
Polygala longicaulis H.B.K.
1
Polygala sanariapoana Steyerm.
1
Polygala violacea Aubl.
1
Securidaca coriacea Bonpl.
1
Securidaca diversifolia (L.) Blake
1
Securidaca marginata Benth.
1
1
QUIINACEAE
Quiina tinifolia Pl. y Tr.
Total QUIINACEAE
RHIZOPHORACEAE
1
1
4
Cassipourea guianensis Aubl.
1
Sterigmapyalum guianense subsp. ichunense
Steyerm. y Liesner
1
Total RHIZOPHORACEAE
2
Alibertia bertierifolia K. Schum.
1
Alibertia edulis (L.) Rich.
1
Alibertia latifolia (Benth.) Schumm. var.
Parqueniana
1
1
Securidaca paniculata Rich. var. lasiocarpa
Oort
1
Securidaca pendula Bonpl.
1
Securidaca warmingiana Chodat
1
Alibertia latifolia (Benth.) Schumm. vel.
sp.af.
15
Amaioua corymbosa H.B.K.
1
1
Amaioua corymbosa HBK
1
Coccoloba dugandiana A. Fernandez
1
Amaioua guianensis Aubl.
1
Coccoloba excelsa Benth.
1
Bertiera guianensis Aubl.
1
Coccoloba fallax Lindau
1
Borreria alata (Aubl.) DC.
1
Coccoloba marginata Benth.
1
Coccoloba obtusifolia Jacq.
1
Coccoloba ovata Benth.
Polygonum hydropiperoides Michx.
Ruphrechtia cruegerii Griseb
1
Ruprechtia tenuilora Benth.
1
Total POLYGALACEAE
Antigonon leptopus Hooker y Arnott.
Borreria laevis (Lam.) Griesb.
1
Borreria densilora DC.
1
1
Borreria intrincata Steyerm.
1
1
Borreria latifolia var. latifolia f. minor (K.
Schum.) Steyerm.
1
RUBIACEAE
Borreria ocimoides (Burm. f.) DC.
1
1
Symmeria paniculata Benth.
1
Borreria pygmaea Spruce ex K. Schum. in
Mart.
Triplaris americana L.
1
Borreria verticillata (L.)G.Meyer
1
12
Chimarrhis bathysoides Steyerm.
1
Campyloneurum phyllitidis (L.) C. Presl.
1
Chiococca alba (L.) Hitch.
1
Microgramma baldwinii Brade
1
Chomelia caurensis (Standl.) Steyerm.
1
Microgramma baldwinii Brade.
1
Chomelia caurensis (Standl.)Steyerm.
1
Total POLYGONACEAE
POLYPODIACEAE
1
1
Securidaca paniculata Rich.
POLYGONACEAE
Total
Microgramma tecta (Kaulf.) Alston
Total PODOSTEMONACEAE
POLYGALACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Microgramma persicariifolia (Schrad) C.
Presl.
1
Total PLUMBAGINACEAE
PODOSTEMONACEAE
FAMILIA
Microgramma reptans (Cav.) A.R.Sm.
Total PIPERACEAE
PLUMBAGINACEAE
GRUPO
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
548
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
FAMILIA
ESPECIE Y AUTOR
1
Chomelia grabiuscula Steyerm.
1
Chomelia volubilis (Standl.) Steyerm.
1
Cosmibuena grandilora (Ruiz y Pavon)
Rusby
Diodia apiculta (Willd.) Schum.
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
FAMILIA
ESPECIE Y AUTOR
Total
Palicourea grandifolia var. sprucei (Müll.
Arg.) Steyerm.
1
1
Palicourea nitidella (Müll. Arg.) Standl
1
1
Palicourea triphylla DC.
1
1
Perama dichotoma Poepp. var. Dichotoma
1
Perama galioides (Kunth) Poir.
1
Posoqueria latifolia (Rudgo)Roen. y Schult.
1
Posoqueria longilora Aubl.
1
1
Diodia teres (SW)Steyerm. ssp prostrata
1
Diodia teres Walt.
1
Duroia fusifera Hook. ex K. Schum. in
Mart.
1
Duroia genipoides Hook. f. ex Schumann
1
(Ladbr.) Zarucchi y
GRUPO
Palicourea lancigera (Standl.) Steyerm.
Diodia hyssopifolia (Willd ex Roem y
Schult) Cham y Schult.
Duroia micrantha
Krkbride
RUBIACEAE
Total
Chomelia caurensis (Standl.)Steyerm.
1
Posoqueria longilora Aubl.
1
Posoqueria panamensis Walp.
2
Posoqueria williamsii Steyerm.
1
Psychotria adderleyi Steyerm.
1
Psychotria amplectens Benth.
1
Duroia sprucei Rusby
1
Psychotria anceps Benth.
1
Faramea capillipes Müll. Arg.
1
Psychotria bahiensis DC var. cornigera
(Benth.) Steyer.
1
Faramea corymbosa Aubl.
1
Faramea crassifolia Benth.
1
Faramea morilloi Steyerm.
1
Faramea multilora Rich.
1
Faramea occidentalis Rich.
1
Faramea occidentalis subsp. occidentalis var.
meridionalis Steyerm.
1
Faramea orinocensis Standl.
1
Faramea rectinervia Standley
1
Faramea sessilifolia (Kunth) A.DC
1
Ferdinandusa guainiae Spruce ex K.Schum.
1
Genipa americana L.
1
Genipa americana L. var. americana.
1
Genipa americana L. var. caruto
1
Guytarda divaricata (H. y B.) Standl.
1
Henriquezia nitida var. nitida Spruce ex
Benth.
1
Isertia hypoleuca Benth.
1
Isertia parrilora Vahl.
1
Ixora acuminatissima M.Arg.
1
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
Psychotria bracteocardia (A. DC) Müll. Arg.
1
Psychotria capitata RyP
1
Psychotria capitata subsp. inundata (Benth.) Steyerm.
1
Psychotria cardiomorpha C.M. Taylor y A.
Pool
1
Psychotria
H.B.K.
RUBIACEAE
cordifolia
subsp.
cordifolia
1
Psychotria delexa DC.
1
Psychotria delexa subsp. venulosa (M.Arg.)
Steyerm
1
Psychotria hofmannseggiana (Willd. Ex
Roem y Schult.) Müll. Arg.
1
Psychotria hofmannseggiana var. hofmannseggiana (Willd. ex Roem. y Schult.)
Müll. Arg..
1
Psychotria lindenii Standl.
1
Psychotria longicuspis Mûll.Arg.
1
Psychotria lupulina Benth.
1
Psychotria lupulina subsp. rhodoleuca var.
maypurensis (H.B.K.) Steyerm.
1
Psychotria microdon (DC.) Orb.
1
Psychotria oicinalis (Aubl.) Sandw.
1
Malanea gabrielensis Müll. Arg.
1
Mitracarpus hirtus (L.) DC.
1
Psychotria poeppigiana Müll. Arg. spp.
Poeppigiana
1
Morinda peduncularis HBK
1
Psychotria poeppigiana Müll.Arg.
1
Morinda tenuifolia (Benth.) Steyerm.
1
Psychotria polycephala Benth.
1
Oldenlandia lancifolia (Schum.) DC.
1
Psychotria puberulenta Steyerm.
1
Pagamea coriacea Spruce ex Benth.
1
Psychotria racemosa (Aubl.) Raeuschel
1
Pagamea coriacea var. coriacea Spruce ex
Benth.
1
Psychotria rosea Benth. Müll. Arg. var. rosea
1
Pagamea guianensis var. guianensis Aubl.
1
Psychotria ulviformis Steyerm.
1
Psychotria vasivensis (Müll.Arg.) Standl.
1
Pagamea montana Standley.
1
Palicourea calophylla DC.
1
Palicourea corymbifera (Müll. Arg.) Standl.
1
Palicourea crocea (Sw.) R. y S. var. riparia
(Benth.) Griseb
Randia formosa (Jacq.) K.Schum. formosa
1
1
Randia formosa (Jacq.)K.Schum.
1
Palicourea crocea (Sw.) Roem. y Schult.
1
Randia venezuelanensis Stey.
1
Palicourea fastigiata HBK
1
Remijia densilor (Standl. y Steyerm.
1
549
Randia armata (Sw.) DC.
1
Randia cf. handensis Karst
1
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
FAMILIA
ESPECIE Y AUTOR
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
Total
1
Paullinia caloptera Radlk.
1
Paullinia capreolata (Aubl.) Radlk.
1
Remijia morilloi Steyerm. in Luces y Steyerm.
1
Remijia pacimonica Standl.
1
Remijia roraimae (Benth) Schum.
1
Remijia wurdackii Steyerm.
1
Ryiniphyllum paucilorum Kunth ex Krause
1
Rosenbergiodendron formosum (Jacq.) Fagerlind
1
Rudgea cornifolia (HyB) Standley
1
Rudgea crassiloba Benth.
Rudgea duidae (Standl.) Steyerm.
SAPINDACEAE
1
Paullinia clathata Radlk.
1
Paullinia clavigera Schlecht.
1
Paullinia cururu L.
1
Paullinia leiocarpa Griseb.
1
Paullinia micrantha Camb. in Hill
1
Paullinia pinnata L.
1
Paullinia rufescens Rich.
1
1
Paullinia rugosa Benth. ex Radlk.
1
1
Paullinia tyragona Aubl.
1
1
Sapindus saponaria L.
1
Rudgea laurifolia (H.B.K.) Steyerm.
1
Serjania adusta Radlk..
1
Rudgea sclerocalyx (Müll. Arg.) Zappi
1
Toulisia cf. pulvinata Radlk.
1
Rudgea stipulacea (DC.) Steyerm.
1
Toulisia irma Radlk.
1
Rudgea woronovii Standley
1
Toulisia guianensis Aubl.
1
Sabicea brachycalyx Steyerm.
1
Toulisia nervosa Radlk.
1
1
Trichilia trifolia L.
1
Total SAPINDACEAE
Simira rubescens (Benth.) Bremek. ex.
Steyerm. Sin. (Sickingia tinctoria (Kunth)
Schumann)
1
Sipanea glomerata H.B.K. var. Glomerata
1
29
Chrysophyllum argenteum Jacq. ssp. auratum (Miq.) Penn.
1
Chrysophyllum pomiferum (Eyma) Penn.
1
Ecclinusa guianensis Eyma
1
Sipanea veris S. Moore
1
Sphinctanthus striilorus (DC) Hook
1
Stachyarrhena duckei Standl.
1
Stachyarrhena pendulilora K. Schum. in
Mart.
1
Stachyarrhena ryiculata Steyerm.
1
Stachyarrhena spicata Hook. f.
1
Manilkara achras (Mill) Fosberg
1
Uncaria guianensis (Aubl.) Gmel.
1
Manilkara bidentata (A.DC.) A.Chev.
1
1
Manilkara bidentata subsp. surinamensis
(Miq.) Penn.
1
Warszewiczia coccinea (Vahl) Klotzsch
138
Angostura trifoliata (Willd.) T.Elias
1
Decagonocarpus oppositifolius Spruce ex
Engl. in Mart.
1
Ertela trifolia (L.) Kuntze.
1
Total RUTACEAE
SAPOTACEAE
3
Salvinia auriculata Aubly
Salvinia minima Baker.
Total SALVINIACEAE
Cardiospermum halicacabum L.
SAPINDACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Remijia longifolia Benth. ex Standl.
Total RUBIACEAE
SALVINIACEAE
FAMILIA
Melicoccus bigugatus Jacq.
Simira aristeguiyae (Steyerm.) Steyerm.
RUTACEAE
GRUPO
1
Rudgea hostmanniana Benth.
RUBIACEAE
Total
Remijia irmula (Mart.) Weddell
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
Elaeoluma af. nuda (Baehni) Aubrév.
1
Elaeoluma crispa T.D. Penn.
1
Elaeoluma glabrescens (Mart. y Eichler)
Aubrév.
1
Elaeoluma schomburgkiana (Miq.) Baillon
1
Matayba camptoneura Radlk.
1
Matayba elegans Radlk.
1
Micropholis egensis (A. DC.) Pierre
1
Micropholis guyanensis (A.DC.) Pierre
1
1
Micropholis humboldtiana
Schult.) Penn.
(Roem.
y
1
1
Micropholis melinoniana Pierre
1
2
Micropholis venulosa (Mart. y Eichl.) Pierre
1
1
Paullinia ingaefolia Rich. in Juss.
1
Paullinia rufescens L.C.Rich
1
Pouteria amygdalicarpa (Pih.)Penn.
1
1
Pouteria arcuata Penn.
1
1
Pouteria caimito (Ruiz y Pavon) Radlk.
1
1
Pouteria cuspidata (A.DC.) Baehni
1
Matayba arborescens (Aubl.)Radlk.
1
Matayba camptoneura Radlk.
1
Pouteria cuspidata (A.DC.) Baehni subsp.
robusta (Mart.yEich.) Penn. comb. y stat.
novo
1
Pouteria elegans (A. DC.) Baehni.
1
Pouteria gabrielensis (Gilly ex Aubrév.) T.D.
Penn.
1
Cardiospermum halicacabum var. microcarpum (H.B.K.) Blume
1
Cupania cinerea Poepp.
Cupania latifolia Poepp y Endl.
Cupania scrobiculata Rich.
Matayba elegans Radlk.
1
Matayba inelegans Spruce ex Radlk.
1
Matayba scrobiculata Radlk.
1
550
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
FAMILIA
SAPOTACEAE
ESPECIE Y AUTOR
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
Total
1
Byttneria aristeguiyae Cristób.
1
Pouteria maguirei Aubrév.
1
Byttneria piresii Cristób.
1
Pouteria minima Penn.
1
Byttneria rhamnifolia Benth.
1
Pouteria orinocoensis (Aubr.) Penn.
1
Guazuma ulmifolia Lam.
1
Pouteria pimichinensis T.D. Penn.
1
Guazuma ulmifolia Lam. var. ulmifolia
1
Pouteria plicata Penn.
1
Helicteres guazumaefolia H.B.K.
1
Pouteria ryiculata (Engler) Eyma subsp. surinamensis Penn. subsp. nov.
1
STERCULIACEAE
Herrania
R.E.Schultes
lemniscata
(Schomb.)
1
Pouteria ryiculata (Engler) Eyma.
1
Melochia arenosa Benth.
1
Pouteria ryiculata (Eyl.) Eym. ssp. Ryiculata
1
Melochia tomentosa L.
1
36
Sterculia peruviana (Simpson) Taylor.
1
1
1
Bacopa callitrichoides (HBK) Pennell
1
Sterculia pruriens (Aubl.) Schuman
Lindernia crustaceae (L.) F. Muell.
1
Sterculia pruriens (Aubl.) Schuman var
miriadenia
Mecardonia procumbens (Mill.) Small
1
Scoparia dulcis L.
1
Stemodia foliosa Benth.
1
Waltheria indica L.
Total STERCULIACEAE
STRELIACACEAE
5
Picramnia sellowii Planchon spruceana
1
Total STRELIACACEAE
Pricamnia magnifolia Macbride
1
STYRACACEAE
Simaba cedron Planch.
1
Simaba guianensis Aubl.
1
Simaba multilora H.B.K.
1
Simaba obovata Spruce
1
Simaba orinocensis Kunth
1
Simarouba amara Aubl.
1
Cestrum latifolium Lam.
1
1
Lycianthes paucilora (Vanl.) Bitter.
1
Markea formicarum Dammer
1
Markea porphyrobaphes Sandwith
1
Physalis angulata L.
1
Physalis pubescens L.
THEOPHRASTACEAE
Phenakospermum guyanense (L.C.Rich.)
Endl. ex Miq.
1
1
Styrax oblongus (R.yP.) A.DC., previously S.
guianensis A.DC.
1
1
Clavija lancifolia Desf.
1
Clavija lancifolia Desf. ssp. chermountiana
(Standl.) Stahl
1
Total THEOPHRASTACEAE
THYMELACEAE
1
13
Total STYRACACEAE
8
Lycianthes lenta (Cav.) Benth.
Lasiadenia rupestris Bentham
Total THYMELACEAE
2
1
1
Apeiba aspera Aubl. s.lat.
1
Apeiba aspera subsp. membranacea (Spr.
yBenth.) MeijerySty.
1
Corchorus aestuans L.
1
Luehea candida Mart.
1
Luehea seemannii Tr. y Planch.
1
1
Lueheopsis althaeilora (Spruce ex Benth.)
Burry
1
Schwenckia americana L.
1
Mollia lepidota Spruce ex Benth.
1
Schwenckia grandilora Benth.
1
Mollia speciosa Mart.
1
Solanum americanum Mill.
1
Triumfyta semitriloba Jacq.
1
Solanum asperum Rich.
1
Vasivaea alchorneoides Baillon.
Solanum bicolor Roemer y Schultes
1
Solanum crinitum Lam.
1
Trigonia laevis Aubl. var. microcarpa Sagot
1
Solanum lanceifolium Jacq.
1
Trigonia sericea H.B.K.
1
Solanum leucocarpon Cunal
1
Trigonia spruceana Benth. ex Warm.
1
Solanum monacophyllum Dunal
1
Trigonia villosa Aubl. villosa
1
Solanum pensile Sendth.
1
Solanum rugosum Dunal
1
Piriquya cistoides (L.) Griseb.
1
Solanum schomburgkii Sendth.
1
Piriquya undulata Urb.
1
Solanum stramonifolium Jacq.
1
Turnera acuta Willd. ex Roem. y Schult
1
Solanum subinerme Jacq.
1
Turnera castilloi Arbo
1
21
Turnera guianensis Aubly
1
1
Turnera odorata Rich.
1
Total SOLANACEAE
SPHENOCLEACEAE
ESPECIE Y AUTOR
1
Total SIMAROUBACEAE
SOLANACEAE
FAMILIA
Total SPHENOCLEACEAE
Pouteria guianensis Aubl.
Total SCROPHULARIACEAE
SIMAROUBACEAE
GRUPO
1
Total SAPOTACEAE
SCROPHULARIACEAE
Total
Pouteria gomphiaefolia (Mart.) Radlk.
ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
GRUPO
Sphenoclea zeylanica Gaertn.
TILIACEAE
Total TILIACEAE
TRIGONIACEAE
Total TRIGONIACEAE
TURNERACEAE
551
1
10
4
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
FAMILIA
TURNERACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Total
Turnera pumilea L.
1
Turnera scabra Millsp.
1
Turnera steyermarkii Arbo
1
Total TURNERACEAE
ULMACEAE
1
Cissus spinosa Cambessédes.
1
Cissus verticillata (L.) Nicols. y Jarvis
1
Total VITACEAE
5
Erisma blancoa Marc.-Berti
Celtis iguanea (Jacq.) Sarg.
1
Erisma calcaratum (Link.) Warm.
1
Trema micrantha (L.) Blume
1
Erisma uncinatum Warm.
1
1
1
3
Qualea acuminata Spruce ex Warm.
Laportea aestuans (L.) Chew.
1
Qualea dinizii Ducke
1
Urera baccifera (L.)Gand.
1
Qualea paraensis Ducke
1
1
Qualea ryusa Spruce ex Warming
1
3
Ruizterania ferruginea (Steyerm.) Marc.Berti.
1
Ruizterania obtusata (Briq.) Marc.-Berti
1
1
1
Aegiphila mollis H.B.K.
1
Amasonia arborea HBK
1
Amasonia campestris Kunth
1
Ruizterania ryusa (Spruce ex Warm.) Marcano-Berti
Lantana camara L.
1
Vochysia ferruginea Mart.
Lippia alba (Mill.) N.E. Br.
1
Vochysia glaberrima Warm. in Mart.
1
Pyrea blanchyiana Schauer
1
Vochysia obscura Warm.
1
Pyrea macrostachya Benth.
1
Vochysia steyermarkiana Marc.-Berti
1
Priva lappulacea (L.) Pers.
1
Vochysia surinamensis Stal.
1
Stachytarphya cayennensis (L.C. Rich.)
Vahl.
1
Vochysia surinamensis Staleu var. surinamensis
1
Vitex capitata Vahl.
1
Vochysia tyraphylla (G.Meyer) DC.
1
1
Vochysia venezuelana Stalen
Vitex orinocensis Kunth. var. multilora
(Miq.) Huber
Total VERBENACEAE
VOCHYSIACEAE
Total VOCHYSIACEAE
11
Amphirrhox latifolia Mart.
1
Amphirrhox longifolia (St.Hil.) Sprengel
1
Corynostylis arborea (L.) Blake
1
Corynostylis arborea (L.) S.F.Blake
1
Corynostylis carthagenensis Karsten.
1
Corynostylis volubilis Smith y Fernández
1
Dendrophthora tepuiana (Steyerm.) Kuijt
1
ZINGIBERACEAE
1
18
Costus arabicus L.
1
Costus scaber R.y P.
1
Costus spiralis (Jacq.) Roscoe
1
Renealmia loribunda Schum. in Engl.
1
Renealmia monosperma Miq.
Total ZINGIBERACEAE
1
5
Total ANGIOSPERMAE-Dicotyledoneae
1720
Hybanthus oppositifolius (L.) Taubert.
1
Echinodorus grandilorus (Cham y Schl.)
Mich.
Leonia cymosa Mart.
1
Echinodorus latifolius (Seub.)Rotoj.
1
Leonia glycycarpa Ruiz y Pav.
1
Echinodorus paniculatus Micheli.
1
Phoradendron crassifolium (Pohl) Eichler
in Mart.
1
Phoradendron strongyloclados Eichler in
Mart.
1
Phoradendron undulatum (Pohl.) Eichl.
1
Rinorea camptoneura (Radlk.) Melch.
1
Rinorea lavescens (Aubl.) Kuntze
1
Rinorea lindeniana (Tul.) Kuntze
1
Rinorea macrocarpa
O.Kuntze.
(Mart.ex
Eichl.)
1
Rinorea riana O.Kuntze vel sp. af.
1
Rinorea sprucei (Eichler) Kuntze
ALISMATACEAE
1
Rinorea pubilora (Benth).Sprague y Sandwith.
Total VIOLACEAE
VITACEAE
VITACEAE
Total
1
Urera caracasana (Jacq.) Gaudich
VIOLACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Cissus sicloydes L.
9
Total URTICACEAE
VERBENACEAE
FAMILIA
Ampelocera edentula Kuhlman
Total ULMACEAE
URTICACEAE
GRUPO
ANGIOSPERMAE-Monocotyledoneae
GRUPO
1
Echinodorus tenellus (Mart)Buch.
1
Sagittaria guyanensis HBK.
1
Sagittaria lancifolia L.
1
Sagittaria planitiana Agost.
1
Sagittaria rhombifolia Cham.
1
Total ALISMATACEAE
8
Anthurium clavigerum Poepp.
1
Anthurium davigeceum Poepp.
1
Anthurium gracile (Rudge) Schott
1
Caladium bicolor (Aiton) Vent.
1
Dracontium asperum K.Koch.
1
1
Hyeropsis lexuosa (H.B.K.) Bunting
1
20
Hyeropsis lexuosa (H.B.K.) Bunting var.
lexuosa
1
Hyeropsis lexuosa (H.B.K.) Bunting var.
maguirei
1
Cissus alata Jacq.
1
Cissus erosa L.C.Rich
1
ARACEAE
552
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
FAMILIA
ARACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Total
Total
1
Hyeropsis steyermarkii Bunting var robusta
1
Pitcairnia pruinosa H.B.K.
1
Hyeropsis tenuispadix Bunting
1
Tillandsia lexuosa Sw.
1
Monstera adansonii Schott.
1
Tillandsia adpressilora Mez.
1
Monstera obliqua Miq.
1
Tillandsia balbisiana Schut.f.
1
Monstera spruceana (Schott) Engl.
1
Tillandsia bulbosa Hook
1
Montrichardia arborescens (l.) Schott
1
Tillandsia elongata H.B.K.
1
1
Tillandsia paraensis Mez.
1
Tillandsia usneoides Sw.
1
Philodendron
Kunth.
fragrantissimum
(Hook)
Philodendron hylaeae Bunting
1
Piptocarpha ovata (Benth.) Baker
1
Piptocoma areolata (Wurdack) Pruski
1
Piptocoma schomburgkii (Sch. Bip.) Pruski
1
Pistia stratiotes L.
1
Rhodospatha oblongata Poepp.
1
Spathiphyllum cuspidatum Schott
1
BROMELIACEAE
Vriesea socialis L.B. Sm.
Total BROMELIACEAE
BURMANNIACEAE
1
1
Astrocaryum gynacanthum Mart.
1
Astrocaryum jauari Mart.
1
Attalea butyracea (Mutis ex L.f.) Wess.
1
Attalea maripa (Aubl.) Mart.
1
Bactris acanthocarpa Mart. var trailiana
1
Bactris acanthocarpa Mart. var. acanthocarpa
1
Bactris brongniartii Mart.
1
Bactris gasipaes Kunth. in Humb.
1
Bactris guineensis (L.) Moore.
1
Bactris maraja Mart. sin. (Bactris brongnartii Mart.)
1
Bactris simplicifrons Mart.
1
Bactris trailiana Barb.Rodr.
1
Copernicia tectorum (H.B.K.) Mart.
1
Desmoncus orthacantus Mart.
1
Desmoncus polycanthos Mart.
1
Euterpe precatoria Mart. var. precatoria
1
Geonoma baculifera (Poit.) Kunth.
1
Geonoma deversa (Poit.) Kunth
1
Hyospathe elegans Mart.
1
Iriartella syigera Wend.
1
Leopoldinia piassaba Wallace
1
Leopoldinia pulchra Mart.
1
Mauritia lexuosa L. f.
1
Mauritiella aculeata (Kunth) Burry
1
Oenocarpus bacaba Mart.
1
Oenocarpus bataua Mart.
1
Socratea exorrhiza (Mart.) H. Wend.
1
Total ARECACEAE
COMMELINACEAE
Dictyostega orobanchoides subps. parvilora
(Benth.) Snelders y Maas
29
1
1
Commelina difusa Burm.
1
Commelina erecta L.
1
Commelina ruipes Seub. var. glabrata
(D.Hunt) Faden y D.Hunt
1
Dichorisandra hexandra Standley
1
5
Dicranopygium cf. yacu-sisa Harling
1
Dicranopygium nanum (Gleason) Harling.
1
Ludovia lancifolia Brongn
1
horacocarpus bisectus (Vell.) Harling
1
Total CYCLANTHACEAE
Bulbostylis hirta (hunb) Svenson
CYPERACEAE
1
Callisia iliformis (M.Martens y Galeotti)
D.R.Hunt.
Total COMMELINACEAE
CYCLANTHACEAE
1
12
Total BURMANNIACEAE
23
Astrocaryum chambira Burry
ANGIOSPERMAE-Monocotyledoneae
ESPECIE Y AUTOR
Pitcairnia caricifolia Mart.ex Schult.f.
Acrocomia aculeata (Jacq.) Lodd. ex Mart.
BROMELIACEAE
FAMILIA
1
Total ARACEAE
ARECACEAE
GRUPO
Hyeropsis spruceana Schott.
ANGIOSPERMAE-Monocotyledoneae
GRUPO
4
1
Calyptrocarya bicolor (H.Pfeif)T.Koyama.
1
Calyptrocarya glomerulata (Brongn.) Urban
1
Calyptrocarya poeppigiana Kunth.
1
Cyperus laxus dam
1
Cyperus aggregatus (Willd.) Endl.
1
Cyperus aggregatus (Willd.) Endl.
1
Cyperus diformis L.
1
Cyperus hermaphroditus (Jacq.) Urban
1
Cyperus imbricatus Ryz.
1
Cyperus laxus Lam.
1
Cyperus ligularis L.
1
Cyperus longifolium (Rich.)Nees.
1
Cyperus luzulae ( L ). Rottb. Ex Ryz
1
Cyperus macrostachyos Lam.
1
Cyperus miliifolius Poepp.y Kunth.
1
Cyperus odoratus L.
1
Cyperus rotundus L.
1
Cyperus sphacelatus Rottb.
1
Cyperus traillii C.B.clarke.
1
Cyperus virens Michx.
1
Diplasia karatifolia L.C.Rich.
1
Aechmea tillandsioides (Mart ex Schult)
Baker.
1
Eleocharis elegans (Kunth) Roem y Schult.
1
Ananas parguazensis Camargo y L.B.Smith.
1
Eleocharis iliculmis Kunth
1
553
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
FAMILIA
ESPECIE Y AUTOR
1
Eleocharis subfoliata C.B. Clacke.
1
Fimbristylis miliacea (L.) vahl
1
Fimbristylis vahlii (Lam.) Link.
1
Fuirena umbellata Rottb.
1
Hypolytrum pulchrum (Rudge) H. Pfeif.
1
Killinga pumila Michx.
1
Lipocarpha micrantha (Vahl) G.C.Tucker
1
Oxycaryum cubense (Poepp y Kunth) Palla.
CYPERACEAE
1
Rhynchospora amazonica Poepp.y Kunth
guianensis
1
Rhynchospora cephalotes (L.) Vahl.
1
Rhynchospora comata (Lindl.) Schultz.
1
Rhynchospora pubera (Vahl) Boeckel. Var.
pubera
1
Rhynchospora pubera (Vahl.) Bôck.
1
Scleria lagellum - nigrorum Berg
1
Scleria cyperina Kunth.ex Bouché.
1
Scleria malaleuca Rchb.ex Schltdl. y Cham.
Scleria microcarpa Nees.
ANGIOSPERMAE-Monocotyledoneae
Paepalanthus fasciculatus (Rottb.) Kunth.
Paepalanthus lamarkii Kunth.
Total ERIOCAULACEAE
HAEMODORACEAE
GRUPO
Total
1
Encyclia amicta (Lind f. y Rich.f) Schultz
1
Epidendrum strobiliferum Rchb.f.
1
Habenaria loribunda Lindl.
1
Nidema ottonis (Rchb.f.) Britton y Millq.
1
Oeceoclades maculata (Lindl)Lindl.
1
Oncidium cebollya (Jacq.) Sw.
1
Polystachya foliosa (Hook) Rchb.f.
1
Prosthechea vespa (Vell) W.E.Higgins.
1
Rudoliella aurantiaca Lindl.
1
Scaphyglottis graminifolia (Ruiz y Pav.)
Poepp. y Endlich.
1
Spiranthes funckeana. A.Rich.
1
Trigonidium acuminatum Balemen ex Lindl.
1
Trizeuxis falcata Lindl.
1
Vainilla odorata Prese
1
18
1
Arthrostylidium berryi Judziewicz y Davidse
1
1
Axonopus longispicus (Doell) Kuhlm.
1
43
Brachiaria fasciculata (Sw.) L. Paridi
1
Brachiaria plantaginea (Link) Hitchc.
1
Brachiaria tarciculata (Swartz).Parodi
1
1
1
1
Total HAEMODORACEAE
1
HYDROCHARITACEAE
1
Elodea granatensis Bompl.
ESPECIE Y AUTOR
Cyrtopodium andersonii (lamb ex Andrews.) R.Br.
Total ORCHIDIACEAE
2
Schieckia orinocensis subsp. silvestris Maas
y Stoel
FAMILIA
ORCHIDIACEAE
1
Rhynchospora albomarginata Kük
Total CYPERACEAE
ERIOCAULACEAE
Total
Eleocharis mutata (L.) Roem. y Schult.
ANGIOSPERMAE-Monocotyledoneae
GRUPO
Eragrostis glomerata (Walt.) Dewey
1
Eragrostis hypnoides (Lam) B y P.
1
Eragrostis japonica (hunb) Trin.
1
Eragrostis maypurenis (H.B.K.) Steud
1
Eragrostis pilosa (L.)Beauv.
1
Fimbristylis aestivalis (Ryz.) Vahl.
1
Total HYDROCHARITACEAE
1
IRIDACEAE
1
Guadua venezuelae Munro
1
1
Gynerium sagittarium (Aubl.) P.Beauv.
1
1
Hymenachne amplexicaulis (Rudge) Nees
1
1
Ichnanthus breviscrobs Doell
1
Ichnanthus pallens (Sw.) Munro ex Benth.
1
Ichnanthus panicoides Beauv.
1
Leersia hexandra Sw.
1
Emmotum acuminatum (Benth.) Miers
Total IRIDACEAE
LILIACEAE
Hymenocallis tubilora Salisb.
Total LILIACEAE
Calathea altissima (Poepp. y Endl.) Koern.
1
POACEAE
Calathea inocephala (O.Kuntze) Kennedy
y Nicholson
1
Calathea lutea (Jacq.) G.F.W.Meyer
1
Calathea zingiberiana Koern
1
Ischnosiphon arouma (Aubl.) Koern
1
Ischnosiphon gracilis (Rudge) Koern subsp.
gracilis o I.longilorus Schum.
Olyra caudata Trin.
1
1
Olyra ciliatifolia Raddi
1
Ischnosiphon obliquus Koern.
1
Olyra latifolia L.
1
Monotagma plurispicatum (Koern.) Schum.
1
Olyra longifolia Kunth.
1
Monotagma secundum (Pyers) Schum.
1
Olyra micrantha Kunth.
1
Monotagma spicatum (Aubl.) Macbr.
1
Oryza alta Smallen
1
Total MARANTHACEAE
10
Panicum hirtum Lam.
1
MAYACACEAE
1
Panicum laxum Sw.
1
MARANTHACEAE
Mayaca luviatilis Aubl.
1
Merostachys ryrorsa McClure
1
1
Panicum maximun Jacq.
1
Brassavola martiana Lindl.
1
Panicum mertensii Roth
1
Campylocentrum poeppigii (Lindl.) Rulfe.
1
Panicum millegrana Schrad.
1
Cattleya violacea (HBK) Rulf.
1
Panicum pilosum Swartz.
1
Total MAYACACEAE
ORCHIDIACEAE
Leptochloa virgata (L.)Beauv.
554
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
FAMILIA
ANGIOSPERMAE-Monocotyledoneae
POACEAE
ESPECIE Y AUTOR
1
Paspalum conjugatum Berg.
1
Paspalum fasciculatum Willd.
1
Paspalum millegrana Schrad
1
Paspalum plicatulum Michx
1
Paspalum repens Berg.
1
Paspulum melanospermum Desv.
1
Pharus virescens Doell
1
Reimarochloa acuta (Flügge) Hitchc.
1
Syaria tenax (L. Rich.) Desv.
1
Urochloa mollisl (SW)Morrone y Zuluaga
1
Total POACEAE
PONTEDERIACEAE
Eichhornia crasipes (Mart.) Solms
RAPATEACEAE
1
Rapatea paludosa Aubl.
Smilax chimantensis Steyerm. y Maguire.
1
Smilax schomburgkiana Kunth.
1
Tacca parkeri Seemann
hurnia sphaerocephala (Rudge) Hook f.
Total ANGIOSPERMAE-Monocotyledoneae
GYMNOSPERMAE
Gnyum leyboldii Tul.,
1
1
Elaphoglossum styriacum Mickel
1
Myaxya rostrata (Kunth.) C. Presl.
Nympha potamophila Wiersema
1
1
1
Ceratopteris pteridoides (Hook) Hieron.
Total PARKERIACEAE
PEDALIACEAE
1
4
1
Total NYMPHAEA
PARKERIACEAE
1
Elaphoglossum glabellum J. Sm.
Total MYAXYACEAE
NYMPHAEA
4
1
1
Craniolaria annua L.
Sesamum orientale L.
Total PEDALIACEAE
1
1
2
1
Adiantum latifolium Lam.
1
210
PTERIDACEAE
1
Gnyum pseudopaniculatum sp. nov. Won
1
Gnyum urens (Aubl.) Blume
1
Adiantum phylliditis J.Sm.
1
Pityrogramma calomelanos (L.) Link
1
Pteris pungens Willd.
Total PTERIDACEAE
SALVINIACEAE
5
SCHIZAEACEAE
5
Total SCHIZAEACEAE
1
THELYPTERIDACEAE
1
Salvinia auriculata Aubl.
Salvinia minima Baker.
Cyclodium inerme (Fée) A.R.Smith.
1
Lastreopsis efusa (Sw.) Tindale.
1
Triplophyllum funestum (Kunze) Holttum.
1
Total PTERIDOPHYTA
4
Total general
VITTARIACEAE
Total VITTARIACEAE
555
1
1
2
Schizaea elegans (Vahl) Sw.
1
helypteris interrupta (Willd.) K. Iwats.
1
1
Total THELYPTERIDACEAE
1
1
5
Total SALVINIACEAE
Ctenitis refulgens (Kl.ex Myt.) C.Chr.ex
Varesc.
Total DRYOPTERIDACEAE
1
Trichomanes hostmannianum (Klotzsch)
Kunzc.
Acrostichum daneifolium Langsd y Fisch.
1
Total AZOLLACEAE
Trichomanes elegans Rich.
1
1
Azolla caroliniana Willd.
1
1
Gnyum paniculatum Spruce ex Benth.,
Hooker’s
Total GNYACEAE
1
Trichomanes accedens C. Pre
Lomagramma guianensis (Aubl.)Ching.
MYAXYACEAE
1
Hymenophyllum hirsutum (L.)
Total LOMARIOPSIDACEAE
1
Gnyum nodilorum Brongn. in Duperrey,
Total GYMNOSPERMAE
DRYOPTERIDACEAE
1
LOMARIOPSIDACEAE.
1
Total THURNIACEAE
AZOLLACEAE
GRAMMITIDACEAE
Bolbitis serratifolia (Mert.ex Kdult.) Schott.
2
Total TACCACEAE
GNYACEAE
Total
Total HYMENOPHYLLACEAE
1
Total SMILACACEAE
THURNIACEAE
ESPECIE Y AUTOR
Cochlidium furcatum (Hook y Grew)
C.Chr.
HYMENOPHYLLACEAE
1
2
TACCACEAE
FAMILIA
Total GRAMMITIDACEAE
1
Total PONTEDERIACEAE
SMILACACEAE
GRUPO
43
Eichhornia azurea (Sw.) Kunth
Total RAPATEACEAE
PTERIDOPHYTA
Total
Panicum scabridum Doell
PTERIDOPHYTA
GRUPO
Vittaria costata Kunze
Vittaria lineata (L.) Sm.
1
1
1
2
30
1965
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Anexo 4.
Resultados de análisis de variables en las diferentes regiones (lora y vegetación). EM = esfuerzo de muestreo, NC = nivel de conocimiento, VI = vacíos de información, RIQ = riqueza, END = endemismo, AMNZ= amenazadas, PROC= procesos ecológicos: CA =
captación de agua en cabeceras de cuencas, CC = productividad captura de carbono, RA = regulación de acuíferos, napas freáticas,
RS= regulación de sedimentos (erosión en laderas), PE = procesos de especiación en zonas de transición itogeográica
Región
Código
AMAZONAS
FV4
ANDES ALTOS
ANDES PIEDEMONTE
CORDILLERA DE LA
COSTA
EM
NC
VI
RIQ
END
AMNZ
USO
SUMA
PROC
Bosque de transición amazónica
3
3
3
4
3
3
4
14
CC,PE
FV5a
Bosques, arbustales
y páramos del
orobioma andino
semihúmedo
2
2
3
4
3
4
3
14
CA
FV5b
Bosques, arbustales
y páramos del
orobioma andino
húmedo
3
3
3
2
3
4
4
13
CA
FV5c
Bosques, arbustales
y páramos del
orobioma andino
Serrrania de la
Macarena
3
2
2
4
3
3
4
14
CA
FV1a
Bosques semicaducifolios y arbustales
xeroiticos del
piedemonte andino
norte
2
2
3
2
1
3
3
9
CA, RS
FV1b
Bosques semicaducifolios del
piedemonte andino
medio
3
3
2
3
1
3
3
10
CA,RS
FV1c
Bosques siempreverdes del piedemonte andino sur
3
3
2
2
1
3
4
10
RS, CA
FV11
Bosques montanos
y submontanos de
la Cordillera de la
Costa
3
3
3
3
2
3
2
10
CA
FV6a
Sabanas arboladas
occidentales del
norte de la Guayana
1
1
4
3
1
2
2
8
RA
FV6b
Sabanas arbustivas
orientales del norte
de la Guayana
3
2
2
2
1
1
2
6
RA
FV8
Sabanas inundables
de arenas blancas
Inírida-Atabapo
1
1
4
4
3
2
4
13
CC,PE
FV13
Bosques húmedos
de arenas blancas
1
1
4
4
3
1
2
10
CC,PE
FV12
Bosques en áreas de
aloramientos
1
1
4
4
3
1
2
10
CC
FV7a
Sabanas, bosques
y arbustales de la
altiplanicie Gran
Sabana
4
3
2
4
3
3
1
11
CA,
RA,RS,CC
GUAYANA NORTE
GUAYANA SUR
Subregión
556
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Región
Código
EM
NC
VI
RIQ
END
AMNZ
USO
SUMA
PROC
FV7b1
Herbazales, arbustales y bosques
montanos de los
tepuyes orientales
4
2
2
4
4
2
1
11
CA,CC
FV7b2
Herbazales, arbustales y bosques
montanos de los tepuyes occidentales
1
1
4
4
4
1
1
10
CA,CC
FV7c
Bosques húmedos
de la Guayana
oriental
2
1
3
4
3
1
3
11
CA,CC
FV7d
Bosques húmedos
de Guayana
occidental
1
1
4
4
3
1
2
10
CA,CC
FV2
Sabanas inundables
2
3
2
2
1
2
2
7
MH
FV3a
Sabanas de
altillanura húmeda
2
2
2
2
1
3
3
9
RA,MH
FV3b
Sabanas de
altillanura seca
1
1
4
1
1
3
2
7
RA,MH
FV3c
Sabanas de
altillanura seca
arenosa eólica
2
2
4
2
1
2
3
8
RA,MH
FV10a
Sabanas de galeras
2
2
3
2
1
2
3
8
RA
FV10b
Sabanas de llanos
altos centrales
4
4
1
1
2
1
2
6
RA
FV10c
Sabanas de llanos
orientales
3
3
2
2
1
2
1
6
RA
FV9a
Bosques y herbazales del Delta
4
2
2
4
2
3
4
13
CC,MH
FV9b
Bosques, arbustales
y herbazales inundables del Corredor
Bajo Orinoco
3
3
2
2
1
4
4
11
CC,MH
FV9c
Bosques, arbustales
y herbazales inundables del Corredor
Medio Orinoco
1
1
4
3
1
4
4
12
CC,MH
FV9d
Bosques, arbustales
y herbazales inundables del Corredor
Alto Orinoco
1
1
4
3
2
1
2
8
CC,MH
GUAYANA SUR
LLANOS
Subregión
ORINOCO-DELTA
557
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Anexo 5.
No.
Listado de lora del departamento del Vichada.
No.
1
Familia
Acanthaceae
Nombre cientiico
Aphelandra scabra (Vahl) Sm.
2
Acanthaceae
Justicia parguazensis Wassh
3
Acanthaceae
Justicia sp.
Familia
Nombre cientiico
38
Annonaceae
Oxandra sp.
39
Annonaceae
Oxandra mediocris Diels
40
Annonaceae
Rollinia exsucca (DC. ex Dunal) A. DC.
41
Annonaceae
Rollinia sp2
42
Annonaceae
Xylopia aromatica (Lam.) Mart.
43
Annonaceae
Xylopia emarginata Mart.
44
Annonaceae
Xylopia frutescens Aubl.
4
Acanthaceae
Ruellia geminilora Kunth
5
Acanthaceae
Ruellia humboldtiana (Nees) Lindau
6
Acanthaceae
Ruellia sp.
45
Annonaceae
Xylopia plowmanii P.E. Berry y D.M.
Johnson
7
Acanthaceae
Ruellia tuberosa L.
46
Annonaceae
Xylopia sp.
8
Alismataceae
Echinodorus sp1
47
Annonaceae
Xylopia venezuelana R.E. Fr.
9
Alismataceae
Echinodorus sp2
48
Apocynaceae
Aspidosperma excelsum Benth.
10
Alismataceae
Sagittaria guayanensis Kunth
49
Apocynaceae
Aspidosperma multilorum A. DC
11
Alstroemeriaceae
Bomarea edulis (Tussac) Herb
50
Apocynaceae
Aspidosperma sp1
12
Amaranthaceae
Alternanthera pulchella Kunth
51
Apocynaceae
Couma macrocarpa Barb. Rodr.
13
Amaranthaceae
Cyathula postrata (L.) Blume
52
Apocynaceae
Forsteronia gracilis (Benth.) Müll. Arg.
14
Amaryllidaceae
Hymenocallis littoralis (Jacq.) Salisb.
53
Apocynaceae
Himatanthus articulatus (Vahl) Woodson
15
Anacardiaceae
Anacardium occidentale L.
54
Apocynaceae
16
Anacardiaceae
Astronium graveolens Jacq.
Himatanthus attenuatus (Benth.)
Woodson
17
Anacardiaceae
Cyrtocarpa velutinifolia (Cowan) J.D.
Mitch. y Daly
55
Apocynaceae
Himatanthus bracteatus (A. DC.)
Woodson
18
Anacardiaceae
Spondias mombin L.
56
Apocynaceae
Himatanthus semilunatus Markgr.
19
Anacardiaceae
Tapirira guianensis
57
Apocynaceae
Lacmellea ramosissima (Müll.Arg.)
Markgr.
20
Annonaceae
Annona cherimolioides Triana y Planch
58
Apocynaceae
Lacmellea sp.
21
Annonaceae
Annona hypoglauca Mart.
59
Apocynaceae
Macoubea guianensis Aubl.
Apocynaceae
Malouetia calva Markgr.
22
Annonaceae
Annona montana Macfad.
60
23
Annonaceae
Bocageopsis multilora (Mart.) R.E.Fr.
61
Apocynaceae
Malouetia sp1
24
Annonaceae
Duguetia megalocarpa Maas
62
Apocynaceae
Malouetia sp2
25
Annonaceae
Duguetia sp.
63
Apocynaceae
Malouetia tamaquarina (Aubl.) A.DC.
26
Annonaceae
Duguetia odorata (Diels) J.F.Macbr.
64
Apocynaceae
Mandevilla annulariifolia Woodson
27
Annonaceae
Guatteria coeloneura Diels
65
Apocynaceae
Mandevilla caurensis Markgr
28
Annonaceae
Guatteria gracilipes R.E.Fr.
66
Apocynaceae
Mandevilla lancifolia Woodson
29
Annonaceae
Guatteria maypurensis Kunth
Apocynaceae
30
Annonaceae
Guatteria metensis R.E.Fr.
Mandevilla scabra (Hofmanns. ex Roem.
y Schult.) K. Schum
31
Annonaceae
Guatteria schomburgkiana Mart
32
Annonaceae
Guatteria sp1
33
Annonaceae
Guatteria sp2
34
Annonaceae
68
Apocynaceae
Mandevilla steyermarkii Woodson
69
Apocynaceae
Mesechites triidus (Jacq.) Müll.Arg.
70
Apocynaceae
Microplumeria anomala (Müll. Arg.)
Markgr
Guatteria sp3
71
Apocynaceae
Odontadenia killipii Woodson
Heteropetalum brasiliense Benth.
72
Apocynaceae
Odontadenia sp1
73
Apocynaceae
Odontadenia sp2
Apocynaceae
Parahancornia oblonga (Benth. ex Müll.
Arg.) Monach.
35
Annonaceae
36
Annonaceae
Oxandra asbeckii (Pulle) R.E. Fr
Annonaceae
Oxandra espintana (Spruce ex Benth.)
Baill.
37
67
74
558
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
No.
75
Familia
Apocynaceae
Nombre cientiico
No.
Familia
Nombre cientiico
Plumeria inodora Jacq.
112
Arecaceae
Attalea maripa (Aubl.) Mart.
76
Apocynaceae
Prestonia sp1
113
Arecaceae
Attalea microcarpa Mart.
77
Apocynaceae
Prestonia quinquangularis (Jacq.) Spreng.
114
Arecaceae
Attalea racemosa Spruce
78
Apocynaceae
Tabernaemontana sp.
115
Arecaceae
Bactris acanthocarpa Mart
Apocynaceae
Tabernaemontana siphilitica (L. f.)
Leeuwenb
79
80
Apocynaceae
Tabernaemontana heterophylla Vahl
81
Apocynaceae
Tabernaemontana lavicans Willd. ex
Roem. y Schult.
82
Aquifoliaceae
Ilex sp1
83
Aquifoliaceae
Ilex sp2
84
Araceae
Anthurium bonplandii G.S.Bunting
85
Araceae
Anthurium clavigerum Poepp. y Endl.
86
Araceae
Anthurium sp1
87
Araceae
Caladium macrotites Schott
88
Araceae
Caladium sp.
89
Araceae
Diefenbachia seguine (Jacq.) Schott
90
Araceae
Dracontium dubium Kunth
91
Araceae
Montrichardia arborescens (L.) Schott
92
Araceae
Montrichardia linifera (Arruda) Schott
93
Araceae
Monstera adansonii Schott
94
Araceae
Monstera pinnatipartita Schott
116
Arecaceae
Bactris brongniartii Mart.
117
Arecaceae
Bactris bidentula Spruce
118
Arecaceae
Bactris hirta Mart.
119
Arecaceae
Bactris major Jacq.
120
Arecaceae
Bactris maraja Mart.
121
Arecaceae
Bactris simplicifrons Mart.
122
Arecaceae
Desmoncus orthacanthos Mart.
123
Arecaceae
Desmoncus polyacanthos Mart.
124
Arecaceae
Euterpe precatoria Mart.
125
Arecaceae
Geonoma deversa (Poit.) Kunth
126
Arecaceae
Iriartella setigera (Mart.) H. Wendl.
127
Arecaceae
Leopoldinia pulchra Mart.
128
Arecaceae
Mauritia lexuosa L. f.
129
Arecaceae
Mauritiella aculeata (Kunth) Burret
130
Arecaceae
Oenocarpus bacaba Mart.
131
Arecaceae
Oenocarpus bataua Mart.
132
Arecaceae
Oenocarpus minor Mart.
133
Arecaceae
Socratea exorrhiza (Mart.) H. Wendl.
95
Araceae
Philodendron solimoesense A.C. Sm.
96
Araceae
Philodendron sp1
97
Araceae
Philodendron sp2
134
Arecaceae
Syagrus orinocensis (Spruce) Burret
135
Arecaceae
Syagrus sancona H. Karst.
136
Arecaceae
Aristolochia goudotii Duch
137
Aristolochiaceae
Aristolochia nummularifolia Kunth
98
Araceae
Philodendron fragrantissimum (Hook.)
G.Don
99
Araceae
Pistia stratiotes L.
100
Araceae
Spathiphyllum cannifolium (Dryand.)
Schott
138
Aristolochiaceae
Aristolochia trilobata L.
101
Araceae
Urospatha sagittifolia (Rudge) Schott
139
Asclepiadaceae
Blepharodon sp1
102
Araceae
Xanthosoma striatipes (K. Koch y
Bouché) Madison
140
Asclepiadaceae
Blepharodon sp2
103
Araceae
Xanthosoma sp.
141
Asclepiadaceae
Cynanchum strictum (Gleason y Moldenke) R.W.Holm
104
Araliaceae
Dendropanax arboreus (L.) Decne. y
Planch.
142
Asclepiadaceae
Cynanchum guanchezii
143
Asclepiadaceae
Gonobolus sp.
144
Asclepiadaceae
Marsdenia rubrofusca Benth. ex E.
Fourn.
105
Arecaceae
Acrocomia aculeata (Jacq.) Lodd. ex
Mart.
106
Arecaceae
Astrocaryum acaule Mart.
107
Arecaceae
Astrocaryum chambira Burret
145
Asclepiadaceae
Marsdenia sp1
Astrocaryum gynacanthum Mart.
146
Asteraceae
Acmella alba (L’Hér.) R.K.Jansen
Asteraceae
Ambrosia peruviana Willd
108
Arecaceae
109
Arecaceae
Astrocaryum jauari Mart.
147
110
Arecaceae
Attalea butyracea (Mutis ex L. f.) Wess.
Boer
148
Asteraceae
Ayapana amygdalina (Lam.) R.M.King
y H.Rob.
111
Arecaceae
Attalea insignis (Mart.) Drude
149
Asteraceae
Calea montana Klatt
559
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
No.
Familia
Nombre cientiico
No.
Familia
Nombre cientiico
150
Asteraceae
Calea tolimana Hieron.
187
Bignoniaceae
Pleonotoma sp1
151
Asteraceae
Chromolaena odorata (L.) R.M.King y
H.Rob.
188
Bignoniaceae
Pleonotoma sp2
Bignoniaceae
Asteraceae
Gongylolepis martiana (Baker) Steyerm.
y Cuatrec.
189
Pyrostegia venusta (Ker Gawl.) Miers
152
190
Bignoniaceae
Pyrostegia dichotoma Miers ex K.Schum.
Asteraceae
Ichthyothere terminalis (Spreng.) S.F.
Blake
191
Bignoniaceae
Tabebuia barbata (E. Mey.) Sandwith
Bignoniaceae
Tabebuia chrysantha (Jacq.) G. Nicholson
153
154
Asteraceae
Melanthera sp.
192
155
Asteraceae
Mikania congesta DC.
193
Bignoniaceae
Tabebuia insignis (Miq.) Sandwith
156
Asteraceae
Mikania sp1
194
Bignoniaceae
Tabebuia ochracea (Cham.) Standl.
157
Asteraceae
Piptocoma discolor (Kunth) Pruski
195
Bignoniaceae
Tabebuia orinocensis (Sandwith) A.H.
Gentry
196
Bignoniaceae
Tabebuia pilosa A.H. Gentry
197
Bignoniaceae
Tabebuia serratifolia (Vahl) G. Nicholson
198
Bignoniaceae
Tabebuia uleana (Kranzl.) A.H.Gentry
199
Bignoniaceae
sp1
200
Bignoniaceae
sp2
201
Bignoniaceae
sp3
202
Bignoniaceae
sp4
203
Bignoniaceae
sp5
158
Asteraceae
Tessaria integrifolia Ruiz y Pav.
159
Asteraceae
sp1
160
Asteraceae
sp2
161
Balanophoraceae
Helosis cayennensis (Sw.) Spreng.
162
Begoniaceae
Begonia sp.
Bignoniaceae
Anemopaegma karstenii Bureau y
K.Schum.
Bignoniaceae
Anemopaegma oligoneuron (Sprague y
Sandwith) A.H.Gentry
163
164
165
Bignoniaceae
Anemopaegma sp1
166
Bignoniaceae
Anemopaegma sp2
204
Bignoniaceae
sp6
167
Bignoniaceae
Arrabidaea conjugata (Vell.) Mart.
205
Bignoniaceae
Xylophragma seemannianum (Kuntze)
Sandwith
168
Bignoniaceae
Arrabidaea sp1
206
Bixaceae
Bixa orellana L.
169
Bignoniaceae
Arrabidaea sp
207
Bixaceae
Bixa urucurana Willd.
170
Bignoniaceae
Clytostoma binatum (hunb.) Sandwith
208
Bixaceae
171
Bignoniaceae
Crescentia amazonica Ducke
Cochlospermum orinocense (Kunth)
Steud.
172
Bignoniaceae
Distictella arenaria A.H.Gentry
209
Bixaceae
Cochlospermum vitifolium (Willd.)
Spreng.
173
Bignoniaceae
Distictella monophylla Sandwith
210
Bombacaceae
Cavanillesia sp.
174
Bignoniaceae
Godmania aesculifolia (Kunth) Standl.
211
Bombacaceae
Ceiba pentandra (L.) Gaertn.
175
Bignoniaceae
Jacaranda copaia (Aubl.) D.Don.
212
Bombacaceae
Matisia lasiocalyx K.Schum.
176
Bignoniaceae
Jacaranda obtusifolia Bonpl.
213
Bombacaceae
Matisia ochrocalyx K.Schum.
177
Bignoniaceae
Jacaranda orinocensis Sandwith
214
Bombacaceae
Pachira nitida Kunth
178
Bignoniaceae
Macfadyena uncata (Andrews) Sprague
y Sandwith
215
Bombacaceae
Pachira nukakica Fern.Alonso
179
Bignoniaceae
Macfadyena unguis-cati (L.) A.H.Gentry
216
Bombacaceae
Pachira obovata (A.Robyns)
W.S.Alverson
180
Bignoniaceae
Mansoa kerere (Aubl.) A.H.Gentry
217
Bombacaceae
181
Bignoniaceae
Mansoa sp.
Pachira sordida (R.E.Schult.)
W.S.Alverson
182
Bignoniaceae
Memora cladotricha Sandwith
218
Bombacaceae
Pachira liesneri (Steyerm.) W.S. Alverson
219
Bombacaceae
Pseudobombax croizatii A. Robyns
220
Boraginaceae
Cordia alliodora (Ruiz y Pav.) Oken
183
Bignoniaceae
Memora lavilora (Miq.) Pulle
184
Bignoniaceae
Phryganocydia corymbosa (Vent.) Bureau
ex K. Schum.
221
Boraginaceae
Cordia bicolor DC.
185
Bignoniaceae
Pithecoctenium crucigerum (L.)
A.H.Gentry
222
Boraginaceae
Cordia nodosa Lam.
186
Bignoniaceae
Pleonotoma jasminifolia (Kunth) Miers
223
Boraginaceae
Cordia sp1
560
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
No.
Familia
Nombre cientiico
No.
Familia
Nombre cientiico
224
Boraginaceae
Cordia sp2
261
Cactaceae
Epiphyllum phyllanthus (L.) Haw.
225
Boraginaceae
Cordia sp3
262
Cactaceae
Melocactus mazelianus Ríha
226
Boraginaceae
Cordia tetrandra Aubl.
263
Cactaceae
Melocactus neryi K. Schum.
227
Bromeliaceae
Aechmea sp1
264
Cactaceae
Hylocereus lemairei (Hook.) Britton y
Rose
265
Cactaceae
No identiicada
228
Bromeliaceae
Ananas parguazensis Camargo y L.B.Sm
229
Bromeliaceae
Ananas sp.
230
Bromeliaceae
Brewcaria relexa (L.B.Sm.) B.Holst
231
Bromeliaceae
Bromelia sp.
232
Bromeliaceae
Pepinia bulbosa (L.B.Sm.) G.S.Varad. y
Gilmartin
233
Bromeliaceae
Pepinia caricifolia (Mart. ex Schult.f.)
G.S.Varad. y Gilmartin
266
Cactaceae
Pereskia guamacho F.A.C.Weber
267
Capparaceae
Capparis lexuosa (L.) L.
268
Capparaceae
Capparis frondosa Jacq.
269
Capparaceae
Cleome guianensis Aubl.
270
Capparaceae
Cleome speciosa Raf.
271
Capparaceae
Crateva tapia L.
272
Caryocaraceae
Caryocar microcarpum Ducke
234
Bromeliaceae
Pepinia juncoides (L.B.Sm.) G.S.Varad.
y Gilmartin
235
Bromeliaceae
Pepinia pruinosa
273
Cecropiaceae
Cecropia concolor Willd.
236
Bromeliaceae
Tillandsia lexuosa Sw.
274
Cecropiaceae
Cecropia icifolia Warb. ex Snethl.
237
Bromeliaceae
Tillandsia paraensis Mez
275
Cecropiaceae
Cecropia latiloba Miq.
238
Bromeliaceae
Vriesea sp.
276
Cecropiaceae
Cecropia metensis Cuatrec.
239
Burmaniaceae
Burmannia foliosa Gleason
277
Cecropiaceae
Cecropia sciadophylla Mart.
240
Burmaniaceae
Burmannia bicolor Mart
278
Cecropiaceae
Coussapoa parvifolia Standl.
241
Burmaniaceae
Burmannia dasyantha Mart.
279
Cecropiaceae
Cecropia peltata L.
242
Burmaniaceae
Burmannia sanariapoana Steyerm.
280
Cecropiaceae
Pourouma sp.
243
Burseraceae
Bursera simaruba (L.) Sarg.
281
Cecropiaceae
Pourouma bicolor Mart.
244
Burseraceae
Commiphora leptophloeos (Mart.) J.B.
Gillett
282
Celastraceae
Goupia glabra Aubl.
Celastraceae
Maytenus sp1
Burseraceae
Crepidospermum rhoifolium (Benth.)
Triana y Planch.
283
245
284
Celastraceae
Maytenus sp2
246
Burseraceae
Protium guianense (Aubl.) Marchand
285
Chrysobalanaceae
Couepia paraensis (Mart. y Zucc.) Benth.
247
Burseraceae
Protium llanorum Cuatrec.
286
Chrysobalanaceae
Hirtella ulei Pilg.
248
Burseraceae
Protium ferrugineum (Engl.) Engl.
287
Chrysobalanaceae
Hirtella subscandens Spruce ex Hook. f.
249
Burseraceae
Protium pilosissimum Engl.
288
Chrysobalanaceae
Hirtella schultesii Prance
250
Burseraceae
Protium nitidifolium (Cuatrec.) Daly
289
Chrysobalanaceae
Hirtella racemosa Lam.
251
Burseraceae
Protium crassipetalum Cuatrec.
290
Chrysobalanaceae
Hirtella paniculata Sw.
252
Burseraceae
Protium heptaphyllum (Aubl.) Marchand
291
Chrysobalanaceae
Hirtella elongata Mart. y Zucc.
292
Chrysobalanaceae
Licania apetala (E. Mey.) Fritsch var.
aperta (Benth.) Prance
293
Chrysobalanaceae
Licania cardiophylla Prance
294
Chrysobalanaceae
Licania heteromorpha Benth.
295
Chrysobalanaceae
Licania intrapetiolaris Spruce ex Hook.f.
296
Chrysobalanaceae
Licania leucosepala Griseb.
297
Chrysobalanaceae
Licania licaniilora (Sagot) S.F.Blake
298
Chrysobalanaceae
Licania longistyla (Hook.f.) Fritsch
299
Chrysobalanaceae
Licania micrantha Miq.
253
Burseraceae
Protium grandifolium Engl.
254
Burseraceae
Protium nitidifolium (Cuatrec.) Daly
255
Burseraceae
Protium opacum Swart
256
Burseraceae
Protium trifoliolatum Engl.
257
Burseraceae
Protium unifoliolatum Spruce ex Engl.
258
Burseraceae
Tetragastris mucronata (Rusby) Swart.
259
Burseraceae
Trattinnickia rhoifolia Willd.
260
Cactaceae
Acanthocereus tetragonus (L.) Hummelinck
561
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
No.
Familia
Nombre cientiico
No.
Familia
338
Combretaceae
Nombre cientiico
300
Chrysobalanaceae
Licania mollis Benth
301
Chrysobalanaceae
Licania parvifructa Fanshawe y Maguire
339
Combretaceae
Combretum fruticosum (Loef.) Stuntz
Combretaceae
Combretum laurifolium Mart.
Combretum frangulifolium Kunth
302
Chrysobalanaceae
Licania pyrifolia Griseb.
340
303
Chrysobalanaceae
Licania subarachnophylla Cuatrec.
341
Combretaceae
Combretum laxum Jacq.
342
Combretaceae
Combretum llewelynii J.F. Macbr.
304
Chrysobalanaceae
Licania wurdackii Prance
305
Chrysobalanaceae
Parinari excelsa Sabine
306
Chrysobalanaceae
Parinari sp1
307
Chrysobalanaceae
Parinari sp2
308
Clusiaceae
Calophyllum brasiliense Cambess.
309
Clusiaceae
Calophyllum sp.
310
Clusiaceae
Caraipa llanorum Cuatrec.
311
Clusiaceae
Caraipa densifolia Mart.
312
Clusiaceae
Caraipa punctulata Ducke
313
Clusiaceae
Clusia candelabrum Planch. y Triana
314
Clusiaceae
Clusia columnaris Engl
315
Clusiaceae
Clusia grandilora Splitg.
316
Clusiaceae
Clusia panapanari (Aubl.) Choisy
317
Clusiaceae
Clusia sp1
318
Clusiaceae
Clusia sp2
319
Clusiaceae
Garcinia madruno (Kunth) Hammel
320
Clusiaceae
Garcinia macrophylla C.Mart.
321
Clusiaceae
Mahurea exstipulata Benth.
322
Clusiaceae
Symphonia globulifera L. f.
343
Combretaceae
Terminalia amazonia (J.F. Gmel.) Exell
344
Commelinaceae
Commelina difusa Burm.f.
345
Commelinaceae
Commelina sp1
346
Commelinaceae
Murdannia nudilora (L.) Brenan
347
Connaraceae
Connarus venezuelanus Baill.
348
Connaraceae
Pseudoconnarus macrophyllus (Poepp.)
Radlk.
349
Connaraceae
Connarus ruber (Poepp.) Planch.
350
Connaraceae
Connarus rigidus Forero
351
Connaraceae
Connarus patrisii (DC.) Planch.
352
Connaraceae
Connarus punctatus Planch.
353
Connaraceae
Rourea glabra Kunth
354
Connaraceae
Rourea sp.
355
Convolvulaceae
Aniseia minor (Choisy) J.A. McDonald
=Aniseia cernua
356
Convolvulaceae
Dicranostyles holostyla Ducke
357
Convolvulaceae
Evolvulus sp1
358
Convolvulaceae
Evolvulus sp2
359
Convolvulaceae
Evolvulus sp3
360
Convolvulaceae
Ipomoea argentea Meisn.
361
Convolvulaceae
Ipomoea carnea Jacq.
362
Convolvulaceae
Ipomoea discolor (HBK) G. Don
363
Convolvulaceae
Ipomoea mauritiana Jacq.
323
Clusiaceae
Tovomita longifolia (Rich.) Hochr.
324
Clusiaceae
Tovomita brevistaminea Engl.
325
Clusiaceae
Tovomita eggersii Vesque
364
Convolvulaceae
Ipomoea schomburgkii Choisy
326
Clusiaceae
Tovomita spruceana Planch. y Triana
365
Convolvulaceae
Ipomoea squamosa Choisy
327
Clusiaceae
Vismia cayennensis (Jacq.) Pers.
366
Convolvulaceae
Jacquemontia tamnifolia (L.) Griseb.
328
Clusiaceae
Vismia guianensis (Aubl.) Pers.
367
Convolvulaceae
Maripa sp1
329
Clusiaceae
Vismia japurensis Reichardt
368
Convolvulaceae
Maripa sp2
330
Clusiaceae
Vismia macrophylla Kunth
369
Convolvulaceae
Merremia aturensis (Kunth) Hallier f.
331
Clusiaceae
Vismia schultesii N.Robson
370
Costaceae
Costus arabicus L.
332
Clusiaceae
Vismia sprucei Sprague
371
Cucurbitaceae
Cayaponia cruegeri (Naudin) Cogn.
Cucurbitaceae
Cayaponia sp1
333
Combretaceae
Buchenavia macrophylla Eichler
372
334
Combretaceae
Buchenavia pallidovirens Cuatrec.
373
Cucurbitaceae
Gurania spinulosa (Poepp. y Endl.)
Cogn.
335
Combretaceae
Buchenavia parvifolia Ducke
374
Cucurbitaceae
Lufa sepium (G. Mey.) C. Jefrey
336
Combretaceae
Buchenavia reticulata Eichler
375
Cucurbitaceae
Momordica charantia L.
Combretaceae
Buchenavia tetraphylla (Aubl.)
R.A.Howard
376
Cucurbitaceae
Rytidostylis amazonica (C. Mart. ex
Cogn.) Spruce ex Kuntze
337
562
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
No.
Familia
377
Cyclanthaceae
Cyclanthus bipartitus Poit.
378
Cyperaceae
Bulbostylis junciformis (Kunth) C.B.
Clarke
379
Cyperaceae
Nombre cientiico
No.
Bulbostylis juncoides (Vahl) Kük ex Osten
Familia
Nombre cientiico
414
Cyperaceae
Scleria distans Poir.
415
Cyperaceae
Scleria lagellum-nigrorum P.J.Bergius
416
Cyperaceae
Scleria macrophylla J. Presl y C. Presl
417
Cyperaceae
Scleria reticularis Michx.
380
Cyperaceae
Bulbostylis lanata (Kunth) C.B. Clarke
Dichapetalaceae
Tapura juruana (Ule) Rizzini
Cyperaceae
Bulbostylis leucostachya (Kunth)
C.B.Clarke
418
381
419
Dichapetalaceae
Dichapetalum spruceanum Baill.
382
Cyperaceae
Bulbostylis paradoxa (Spreng.) Lindm.
420
Dilleniaceae
Curatella americana L.
383
Cyperaceae
Bulbostylis sp.
421
Dilleniaceae
Davilla kunthii A.St.-Hil.
384
Cyperaceae
Cyperus aggregatus (Willd.) Endl
422
Dilleniaceae
Davilla nitida (Vahl) Kubitzki
385
Cyperaceae
Cyperus cuspidatus Kunth
423
Dilleniaceae
Davilla rugosa Poir. var.rugosa
386
Cyperaceae
Cyperus fuscus
424
Dilleniaceae
Davilla sp1
387
Cyperaceae
Cyperus haspan L.
425
Dilleniaceae
Doliocarpus brevipedicellatus Garcke
388
Cyperaceae
Cyperus laxus Lam.
426
Dilleniaceae
Doliocarpus dentatus (Aubl.) Standl.
389
Cyperaceae
Cyperus luzulae (L.) Rottb. ex Retz
427
Dilleniaceae
Doliocarpus spraguei Cheesman
390
Cyperaceae
Cyperus odoratus L.
428
Dilleniaceae
No identiicada
391
Cyperaceae
Cyperus sphacelatus Rottb.
392
Cyperaceae
Eleocharis elegans (Kunth) Roem. y
Schult.
393
Cyperaceae
Eleocharis interstincta (Vahl) Roem. y
Schult.
394
Cyperaceae
Eleocharis jelskiana Boeck.
395
Cyperaceae
Eleocharis minima Kunth
396
Cyperaceae
Fimbristylis complanata (Retz.) Link
397
Cyperaceae
Fimbristylis cymosa (Lam.) R.Br.
398
Cyperaceae
Fimbristylis dichotoma (L.) Vahl
399
Cyperaceae
Fimbristylis miliacea (L.) Vahl
400
Cyperaceae
Fuirena umbellata Rottb.
401
Cyperaceae
Kyllinga brevifolia Rottb.
402
Cyperaceae
Kyllinga sp.
403
Cyperaceae
Lagenocarpus celiae T.Koyama y Maguire
404
Cyperaceae
Lagenocarpus guianensis Lindl. y Nees
ex Nees
405
Cyperaceae
Lagenocarpus rigidus Nees
406
Cyperaceae
Rhynchospora barbata (Vahl) Kunth
407
Cyperaceae
Rhynchospora cephalotes (L.) Vahl
408
Cyperaceae
Rhynchospora comata (Link) Roem. y
Schult
409
Cyperaceae
Rhynchospora corymbosa (L.) Britton
410
Cyperaceae
411
412
413
429
Dilleniaceae
Tetracera tigarea DC.
430
Dioscoreaceae
Dioscorea atrescens R.Knuth
431
Dioscoreaceae
Dioscorea pittieri R.Knuth
432
Dioscoreaceae
Dioscorea sp1
433
Dioscoreaceae
Dioscorea sp2
434
Dioscoreaceae
Dioscorea trichanthera Gleason
435
Dioscoreaceae
Dioscorea trifoliata Kunth
436
Droseraceae
Drosera arenicola Steyerm.
437
Droseraceae
Drosera cayennensis Sagot ex Diels
438
Droseraceae
Drosera sessilifolia A. St.-Hil.
439
Ebenaceae
Diospyros sp.
440
Elaeocarpaceae
Sloanea guianensis (Aubl.) Benth.
441
Elaeocarpaceae
Sloanea loribunda Spruce ex. Benth.
442
Elaeocarpaceae
Sloanea ternilora (Moç. y Sessé ex DC.)
Standl.
443
Elaeocarpaceae
Sloanea eichleri K.Schum
444
Eriocaulaceae
Eriocaulon humboldtii Kunth
445
Eriocaulaceae
Paepalanthus formosus Moldenke
446
Eriocaulaceae
Paepalanthus sp1
447
Eriocaulaceae
Paepalanthus sp2
448
Eriocaulaceae
Paepalanthus sp4
Rhynchospora crassipes Boeck.
449
Eriocaulaceae
Paepalanthus sp5
Cyperaceae
Rhynchospora globosa (Kunth) Roem.
y Schult.
450
Eriocaulaceae
Syngonanthus caulescens (Poir.) Ruhland
Cyperaceae
Rhynchospora nervosa (Vahl) Boeck.
451
Eriocaulaceae
Syngonanthus gracilis (Bong.) Ruhland
Eriocaulaceae
Syngonanthus humboldtii (Kunth)
Ruhland
Cyperaceae
452
Rhynchospora pubera (Vahl) Boeck
563
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
No.
Familia
453
Eriocaulaceae
Syngonanthus sp1
Nombre cientiico
No.
Familia
Nombre cientiico
491
Euphorbiaceae
Mabea nitida Spruce ex Benth.
454
Eriocaulaceae
Philodice hofmannseggii Mart.
492
Euphorbiaceae
Mabea sp.
493
Euphorbiaceae
Mabea trianae Pax
455
Erythroxylaceae
Erythroxylum divaricatum Peyr
456
Erythroxylaceae
Erythroxylum gracilipes Peyr.
494
Euphorbiaceae
Manihot sp.
Euphorbiaceae
Manihot tristis Müll. Arg. subsp.tristis
Maprounea amazonica Esser
457
Erythroxylaceae
Erythroxylum impressum O.E. Schulz
495
458
Erythroxylaceae
Erythroxylum macrophyllum Cav.
496
Euphorbiaceae
497
Euphorbiaceae
Maprounea guianensis Aubl.
498
Euphorbiaceae
Margaritaria nobilis L. f.
499
Euphorbiaceae
Microstachys corniculata (Vahl) Griseb.
500
Euphorbiaceae
Phyllanthus caroliniensis Walter
459
Erythroxylaceae
Erythroxylum orinocense Kunth
460
Erythroxylaceae
Erythroxylum sp1
461
Erythroxylaceae
Erythroxylum suberosum A. St.-Hil
462
Erythroxylaceae
Erythroxylum williamsii Standl. ex
Plowman (1)
501
Euphorbiaceae
Phyllanthus elsiae Urb.
463
Euphorbiaceae
Alchornea castaneifolia (Willd.) A. Juss.
502
Euphorbiaceae
Phyllanthus gallinetae Jabl.
464
Euphorbiaceae
Alchornea discolor Poepp.
503
Euphorbiaceae
Phyllanthus juglandifolius Willd.
465
Euphorbiaceae
Alchornea luviatilis R. Secco
504
Euphorbiaceae
Phyllanthus rupestris Kunth
466
Euphorbiaceae
Alchornea triplinervia (Spreng.) Müll.
Arg.
505
Euphorbiaceae
Piranhea longepedunculata Jabl.
506
Euphorbiaceae
Piranhea trifoliata Baill.
507
Euphorbiaceae
Podocalyx loranthoides Klotzsch
508
Euphorbiaceae
Pogonophora schomburgkiana Miers ex
Benth.
467
Euphorbiaceae
Alchorneopsis loribunda (Benth.) Müll.
Arg.
468
Euphorbiaceae
Amanoa glaucophylla Müll.Arg.
469
Euphorbiaceae
Amanoa guianensis Aubl
470
Euphorbiaceae
Amanoa oblongifolia Müll.Arg.
471
Euphorbiaceae
Aparisthmium cordatum (A. Juss.) Baill.
472
Euphorbiaceae
Bernardia amazonica Croizat
473
Euphorbiaceae
Caperonia cf. castaneifolia (L.) A. St.-Hil.
474
Euphorbiaceae
Caperonia sp.
509
Euphorbiaceae
Richeria grandis Vahl
510
Euphorbiaceae
Sapium glandulosum (L.) Morong
511
Euphorbiaceae
Sapium jenmanii Hemsl.
Euphorbiaceae
Senefelderopsis chiribiquetensis
(R.E.Schult. y Croizat) Steyerm.
513
Euphorbiaceae
Tacarcuna amanoifolia Hut
514
Fabaceae
Caesalpinioideae
Apuleia leiocarpa (Vogel) J.F. Macbr.
515
Fabaceae
Caesalpinioideae
Bauhinia cupulata Benth.
516
Fabaceae
Caesalpinioideae
Bauhinia glabra Jacq.
517
Fabaceae
Caesalpinioideae
Bauhinia guianensis Aubl.
518
Fabaceae
Caesalpinioideae
Bauhinia longicuspis Spruce ex Benth.
512
475
Euphorbiaceae
Chamaesyce thymifolia (L.) Millsp
476
Euphorbiaceae
Croton cuneatus Klotzsch
477
Euphorbiaceae
Croton orinocensis Müll. Arg
478
Euphorbiaceae
Croton sp.
479
Euphorbiaceae
Croton trinitatis Millsp
480
Euphorbiaceae
Dalechampia ainis Müll. Arg
481
Euphorbiaceae
Dalechampia magnoliifolia Müll. Arg
482
Euphorbiaceae
Dalechampia scandens L
519
Fabaceae
Caesalpinioideae
Bauhinia ungulata L.
483
Euphorbiaceae
Dalechampia sp1
520
Euphorbiaceae
Dalechampia tiliifolia Lam.
Fabaceae
Caesalpinioideae
Brownea negrensis Benth.
484
485
Euphorbiaceae
Discocarpus gentryi S.M. Hayden
521
Fabaceae
Caesalpinioideae
Campsiandra comosa Benth.
486
Euphorbiaceae
Hevea guianensis Aubl.
522
Fabaceae
Caesalpinioideae
Campsiandra implexicaulis Stergios
487
Euphorbiaceae
Hevea paucilora (Spruce ex Benth.)
Müll. Arg.
523
Fabaceae
Caesalpinioideae
Campsiandra steyermarkiana Stergios
488
Euphorbiaceae
Hyeronima alchorneoides Allemao
524
Cassia moschata Kunth
489
Euphorbiaceae
Hyeronima oblonga (Tul.) Müll. Arg.
Fabaceae
Caesalpinioideae
490
Euphorbiaceae
Mabea montana Müll. Arg.
525
Fabaceae
Caesalpinioideae
Chamaecrista desvauxii (Collad.) Killip
var1
564
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
No.
Familia
Nombre cientiico
526
Fabaceae
Caesalpinioideae
Chamaecrista desvauxii (Collad.) Killip
var2
527
Fabaceae
Caesalpinioideae
528
No.
Familia
Nombre cientiico
554
Fabaceae
Caesalpinioideae
Senna alata (L.) Roxb.
Chamaecrista diphylla (L.) Greene
555
Fabaceae
Caesalpinioideae
Senna multijuga (Rich.) H.S. Irwin y
Barneby
Fabaceae
Caesalpinioideae
Chamaecrista lexuosa (L.) Greene
556
Fabaceae
Caesalpinioideae
Senna obtusifolia (L.) H.S. Irwin y
Barneby
529
Fabaceae
Caesalpinioideae
Chamaecrista kunthiana (Schltdl. y
Cham.) H.S.Irwin y Barneby
557
Fabaceae
Caesalpinioideae
Senna occidentalis (L.) Link
530
Fabaceae
Caesalpinioideae
Chamaecrista nictitans (L.) Moench.
558
Fabaceae
Caesalpinioideae
Senna papillosa (Britton y Rose)
H.S.Irwin y Barneby
531
Fabaceae
Caesalpinioideae
Chamaecrista ramosa (Vogel) H.S. Irwin
y Barneby
559
Fabaceae
Caesalpinioideae
Senna pendula (Humb. y Bonpl. ex
Willd.) H.S. Irwin y Barneby
532
Fabaceae
Caesalpinioideae
Chamaecrista roraimae (Benth.) Gleason
560
Fabaceae
Caesalpinioideae
Senna silvestris (Vell.) H.S. Irwin y
Barneby
533
Fabaceae
Caesalpinioideae
Chamaecrista rotundifolia (Pers.) Greene
561
Fabaceae
Caesalpinioideae
Senna spinescens (Vogel)) H.S. Irwin y
Barneby
534
Fabaceae
Caesalpinioideae
Chamaecrista serpens (L.) Greene
562
Fabaceae
Caesalpinioideae
Senna wurdackii H.S. Irwin y Barneby
535
Fabaceae
Caesalpinioideae
Chamaecrista sp1
563
Fabaceae
Caesalpinioideae
sp1
536
Fabaceae
Caesalpinioideae
Chamaecrista viscosa (Kunth) H.S. Irwin
y Barneby
564
Fabaceae
Caesalpinioideae
Tachigali cavipes (Spruce ex Benth.) J.F.
Macbr.
537
Fabaceae
Caesalpinioideae
Copaifera pubilora Benth.
565
Fabaceae
Caesalpinioideae
Tachigali chrysophylla (Poepp.) Zarucchi
y Herend.
538
Fabaceae
Caesalpinioideae
Cynometra bauhiniifolia Benth. var.
bauhiniifolia
566
Fabaceae
Caesalpinioideae
Tachigali davidsei Zarucchi y Herend.
539
Fabaceae
Caesalpinioideae
Cynometra marginata Benth.
567
Fabaceae
Caesalpinioideae
Tachigali guianensis (Benth.) Zarucchi
y Herend.
540
Fabaceae
Caesalpinioideae
Cynometra spruceana Benth. var. procera
Benth.
568
Fabaceae
Caesalpinioideae
Tachigali myrmecophila (Ducke) Ducke
541
Fabaceae
Caesalpinioideae
Heterostemon mimosoides Desf.
569
Fabaceae
Caesalpinioideae
Tachigali odoratissima (Spruce ex Benth.)
Zaruchi y Herend.
542
Fabaceae
Caesalpinioideae
Hofmannseggia erecta Phil.
570
Fabaceae Faboideae
Abrus precatorius L.
571
Fabaceae Faboideae
Acosmium nitens (Vogel) Yakovlev
543
Fabaceae
Caesalpinioideae
Hymenaea courbaril L.
572
Fabaceae Faboideae
Aeschynomene americana L.
544
Fabaceae
Caesalpinioideae
Macrolobium acaciifolium (Benth.)
Benth.
545
Fabaceae
Caesalpinioideae
Macrolobium bifolium (Aubl.) Pers.
546
Fabaceae
Caesalpinioideae
Macrolobium limbatum Spruce ex Benth.
var. limbatum
547
Fabaceae
Caesalpinioideae
Macrolobium multijugum (DC.) Benth.
var. multijugum
548
Fabaceae
Caesalpinioideae
Peltogyne loribunda (H.B.K.) Pittier
549
Fabaceae
Caesalpinioideae
Peltogyne paniculata Benth
550
Fabaceae
Caesalpinioideae
Peltogyne parvifolia Spruce ex Benth.
551
Fabaceae
Caesalpinioideae
Peltogyne sp1
552
Fabaceae
Caesalpinioideae
Peltogyne venosa (Vahl) Benth.
553
Fabaceae
Caesalpinioideae
573
Fabaceae Faboideae
Aeschynomene elegans Cham. y Schltdl.
574
Fabaceae Faboideae
Aeschynomene histrix Poir.
575
Fabaceae Faboideae
Aeschynomene scabra G. Don
576
Fabaceae Faboideae
Andira surinamensis (Bondt) Splitg. ex
Amshof
577
Fabaceae Faboideae
Bowdichia virgilioides Kunth
578
Fabaceae Faboideae
Calopogonium mucunoides Desv.
579
Fabaceae Faboideae
Canavalia brasiliensis Mart. ex Benth
580
Fabaceae Faboideae
Canavalia sp1
581
Fabaceae Faboideae
Canavalia sp2
582
Fabaceae Faboideae
Centrosema angustifolium (Kunth)
Benth.
583
Fabaceae Faboideae
Centrosema pascuorum Mart. ex Benth.
584
Fabaceae Faboideae
Centrosema macrocarpum Benth.
Fabaceae Faboideae
Centrosema tetragonolobum SchultzeKrat y R.J. Williams
585
Schizolobium parahyba (Vell.) S.F. Blake
565
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
No.
Familia
No.
Familia
586
Fabaceae Faboideae
Centrosema venosum Mart. ex Benth.
Nombre cientiico
Nombre cientiico
625
Fabaceae Faboideae
Galactia sp1
587
Fabaceae Faboideae
Clathrotropis macrocarpa Ducke
626
Fabaceae Faboideae
Hymenolobium petraeum Ducke
588
Fabaceae Faboideae
Clathrotropis brachypetala (Tul.) Kleinhoonte
627
Fabaceae Faboideae
Indigofera lespedezioides Kunth
589
Fabaceae Faboideae
Clitoria coriacea Schery
628
Fabaceae Faboideae
Machaerium acuminatum Kunth
590
Fabaceae Faboideae
Clitoria dendrina Pittier
629
Fabaceae Faboideae
Machaerium ferox (Mart. ex Benth.)
Ducke
591
Fabaceae Faboideae
Clitoria falcata Lam.
630
Fabaceae Faboideae
Machaerium loribundum Benth.
592
Fabaceae Faboideae
Clitoria guianensis (Aubl.) Benth
631
Fabaceae Faboideae
Clitoria hermannii Fantz
Fabaceae Faboideae
593
Machaerium inundatum (Mart. ex
Benth.) Ducke
594
Fabaceae Faboideae
Clitoria simplicifolia (Kunth) Benth.
632
Fabaceae Faboideae
Machaerium leiophyllum (DC.) Benth
595
Fabaceae Faboideae
Crotalaria nitidula Martius ex Schrank
633
Fabaceae Faboideae
Machaerium madeirense Pittier
634
Fabaceae Faboideae
Macroptilium gracile (Poepp. ex Benth.)
Urb.
635
Fabaceae Faboideae
Macroptilium monophyllum (Benth.)
Maréchal y Baudet
636
Fabaceae Faboideae
Mucuna rostrata Benth.
637
Fabaceae Faboideae
sp1
638
Fabaceae Faboideae
sp2
639
Fabaceae Faboideae
sp3
640
Fabaceae Faboideae
sp4
641
Fabaceae Faboideae
sp5
642
Fabaceae Faboideae
sp6
643
Fabaceae Faboideae
sp7
644
Fabaceae Faboideae
sp8
645
Fabaceae Faboideae
sp9
596
Fabaceae Faboideae
Crotalaria maypurensis Kunth
597
Fabaceae Faboideae
Crotalaria pallida Aiton
598
Fabaceae Faboideae
Crotalaria sagittalis L.
599
Fabaceae Faboideae
Dalbergia hygrophila (Mart. ex Benth.)
Hoehne
600
Fabaceae Faboideae
Dalbergia inundata Spruce ex Benth.
601
Fabaceae Faboideae
Dalbergia sp1
602
Fabaceae Faboideae
Dalbergia sp2
603
Fabaceae Faboideae
Dalbergia sp3
604
Fabaceae Faboideae
Derris negrensis Benth
605
Fabaceae Faboideae
Desmodium barbatum (L.) Benth.
606
Fabaceae Faboideae
Desmodium incanum DC.
607
Fabaceae Faboideae
Desmodium orinocense (DC.) Cuello
608
Fabaceae Faboideae
Desmodium sp1
609
Fabaceae Faboideae
Desmodium trilorum (L.) DC.
610
Fabaceae Faboideae
Dioclea guianensis Benth.
611
Fabaceae Faboideae
Dioclea relexa Hook. f. in Hook
646
Fabaceae Faboideae
Ormosia costulata (Miq.) Kleinhoonte
647
Fabaceae Faboideae
Ormosia paraensis Ducke
648
Fabaceae Faboideae
Pterocarpus acapulcensis Rose
Pterocarpus amazonum (Mart. ex Benth.) Amshof
612
Fabaceae Faboideae
Dioclea sericea Kunth.
649
Fabaceae Faboideae
613
Fabaceae Faboideae
Diplotropis martiusii Benth.
650
Fabaceae Faboideae
Soemmeringia semperlorens Mart
614
Fabaceae Faboideae
Diplotropis purpurea (Rich.) Amshof
651
Fabaceae Faboideae
615
Fabaceae Faboideae
Dipteryx punctata (S.F.Blake) Amshof
Stylosanthes guianensis (Aubl.) Sw. var.
guianensis
616
Fabaceae Faboideae
Dipteryx rosea Spruce ex Benth.
652
Fabaceae Faboideae
Swartzia leptopetala Benth.
617
Fabaceae Faboideae
Eriosema crinitum (Kunth) G.Don
653
Fabaceae Faboideae
Swartzia leptopetala Benth.
618
Fabaceae Faboideae
Eriosema obovatum Benth.
654
Fabaceae Faboideae
Swartzia pittieri Schery
Fabaceae Faboideae
Swartzia sericea Vogel
619
Fabaceae Faboideae
Eriosema rufum (Kunth) G.Don
655
620
Fabaceae Faboideae
Eriosema simplicifolium (Kunth) G.Don
656
Fabaceae Faboideae
Swartzia sp1
621
Fabaceae Faboideae
Erythrina fusca Lour.
657
Fabaceae Faboideae
Swartzia sp2
622
Fabaceae Faboideae
Etaballia dubia (Kunth) Rudd
658
Fabaceae Faboideae
Swartzia sp3
623
Fabaceae Faboideae
Galactia glaucescens Kunth
659
Fabaceae Faboideae
Swartzia sp4
624
Fabaceae Faboideae
Galactia jussiaeana Kunth
660
Fabaceae Faboideae
Tephrosia sinapou (Buc’hoz) A.Chev.
566
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
No.
Familia
661
Fabaceae Faboideae
Tephrosia sinapou (Buc’hoz) A.Chev.
Nombre cientiico
662
Fabaceae Faboideae
Vatairea sp.
663
Fabaceae Faboideae
Vigna luteola (Jacq.) Benth.
664
Fabaceae Faboideae
Vigna sp1
665
Fabaceae Faboideae
Vigna sp2
666
Fabaceae Faboideae
Zornia guanipensis Pittier
667
Fabaceae Faboideae
Zornia latifolia Sm.
668
Fabaceae Faboideae
Zornia sericea
669
Fabaceae
Mimosoideae
No.
Familia
Nombre cientiico
692
Fabaceae
Mimosoideae
Mimosa microcephala Humb. y Bonpl.
ex Willd.
693
Fabaceae
Mimosoideae
Mimosa pellita Humb. y Bonpl. ex Willd
694
Fabaceae
Mimosoideae
Mimosa pigra L.
695
Fabaceae
Mimosoideae
Mimosa pudica L.
696
Fabaceae
Mimosoideae
Mimosa somnians Humb. y Bonpl. ex
Willd.
697
Mimosa sp1
Abarema jupunba (Willd.) Britton y
Killip
Fabaceae
Mimosoideae
698
Mimosa sp2
670
Fabaceae
Mimosoideae
Albizia subdimidiata (Splitg.) Barneby y
J.W.Grimes
Fabaceae
Mimosoideae
699
Mimosa tarda Barneby
671
Fabaceae
Mimosoideae
Fabaceae
Mimosoideae
Anadenanthera peregrina (L.) Speg
700
Neptunia oleracea Lour.
672
Fabaceae
Mimosoideae
Fabaceae
Mimosoideae
Calliandra glomerulata H. Karst.
701
Parkia discolor Spruce ex Benth.
673
Fabaceae
Mimosoideae
Fabaceae
Mimosoideae
Calliandra riparia Pittier
702
Parkia pendula (Willd.) Benth. ex Walp.
674
Fabaceae
Mimosoideae
Fabaceae
Mimosoideae
Calliandra vaupesiana R.S.Cowan
703
Fabaceae
Mimosoideae
Stryphnodendron microstachyum Poepp.
675
Fabaceae
Mimosoideae
Cedrelinga cateniformis (Ducke) Ducke
704
Fabaceae
Mimosoideae
Stryphnodendron pulcherrimum (Willd.)
676
Fabaceae
Mimosoideae
Entada polystachya (L.) DC.
705
Zygia cataractae (Kunth) L. Rico
Enterolobium schomburgkii (Benth.)
Benth.
Fabaceae
Mimosoideae
677
Fabaceae
Mimosoideae
706
Zygia latifolia (L.) Fawc. y Rendle
678
Fabaceae
Mimosoideae
Fabaceae
Mimosoideae
Enterolobium timbouva Mart.
707
Zygia unifoliolata (Benth.) Pittier
679
Fabaceae
Mimosoideae
Hydrochorea marginata (Spruce ex
Benth.) Barneby y J.W.Grimes
Fabaceae
Mimosoideae
708
Flacourtiaceae
Banara guianensis Aubl.
680
Fabaceae
Mimosoideae
Inga alba (Sw.) Willd.
681
Fabaceae
Mimosoideae
Inga brachystachys Ducke
682
Fabaceae
Mimosoideae
Inga cylindrica Mart.
683
Fabaceae
Mimosoideae
Inga edulis Mart
684
Fabaceae
Mimosoideae
Inga heterophylla Willd.
685
Fabaceae
Mimosoideae
Inga stenoptera Benth.
686
Fabaceae
Mimosoideae
Inga thibaudiana DC.
687
Fabaceae
Mimosoideae
Inga vera Willd.
688
Fabaceae
Mimosoideae
709
Flacourtiaceae
Banara orinocensis (Cuatrec.) Sleumer
710
Flacourtiaceae
Casearia commersoniana Cambess.
711
Flacourtiaceae
Casearia grandilora Cambess.
712
Flacourtiaceae
Casearia javitensis Kunth
713
Flacourtiaceae
Casearia sp1
714
Flacourtiaceae
Casearia sp2
715
Flacourtiaceae
Casearia ulmifolia Vahl ex Vent.
716
Flacourtiaceae
Casearia sylvestris Sw.
717
Flacourtiaceae
Casearia zizyphoides H.B.K.
718
Flacourtiaceae
Homalium guianense (Aubl.) Oken
719
Flacourtiaceae
Homalium racemosum Jacq.
720
Flacourtiaceae
Laetia americana L.
Inga sp1
721
Flacourtiaceae
Laetia suaveolens (Poepp.) Benth.
Fabaceae
Mimosoideae
Macrosamanea discolor (Willd.) Britton
y Killip
722
Flacourtiaceae
Lindackeria paludosa (Benth.) Gilg
723
Flacourtiaceae
Mayna odorata Aubl.
690
Fabaceae
Mimosoideae
Macrosamanea sp2
724
Flacourtiaceae
Ryania dentata (H.B.K.) Miq
691
Fabaceae
Mimosoideae
Flacourtiaceae
Xylosma intermedia (Seem.) Triana y
Planch.
689
725
Mimosa colombiana Britton y Killip
567
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
No.
Familia
726
Flacourtiaceae
Xylosma sp1
Nombre cientiico
764
Humiriaceae
Sacoglottis sp.
727
Gentianaceae
Adenolisianthus arboreus (Spruce ex
Progel) Gilg
765
Hydrophyllaceae
Hydrolea spinosa L
766
Icacinaceae
Emmotum loribundum R.A.Howard
728
Gentianaceae
Chelonanthus alatus (Aubl.) Pulle
729
Gentianaceae
Chelonanthus angustifolius (Kunth) Gilg
No.
Familia
Nombre cientiico
767
Icacinaceae
Poraqueiba sericea Tul.
768
Iridaceae
Cipura paludosa Aubl.
769
Iridaceae
Cypella linearis (Kunth) Baker
730
Gentianaceae
Chelonanthus purpurascens (Aubl.)
Struwe y V.A.Albert
731
Gentianaceae
Coutoubea minor H.B.K.
770
Iridaceae
Cypura sp.
732
Gentianaceae
Coutoubea ramosa Aubl
771
Lacistemataceae
Lacistema aggregatum (Bergius) Rusby
733
Gentianaceae
Coutoubea spicata Aubl
772
Lamiaceae
Amasonia campestris (Aubl.) Moldenke
734
Gentianaceae
Coutoubea sp.
773
Lamiaceae
Eriope crassipes Benth.
Gentianaceae
Irlbachia pratensis (Kunth) L. Cobb y
Maas
774
Lamiaceae
Hyptis brachiata Briq.
775
Lamiaceae
Hyptis conferta Pohl ex Benth.
776
Lamiaceae
Hyptis dilatata Benth
777
Lamiaceae
Hyptis laciniata Benth
778
Lamiaceae
Hyptis mutabilis (Rich.) Briq.
779
Lamiaceae
Hyptis savannarum Briq.
735
736
Gentianaceae
Schultesia benthamiana Klotzsch ex
Griseb.
737
Gentianaceae
Schultesia brachyptera Cham.
738
Gentianaceae
Schultesia guianensis (Aubl.) Malme
739
Gentianaceae
Voiria sp.
740
Gesneriaceae
Chrysothemis dichroa Leeuwenb
780
Hyptis sp1
Gesneriaceae
Codonanthe crassifolia (H.Focke)
C.V.Morton
Lamiaceae
741
781
Lamiaceae
Hyptis suaveolens (L.) Poit.
742
Gesneriaceae
Sinningia elatior (Kunth) Chautems
782
Lauraceae
Aniba panurensis (Meisn.) Mez
743
Gesneriaceae
Sinningia incarnata (Aubl.) D.L.Denham
783
Lauraceae
Aniba sp1
744
Gnetaceae
Gnetum leyboldii Tul.
784
Lauraceae
Cassytha iliformis L
745
Haemodoraceae
Schiekia orinocensis (Kunth) Meisn
785
Lauraceae
Endlicheria anomala (Nees) Mez
746
Heliconiaceae
Heliconia acuminata Rich.
786
Lauraceae
Endlicheria sericea Nees
747
Heliconiaceae
Heliconia hirsuta L. f.
787
Lauraceae
Nectandra cuspidata Nees y Mart.
748
Heliconiaceae
Heliconia juliani Barreiros
788
Lauraceae
Nectandra pichurim (Kunth) Mez
749
Heliconiaceae
Heliconia marginata (Griggs) Pittier
789
Lauraceae
Nectandra sp1
750
Heliconiaceae
Heliconia psittacorum L. f.
790
Lauraceae
Ocotea bofo Kunth
751
Heliconiaceae
Heliconia tarumaensis Barreiros
791
Lauraceae
Ocotea cymbarum Kunth
752
Hippocrateaceae
Anthodon decussatum Ruiz y Pav.
792
Lauraceae
Ocotea esmeraldana Moldenke
753
Hippocrateaceae
Cheiloclinium anomalum Miers
793
Lauraceae
Ocotea loribunda (Sw.) Mez
754
Hippocrateaceae
Cheiloclinium cognatum (Miers) A.C.Sm.
794
Lauraceae
Ocotea guianensis Aubl.
755
Hippocrateaceae
Prionostemma asperum (Lam.) Miers
795
Lauraceae
Ocotea longifolia Kunth
756
Hippocrateaceae
Pristimera cf. nervosa (Miers) A.C. Sm
796
Lauraceae
Ocotea sanariapensis Lasser
757
Hippocrateaceae
Salacia impressifolia (Miers) A.C.Sm.
797
Lecythidaceae
Eschweilera parvilora (Aubl.) Miers
758
Hippocrateaceae
Salacia sp1
798
Lecythidaceae
Eschweilera parvifolia Mart. ex DC.
759
Hippocrateaceae
Salacia sp2
799
Lecythidaceae
Eschweilera sp1
760
Hugoniaceae
Roucheria calophylla Planch.
800
Lecythidaceae
Eschweilera sp2
761
Humiriaceae
Humiria balsamifera Aubl.
801
Lecythidaceae
Eschweilera tenuifolia (O. Berg) Miers
762
Humiriaceae
Humiria wurdackii Cuatrec.
802
Lecythidaceae
Gustavia augusta L.
763
Humiriaceae
Sacoglottis guianensis Benth.
803
Lecythidaceae
Gustavia cf. acuminata
568
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
No.
Familia
No.
Familia
804
Lecythidaceae
Gustavia hexapetala (Aubl.) Sm.
Nombre cientiico
843
Malpighiaceae
Diplopterys sp.
Nombre cientiico
805
Lemnaceae
Lemna sp.
844
Malpighiaceae
806
Lentibulariaceae
Utricularia nervosa Weber ex Benj.
Heteropterys alata (W.R.Anderson)
W.R.Anderson
807
Lentibulariaceae
Utricularia sp1
845
Malpighiaceae
Heteropterys macradena (DC.)
W.R.Anderson
808
Lentibulariaceae
Utricularia sp2
846
Malpighiaceae
Heteropterys orinocensis (H.B.K.) A. Juss.
Malpighiaceae
Hiraea faginea (Sw.) Nied
809
Lentibulariaceae
Utricularia sp3
847
810
Lentibulariaceae
Utricularia sp4
848
Malpighiaceae
sp1
Malpighiaceae
sp2
811
Lentibulariaceae
Utricularia subulata L.
849
812
Liliaceae
Curculigo scorzonerifolia (Lam.) Baker,
850
Malpighiaceae
sp3
851
Malpighiaceae
Stigmaphyllon adenodon A.Juss.
852
Malpighiaceae
Stigmaphyllon sinuatum (DC.) A.Juss.
813
Liliaceae
Hippeastrum elegans (Spreng.) H.E.
Moore
814
Loganiaceae
Bonyunia aquatica Ducke
815
Loganiaceae
Spigelia anthelmia L.
816
Loganiaceae
Potalia amara Aubl.
817
Loganiaceae
Strychnos bredemeyeri (Schult. y Schult.
f.) Sprague y Sandwith
818
Loganiaceae
Strychnos guianensis (Aubl.) Mart
857
Malvaceae
Hibiscus sp2
819
Loganiaceae
Strychnos brachiata Ruiz y Pav
858
Malvaceae
Malachra sp.
820
Loganiaceae
Strychnos sp1
859
Malvaceae
Peltaea speciosa (Kunth) Standl.
821
Loganiaceae
Psittacanthus cucullaris (Lam.) Blume
860
Malvaceae
Sida acuta Burm. f.
822
Loranthaceae
Psittacanthus sp1
861
Malvaceae
Sida serrata Willd. ex Spreng
823
Loranthaceae
Psittacanthus sp2
862
Malvaceae
Sida sp1
824
Loranthaceae
Phthirusa sp.
863
Malvaceae
Sida sp2
825
Loranthaceae
No identiicada
864
Malvaceae
Wissadula sp1
826
Lythraceae
Cuphea antisyphilitica Kunth
865
Malvaceae
Wissadula sp2
827
Lythraceae
Cuphea melvilla Lindl.
866
Marantaceae
Calathea altissima (Poepp. y Endl.) Körn
828
Lythraceae
Cuphea micrantha Kunth
867
Marantaceae
829
Lythraceae
Cuphea odonellii Lourteig
Calathea propinqua (Poepp. y Endl.)
Körn
830
Lythraceae
Cuphea repens Koehne
853
Malpighiaceae
Tetrapterys sp1
854
Malpighiaceae
Tetrapterys sp2
855
Malvaceae
Gossypium hirsutum L.
856
Malvaceae
Hibiscus sp1
868
Marantaceae
Calathea cyclophora Baker
869
Marantaceae
Calathea zingiberina Körn.
831
Malpighiaceae
Banisteriopsis caapi (Spruce ex Griseb.)
C.V.Morton
870
Marantaceae
Ischnosiphon arouma (Aubl.) Körn.
832
Malpighiaceae
Burdachia prismatocarpa A. Juss.
871
Marantaceae
Ischnosiphon sp.
833
Malpighiaceae
Byrsonima chrysophylla Kunth
872
Marantaceae
Maranta linearis L. Andersson
834
Malpighiaceae
Byrsonima coccolobifolia Kunth
873
Marantaceae
835
Malpighiaceae
Byrsonima crassifolia (L.) Kunth
Monotagma laxum (Poepp. y Endl.)
K.Schum.
836
Malpighiaceae
Byrsonima crispa A. Juss.
874
Marantaceae
halia geniculata L.
837
Malpighiaceae
Byrsonima japurensis A.Juss.
875
Marsileaceae
Marsilea polycarpa Hook. y Grev.
876
Marcgraviaceae
Norantea guianensis Aubl.
877
Marcgraviaceae
Souroubea guianensis Aubl.
878
Melastomataceae
Acanthella pulchra Gleason
879
Melastomataceae
Acanthella sprucei Hook f.
880
Melastomataceae
Aciotis acuminifolia (Mart. ex DC.)
Triana
838
Malpighiaceae
Byrsonima nitidissima Kunth
839
Malpighiaceae
Byrsonima punctulata A.Juss.
840
Malpighiaceae
Byrsonima sp1
841
Malpighiaceae
Byrsonima sp2
842
Malpighiaceae
Byrsonima verbascifolia (L.) DC.
569
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
No.
Familia
Nombre cientiico
No.
Familia
Melastomataceae
Nombre cientiico
881
Melastomataceae
Aciotis sp1
882
Melastomataceae
Acisanthera hedyotidea (C. Presl) Triana
921
Melastomataceae
Miconia minutilora (Bonpl.) DC.
883
Melastomataceae
Acisanthera limnobios (DC.) Triana
922
Melastomataceae
Miconia phaeophylla Triana
884
Melastomataceae
Acisanthera unilora (Vahl) Gleason
923
Melastomataceae
Miconia prasina (Sw.) DC.
Melastomataceae
Miconia punctata (Desr.) D.Don ex DC.
920
Miconia longifolia (Aubl.) DC.
885
Melastomataceae
Bellucia grossularioides (L.) Triana
924
886
Melastomataceae
Bellucia villosa Lozano-C.
925
Melastomataceae
Miconia rubiginosa (Bonpl.) DC.
Melastomataceae
Miconia rufescens (Aubl.) DC.
887
Melastomataceae
Clidemia capitellata (Bonpl.) D.Don
926
888
Melastomataceae
Clidemia ciliata D. Don.
927
Melastomataceae
Miconia serrulata (DC.) Naudin
Melastomataceae
Miconia stenostachya DC
Miconia ternatifolia Triana
889
Melastomataceae
Clidemia hirta (L.) D.Don.
928
890
Melastomataceae
Clidemia novemnervia (DC.) Triana
929
Melastomataceae
Clidemia octona (Bonpl.) L.O. Williams
930
Melastomataceae
Miconia tomentosa (Rich.) D.Don ex DC
891
Melastomataceae
892
Melastomataceae
Clidemia rubra (Aubl.) Mart.
931
Melastomataceae
Miconia trinervia (Sw.) D.Don ex
Loudon
893
Melastomataceae
Clidemia sericea D.Don
932
Melastomataceae
Pachyloma huberioides (Naudin) Triana
894
Melastomataceae
Comolia leptophylla (Bonpl.) Naudin
933
Melastomataceae
Poteranthera pusilla Bong.
895
Melastomataceae
Comolia microphylla Benth.
934
Melastomataceae
Pterogastra divaricata (Bonpl.) Naudin.
896
Melastomataceae
Comolia nummularioides (Bonpl.)
Naudin
935
Melastomataceae
Pterogastra minor Naudin.
897
Melastomataceae
Comolia sp1
936
Melastomataceae
Rhynchanthera grandilora (Aubl.) DC.
937
Melastomataceae
Rhynchanthera serrulata (Rich.) DC.
938
Melastomataceae
Tibouchina aspera Aubl.
939
Melastomataceae
Tibouchina spruceana Cogn.
898
Melastomataceae
Comolia sp2
899
Melastomataceae
Desmoscelis villosa (Aubl.) Naudin
900
Melastomataceae
Grafenrieda rotundifolia (Bonpl.) DC.
901
Melastomataceae
Grafenrieda sp1
902
Melastomataceae
Grafenrieda sp2
903
Melastomataceae
Henriettea martiusii (DC.) Naudin
940
Melastomataceae
Tococa nitens (Benth.) Triana
941
Melastomataceae
Tococa coronata Benth.
942
Melastomataceae
Tococa guianensis Aubl.
943
Melastomataceae
Tococa macrosperma Mart.
904
Melastomataceae
Henriettea mucronata (Gleason)
S.S.Renner
944
Meliaceae
Cedrela issilis Vell.
905
Melastomataceae
Henriettea succosa (Aubl.) DC
945
Meliaceae
Cedrela odorata L.
906
Melastomataceae
Henriettella ovata Cogn
946
Meliaceae
Guarea fc. glabra Vahl
907
Melastomataceae
Henriettella sp1
947
Meliaceae
Guarea guidonia (L.) Sleumer
908
Melastomataceae
Henriettella sp2
948
Meliaceae
Guarea sp1
909
Melastomataceae
Loreya arborescens (Aubl.) DC.
949
Meliaceae
Guarea sp2
910
Melastomataceae
Macairea thyrsilora DC.
950
Meliaceae
Trichilia quadrijuga H.B.K
911
Melastomataceae
Meriania urceolata Triana
951
Meliaceae
Trichilia rubra C. DC
912
Melastomataceae
Miconia alata (Aubl.) DC.
952
Meliaceae
Trichilia sp.
913
Melastomataceae
Miconia albicans (Sw.) Triana
953
Mendonciaceae
Mendoncia lindavii Rusby
914
Melastomataceae
Miconia aplostachya (Bonpl.) DC.
954
Memecylaceae
Mouriri acutilora Naudin
915
Melastomataceae
Miconia brevipes Benth.
955
Memecylaceae
Mouriri caulilora Mart. ex DC.
916
Melastomataceae
Miconia chrysophylla (Rich.) Urb.
956
Memecylaceae
Mouriri collocarpa Ducke
917
Melastomataceae
Miconia dispar Benth.
957
Memecylaceae
Mouriri guianensis Aubl.
918
Melastomataceae
Miconia holosericea (L.) DC.
958
Memecylaceae
Mouriri myrtilloides (Sw.) Poir.
919
Melastomataceae
Miconia impetiolaris (Sw.) D. Don ex DC
959
Menispermaceae
Abuta grandifolia (Mart.) Sandwith
570
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
No.
Familia
No.
Familia
Nombre cientiico
997
Myrsinaceae
Cybianthus spicatus (Kunth) G. Agostini
Menispermaceae
Curarea tecunarum Barneby y Krukof
998
Myrsinaceae
Myrsine guianensis (Aubl.) Kuntze
Menispermaceae
Orthomene schomburgkii (Miers) Barneby y Krukof
999
Myrsinaceae
Stylogyne sp1
1000
Myrtaceae
Calycolpus calophyllus (Kunth) O. Berg
1001
Myrtaceae
Calyptranthes lucida Mart. ex DC.
1002
Myrtaceae
Calyptranthes macrophylla O. Berg in
Mart.
1003
Myrtaceae
Calyptranthes multilora Poepp. ex
O.Berg
1004
Myrtaceae
Eugenia amblyosepala McVaugh
1005
Myrtaceae
Eugenia bilora (L.) DC
1006
Myrtaceae
Eugenia emarginata (Kunth) DC.
Menispermaceae
961
962
Nombre cientiico
Abuta sp1
960
963
Menispermaceae
Othomene sp.
964
Menispermaceae
Cissampelos ovalifolia DC
965
Menispermaceae
Cissampelos pareira L
966
Monimiaceae
Siparuna guianensis
967
Moraceae
Brosimum guianense (Aubl.) Huber
968
Moraceae
Brosimum utile (Kunth) Pittier
969
Moraceae
Brosimum lactescens (S.Moore) C.C.Berg
970
Moraceae
Brosimum rubescens Taub.
1007
Myrtaceae
Eugenia polystachyoides Amshof
971
Moraceae
Brosimum sp1
1008
Myrtaceae
Eugenia punicifolia (Kunth) DC.
972
Moraceae
Clarisia racemosa Ruiz y Pav.
1009
Myrtaceae
Eugenia sp1
973
Moraceae
Dorstenia brasiliensis Lam
1010
Myrtaceae
Eugenia sp2
974
Moraceae
Ficus mathewsii (Miq.) Miq.
1011
Myrtaceae
Eugenia sp3
975
Moraceae
Ficus mollicula Pittier
1012
Myrtaceae
Eugenia sp4
976
Moraceae
Ficus guianensis Desv. ex Ham.
1013
Myrtaceae
Eugenia sp5
977
Moraceae
Ficus insipida Willd.
1014
Myrtaceae
Eugenia sp6
978
Moraceae
Ficus sp1
1015
Myrtaceae
Eugenia sp7
979
Moraceae
Ficus sp2
1016
Myrtaceae
Eugenia sp8
980
Moraceae
Maclura tinctoria (L.) Steud.
1017
Myrtaceae
Eugenia sp9
981
Moraceae
Maquira coriacea (H.Karst.) C.C.Berg
1018
Myrtaceae
Eugenia sp10
982
Moraceae
Maquira calophylla (Poepp. y Endl.)
C.C.Berg
1019
Myrtaceae
Eugenia sp11
983
Moraceae
Pseudolmedia laevis (Ruiz y Pav.)
J.F.Macbr.
984
Moraceae
Sorocea steinbachii C.C.Berg
985
Moraceae
sp1
986
Moraceae
1020
Myrtaceae
Eugenia sp12
1021
Myrtaceae
Eugenia sp13
1022
Myrtaceae
Eugenia sp14
1023
Myrtaceae
Myrcia fallax (Rich.) DC.
Trymatococcus amazonicus Poepp. y
Endl.
1024
Myrtaceae
Myrcia inaequiloba (DC.) D. Legrand
1025
Myrtaceae
Myrcia sp1
Myrtaceae
Myrcia sp2
987
Myristicaceae
Iryanthera ulei Warb.
988
Myristicaceae
Iryanthera juruensis Warb
1026
Iryanthera laevis Markgr.
1027
Myrtaceae
Myrcia splendens (Sw.) DC.
Myrtaceae
Myrcia subsessilis O. Berg
989
Myristicaceae
990
Myristicaceae
Virola carinata (Benth.) Warb.
1028
991
Myristicaceae
Virola elongata (Benth.) Warb.
1029
Myrtaceae
Myrciaria dubia (Kunth) McVaugh
1030
Myrtaceae
Myrciaria sp1
992
Myristicaceae
Virola sebifera Aubl.
993
Myristicaceae
Virola surinamensis (Rol. ex Rottb.)
Warb.
1031
Myrtaceae
Myrciaria sp2
1032
Myrtaceae
Myrciaria sp3
994
Myristicaceae
Virola sp.
1033
Myrtaceae
Plinia involucrata (O.Berg) McVaugh
995
Myrsinaceae
Cybianthus fulvopulverulentus (Mez)
G.Agostini
1034
Myrtaceae
Plinia sp1
996
Myrsinaceae
Cybianthus llanorum Pipoly
1035
Myrtaceae
Psidium acutangulum DC.
571
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
No.
Familia
Nombre cientiico
No.
Familia
Nombre cientiico
1036
Myrtaceae
Psidium densicomum DC.
1075
Orchidaceae
Cattleya violacea (Kunth) Rolfe
1037
Myrtaceae
Psidium maribense DC.
1076
Orchidaceae
Caularthron bicornutum (Hook.) Raf.
1038
Myrtaceae
Psidium guineense Sw.
1077
Orchidaceae
Cleistes rosea Lindl
1039
Myrtaceae
Psidium sp1
1078
Orchidaceae
1040
Nyctaginaceae
Guapira sp1
Cleistes trilora (C. Schweinf.) Carnevali
y I. Ramírez
1041
Nyctaginaceae
Guapira sp2
1079
Orchidaceae
Cyrtopodium paniculatum (Ruiz y Pav.)
Garay
1042
Nyctaginaceae
Guapira sp3
1080
Orchidaceae
Duckeella paucilora Garay
1043
Nyctaginaceae
sp1
1081
Orchidaceae
Encyclia leucantha Schltr.
1044
Nymphaeaceae
Nymphaea rudgeana G. Mey.
1082
Orchidaceae
Epidendrum calanthum Rchb. f. y Warsz.
1045
Ochnaceae
Ouratea brevipedicellata Maguire y
Steyerm
1083
Orchidaceae
Epidendrum imbriatum Kunth
1046
Ochnaceae
Ouratea castaneifolia (DC.) Engl
1084
Orchidaceae
Epidendrum nocturnum Jacq
1085
Orchidaceae
Epistephium subrepens Hoehne
1086
Orchidaceae
Habenaria heptadactyla Rchb. f.
1047
Ochnaceae
Ouratea polyantha (Triana y Planch.)
Engl
1048
Ochnaceae
Ouratea sp1
1049
Ochnaceae
Ouratea sp2
1050
Ochnaceae
Ouratea sp3
1051
Ochnaceae
Ouratea sp4
1052
Ochnaceae
Ouratea sp5
1053
Ochnaceae
Ouratea sp6
1054
Ochnaceae
Ouratea guildingii (Planch.) Urb.
1055
Ochnaceae
Sauvagesia erecta L
1056
Ochnaceae
Sauvagesia rubiginosa A.St.-Hil.
1057
Ochnaceae
Sauvagesia ramosa (Gleason) Sastre
1058
Ochnaceae
Wallacea insignis Spruce ex Benth. y
Hook.f.
1059
Olacaceae
Cathedra acuminata (Benth.) Miers
1060
Olacaceae
Chaunochiton angustifolium Sleumer
1061
Olacaceae
Chaunochiton loranthoides Benth
1062
Olacaceae
Dulacia candida (Poepp.) Kuntze
1063
Olacaceae
Heisteria sp.
1064
Olacaceae
Minquartia guianensis Aubl.
1065
Olacaceae
sp1
1066
Onagraceae
Ludwigia densilora (Micheli) H.Hara
1067
Onagraceae
Ludwigia hyssopifolia (G.Don) Exell
1068
Onagraceae
Ludwigia leptocarpa (Nutt.) H.Hara
1069
Onagraceae
Ludwigia nervosa (Poir.) H.Hara
1070
1071
1072
Onagraceae
Onagraceae
Onagraceae
Ludwigia peploides (Kunth) P.H.Raven
Ludwigia sedoides (Bonpl.) Hara
1087
Orchidaceae
Habenaria sp.
1088
Orchidaceae
Ionopsis utricularioides (Sw.) Lindl
1089
Orchidaceae
Oncidium cebolleta (Jacq.) Sw.
1090
Orchidaceae
Polystachya amazonica Schltr.
1091
Orchidaceae
Schomburgkia rosea Linden ex Lindl.
1092
Orchidaceae
Sobralia liliastrum Lindl.
1093
Orchidaceae
sp1
1094
Orchidaceae
sp2
1095
Orchidaceae
Vanilla planifolia Andrews
1096
Orchidaceae
Vanilla sp1
1097
Oxalidaceae
Oxalis frutescens L
1098
Passiloraceae
Passilora auriculata Kunth
1099
Passiloraceae
Passilora coccinea Aubl.
1100
Passiloraceae
Passilora foetida L. var.1
1101
Passiloraceae
Passilora garckei Mast
1102
Passiloraceae
Passilora misera Kunth
1103
Passiloraceae
Passilora nitida Kunth
1104
Passiloraceae
Passilora phaeocaula Killip
1105
Passiloraceae
Passilora quadriglandulosa Rodschied
1106
Passiloraceae
Passilora seemannii Griseb
1107
Passiloraceae
Passilora sclerophylla Harms
1108
Passiloraceae
Passilora sp.
1109
Piperaceae
Peperomia guaiquinimana Trel. y Yunck.
Ludwigia sp1
1110
Piperaceae
Peperomia quadrangularis (J.V.homps.)
A. Dietr
1073
Orchidaceae
Catasetum pileatum Rchb. f.
1111
Piperaceae
Peperomia sp1
1074
Orchidaceae
Catasetum sp.
1112
Piperaceae
Piper aduncum L.
572
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Nombre cientiico
No.
1113
Piperaceae
Piper hermannii Trel. y Yunck.
1152
Poaceae
Hymenachne amplexicaulis (Rudge) Nees
Poaceae
Hyparrhenia rufa (Nees) Stapf
No.
Familia
Familia
Nombre cientiico
1114
Piperaceae
Piper marginatum Jacq.
1153
1115
Piperaceae
Piper ovatum Vahl
1154
Poaceae
Ichnanthus breviscrobs Döll
1116
Piperaceae
Piper sp1
1155
Poaceae
Imperata brasiliensis Trin.
1117
Piperaceae
Piper sp2
1156
Poaceae
Leersia hexandra Sw
1118
Poaceae
Andropogon bicornis L.
1157
Poaceae
Leptocoryphium lanatum (Kunth) Nees
1119
Poaceae
Andropogon hypogynus Hack.
1158
Poaceae
Mesosetum chaseae Luces
1120
Poaceae
Andropogon lateralis Nees
1159
Poaceae
Mesosetum loliiforme (Hochst. ex Steud.)
Chase
1160
Poaceae
Olyra ciliatifolia Raddi
1161
Poaceae
Olyra latifolia L.
1162
Poaceae
Oryza latifolia Desv.
1163
Poaceae
Oryza ruipogon Grif. [naturalized]
1164
Poaceae
Otachyrium versicolor (Döll) Henrard
1165
Poaceae
Panicum caricoides Nees
1166
Poaceae
Panicum cyanescens Nees ex Trin.
1167
Poaceae
Panicum laxum Sw.
1121
Poaceae
Andropogon leucostachyus Kunth
1122
Poaceae
Andropogon selloanus (Hack.) Hack.
1123
Poaceae
Andropogon virgatus Desv.
1124
Poaceae
Anthaenantia lanata (Kunth) Benth.
1125
Poaceae
Aristida capillacea Lam.
1126
Poaceae
Aristida longifolia Trin.
1127
Poaceae
Aristida riparia Trin.
1128
Poaceae
Aristida torta (Nees) Kunth
1129
Poaceae
Arundinella hispida (Humb. y Bonpl. ex
Willd.) Kuntze
1168
Poaceae
Panicum micranthum Kunth
1130
Poaceae
Axonopus anceps (Mez) Hitchc.
1169
Poaceae
Panicum orinocanum Luces
1131
Poaceae
Axonopus aureus P. Beauv.
1170
Poaceae
Panicum parvifolium Lam.
1132
Poaceae
Axonopus capillaris (Lam.) Chase
1171
Poaceae
Panicum pilosum Sw.
1133
Poaceae
Axonopus compressus (Sw.) P.Beauv.
1172
Poaceae
Panicum rudgei Roem. y Schult.
1134
Poaceae
Axonopus chrysoblepharis (Lag.) Chase
1173
Poaceae
Panicum stoloniferum Poir.
Panicum stoloniferum Poir.
1135
Poaceae
Axonopus issifolius (Raddi) Kuhlm.
1174
Poaceae
1136
Poaceae
Axonopus pressus (Nees ex Steud.) Parodi
1175
Poaceae
Pariana radicilora Sagot ex Döll
1137
Poaceae
Axonopus purpusii (Mez) Chase
1176
Poaceae
1138
Poaceae
Axonopus triglochinoides (Mez) Dedecca
Paspalum carinatum Humb. y Bonpl.
ex Flüggé
Poaceae
1177
1139
Cenchrus brownii Roem. y Schult.
Poaceae
Paspalum conjugatum Bergius
1140
Poaceae
Cynodon dactylon (L.) Pers.
1178
Poaceae
Paspalum convexum Humb. y Bonpl. ex
Flüggé
1141
Poaceae
Digitaria horizontalis Willd.
1179
Poaceae
Paspalum fasciculatum Willd.
1142
Poaceae
Eleusine indica (L.)
1180
Poaceae
Paspalum millegrana Schrad.
1143
Poaceae
Elionurus muticus (Spreng.) Kuntze
1181
Poaceae
Paspalum multicaule Poir.
1144
Poaceae
Eragrostis maypurensis (Kunth) Steud.
1182
Poaceae
Paspalum notatum Flüggé
1145
Poaceae
Eriochrysis cayennensis P.Beauv
1183
Poaceae
Paspalum pectinatum Nees
Paspalum plicatulum Michx.
1146
Poaceae
Guadua angustifolia Kunth
1184
Poaceae
1147
Poaceae
Guadua sp.
1185
Poaceae
Paspalum repens Bergius
1186
Poaceae
Rhynchelytrum repens (Willd.) C.E.
Hubb.
1187
Poaceae
Setaria parvilora (Poir.) Kerguélen
1188
Poaceae
Sporobolus cubensis Hitchc.
1189
Poaceae
Steinchisma laxa (Sw.) Zuloaga
1148
Poaceae
Gymnopogon foliosus (Willd.) Nees
1149
Poaceae
Gynerium sagittatum (Aubl.) P. Beauv.
1150
Poaceae
Heteropogon contortus (L.) P.Beauv. ex
Roem. y Schult.
1151
Poaceae
Homolepis aturensis (Kunth) Chase
573
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
No.
1190
Familia
Poaceae
Nombre cientiico
No.
Familia
Nombre cientiico
Streptogyna americana C.E.Hubb.
1229
Pontederiaceae
Eichhornia heterosperma Alexander
Pontederiaceae
Heteranthera reniformis Ruiz y Pav.
1191
Poaceae
Trachipogon sp.
1230
1192
Poaceae
Trachypogon spicatus (L.f.) Kuntze
1231
Pontederiaceae
Heteranthera sp1
1193
Poaceae
Trachypogon vestitus Andersson
1232
Pontederiaceae
Heteranthera sp2
1194
Podostemaceae
Apinagia exilis (Tul.) P.Royen
1233
Pontederiaceae
Heteranthera sp3
1195
Podostemaceae
Marathrum sp.
1234
Portulacaceae
Portulaca pygmaea Steyerm.
1196
Polygalaceae
Bredemeyera lucida (Benth.) Klotzsch
ex Hassk.
1235
Portulacaceae
Portulaca pusilla Kunth
1236
Portulacaceae
Portulaca elatior Rohrb.
1237
Portulacaceae
Talinum fruticosum (L.) Juss
1238
Proteaceae
Euplassa saxicola (Schult.) Steyerm
1197
Polygalaceae
Bredemeyera sp1
1198
Polygalaceae
Diclidanthera bolivarensis Pittier
1199
Polygalaceae
Diclidanthera wurdackiana Aymard y
P.E.Berry
1239
Proteaceae
Panopsis rubescens (Pohl) Rusby
1200
Polygalaceae
Moutabea guianensis Aubl
1240
Proteaceae
Roupala montana Aubl.
1201
Polygalaceae
Polygala adenophora DC.
1241
Quiinaceae
Quiina lorida Tul.
1202
Polygalaceae
Polygala hygrophila Kunth
1242
Quiinaceae
Quiina macrophylla Tul.
1203
Polygalaceae
Polygala microspora S.F. Blake
1243
Quiinaceae
Quiina sp1
1204
Polygalaceae
Polygala paniculata L.
1244
Rapateaceae
Guacamaya superba Maguire
1205
Polygalaceae
Polygala sanariapoana Steyerm.
1245
Rapateaceae
Monotrema xyridoides Gleason
1206
Polygalaceae
Polygala savannarum Chodat,
1207
Polygalaceae
Polygala sp1
1246
Rapateaceae
Rapatea circasiana García-Barr. y
L.E.Mora
1208
Polygalaceae
Polygala spruceana A.W. Benn.
1247
Rapateaceae
Schoenocephalium martianum Seub.
1248
Rhamnaceae
Gouania sp1
1209
Polygalaceae
Polygala variabilis Kunth
1210
Polygalaceae
Securidaca bialata Benth
1249
Rhamnaceae
Gouania sp2
Rhamnaceae
Gouania sp3
1211
Polygalaceae
Securidaca longifolia Poepp. y Endl
1250
1212
Polygalaceae
Securidaca pendula Bonpl. C
1251
Rubiaceae
Alibertia acuminata (Benth.) Sandwith
Securidaca sp1
1252
Rubiaceae
Alibertia latifolia (Benth.) K. Schum
Rubiaceae
Alibertia myrciifolia K. Schum.
1213
Polygalaceae
1214
Polygalaceae
Securidaca sp2
1253
1215
Polygalaceae
Securidaca sp3
1254
Rubiaceae
Alibertia sp1
1255
Rubiaceae
Amaioua guianensis Aubl.
1216
Polygalaceae
Securidaca sp4
1217
Polygonaceae
Antigonon leptopus Hook. y Arn.
1256
Rubiaceae
Amaioua sp.
1257
Rubiaceae
Borreria capitata (Ruiz y Pav.) DC.
1218
Polygonaceae
Coccoloba dugandiana A. Fernández,
1219
Polygonaceae
Coccoloba caracasana Meisn.
1258
Rubiaceae
Borreria densilora DC.
Rubiaceae
Borreria latifolia (Aubl.) K.Schum.
1220
Polygonaceae
Coccoloba ovata Benth.
1259
1221
Polygonaceae
Coccoloba sp1
1260
Rubiaceae
1222
Polygonaceae
Polygonum acuminatum Kunth
Borreria ocymifolia (Willd. ex Roem. y
Schult.) Bacigalupo y E.L.Cabral
1261
Rubiaceae
Capirona decorticans Spruce
1223
Polygonaceae
Polygonum punctatum Elliott
1262
Rubiaceae
Chomelia volubilis (Standl.) Steyerm.
1224
Polygonaceae
Ruprechtia tenuilora Benth.
1225
Polygonaceae
Symmeria paniculata Benth.
1263
Rubiaceae
Coccocypselum guianense (Aubl.) K.
Schum.
1226
Polygonaceae
Triplaris americana L. [to be expected
in GU]
1264
Rubiaceae
Coccocypselum hirsutum Bartl. ex DC.
1227
Polygonaceae
Triplaris weigeltiana (Rchb.) Kuntze
1265
Rubiaceae
Cordiera myrciifolia (Spruce ex
K.Schum.) C.Persson y Delprete
1228
Pontederiaceae
Eichhornia crassipes (Mart.) Solms
1266
Rubiaceae
Coussarea paniculata (Vahl) Standl.
574
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
No.
Familia
Nombre cientiico
1267
Rubiaceae
Declieuxia fruticosa (Roem. y Schult.)
Kuntze
1268
Rubiaceae
Diodia hyssopifolia (Willd. ex Roem. y
Schult.)
Cham. y Schltdl.
1269
Rubiaceae
Duroia fusifera Hook. f. ex K. Schum.
1270
1271
1272
Rubiaceae
No.
Duroia genipoides Hook.f. ex K.Schum.
Familia
Nombre cientiico
1304
Rubiaceae
Psychotria vichadensis Standl.
1305
Rubiaceae
Randia sp1
1306
Rubiaceae
Randia sp2
1307
Rubiaceae
Randia sp3
1308
Rubiaceae
Randia venezuelensis Steyerm.
1309
Rubiaceae
Remijia longifolia Benth. ex Standl.
1310
Rubiaceae
Remijia amphithrix Standl.
Rosenbergiodendron formosum (Jacq.)
Fagerl.
Rubiaceae
Duroia hirsuta (Poepp. y Endl.)
K.Schum.
Rubiaceae
Duroia micrantha (Ladbr.) Zarucchi y
J.H. Kirkbr.
1311
Rubiaceae
1273
Rubiaceae
Faramea capillipes Müll.Arg.
1312
Rubiaceae
Rosenbergiodendron sp.
1274
Rubiaceae
Faramea sessilifolia (Kunth) DC.
1313
Rubiaceae
Rudgea crassifolia Zappi y E.Lucas
1275
Rubiaceae
Faramea sp1
1314
Rubiaceae
Rudgea cornifolia (Kunth) Standl.
1276
Rubiaceae
Faramea sp2
1315
Rubiaceae
Sabicea colombiana Wernham
1277
Rubiaceae
Genipa americana L.
1316
Rubiaceae
Sabicea velutina Benth.
1278
Rubiaceae
Genipa spruceana Steyerm.
1317
Rubiaceae
Simira pisoniiformis (Baill.) Steyerm
1279
Rubiaceae
Geoila sp.
1318
Rubiaceae
1280
Rubiaceae
Geophila orbicularis (Müll. Arg.) Steyerm
Simira rubescens (Benth.) Bremek. ex
Steyerm.
1319
Rubiaceae
Simira sp1
1281
Rubiaceae
Isertia rosea Spruce ex K. Schum
1320
Rubiaceae
Simira sp2
1282
Rubiaceae
Ixora acuminatissima Müll. Arg.
1321
Rubiaceae
Sipanea pratensis Aubl.
1283
Rubiaceae
Malanea gabrielensis Müll.Arg.
1322
Rubiaceae
Sipanea hispida Benth. ex Wernham
1284
Rubiaceae
Morinda tenuilora (Benth.) Steyerm.
1323
Rubiaceae
Sipanea veris S. Moore
1285
Rubiaceae
Pagamea guianensis Aubl.
1324
Rubiaceae
Sipaneopsis maguirei Steyerm.
1286
Rubiaceae
Palicourea guianensis Aubl.
1325
Rubiaceae
sp1
1287
Rubiaceae
Palicourea crocea (Sw.) Roem. y Schult.
1326
Rubiaceae
sp2
1288
Rubiaceae
Palicourea croceoides Desv. ex Ham.
1327
Rubiaceae
sp1
1289
Rubiaceae
Palicourea lasiantha K.Krause
1328
Rubiaceae
sp2
1290
Rubiaceae
Palicourea nitidella (Müll.Arg.) Standl.
1329
Rubiaceae
sp3
1291
Rubiaceae
Palicourea rigida Kunth
1330
Rubiaceae
sp4
1292
Rubiaceae
Palicourea triphylla DC.
1331
Rubiaceae
sp5
1293
Rubiaceae
Perama galioides (Kunth) Poir.
1332
Rubiaceae
sp6
1294
Rubiaceae
Perama hirsuta Aubl.
1333
Rubiaceae
Stachyarrhena duckei Standl.
1295
Rubiaceae
Platycarpum orinocense Bonpl
1296
Rubiaceae
Psychotria cardiomorpha C.M.Taylor
y Pool
1297
Rubiaceae
Psychotria capitata Ruiz y Pav.
1336
Rubiaceae
Tocoyena sp1
1337
Rubiaceae
Tocoyena sp2
1334
Rubiaceae
Stachyarrhena spicata Hook.f.
1335
Rubiaceae
Stachyarrhena sp.
1298
Rubiaceae
Psychotria carthagenensis Jacq.
1299
Rubiaceae
Psychotria delexa DC.
1338
Rubiaceae
Tocoyena sp3
Rutaceae
Ertela trifolia (L.) Kuntze
Rutaceae
Spathelia giraldiana C. Parra-O
1300
Rubiaceae
Psychotria ernestii K. Krause
1339
1301
Rubiaceae
Psychotria gracilenta Müll.Arg.
1340
1302
Rubiaceae
Psychotria poeppigiana Müll.Arg.
1341
Rutaceae
Spathelia ulei (Engl. ex Harms) R.S.
Cowan y Brizicky
1303
Rubiaceae
Psychotria variegata Steyerm.
1342
Rutaceae
Zanthoxylum sp.
575
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
No.
Familia
Nombre cientiico
No.
Familia
Nombre cientiico
1343
Salviniaceae
Salvinia auriculata Aubl.
1383
Simaroubaceae
Simaba cedron Planch.
Simaroubaceae
Simaba orinocensis Kunth
1344
Sapindaceae
Allophylus racemosus Sw
1384
1345
Sapindaceae
Cardiospermum halicacabum L.
1385
Simaroubaceae
Simaba guianensis Aubl.
1346
Sapindaceae
Cardiospermum sp.
1386
Simaroubaceae
Simarouba amara Aubl
1347
Sapindaceae
Cupania livida (Radlk.) Croat
1387
Smilacaceae
1348
Sapindaceae
Cupania latifolia Kunth
Smilax maypurensis Humb. y Bonpl. ex
Willd.
1388
Smilacaceae
Smilax sp1
1349
Sapindaceae
Cupania americana L.
1389
Solanaceae
Cestrum sp.
1350
Sapindaceae
Cupania sp1
1390
Solanaceae
Lycianthes sp.
1351
Sapindaceae
Matayba guianensis Aubl.
1391
Solanaceae
Physalis pubescens L.
1352
Sapindaceae
Matayba macrolepis Radlk.
1353
Sapindaceae
Matayba macrostylis Radlk.
1354
Sapindaceae
Matayba sp1
1355
Sapindaceae
Matayba sp2
1356
Sapindaceae
Paullinia leiocarpa Griseb.
1357
Sapindaceae
Paullinia pachycarpa Benth.
1358
Sapindaceae
Paullinia sp1
1359
Sapindaceae
Paullinia sp2
1360
Sapindaceae
Paullinia sp3
1361
Sapindaceae
Serjania caracasana (Jacq.) Willd.
1362
Sapindaceae
Serjania clematidea Triana y Planch.
1363
Sapindaceae
Serjania rhombea Radlk.
1402
Sterculiaceae
Helicteres guazumaefolia Kunth
1364
Sapindaceae
Toulicia pulvinata Radlk
1403
Sterculiaceae
Melochia arenosa Benth
1365
Sapindaceae
Urvillea ulmacea Kunth
1404
Sterculiaceae
Melochia villosa (Mill.) Fawc. y Rendle
1366
Sapindaceae
Vouarana guianensis Aubl
1405
Sterculiaceae
Melochia parvifolia Kunth
1367
Sapotaceae
Lucuma sp.
1406
Sterculiaceae
Melochia sp.
1368
Sapotaceae
Micropholis egensis (A. DC.)
1407
Sterculiaceae
Sterculia apetala (Jacq.) H.Karst.
1369
Sapotaceae
Micropholis sp1
1408
Sterculiaceae
Waltheria berteroi (Spreng.) J.G.
Saunders
1392
Solanaceae
Schwenckia grandilora Benth.
1393
Solanaceae
Solanum lanceifolium Jacq
1394
Solanaceae
Solanum monachophyllum Dunal
1395
Solanaceae
Solanum sp.
1396
Sterculiaceae
Byttneria genistella Triana y Planch.
1397
Sterculiaceae
Byttneria sp1
1398
Sterculiaceae
Byttneria sp2
1399
Sterculiaceae
Byttneria rhamnifolia Benth.
1400
Sterculiaceae
Guazuma ulmifolia var. tomentosa
K.Schum.
1401
Sterculiaceae
Guazuma ulmifolia var. tomentella K.
Schum
1370
Sapotaceae
Micropholis sp2
1371
Sapotaceae
Pouteria elegans (A.DC.) Baehni
1409
Strelitziaceae
Phenakospermum guyannense (Rich.)
Endl. ex Miq.
1372
Sapotaceae
Pouteria hispida Eyma
1410
Styracaceae
Styrax rigidifolius Idrobo y R.E.Schult.
1373
Sapotaceae
Pouteria sp1
1411
hurniaceae
hurnia polycephala Schnee
1374
Sapotaceae
Pouteria sp2
1412
hymelaeaceae
Lasiadenia rupestris Benth
1375
Scrophulariaceae
Bacopa callitrichoides (Kunth) Pennell
1413
Tiliaceae
Apeiba tibourbou Aubl.
1376
Scrophulariaceae
Buchnera pusilla Kunth
1414
Tiliaceae
Corchorus orinocensis Kunth
1377
Scrophulariaceae
Buchnera rosea Kunth
1415
Tiliaceae
Luehea cymulosa Spruce ex Benth.
1378
Scrophulariaceae
Buchnera sp1
1416
Tiliaceae
Luehea sp.
1379
Scrophulariaceae
Buchnera weberbaueri Diels
1417
Tiliaceae
Mollia speciosa Mart.
1380
Scrophulariaceae
Escobedia grandilora (L. f.) Kuntze
1418
Tiliaceae
Mollia sp.
Tiliaceae
Triumfetta bogotensis DC.
Turneraceae
Piriqueta cistoides (L.) Griseb
1381
Scrophulariaceae
Scoparia dulcis L
1419
1382
Simaroubaceae
Picramnia magnifolia J.F. Macbr.
1420
576
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Nombre cientiico
No.
1421
Turneraceae
Turnera acuta Willd. ex Schult
1447
Violaceae
1422
Turneraceae
Turnera guianensis Aubl
1448
Violaceae
Rinorea sp.
1449
Viscaceae
Phoradendron quadrangulare (Kunth)
Griseb
1450
Viscaceae
Phoradendron obtusissimum (Miq.)
Eichler
No.
Familia
Familia
Nombre cientiico
Rinorea lavescens (Aubl.) Kuntze
1423
Turneraceae
Turnera sp1
1424
Turneraceae
Turnera sp2
1425
Turneraceae
Turnera sp3
1426
Turneraceae
Turnera sp4
1451
Vitaceae
Cissus descoingsii J.A. Lombardi
1427
Ulmaceae
Celtis iguanaea (Jacq.) Sarg
1452
Vitaceae
Cissus erosa Rich.
Trema micrantha (L.) Blume
1453
Vochysiaceae
Erisma uncinatum Warm.
Vochysiaceae
Qualea dinizii Ducke
1428
Ulmaceae
1429
Urticaceae
Urera caracasana (Jacq.) Gaudich
1454
1430
Vellociaceae
Vellozia tubilora (Rich.) Kunth
1455
Vochysiaceae
Qualea paraensis Ducke
Vochysiaceae
Qualea sp1
1431
Verbenaceae
Aegiphila integrifolia (Jacq.) B.D.Jacks.
1456
1432
Verbenaceae
Lantana camara L.
1457
Vochysiaceae
Vochysia crassifolia Warm.
1458
Vochysiaceae
Vochysia ferruginea Mart.
1433
Verbenaceae
Lantana trifolia L.
1434
Verbenaceae
Lantana sp.
1459
Vochysiaceae
Vochysia obscura Warm
1460
Vochysiaceae
Vochysia vismiifolia Spruce ex Warm.
1435
Verbenaceae
Petrea pubescens Turcz.
1436
Verbenaceae
Petrea sp.
1461
Vochysiaceae
Vochysia venezuelana Staleu
Xyridacea
Abolboda macrostachya Spruce ex Malme
1437
Verbenaceae
Priva lappulacea (L.) Pers.
1462
1438
Verbenaceae
Stachytarpheta angustifolia (Mill.) Vahl
1463
Xyridacea
Abolboda neblinae Maguire
1464
Xyridacea
Abolboda pulchella Bonpl.
1439
Verbenaceae
Stachytarpheta cayennensis (Rich.) Vahl
1440
Verbenaceae
Vitex calothyrsa Sandwith
1465
Xyridacea
Xyris caroliniana Walter
Vitex capitata Vahl
1466
Xyridacea
Xyris globosa Nilsson
Xyridacea
Xyris involucrata Nees
1441
Verbenaceae
1442
Verbenaceae
Vitex orinocensis Kunth
1467
1443
Violaceae
Amphirrhox longifolia (A.St.-Hil.)
Spreng.
1468
Xyridacea
Xyris jupicai Rich.
1469
Xyridacea
Xyris lomatophylla Mart.
1470
Xyridacea
Xyris savanensis Miq.
Zngiberaceae
Renealmia thyrsoidea (Ruiz y Pav.)
Poepp. y Endl.
1444
Violaceae
Corynostylis carthagenensis H. Karst
1445
Violaceae
Corynostylis arborea (L.) S.F.Blake
1446
Violaceae
Rinorea pubilora (Benth.) Sprague y
Sandwith
1471
577
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Anexo 6.
Especies de lora amenazada de la Orinoquia colombiana.
Familia
Especie
Categoría de
riesgo
Departamento
Distribución
Altitud
(Mín.)
Altitud
(Máx.)
Acanthaceae
Pelecostemon trianae
EN
Met
No endémica
0
1000
Bombacaceae
Pachira quinata
EN
Ara, Atl, Bol,
Caq, Cas, Ces,
Cor, Mag, Met,
Suc, Val?
No endémica
0
600
Chrysobalanaceae
Parinari pachyphylla
EN
Ant, Bol, Ces,
Guaj, Mag, Nsa,
Vich
No endémica
100
1300
Acanthaceae
Aphelandra schieferae
VU
Met
Endémica o muy
restringida
300
900
Chrysobalanaceae
Hirtella adenophora
VU
Met
Endémica o muy
restringida
850
1000
Chrysobalanaceae
Licania lasseri
VU
Met
No endémica
0
1300
Chrysobalanaceae
Licania silvae
VU
Ant, Met
No endémica
0
700
No endémica
100
1500
0
1000
Palmae
Bactris gasipaes var.
chichagui
VU
Ant, Bol, Boy,
Cho, Cal, Cun,
Guaj, Mag, Met,
Nsa, Qui, Ris,
San, Suc, Tol, Val,
Met, Cas, Ara.
Palmae
Syagrus sancona
VU
Ant, Ara, Caq,
Cas, Cun, Met,
Nsa, Put, Qui,
Ris, Tol, Val
No endémica
Orquidaceae
Cattleya schroederae
VU
Ara,Boy, Caq,
Nor San, Cas,
Met
Endémica o muy
restringida
500
1600
Apocynaceae
Aspidosperma excelsum
NT
Met, Gauv, Guai,
Caq
No endémica
80
400
Apocynaceae
Aspidosperma megalocarpun
NT
Cho, Mag, Guai
No endémica
0
1000
Boraginaceae
Cordia gerascanthus
NT
Ara, Cas
No endémica
100
300
Cecropiaceae
Pourouma mollis ssp. triloba
NT
Met
No endémica
90
1800
Chrysobalanaceae
Hirtella liesneri
NT
Caq, Guav
No endémica
0
1000
fv1c
Chrysobalanaceae
Licania gracilipes
NT
Caq, Guai
No endémica
0
1000
Fabaceae
Myrocarpus venezuelensis
NT
Guav, Met, Ara
No endémica
200
400
0
1000
Orquidaceae
Coryanthes macrantha
NT
Boy, Met
Endémica o muy
restringida
Orquidaceae
Masdevallia sanctae-idei
NT
Cas, Cun, Met,
Nor San
No endémica
500
1800
Palmae
Roystonea oleracea
NT
Ara, Cas, Met
No endémica
0
1000
NE
Ama, Ant, Caq,
Choc, Vich, Put,
Guav, Vau, Val
No endémica
0
1000
No endémica
0
1000
No endémica
200
600
Olacaceae
Minquartia guianensis
Fabaceae
Platymiscium pinnatum
NE
Ant, Cal, Ces,
Mag, Guav, Met,
Cas, Ara, Val
Orquidaceae
Cattleya violacea
LC
Ara, Cas,Caq,
Ama, Guai,
Guav,Vau,Vich,
Put
578
Región
biogeográica
fv1c
fv2
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Lasso.
Familia
Especie
Categoría de
riesgo
Departamento
Distribución
Altitud
(Mín.)
Altitud
(Máx.)
Orquidaceae
Restrepia metae
VU
Met
Endémica o muy
restringida
0
550
Palmae
Mauritia lexuosa
LC
Ama, Caq, Met,
Vich, Ara, Gua,
Vau
No endémica
0
1000
No endémica
0
1000
fv3a
Fabaceae
Bowdichia virgilioides
NE
Vich, Met, Cas,
Ara.
Calophyllaceae
Caraipa llanorum
NE
Boy, Caq, Vich,
Cas, Ara.
No endémica
0
500
Fabaceae
Dypterix odorata
NE
Orinoquía
No endémica
0
500
Met
Endémica o muy
restringida
360
490
0
100
Chrysobalanaceae
Hirtella maguirei
Lecythidaceae
Gustavia macarenensis subsp.
macarenensis
NT
Ama, Met
Endémica o muy
restringida
Chrysobalanaceae
Acioa schultesii
NT
Guai
No endémica
100
200
Lecythidaceae
Asteranthos brasiliensis
NT
Guai
No endémica
0
500
Vochysiaceae
Erisma uncinatum
NT
Guav, Vich
No endémica
80
300
Chrysobalanaceae
Licania cardiophylla
NT
Guai, Vich
No endémica
0
500
Palmae
Astrocaryum chambira
LC
Ama, Caq, Guav,
Met, Put, Vau
No endémica
0
500
Fabaceae
Acosmium nitens
NE
Met, Cas, Vich,
Guai, Vau
No endémica
0
500
Lauraceae
Ocotea cymbarum
NT
Guai, Vich
No endémica
80
100
Lauraceae
Aniba perutilis
CR
Ant, Bol, Cal,
Met, San,Val
No endémica
0
2400
Palmae
Ceroxylon quindiuense
EN
Ant, Caq, Cas,
Cun, Met, Nsa,
Put, Qui, Ris,
Tol, Val
No endémica
2000
3000
No endémica
1900
3800
CR
Podocarpaceae
Podocarpus oleifolius
VU
Ant, Boy, Cau,
Ces, Cun, Cho,
Hui, Mag, Met,
Nar, Put, Qui,
Ris, san, Tol, Val
Scrophulariaceae
Calceolaria hirtilora
NT
Boy, Cun, Met,
Nsa
Endémica o muy
restringida
3600
3900
Asteraceae
Espeletia cleeii
NT
Ara, Boy
Endémica o muy
restringida
3500
4300
Palmae
Geonoma orbignyana
NT
Caq, Met, San
No endémica
1100
2500
NT
Ant, Boy, Cal,
Caq, Cau, Cho,
Cun, Hui, Met,
Nar, Nsa, Put,
Ris, San, Tol, Val
No endémica
1300
2300
NT
Cun, Met
Endémica o muy
restringida
3300
3800
Heliconiaceae
Heliconia burleana
Scrophulariaceae
fv3b
fv4
fv5
fv5a
Scrophulariaceae
Aragoa perez-arbelaeziana
NT
Cun, Met
Endémica o muy
restringida
3300
3800
Scrophulariaceae
Calceolaria penlandii ssp.
puraceensis
NT
Cau, Cun, Hui,
Met
Endémica o muy
restringida
3000
3400
Palmae
Ceroxylon ventricosum
EN
Cau, Put, Met
No endémica
1800
3000
579
Región
biogeográica
fv5b
FLORA Y VEGETACIÓN
DE LA CUENCA DEL RÍO ORINOCO
J. C. Señaris.
Familia
Especie
Categoría de
riesgo
Departamento
Distribución
Altitud
(Mín.)
Altitud
(Máx.)
Asteraceae
Diplostephium fosbergii
NT
Met
Endémica o muy
restringida
3200
3300
Asteraceae
Espeletia cabrerensis
VU
Cun, Met
Endémica o muy
restringida
3200
3200
3300
3600
Asteraceae
Espeletia annemariana
NT
Boy, Cas
Endémica o muy
restringida
Asteraceae
Espeletia miradorensis
NT
Cun
No endémica
3560
3560
2700
3015
Asteraceae
Espeletia oswaldiana
CR
Boy, Met
Endémica o muy
restringida
Asteraceae
Espeletia summapacis
NT
Cun, Met
Endémica o muy
restringida
3700
4000
Asteraceae
Espeletia tapirophila
VU
Met
Endémica o muy
restringida
3000
3400
Euphorbiaceae
Hieronyma duquei
NE
Ant, Cau, Choc,
Hui, Put, Val, Met
No endémica
1000
2300
Junglandaceae
Junglans neotropica
EN
Cun, Met
No endémica
1000
3500
3300
3460
Asteraceae
Libanothamnus tamanus
VU
Ara
Endémica o muy
restringida
Orquidaceae
Lycaste macrophylla
NT
Mag,Met, Val
Endémica o muy
restringida
0
2000
Orquidaceae
Masdevallia discolor
VU
Boy, Cun
Endémica o muy
restringida
2400
2800
Asteraceae
Pentacalia haughtii
NT
Cun, Met
No endémica
3000
3500?
Rosaceae
Polylepis quadrijuga
NE
Ant, Boy, Cund,
Met
No endémica
3300
3900
LC
Boy, Cas, Met,
Caq, Put
No endémica
400
1400
500
1900
Orquidaceae
Rodriguezia venusta
Lecythidaceae
Eschweilera cabrerana
EN
Met
Endémica o muy
restringida
Heliconiaceae
Heliconia aristeguietae
VU
Met
No endémica
900
1200
0
1300
Zamiaceae
Zamia melanorrhachis
LC
Met
Endémica o muy
restringida
Zamiaceae
Zamia poeppigiana
LC
Ant?, Hui, Met,
Tol
Endémica o muy
restringida
0
1300
Chrysobalanaceae
Hirtella scabra
NT
Guai
No endémica
0
1000
0
1000
0
500
Chrysobalanaceae
Hirtella vesiculosa
VU
Guai
Endémica o muy
restringida
Palmae
Leopoldinia piassaba
NT
Guai
No endémica
Región
biogeográica
fv5b
fv5c
fv8
CR (En peligro Crítico), EN (En peligro), VU (Vulnerable), NT (Casi Amenazado), LC (Preocupación Menor), NE (No evaluado, pero con datos de reducción y peligro
de poblaciones a nivel regional).
fv1c
fv2
fv3a
fv3b
fv4
fv5
fv5a
fv5b
fv5c
fv8
Bosques siempreverdes del piedemonte andino sur.
Sabanas inundables, Altillanura y Guayana sur.
Sabanas de Altillanura húmeda, sabanas inundables eolicas, Guayana sur.
Sabanas de Altillanura seca.
Bosque de transición amazónica.
Selvas de transición de la Amazonia, Guayana sur.
Bosques, arbustales y páramos del Orobioma andino semihúmedo.
Bosques, arbustales y páramos del Orobioma andino húmedo.
Bosques, arbustales y páramos del Orobioma andino, Serrranía de la Macarena.
Sabanas inundables de arenas blancas Inírida-Atabapo.
580
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Nieto.
Anexo 7.
Listado de hormigas de dos sitios en la Orinoquia Colombiana.
Subfamilia/Género/ Especie
La
Macarena
RNN
Nukak
Cerapachyinae
Acantostichus spp.
La
Macarena
RNN
Nukak
Camponotus renggeri
X
X
Subfamilia/Género/ Especie
X
X
Camponotus sericeiventris
X
X
Camponotus spp.
X
X
Azteca spp.
X
X
Gigantiops destructor
X
X
Dolichoderus abruptus
X
X
Myrmelachista spp.
X
X
Dolichoderus attelaboides
X
X
Paratrechina longicornis
X
X
Dolichoderus bidens
X
X
Paratrechina spp.
X
X
Dolichoderus bispinosus
X
X
Myrmicinae
Dolichoderus imitator
X
X
Acromyrmex octospinosus
X
X
Dolichoderus longicollis
X
X
Acromyrmex spp.
X
X
Dolichoderus lugens
X
X
Apterostigma sp.
X
X
Dolichoderus quadridenticulatus
X
X
Atta cephalotes
X
X
Dolichoderus rugosus
X
X
Atta laevigata
X
X
Dolichoderus spinicolla
X
X
Cyphomyrmex cornutus
X
X
Dolichoderinae
Dolichoderus spp.
X
X
Cyphomyrmex sp. (gr. rimosus)
X
X
Linepithema sp.
X
X
Cyphomyrmex spp.
X
X
Trachymyrmex spp.
X
X
X
X
Ecitoninae
Eciton burchelli
X
X
Basiceros singularis
Eciton hamatum
X
X
Octostruma sp.
X
X
Eciton rapax
X
X
Wasmannia sp.
X
X
Eciton sp.
X
X
Cephalotes atratus
X
X
Labidus coecus
X
X
Cephalotes clypeatus
X
X
Labidus praedator
X
X
Cephalotes setulifer
X
X
Neivamyrmex sp.
X
X
Cephalotes spp.
X
X
Nomamyrmex esenbecki
X
X
Procryptocerus spp.
X
X
Crematogaster spp.
X
X
Ectatomminae
Ectatomma edentatum
X
X
Daceton armigerum
X
X
Ectatomma opaciventre
X
X
Strumigenys sp.
X
X
Ectatomma ruidum
X
X
Nesomyrmex sp.
X
X
Ectatomma tuberculatum
X
X
Temnothorax sp.
X
X
Gnamptogenys spp.
X
X
Formicinae
Pheidole spp.
X
X
Allomerus sp.
X
X
Acropyga goeldii
X
X
Megalomyrmex leoninus
X
X
Acropyga spp.
X
X
Megalomyrmex sp.
X
X
Brachymyrmex sp.
X
X
Monomorium sp.
X
X
581
INSECTOS:
ESCARABAJOS COPRÓFAGOS, HORMIGAS Y MARIPOSAS
G. Andrade.
Subfamilia/Género/ Especie
Solenopsis geminata
La
Macarena
RNN
Nukak
X
X
La
Macarena
RNN
Nukak
Pachycondyla carinulata
X
X
Subfamilia/Género/ Especie
Solenopsis spp.
X
X
Pachycondyla commutata
X
X
Rogeria spp.
X
X
Pachycondyla crassinoda
X
X
Pachycondyla harpax
X
X
Pachycondyla stigma
X
X
Paraponerinae
X
X
Pachycondyla unidentata
X
X
Anochetus emarginatus
X
X
Pachycondyla venerae
X
X
Anochetus simoni
X
X
Pachycondyla villosa
X
X
Anochetus spp.
X
X
Pachycondyla af. striatinodis
X
X
X
X
X
X
Paraponera clavata
Ponerinae
Hypoponera spp.
X
X
Pachycondyla sp.
Odontomachus bauri
X
X
Proceratiinae
Odontomachus chelifer
X
X
Discothyrea sp.
Odontomachus haematodus
X
X
Pseudomyrmecinae
Odontomachus opaciventris
X
X
Pseudomyrmex simplex
X
X
Pachycondyla apicalis
X
X
Pseudomyrmex spp.
X
X
582
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
Anexo 8.
Anibios de la cuenca del Orinoco.
TAXON
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Guayana
(AR3)
Andina
Colombia
(AR4 c)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
ORDEN ANURA
FAMILIA ALLOPHRYNIDAE
Allophryne ruthveni Gaige, 1926
1
FAMILIA AROMOBATIDAE
Allobates af. brunneus (Cope, 1887)
1
Allobates cepedai (Morales, 2002 “2000”)
Allobates femoralis (Boulenger, 1884)
1
1
1
Allobates humilis (Rivero, 1980 “1978”)
1
Allobates juanii (Morales, 1994)
Allobates marchesianus (Melin, 1941)
1
1
Allobates ranoides (Boulenger, 1918)
1
1
Allobates rufulus (Gorzula, 1990 “1988”)
1
Allobates sanmartini
(Rivero, Langone y Prigioni, 1986)
1
Allobates undulatus
(Myers y Donelly, 2001)
1
Anomaloglossus ayarzaguenai
(La Marca, 1997 “1996”)
1
Anomaloglossus breweri
(Barrio-Amorós, 2006)
1
Anomaloglossus guanayensis
(La Marca, 1997 “1996”)
1
Anomaloglossus mofetti
Barrio-Amorós y Brewer-Carías, 2008
1
Anomaloglossus murisipanensis
(La Marca, 1997 “1996”)
1
Anomaloglossus parimae
(La Marca, 1997 “1996”)
1
Anomaloglossus parkerae
(Meinhardt y Parmelee, 1996)
1
Anomaloglossus praderioi
(La Marca, 1997 “1996”)
1
Anomaloglossus roraima
(La Marca, 1997 “1996”)
1
Anomaloglossus shrevei (Rivero, 1961)
1
Anomaloglossus tamacuarensis
(Myers y Donelly, 1997)
1
Anomaloglossus tepuyensis
(La Marca, 1997 “1996”)
1
Anomaloglossus triunfo
(Barrio-Amorós, Fuentes y Rivas, 2004)
1
Anomaloglossus wothuja
(Barrio-Amorós, Fuentes y Rivas, 2004)
1
Aromobates capurinensis (Péfaur, 1993)
1
583
Zona de
transición
(AR5)
Cordillera Costa
(AR6)
GuaviareMeta
(AR7)
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
TAXON
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Guayana
(AR3)
Andina
Colombia
(AR4 c)
Aromobates orostoma
(Rivero, 1978 “1976”)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
Zona de
transición
(AR5)
Cordillera Costa
(AR6)
GuaviareMeta
(AR7)
1
Aromobates saltuensis
(Rivero, 1980 “1978”)
1
Mannophryne collaris (Boulenger, 1912)
1
Mannophryne cordilleriana
La Marca 1994
1
Mannophryne yustizi (La Marca, 1989)
1
1
Rheobates palmatus (Werner, 1899)
1
FAMILIA BUFONIDAE
Atelopus chrysocorallus
La Marca, 1996 “1994”
1
Atelopus guitarraensis Osorno-Muñoz, ArdilaRobayo y Ruiz-Carranza, 2001
1
Atelopus mandingues Osorno-Muñoz, ArdilaRobayo y Ruiz-Carranza, 2001
1
Atelopus minutulus Ruiz-Carranza, Hernández-Camacho y Ardila-Robayo, 1988
1
Atelopus pedimarmoratus Rivero, 1963
1
Dendrophryniscus minutus (Melin, 1941)
1
1
Metaphryniscus sosae
Señaris, Ayarzagüena y Gorzula, 1994
1
Oreophrynella cryptica
Señaris, 1995 “1993”
1
Oreophrynella huberi Diego-Aransay y Gorzula, 1990 “1987”
1
Oreophrynella macconnelli
Boulenger, 1900
1
Oreophrynella nigra
Señaris, Ayarzagüena y Gorzula, 1994
1
Oreophrynella quelchii (Boulenger, 1895)
1
Oreophrynella vasquezi
Señaris, Ayarzagüena y Gorzula, 1994
1
Rhaebo glaberrimus
(Günther, 1869 “1968”)
1
Rhaebo guttatus (Schneider, 1799)
1
Rhinella ceratophrys (Boulenger, 1882)
1
Rhinella humboldti (Gallardo, 1965)
1
Rhinella margaritifera (Laurenti, 1768)
Rhinella marina (Linnaeus, 1758)
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
FAMILIA CENTROLENIDAE
Centrolene buckleyi (Boulenger, 1882)
1
Centrolene geckoideum
Jiménez de la Espada, 1872
1
Centrolene hybrida Ruiz-Carranza y Lynch,
1991
1
Centrolene petrophilum Ruiz-Carranza y
Lynch, 1991
1
584
1
1
1
1
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
TAXON
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Guayana
(AR3)
Andina
Colombia
(AR4 c)
Centrolene venezuelense (Rivero, 1968)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
Zona de
transición
(AR5)
Cordillera Costa
(AR6)
GuaviareMeta
(AR7)
1
Cochranella duidaeana (Ayarzagüena, 1992)
1
Cochranella riveroi (Ayarzagüena, 1992)
1
Rulyrana lavopunctata (Lynch y Duellman,
1973)
1
Vitreorana antisthenesi (Goin, 1963)
1
Vitreorana gorzulae (Ayarzagüena, 1992)
1
Vitreorana helenae (Ayarzagüena, 1992)
1
Celsiella revocata (Rivero, 1985)
1
Hyalinobatrachium crurifasciatum Myers y
Donnelly, 1997
1
Hyalinobatrachium eccentricum Myers y
Donnelly, 2001
1
Hyalinobatrachium esmeralda Ruiz-Carranza
y Lynch, 1998
1
Hyalinobatrachium iaspidiense (Ayarzagüena,
1992)
1
Hyalinobatrachium ignioculus Noonan y Bonet
2003
1
Hyalinobatrachium mondolii Señaris y Ayarzagüena, 2001
1
Hyalinobatrachium munozorum (Lynch y
Duellman, 1973)
1
Hyalinobatrachium orocostale (Rivero, 1968)
1
Hyalinobatrachium taylori (Goin, 1968 “1967”)
1
FAMILIA CERATOPHRYIDAE
Ceratophrys calcarata Boulenger, 1890
Ceratophrys cornuta (Linnaeus, 1758)
1
1
1
FAMILIA CEUTHOMANTIDAE
Ceuthomantis aracamuni (Barrio-Amorósy
Molina, 2006)
1
Ceuthomantis cavernibardus (Myers y Donnelly, 1997)
1
FAMILIA DENDROBATIDAE
Ameerega hahneli (Boulenger, 1884 “1883”)
Ameerega picta (Bibron in Tshudi, 1838)
1
1
1
1
Ameerega trivittata (Spix, 1824)
1
Dendrobates leucomelas Steindachner, 1864
1
Hyloxalus subpunctatus(Cope, 1899)
Minyobates steyermarki (Rivero, 1971)
1
1
1
1
FAMILIA ELEUTHERODACTYLIDAE
Eleutherodactylus johnstonei Barbour, 1914
1
Adelophryne gutturosa Hoogmoed y Lescure,
1984
1
585
1
1
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
TAXON
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Guayana
(AR3)
Andina
Colombia
(AR4 c)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
Zona de
transición
(AR5)
Cordillera Costa
(AR6)
GuaviareMeta
(AR7)
FAMILIA HEMIPHRACTIDAE
Cryptobatrachus nicefori Cochran y Goin, 1970
1
Flectonotus pygmaeus (Boettger, 1893 )
1
Gastrotheca helenae Dunn, 1944
1
1
Gastrotheca nicefori Gaige, 1933
1
1
Stefania breweri Barrio-Amorós y FuentesRamos, 2003
1
Stefania ginesi Rivero, 1968 “1966”
1
Stefania goini Rivero, 1968 “1966”
1
Stefania marahuaquensis (Rivero, 1961)
1
Stefania oculosa Señaris, Ayarzagüena y Gorzula, 1997 “1996”
1
Stefania percristata Señaris, Ayarzagüena y
Gorzula, 1997 “1996”
1
Stefania riae Duellman y Hoogmoed, 1984
1
Stefania riveroi Señaris, Ayarzagüena y Gorzula, 1997 “1996”
1
Stefania satelles Señaris, Ayarzagüena y Gorzula, 1997 “1996”
1
Stefania scalae Rivero, 1970
1
Stefania schuberti Señaris, Ayarzagüena y
Gorzula, 1997 “1996”
1
Stefania tamacuarina Myers y Donnelly, 1997
1
1
FAMILIA HYLIDAE
Aparasphenodon venezolanus (Mertens, 1950)
1
Dendropsophus brevifrons (Duellman y Crump,
1974)
1
1
Dendropsophus garagoensis (Kaplan, 1991)
1
Dendropsophus labialis (Peters, 1863)
1
Dendropsophus marmoratus (Laurenti, 1768)
1
Dendropsophus mathiassoni (Cochran y Goin,
1970)
1
Dendropsophus microcephalus (Cope, 1886)
1
1
Dendropsophus minusculus (Rivero, 1971)
1
1
Dendropsophus minutus (Peters, 1872)
1
1
1
1
1
Dendropsophus parviceps (Boulenger, 1882)
1
Dendropsophus pelidna (Duellman, 1989)
1
1
1
1
1
1
1
1
Dendropsophus sarayacuensis (Shreve, 1935)
Dendropsophus stingi (Kaplan, 1994)
Dendropsophus triangulum (Günther, 1869
“1868”)
1
1
1
Hyloscirtus jahni (Rivero, 1961)
1
586
1
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
Andina
Colombia
(AR4 c)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
Hyloscirtus lascinius (Rivero, 1970 “1969”)
1
1
Hyloscirtus phyllognathus (Melin, 1941)
1
TAXON
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Guayana
(AR3)
Hyloscirtus platydactylus (Boulenger, 1905)
1
Hypsiboas angelicus Myers y Donnelly, 2008
1
Hypsiboas benitezi (Rivero, 1961)
1
Hypsiboas boans (Linnaeus, 1758)
1
1
1
1
1
Hypsiboas calcaratus (Troschel, 1848)
1
1
Hypsiboas cinerascens (Spix, 1824)
1
1
Hypsiboas crepitans (Wied-Neuwied, 1824)
1
1
Hypsiboas geographicus (Spix, 1824)
1
1
Hypsiboas jimenezi Señaris y Ayarzagüena,
2006
Hypsiboas lanciformis Cope, 1871 “1870”
1
1
1
Hypsiboas lemai (Rivero, 1972 “1971”)
1
1
Hypsiboas ornatissimus (Noble, 1923)
1
Hypsiboas pugnax (Schmidt, 1857)
1
Hypsiboas punctatus (Schneider, 1799)
1
GuaviareMeta
(AR7)
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
Hypsiboas sibleszi (Rivero, 1972 “1971”)
1
Hypsiboas tepuianus Barrio-Amorós y BrewerCarías, 2008
1
Hypsiboas wavrini (Parker, 1936)
1
Myersiohyla aromatica (Ayarzagüena y Señaris,
1994 “1993”)
1
Myersiohyla inparquesi (Ayarzagüena y Señaris,
1994 “1993”)
1
Myersiohyla loveridgei (Rivero, 1961)
1
Osteocephalus buckleyi (Boulenger, 1882)
1
Osteocephalus cabrerai (Cochran y Goin, 1970)
1
Osteocephalus carri (Cochran y Goin, 1970)
1
1
1
1
Hypsiboas rhythmicus (Señaris y Ayarzagüena,
2002)
1
1
1
1
Osteocephalus leprieurii (Duméril y Bibron,
1841)
1
Osteocephalus taurinus Steindachner, 1862
1
1
Pseudis paradoxa (Linnaeus, 1758)
1
1
Scarthyla vigilans (Solano, 1971)
1
1
Scinax baumgardneri (Rivero, 1961)
Scinax boesemani (Goin, 1966)
Cordillera Costa
(AR6)
1
Hypsiboas multifasciatus (Günther, 1859
“1858”)
Scinax blairi (Fouquette y Pyburn, 1972)
Zona de
transición
(AR5)
1
1
1
1
1
1
1
1
1
587
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
TAXON
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Guayana
(AR3)
Andina
Colombia
(AR4 c)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
1
1
1
Zona de
transición
(AR5)
Cordillera Costa
(AR6)
GuaviareMeta
(AR7)
Scinax danae (Duellman, 1986)
Scinax exiguus (Duellman, 1986)
1
Scinax garbei (Miranda-Ribeiro, 1926)
1
Scinax kennedyi (Pyburn, 1973)
1
1
Scinax manriquei Barrio-Amorós, Orellana
y Chacón-Ortiz, 2004 (= Scinax lavidus La
Marca, 2004)
Scinax nebulosus (Spix, 1824)
1
Scinax rostratus (Peters, 1863)
1
1
1
1
1
Scinax ruber (Laurenti, 1768)
1
1
1
1
1
1
1
1
1
Scinax trilineatus (Hoogmoed y Gorzula, 1979)
Scinax wandae (Pyburn y Fouquette, 1971)
1
1
Scinax x-signatus (Spix, 1824)
1
1
Sphaenorhynchus lacteus (Daudin, 1800)
1
1
Tepuihyla aecii (Ayarzagüena, Señaris y Gorzula, 1993 “1992”)
1
Tepuihyla edelcae (Ayarzagüena, Señaris y
Gorzula, 1993 “1992”)
1
Tepuihyla galani (Ayarzagüena, Señaris y
Gorzula, 1993 “1992”)
1
Tepuihyla luteolabris (Ayarzagüena, Señaris y
Gorzula, 1993 “1992”)
1
Tepuihyla rimarum (Ayarzagüena, Señaris y
Gorzula, 1993 “1992”)
1
Tepuihyla rodriguezi (Rivero, 1968)
1
Trachycephalus resiniictrix (Goeldi, 1907)
1
Trachycephalus venulosus (Laurenti, 1768)
1
Phyllomedusa bicolor (Boddaert, 1772)
Phyllomedusa hypochondrialis (Daudin, 1800)
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
Phyllomedusa tarsius (Cope, 1868)
1
1
Phyllomedusa tomopterna (Cope, 1868)
1
Phyllomedusa trinitatis Meterns, 1926
1
1
1
1
1
1
Phyllomedusa vaillantii Boulenger, 1882
FAMILIA LEIUPERIDAE
Engystomops pustulosus (Cope, 1864)
1
Physalaemus cf. cuvieri Fitzinger, 1826
1
Physalaemus ephippifer (Steindachner, 1864)
1
Physalaemus ischeri (Boulenger, 1890)
1
1
Pleurodema brachyops (Cope, 1869 “1968”)
1
1
Pseudopaludicola boliviana Parker, 1927
1
1
1
1
1
Pseudopaludicola llanera Lynch, 1989
1
1
1
1
1
588
1
1
1
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
TAXON
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Guayana
(AR3)
Andina
Colombia
(AR4 c)
1
1
Andina
Venezuela
(AR4 v)
Zona de
transición
(AR5)
Cordillera Costa
(AR6)
GuaviareMeta
(AR7)
FAMILIA LEPTODACTYLIDAE
Leptodactylus andreae Müller, 1923
Leptodactylus bolivianus Boulenger, 1898 (=
Leptodactylus insularum Barbour, 1906)
1
Leptodactylus colombiensis Heyer, 1994
1
Leptodactylus diedrus Heyer, 1994
1
1
1
1
1
1
1
1
Leptodactylus fuscus (Schneider, 1799)
1
1
1
Leptodactylus hylaedactylus (Cope, 1868)
1
1
1
Leptodactylus knudseni Heyer, 1972
1
1
Leptodactylus leptodactyloides (Andersson,
1945)
1
1
1
1
1
1
1
Leptodactylus longirostris Boulenger, 1882
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
Leptodactylus mystaceus (Spix, 1824)
1
1
Leptodactylus ocellatus (Linnaeus, 1758)
1
1
1
Leptodactylus petersii (Steindachner, 1864)
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
Leptodactylus pentadactylus (Laurenti, 1768)
Leptodactylus poecilochilus dyphticus (Boulenger, 1918)
1
1
Leptodactylus riveroi Heyer y Pyburn, 1983
Leptodactylus rugosus Noble, 1923
1
Leptodactylus sabanensis Heyer, 1994
1
1
1
1
1
1
1
Leptodactylus validus Garman, 1888 “1887”
FAMILIA MICROHYLIDAE
Adelastes hylonomos Zweifel, 1986
1
Synapturanus mirandaribeiroi Nelson y
Lescure, 1975
1
Synapturanus salseri Pyburn, 1975
1
Chiasmocleis hudsoni Parker, 1940
1
Ctenophryne geayi Mocquard, 1904
1
1
1
1
Elaschistocleis ovalis (Schneider, 1799)
1
1
Leptodactylus lithonaetes Heyer, 1995
Leptodactylus macrosternum Miranda-Ribeiro,
1926
1
1
Leptodactylus fragilis (Brocchi, 1877)
Leptodactylus lineatus (Schneider, 1799)
1
1
Elaschistocleis surinamensis (Daudin, 1802)
1
Hamptophryne boliviana (Parker, 1927)
1
Otophryne pyburni Campbell y Clarke, 1998
1
Otophryne robusta Boulenger in Lankester,
1900
1
589
1
1
1
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
TAXON
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Otophryne steyermarki Rivero, 1968 “1967”
Guayana
(AR3)
Andina
Colombia
(AR4 c)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
Zona de
transición
(AR5)
Cordillera Costa
(AR6)
GuaviareMeta
(AR7)
1
FAMILIA PIPIDAE
Pipa arrabali Izecksohn, 1976
1
Pipa pipa (Linnaeus, 1758)
1
1
Pipa snethlageae Müller, 1914
1
FAMILIA RANIDAE
Lithobates catesbeianus (Shaw, 1802)
Lithobates palmipes (Spix, 1824)
1
1
1
1
1
1
FAMILIA STRABOMANTIDAE
Dischidodactylus colonnelloi Ayarzagüena, 1985
“1983”
1
Dischidodactylus duidensis (Rivero, 1968)
1
Niceforonia columbiana (Werner, 1899)
1
Pristimantis ainis (Werner, 1899)
1
Pristimantis anolirex (Lynch, 1983)
1
Pristimantis auricarens (Myers y Donnelly,
2008)
1
Pristimantis avius (Myers y Donelly,
1997)
1
Pristimantis boconoensis (Rivero y Mayorga,
1973)
1
Pristimantis bogotensis (Peters, 1863)
Pristimantis cantitans (Myers y Donnelly, 1996)
1
1
Pristimantis carranguerorum (Lynch, 1994)
1
Pristimantis douglasi (Lynch, 1996)
1
Pristimantis frater (Werner, 1899)
1
Pristimantis guaiquinimensis (Schlüter y
Rödder, 2007 “2006”)
1
Pristimantis marahuaka (Fuentes-Ramos y
Barrio-Amorós, 2004)
1
Pristimantis marmoratus (Boulenger, 1900)
1
Pristimantis medemi (Lynch, 1994)
Pristimantis memorans (Myers y Donnelly,
1997)
1
1
Pristimantis nervicus (Lynch, 1994)
1
Pristimantis nicefori (Cochran y Goin, 1970)
1
Pristimantis pedimontanus (La Marca, 2004)
1
Pristimantis prolixodiscus (Lynch, 1978)
1
Pristimantis pruinatus (Myers y Donnelly,
1996)
1
Pristimantis pulvinatus (Rivero, 1968)
1
Pristimantis savagei (Pyburn y Lynch, 1981)
1
590
1
1
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
TAXON
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Guayana
(AR3)
Pristimantis sarisarinama Barrio-Amorós et
Brewer-Carías, 2008
1
Pristimantis stegolepis (Schlüter y Rödder, 2007
“2006”)
1
Pristimantis tepuiensis (Schlüter y Rödder,
2007 “2006”)
1
Andina
Colombia
(AR4 c)
Pristimantis tubernasus (Rivero, 1984 “1982”)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
Zona de
transición
(AR5)
Cordillera Costa
(AR6)
GuaviareMeta
(AR7)
1
Pristimantis vilarsi (Melin, 1941)
1
Pristimantis w-nigrum (Boettger, 1892)
1
1
1
1
Pristimantis yaviensis (Myers y Donnelly, 1996)
1
Pristimantis yuruaniensis Rödder y Jungfer,
2008
1
Pristimantis yustizi (Barrio-Amorós y ChacónOrtiz, 2004)
1
Pristimantis zeuctotylus (Lynch y Hoogmoed,
1977)
1
Strabomantis ingeri (Cochran y Goin, 1961)
1
ORDEN CAUDATA
FAMILIA PLETHODONTIDAE
Bolitoglossa adspersa (Peters, 1863)
Bolitoglossa altamazonica (Cope, 1874)
1
1
1
Bolitoglossa guaramacalensis Schargel, GarcíaPérez y Smith, 2002
1
1
ORDEN APODA
FAMILIA CAECILIIDAE
Caecilia tentaculata Linnaeus, 1758
1
Siphonops annulatus (Mikan, 1820)
1
1
Microcaecilia albiceps (Boulenger, 1882 )
1
1
1
Nectocaecilia petersii (Boulenger, 1882)
1
Potomotyphlus kaupii (Berthold, 1859)
1
Typhlonectes compressicauda (Duméril y
Bibron, 1841)
1
1
FAMILIA RHINATREMATIDAE
Epicrionops niger (Dunn, 1942)
1
11
53
181
591
87
52
25
31
26
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
Anexo 9.
Reptiles de la cuenca del Orinoco.
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Guayana
(AR3)
Andina
Colombia
(AR4 c)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
Zona de
trasición
(AR5)
1
1
1
1
1
1
1
Paleosuchus palpebrosus (Cuvier, 1807)
1
1
1
1
Paleosuchus trigonatus (Schneider, 1801)
1
1
1
1
1
TAXA
Cordillera
Costa
(AR6)
GuaviareMeta
(AR7)
ORDEN CROCODYLIA
FAMILIA ALLIGATORIDAE
Caiman crocodilus crocodilus Linnaeus,
1758
FAMILIA CROCODYLIDAE
Crocodylus intermedius Graves, 1819
1
1
1
1
1
1
ORDEN TESTUDINES
FAMILIA CHELIDAE
Chelus imbriatus (Schneider, 1783)
1
1
Mesoclemmys gibba (Schweigger, 1812)
1
Mesoclemmys raniceps (Gray, 1856 “1855”)
1
Phrynops tuberosus (Peters, 1870)
1
Phrynops geofroanus (Schweigger, 1812)
1
1
1
Platemys platycephala platycephala (Schneider, 1792)
1
1
1
1
1
FAMILIA GEOEMYDIDAE
Rhinoclemmys lammigera (Paolillo, 1985)
1
Rhinoclemmys punctularia (Daudin, 1802
“1801”)
1
FAMILIA KINOSTERNIDAE
Kinosternon scorpioides scorpioides (Linnaeus, 1766)
1
1
1
1
1
1
1
FAMILIA PODOCNEMIDIDAE
Peltocephalus dumerilianus (Schweigger,
1812)
Podocnemis erythrocephala (Spix, 1824)
1
1
Podocnemis expansa (Schweigger, 1812)
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
Chelonoidis carbonaria (Spix, 1824)
1
1
1
1
Chelonoidis denticulata (Linnaeus, 1766)
1
1
Podocnemis uniilis Troschel in Schomburgk, 1848
PodocnemIs vogli Müller, 1935
1
FAMILA TESTUDINIDAE
ORDEN SQUAMATA
SUBORDEN AMPHISBAENIA
FAMILIA AMPHISBAENIDE
592
1
1
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
Llanos
(AR2)
Guayana
(AR3)
Andina
Colombia
(AR4 c)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
Zona de
trasición
(AR5)
Cordillera
Costa
(AR6)
Amphisbaena alba Linnaeus, 1758
1
1
1
1
1
1
Amphisbaena fuliginosa Linnaeus, 1758
1
1
1
1
1
1
1
1
TAXA
Amazonia
(AR1)
Amphisbaena gracilis Strauch, 1881
GuaviareMeta
(AR7)
1
Amphisbaena rozei Lancini, 1963
1
Mesobaena huebneri Mertens, 1925
1
1
SUBORDEN SAURIA
FAMILIA CORYTOPHANIDAE
Basiliscus basiliscus barbouri Ruthven, 1914
1
1
FAMILIA HOPLOCERCIDAE
Enyalioides laticeps (Guichenot, 1855)
1
1
FAMILIA IGUANIDAE
Iguana iguana (Linnaeus, 1758)
1
1
1
1
1
FAMILIA POLYCHROTIDAE
Anolis anatoloros Ugueto, Rivas, Barros,
Sánchez-Pacheco y García-Pérez, 2007
1
Anolis bellipeniculus (Myers y Donnelly,
1996)
1
Anolis carlostoddi (Williams, Praderio y
Gorzula, 1996)
1
Anolis deltae Williams, 1974
1
Anolis jacare Boulenger, 1903
Anolis nitens (Wagler, 1830)
1
1
Anolis punctatus Daudin, 1802
1
1
Norops auratus Daudin, 1802
1
1
1
Norops chrysolepis (Duméril y Bibron,
1837)
1
1
1
1
1
1
Norops eewi (Roze, 1958)
1
1
1
Norops fuscoauratus (D’Orbigny in Duméril
y Bibron, 1937)
1
1
Norops ortonii (Cope, 1868)
1
1
Polychrus marmoratus (Linnaeus, 1758)
1
1
Polychrus gutturosus Berthold, 1845
1
1
1
1
FAMILIA TROPIDURIDAE
Plica lumaria Donnelly y Myers, 1991
1
Plica pansticta (Myers y Donnelly, 2001)
Plica plica (Linnaeus, 1758)
1
1
1
Plica umbra (Linnaeus, 1758)
1
Tropidurus bogerti Roze, 1958
1
Tropidurus hispidus (Spix, 1825)
1
1
593
1
1
1
1
1
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
TAXA
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Guayana
(AR3)
Andina
Colombia
(AR4 c)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
Tropidurus torquatus(Wied-Neuwied,
1820)
Zona de
trasición
(AR5)
Cordillera
Costa
(AR6)
GuaviareMeta
(AR7)
1
Uracentron azureum werneri Mertens, 1925
1
1
Uranoscodon superciliosus (Linnaeus, 1758)
1
1
1
1
1
1
1
FAMILIA GEKKONIDAE
Coleodactylus septentrionalis Vanzolini,
1980
Gonatodes albogularis (Duméril y Bibron,
1836)
1
Gonatodes alexandermendesi Cole y Kok,
2006
1
Gonatodes annularis Boulenger, 1887
1
1
Gonatodes caudiscutatus (Günther, 1859)
1
1
Gonatodes concinnatus (O’ Shaughnessy,
1881)
1
1
Gonatodes humeralis (Guichenot, 1855)
1
Gonatodes infernalis Rivas y Schargel, 2008
1
1
1
1
Gonatodes purpurogularis Esqueda, 2004
1
Gonatodes superciliaris Barrio-Amorós y
Brewer-Carías, 2008
1
Gonatodes vittatus (Lichtenstein, 1856)
Hemidactylus brookii Gray, 1845
1
1
1
Hemidactylus mabouia (Moreau de Jonnès,
1818)
1
1
1
1
Hemidactylus palaichthus Kluge, 1969
1
Lepidoblepharis festae Peracca, 1897
1
Phyllodactylus dixoni Rivero-Blanco y
Lancini, 1968 “1967”
1
1
1
1
1
1
1
1
Phyllodactylus ventralis O’Shaughnessy,
1875
1
Pseudogonatodes guianensis Parker, 1935
1
Sphaerodactylus molei Boettger, 1894
1
1
1
hecadactylus rapicauda (Houttuyn, 1782)
1
1
1
1
FAMILIA
GYMNOPHTHALMIDAE
Alopoglossus atriventris Duellman, 1973
Adercosaurus vixadnexus Myers et Donnelly, 2001
1
1
Anadia hobarti La Marca y García-Pérez
1990
1
Anadia rhombifera (Günther, 1859)
1
Arthrosaura montigena Myers y Donnelly,
2008
1
Arthrosaura reticulata (O’Shaughnessy,
1881)
1
594
1
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
TAXA
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Guayana
(AR3)
Arthrosaura testigensis Gorzula y Señaris,1999 “1998”
1
Arthrosaura tyleri (Burt y Burt, 1931)
1
Arthrosuara versteegii Lidth de Jeude, 1904
1
Bachia lavescens (Bonnaterre, 1789)
1
Bachia guianensis Hoogmoed y Dixon,
1977
1
Bachia heteropa Wiegmann in Lichtenstein,
1856
1
Cercosaura argulus Peters, 1863 “1862”
1
Andina
Colombia
(AR4 c)
Zona de
trasición
(AR5)
1
Cordillera
Costa
(AR6)
GuaviareMeta
(AR7)
1
1
1
Cercosaura ampuedai (Lancini, 1968)
1
Cercosaura nigroventris (Gorzula y Señaris,
1999 “1998”)
1
Cercosaura ocellata ocellata Wagler, 1830
1
Cercosaura phelpsorum (Lancini, 1968)
1
Gymnophthalmus cryptus Hoogmoed, Cole
y Ayarzagüena, 1992
1
Gymnophthalmus speciosus (Hallowell,
1861 “1860”)
1
1
1
Leposoma caparensis Esqueda, 2005
1
Leposoma hexalepis Ayala y Harris, 1982
1
Leposoma parietale (Cope, 1885)
1
1
Leposoma percarinatum (Müller, 1923)
Leposoma rugiceps (Cope, 1869)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
1
1
1
1
Neusticurus bicarinatus (Linnaeus, 1758)
1
Neusticurus racenisi Roze, 1958
1
Neusticurus rudis Boulenger, 1900
1
Neusticurus tatei (Burt y Burt, 1931)
1
Ptychoglossus nicefori (Loveridge, 1929)
1
1
1
Riama cephalolineatus (García-Pérez y
Yústiz, 1995)
1
Riama inanis (Doan y Schargel, 2003)
1
Riolama leucosticta (Boulenger, 1900)
1
Riolama luridiventris Esqueda, La Marca y
Praderio, 2004
1
Riolama uzzelli Molina y Señaris, 2003
1
Tretioscincus oriximinensis Avila-Pires,
1995
1
FAMILIA TEIIDAE
Ameiva ameiva (Linnaeus, 1758)
Ameiva bifrontataCope, 1862
1
1
1
1
1
1
Ameiva bridgesii (Cope, 1869)
1
595
1
1
1
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
TAXA
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Cnemidophorus cryptus Cole y Dessauer,
1993
Andina
Colombia
(AR4 c)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
Zona de
trasición
(AR5)
Cordillera
Costa
(AR6)
1
1
1
1
1
1
1
GuaviareMeta
(AR7)
1
Cnemidophorus gramivagus McCristal y
Dixon, 1987
Cnemidophorus lemniscatus (Linnaeus,
1758)
Guayana
(AR3)
1
1
1
Crocodilurus amazonicus (Spix, 1825)
1
1
1
1
Kentropyx altamazonica (Cope, 1876)
1
Kentropyx calcarata Spix, 1825
1
Kentropyx pelviceps (Cope, 1868)
1
Kentropyx striata (Daudin, 1802)
1
1
Tupinambis teguixin (Linnaeus, 1758)
1
1
1
1
1
1
1
1
1
FAMILIA SCINCIDAE
Mabuya carvalhoi Reboucas-Spieker y
Vanzolini, 1990
Mabuya mabouya (Bonnaterre, 1789)
1
1
1
1
Mabuya nebulosylvestris Miralles, Rivas,
Bonillo, Schargel, Barros, García-Pérez y
Barrio-Amorós, 2009
1
1
1
Mabuya nigropunctata (Spix, 1825)
1
1
SUBORDEN SERPENTES
FAMILIA ANILIIDAE
Anilius scytale (Linnaeus, 1758)
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
Corallus hortulanus (Linnaeus, 1758)
1
1
Corallus ruschenbergerii (Cope, 1876)
1
Epicrates cenchria (Linnaeus, 1758)
1
1
Epicrates maurus Gray, 1849
1
1
1
1
Chironius carinatus (Linnaeus, 1758)
1
1
Chironius exoletus (Linnaeus, 1758)
1
1
FAMILIA BOIDAE
Boa constrictor Linnaeus 1758
1
Corallus caninus (Linnaeus, 1758)
Eunectes murinus Linnaeus, 1758
1
1
1
1
1
1
1
FAMILIA COLUBRIDAE
Chironius fuscus fuscus (Linnaeus, 1758)
Chironius grandiscuamis (Peters,1869
“1868”)
1
1
1
1
1
1
Chironius monticola Roze, 1952
1
Chironius multiventris Schmidt y Walker,
1943
Chironius scurrulus (Wagler, 1824)
1
1
1
1
1
1
1
596
1
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
TAXA
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Dendrophidion dendrophis (Schlegel, 1837)
Dendrophidion percarinatum (Cope, 1893)
Guayana
(AR3)
Andina
Colombia
(AR4 c)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
1
1
1
1
1
1
1
Drymoluber dichrous (Peteres, 1863)
1
1
1
Lampropeltis triangulum (Lacépède, 1789)
1
1
Leptophis ahaetulla (Linnaeus, 1758)
1
1
1
1
Mastigodryas bifossatus striatus (Amaral,
1931)
1
1
1
Mastigodryas boddaerti (Sentzen, 1796)
1
1
1
Mastigodryas danieli Amaral, 1935 “1834”
1
1
1
1
Oxybelis aeneus (Wagler, 1824)
1
1
Oxybelis fulgidus (Daudin, 1803)
1
1
1
1
1
Mastigodryas pulchriceps (Cope, 1868)
1
1
1
1
1
1
Pseustes poecilonotus polylepis (Peters,
1867)
Pseustes shropshirei (Barbour y Amaral,
1924)
1
Pseustes sulphureus sulphureus (Wagler in
Spix, 1824)
1
Rhinobothrium lentiginosum (Scopoli,
1785)
1
1
1
1
1
Spilotes pullatus (Linnaeus, 1758)
1
1
1
1
Tantilla melanocephala (Linnaeus, 1758)
1
1
1
1
FAMILIA DIPSIDAE
1
Atractus duidensis Roze, 1961
1
1
1
Masticophis mentovarius (Duméril, Bibron
y Duméril, 1854)
Atractus elaps (Günther, 1858)
GuaviareMeta
(AR7)
1
Drymobius rhombifer (Günther, 1860)
Atractus crassicaudatus (Duméril, Bibrón
y Duméril, 1854)
Cordillera
Costa
(AR6)
1
Drymarchon corais (Boie, 1827)
Mastigodryas pleei (Duméril y Bibron,
1839)
Zona de
trasición
(AR5)
1
1
1
1
Atractus emigdioi González-Sponga, 1971
1
Atractus guerreroi Myers y Donnelly, 2008
1
Atractus insipidus Roze, 1961
1
Atractus major Boulenger, 1894
1
Atractus mariselae Lancini , 1969
1
Atractus meridensis Esqueda y La Marca,
2005
1
Atractus micheleae Esqueda y La Marca,
2005
1
Atractus pamplonensis Amaral, 1937
1
597
1
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
TAXA
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Guayana
(AR3)
Atractus punctiventris Amaral, 1933
Andina
Colombia
(AR4 c)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
1
Atractus steyermarki Roze, 1958
1
GuaviareMeta
(AR7)
1
Atractus tamaensis Esqueda y La Marca,
2005
1
Atractus torquatus (Duméril, Bibron y
Duméril, 1854)
1
Atractus trilineatus Wagler, 1828
1
Atractus univittatus (Jan, 1862)
1
Clelia clelia (Daudin, 1803)
1
Conophis lineatus (Duméril, Bibron y
Duméril, 1854)
1
1
1
1
1
1
1
1
Dipsas articulata (Cope, 1868)
1
Dipsas catesbyi (Sentzen, 1796)
1
Dipsas copei (Günther, 1872)
1
1
1
1
Dipsas indica Laurenti, 1768
1
Dipsas peruana (Boettger, 1898)
1
Dipsas pavonina Schlegel, 1837
1
1
1
Dipsas variegata (Duméril, Bibron y
Duméril, 1854)
1
1
1
Enuliophis sclateri (Boulenger, 1894)
1
Erythrolamprus aesculapii (Linnaeus, 1758)
1
Erythrolamprus bizonus Jan, 1863
1
1
1
1
1
1
1
1
1
Helicops hagmanni Roux, 1910
1
1
Helicops hogei Lancini, 1964
1
1
Helicops danieli Amaral, 1838 “1837”
1
1
1
1
Helicops pastazae Shreve, 1934
1
1
1
Helicops scalaris Jan, 1865
1
1
Hydrodynastes bicinctus (Herrmann, 1804)
1
1
Hydrops triangularis (Wagler in Spix, 1824)
1
1
1
Imantodes cenchoa (Linnaeus, 1758)
1
1
1
1
1
1
Imantodes lentiferus (Cope, 1894)
Leptodeira annulata (Linnaeus, 1758)
Cordillera
Costa
(AR6)
1
Atractus riveroi Roze, 1961
Helicops angulatus (Linnaeus, 1758)
Zona de
trasición
(AR5)
1
1
1
1
1
1
1
1
Leptodeira septentrionalis Kennicott, 1859
1
Liophis breviceps Cope, 1861 “1860”
1
1
Liophis cobella (Linnaeus, 1758)
1
1
Liophis dorsocorallinus Esqueda, Natera, La
Marca y Ilija-Fistar, 2007 “2005”
1
598
1
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
TAXA
Liophis epinephelus Cope, 1862
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
Liophis ingeri Roze, 1958
Liophis lineatus (Linnaeus, 1758)
Andina
Colombia
(AR4 c)
Guayana
(AR3)
1
1
1
Liophis miliaris miliaris (Linnaeus, 1758)
1
1
Liophis poecilogyrus schotti (Schlegel, 1837)
1
1
1
Liophis trebbaui Roze, 1958
1
Liophis typhlus typhlus (Linnaeus, 1758)
1
Ninia atrata (Hallwell, 1845)
1
Oxyrhopus occipitalis (Wagler, 1824)
1
1
1
1
1
Philodryas cordata Donnelly y Myers, 1991
1
Philodryas olfersii herbeus (Wied-Neuwied,
1825)
1
1
Philodryas viridissimus (Linnaeus, 1758)
1
1
Phimophis guianensis (Troschel in Schomburgk, 1848)
1
1
Pseudoboa coronata Schneider, 1801
1
1
1
1
1
1
1
1
1
Pseudoeryx plicatilis (Linnaeus, 1758)
1
1
Sibon nebulata (Linnaeus, 1758)
1
1
Siphlophis cervinus (Laurenti, 1768)
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
Sibynomorphus mikanii (Schlegel, 1837)
1
Synophis lasallei (Nicéforo-María, 1950)
1
hamnodynastes chimanta Roze, 1958
1
hamnodynastes corocorensis Gorzula y
Ayarzagüena, 1996 “1995”
1
hamnodynastes dixoni Bailey y homas,
2007 “2006”
1
1
1
Siphlophis compressus (Daudin, 1803)
1
1
Oxyrhopus melanogenys (Tschudi, 1845)
Pseudoboa neuwieddii (Duméril, Bibron y
Duméril, 1854)
GuaviareMeta
(AR7)
1
Liophis torrenicola Donnelly y Myers, 1991
Oxyrhopus petola (Linnaeus, 1758)
Cordillera
Costa
(AR6)
1
Liophis melanotus (Shaw, 1802)
Liophis reginae (Linnaeus, 1758)
Zona de
trasición
(AR5)
1
1
hamnodynastes duida Myers y Donnelly,
1995
1
hamnodynastes marahuaquensis Gorzula y
Aryarzagüena, 1996 “1995”
1
hamnodynastes pallidus (Linnaeus, 1758)
1
1
hamnodynastes ramonriveroi Manzanilla y
Sánchez, 2005 “2004”
1
1
599
1
1
ANFIBIOS Y REPTILES
J. Rengifo.
TAXA
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
hamnodynastes yavi Myers y Donnelly,
1996
Umbrivaga pyburni Markezich y Dixon,
1979
Guayana
(AR3)
Andina
Colombia
(AR4 c)
Andina
Venezuela
(AR4 v)
Zona de
trasición
(AR5)
Cordillera
Costa
(AR6)
1
1
1
1
1
GuaviareMeta
(AR7)
1
1
Xenodon merremii (Wagler, 1824)
1
Xenodon rabdocephalus rabdocephalus
(Wied-Neuwied, 1824)
1
1
Xenodon severus (Linnaeus, 1758)
1
1
Xenoxybelis argenteus (Daudin, 1803)
1
1
1
FAMILIA ELAPIDAE
Leptomicrurus collaris breviventris (Roze y
Bernal-Carlo, 1988 “1987”)
1
Micrurus dissoleucus dissoleucus (Cope,
1860)
1
Micrurus dumerilii (Jan, 1858)
1
1
Micrurus iliformis (Günther, 1859)
1
1
Micrurus hemprichii hemprichii (Jan, 1858)
1
1
Micrurus isozonus (Cope, 1860)
1
Micrurus langsdori (Wagler in Spix, 1824)
1
Micrurus lemniscatus (Linnaeus, 1758)
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
Micrurus nattereri Schmidt, 1952
1
Micrurus obscurus (Jan, 1872)
1
Micrurus psyches (Daudin, 1803)
1
1
Micrurus medemi Roze, 1967
Micrurus mipartitus (Duméril, Bibron y
Duméril, 1854)
1
1
1
1
1
Micrurus renjifoi (Lamar, 2003)
1
Micrurus scutiventris (Cope, 1870 “1869”)
1
1
Micrurus spixii (Wagler in Spix, 1824)
1
1
1
1
Micrurus surinamensis (Cuvier, 1817)
1
1
1
1
FAMILIA VIPERIDAE
Bothrocophias hyoprora (Copel, 1876)
1
Bothrocophias micropthalmus (Amaral,
1935)
1
Bothriopsis bilineata (Wied-Neuwied, 1825)
1
Bothriopsis taeniata taeniata Wagler in
Spix, 1824
1
Bothrops asper (Garman, 1884 “1883”)
1
Bothrops atrox (Linnaeus, 1758)
1
Bothrops brazili Hoge, 1954 “1953”
Bothrops isabelae Sandner-Montilla, 1979
1
1
1
1
1
1
1
1
1
600
1
1
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
A. Acosta.
TAXA
Amazonia
(AR1)
Llanos
(AR2)
Bothrops venezuelensis Sandner-Montilla,
1952
Guayana
(AR3)
Andina
Colombia
(AR4 c)
1
Crotalus durissus cumanensis Humboldt,
1811
1
Crotalus vegrandis Klauber, 1941
1
Lachesis muta muta (Linnaeus, 1766)
Porthidium lansbergii rozei (Peters, 1968)
1
Andina
Venezuela
(AR4 v)
Zona de
trasición
(AR5)
Cordillera
Costa
(AR6)
GuaviareMeta
(AR7)
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
FAMILIA ANOMALEPIDIDAE
Helminthophis praeocularis Amaral, 1924
1
Liotyphlops albirostris (Peters, 1857)
1
Liotyphlops anops (Cope, 1899)
1
Typhlophis squamosus (Schlegel, 1839)
1
FAMILIA LEPTOTYPHLOPIDAE
Leptotyphlops albifrons (Wagler, 1824)
1
Leptotyphlops dimidiatus (Jan, 1861)
1
1
1
1
Leptotyphlops goudotii (Dumeríl y Bibron,
1844)
1
Leptotyphlops macrolepis (Peters, 1857)
1
Leptotyphlops septemstriatus (Schneider,
1801)
1
Leptotyphlops signatus (Jan, 1862 “1861”)
1
Leptotyphlops tenellus Klauber, 1939
1
1
1
FAMILIA TYPHLOPIDAE
Typhlops brongersmianus Vanzolini, 1972
Typhlops minuisquamus Dixon y Henderson, 1979
1
Typhlops reticulatus (Linnaeus, 1758)
1
1
1
1
1
135
196
105
83
72
Total por región
14
601
1
1
57
AVES
F. Trujillo.
Anexo 10.
Listado de especies endémicas de aves de la Orinoquia.
No.
Orden
Familia
Especie
VEN
1
Tinamiformes
Tinamidae
Crypturellus berlepschi
2
Tinamiformes
Tinamidae
Crypturellus ptaritepui
E
3
Galliformes
Cracidae
Ortalis ruicauda
R
4
Galliformes
Cracidae
Crax daubentoni
R
5
Galliformes
Cracidae
Pauxi pauxi
R
6
Galliformes
Odontophoridae
Odontophorus columbianus
E
7
Psittaciformes
Psittacidae
Pyrrhura picta emma
E
8
Psittaciformes
Psittacidae
Pyrrhura rhodocephala
E
9
Psittaciformes
Psittacidae
Nannopsittaca panychlora
R
10
Caprimulgiformes
Caprimulgidae
Caprimulgus whitelyi
E
11
Apodiformes
Apodidae
Cypseloides phelpsi
R
12
Apodiformes
Trochilidae
Polytmus milleri
E
13
Apodiformes
Trochilidae
Heliangelus mavors
R
14
Apodiformes
Trochilidae
Lophornis pavoninus
R
15
Apodiformes
Trochilidae
Heliodoxa xanthogonys
R
COL
R
16
Apodiformes
Trochilidae
Coeligena helianthea
R
R
17
Apodiformes
Trochilidae
Chlorostilbon gibsoni
R
R
18
Apodiformes
Trochilidae
Chlorostilbon poortmanni
R
R
19
Apodiformes
Trochilidae
Campylopterus duidae
E
20
Apodiformes
Trochilidae
Campylopterus hyperythrus
E
21
Apodiformes
Trochilidae
Sternoclyta cyanopectus
E
22
Apodiformes
Trochilidae
Amazilia viridigaster
R
23
Apodiformes
Trochilidae
Amazilia tobaci
R
24
Apodiformes
Trochilidae
Amazilia distans
E
25
Galbuliformes
Galbulidae
Brachygalba goeringi
R
E
26
Galbuliformes
Bucconidae
Hypnellus ruicollis bicintus
E
E
27
Piciformes
Ramphastidae
Aulacorhynchus sulcatus
R
28
Piciformes
Picidae
Picumnus pumilus
29
Piciformes
Picidae
Picumnus nigropunctatus
E
30
Piciformes
Picidae
Picumnus squamulatus
R
31
Piciformes
Picidae
Picumnus spilogaster
E
32
Passeriformes
Furnariidae
Synallaxis beverlyae
E
33
Passeriformes
Furnariidae
Cranioleuca demissa
R
34
Passeriformes
Furnariidae
Tripophaga cherrei
E
35
Passeriformes
Furnariidae
hripophaga sp nov
E
602
E*
E
E**
E*
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
No.
Orden
Familia
Especie
VEN
COL
E
36
Passeriformes
Furnariidae
Phacellodomus ruifrons inornatus
R
37
Passeriformes
Furnariidae
Syndactyla roraimae
R
38
Passeriformes
hamnophilidae
hamnophilus multistriatus
R
39
Passeriformes
hamnophilidae
hamnophilus insignis
E
40
Passeriformes
hamnophilidae
Herpsilochmus roraimae
R
41
Passeriformes
hamnophilidae
Schistocichla saturata
R
42
Passeriformes
hamnophilidae
Schistocichla caurensis
R
43
Passeriformes
hamnophilidae
Myrmeciza disjuncta
E
44
Passeriformes
Grallaridae
Grallaria chthonia
E
45
Passeriformes
Grallaridae
Grallaria griseonucha
R
46
Passeriformes
Grallaridae
Myrmothera simplex
R
47
Passeriformes
Tyrannidae
Elaenia dayi
E
48
Passeriformes
Tyrannidae
Stygmatura sp nov.
E
49
Passeriformes
Tyrannidae
Phylloscartes chapmani
R
50
Passeriformes
Tyrannidae
Phylloscartes nigrifrons
E
51
Passeriformes
Tyrannidae
Phylloscartes laviventris
E
52
Passeriformes
Tyrannidae
Inezia tenuirostris
53
Passeriformes
Tyrannidae
Ochthoeca nigrita
R
R
54
Passeriformes
Tyrannidae
Phelpsia inornata
E
55
Passeriformes
Tyrannidae
Poecilotriccus russatus
R
56
Passeriformes
Tyrannidae
Myiarchus venezuelensis
R
57
Passeriformes
Cotingidae
Pipreola whitelyi
R
58
Passeriformes
Cotingidae
Lipaugus streptophorus
R
59
Passeriformes
Pipridae
Xenopipo uniformis
R
60
Passeriformes
Pipridae
Pipra cornuta
R
61
Passeriformes
Vireonidae
Vireolanius eximius
R
62
Passeriformes
Vireonidae
Hylophilus sclateri
R
63
Passeriformes
Corvidae
Cyanocorax helprini
R
64
Passeriformes
Troglodytidae
Microcerculus ustulatus
R
65
Passeriformes
Troglodytidae
Troglodytes rufulus
R
66
Passeriformes
hraupidae
Paroaria nigrogenys
E
67
Passeriformes
hraupidae
Hemispingus reyi
E
68
Passeriformes
hraupidae
Hemispingus goeringi
E
69
Passeriformes
hraupidae
hlypopsis fulviceps
R
70
Passeriformes
hraupidae
Tangara vitriolina
71
Passeriformes
hraupidae
Diglossa gloriosa
E
72
Passeriformes
hraupidae
Diglossa duidae
R
73
Passeriformes
hraupidae
Diglossa major
R
74
Passeriformes
hraupidae
Mitrospingus oleagineus
R
603
E
R
E
R
AVES
F. Trujillo.
No.
Orden
Familia
Especie
VEN
75
Passeriformes
Emberizidae
Emberizoides duidae
E
76
Passeriformes
Emberizidae
Atlapetes personatus
R
77
Passeriformes
Cardinalidae
Amaurospiza carrizalensis
E
78
Passeriformes
Parulidae
Myioborus cardonai
E
79
Passeriformes
Parulidae
Myioborus albifacies
E
80
Passeriformes
Parulidae
Myioborus ornatus
R
81
Passeriformes
Parulidae
Myioborus albifrons
E
82
Passeriformes
Icteridae
Macrogelaius imthurni
R
COL
R
R : Casi endémicas (Colombia) o distribuciones superiores a un 50% en la cuenca (Venezuela).
E : Endémicas.
* : Presumiblemente en el Orinoco colombiano.
**: Distribución restringida en el Orinoco colombiano.
Anexo 11.
Listado de especies amenazadas de aves en la Orinoquia.
No.
Orden
Familia
Especie
VEN
COL
1
Tinamiformes
Tinamidae
Crypturellus ptaritepui
NT
2
Anseriformes
Anatidae
Neochen jubata
NT
NT
3
Anseriformes
Anatidae
Sarkidiornis melanonotos
VU
EN
4
Anseriformes
Anatidae
Merganetta armata
VU
5
Anseriformes
Anatidae
Anas cyanoptera
6
Anseriformes
Anatidae
Netta erythrophtalma
EN
7
Ciconiiformes
hreskiornithidae
Cercibis oxycerca
NT
8
Ciconiiformes
hreskiornithidae
Eudocimus ruber
NT
VU
EN
9
Galliformes
Cracidae
Aburria aburri
10
Galliformes
Cracidae
Crax daubentoni
11
Galliformes
Cracidae
Pauxi pauxi
EN
12
Cathartiformes
Cathartidae
Vultur gryphus
CR
CR
NT
VU
VU
13
Accipitriformes
Accipitridae
Accipiter collaris
14
Accipitriformes
Accipitridae
Morphnus guianensis
VU
NT
15
Accipitriformes
Accipitridae
Harpia harpyja
VU
NT
16
Accipitriformes
Accipitridae
Harpyhaliaetus solitarius
EN
17
Accipitriformes
Accipitridae
Spizaetus isidori
NT
18
Falconiformes
Falconidae
Falco deiroleucus
DD
19
Gruiformes
Rallidae
Coturnicops notatus
DD
20
Gruiformes
Rallidae
Laterallus levraudi
EN
21
Psittaciformes
Psittacidae
Ara militaris
EN
22
Psittaciformes
Psittacidae
Ara araurana
NT
604
NT
EN
VU
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
F. Trujillo.
No.
Orden
Familia
Especie
VEN
23
Psittaciformes
Psittacidae
Ara macao
NT
24
Psittaciformes
Psittacidae
Pionopsitta pyrilia
VU
25
Psittaciformes
Psittacidae
Hapalopsittaca amazonina theresae
EN
26
Psittaciformes
Psittacidae
Amazona dusfresniana
NT
27
Psittaciformes
Psittacidae
Amazona mercenaria
NT
28
Apodiformes
Trochilidae
Avocettula recurvirostris
NT
29
Apodiformes
Trochilidae
Ramphomicron microrhynchum
NT
30
Piciformes
Ramphastidae
Andigena nigrirostris
NT
31
Piciformes
Picidae
Campephilus pollens
VU
32
Passeriformes
Furnariidae
hripophaga cherrei
VU
33
Passeriformes
Furnariidae
hripadectes holostictus
NT
34
Passeriformes
hamnophilidae
Clytoctantes alixii
EN
35
Passeriformes
hamnophilidae
Myrmeciza laemosticta
NT
36
Passeriformes
Grallaridae
Grallaria chtonia
CR
37
Passeriformes
Grallaridae
Grallaria excelsa phelpsi
VU
38
Passeriformes
Grallaridae
Grallaricula cucullata venezuelana
VU
39
Passeriformes
Rhinocryptidae
Scytalopus atratus
NT
40
Passeriformes
Cotingidae
Phoenicircus nigricollis
NT
41
Passeriformes
Cotingidae
Ampelioides tschudii
NT
42
Passeriformes
Cotingidae
Rupicola peruvianus
NT
43
Passeriformes
Pipridae
Corapipo leucorrhoa
NT
44
Passeriformes
Tyrannidae
Ochthoeca nigrita
NT
45
Passeriformes
Tyrannidae
Polystictus pectoralis
NT
46
Passeriformes
hraupidae
Hemispingus goeringi
VU
47
Passeriformes
Parulidae
Basileuterus cinereicollis
NT
48
Passeriformes
Parulidae
Dendroica cerulea
NT
49
Passeriformes
Vireonidae
Vireolanius eximius
NT
50
Passeriformes
Icteridae
Cacicus uropygialis
51
Passeriformes
Emberizidae
Sporophila schistacea
NT
52
Passeriformes
Emberizidae
Oryzoborus crassirostris
NT
53
Passeriformes
Emberizidae
Oryzoborus maximilianus
NT
54
Passeriformes
Emberizidae
Oryzoborus angolensis
NT
55
Passeriformes
Fringillidae
Carduelis yarrellii
CR
56
Passeriformes
Fringillidae
Carduelis cucullata
CR
VU: Vulnerable
EN: En Peligro
CR: En Peligro Crítico
NT: Casi Amenazadas
DD: Datos Deicientes
605
COL
VU
NT
NT
NT
NT
CRUSTÁCEOS
DECÁPODOS DE LA ORINOQUIA VENEZOLANA: BIODIVERSIDAD,
CONSIDERACIONES BIOGEOGRÁFICAS Y CONSERVACIÓN
O. Lasso-Alcalá.
Anexo 12.
Lista preliminar de los crustáceos decápodos de la Orinoquia venezolana, indicando nivel de vulnerabilidad, especies comerciales y endemismos.
Taxa
Endémica
Subcuenca, río, subregión
Vulnerable
Comerciales
Consumo
Ornamentales
Familia Penaeidae
Litopenaeus schmitti
no
no
si
Xiphopenaeus kroyeri
no
no
si
Acetes americanus
no
no
Acetes paraguayensis
no
no
no
no
Euryrhynchus amazonensis
no
no
Euryrhynchus pemoni
si
Familia Sergestidae
Familia Atyidae
Atya gaboensis
Familia Euryrhynchidae
Caroní
Vulnerable D2
Familia Palaemonidae
Macrobrachium acanthurus
no
no
si
Macrobrachium amazonicum
no
no
si
Macrobrachium aracamuni
si
Alto Orinoco
Macrobrachium atabapense
si
Alto Orinoco
Macrobrachium brasiliense
no
no
si
Macrobrachium carcinus
no
no
si
Macrobrachium cortezi
no
no
si
Macrobrachium dierythrum
si
Macrobrachium ferreirai
no
no
Macrobrachium jelskii
no
no
Macrobrachium manningi
si
Macrobrachium nattereri
no
Macrobrachium pectinatum
si
Alto Orinoco
Macrobrachium pumilum
si
Aguaro
Vulnerable D2
Macrobrachium quelchi
si
Caroní
no
Macrobrachium reyesi
no
Macrobrachium rosenbergii
no
Macrobrachium rodriguezi
si
Macrobrachium surinamicum
no
no
Nematopalaemon schmitti
no
no
Palaemon pandaliformis
no
no
Palaemonetes carteri
no
no
Palaemonetes ivonicus
no
no
si
no
no
Aguaro
no
Caroní
si
no
no
si
no
Vulnerable B1 (a-biii, iv, v)
no
Caris
Vulnerable B1 (a-biii, v)
606
si
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
O. Lasso-Alcalá.
Taxa
Endémica
Subcuenca, río, subregión
Vulnerable
Comerciales
Consumo
Palaemonetes mercedae
no
Ornamentales
no
Pseudopalaemon amazonensis
no
no
Pseudopalaemon gouldingi
no
no
no
no
no
no
no
no
Familia Porcellanidae
Petrolisthes armatus
Familia Diogenidae
Clinabarius vittatus
Familia Panopeidae
Hexapanopeus paulensis
Panopeus herbstii
no
no
Panopeus occidentalis
no
no
Callinectes bocourti
no
no
Callinectes ornatus
no
Familia Portunidae
si
si
Familia Pilumidae
Piluminus loridanus
no
no
no
no
Familia Trichodactylidae
Moreirocarcinus emarginatus
Poppiana dentata
no
no
Valdivia serrata
no
no
Forsteria venezuelaensis
no
no
no
no
Familia Xanthidae
Eurytium limosun
Leptodius loridanus
no
no
Menipe nodrifons
no
no
Panopeus americanus
no
no
Panopeus occidentalis
no
no
Familia Pseudothelphusidae
Eudaniella casanarensis
si
Meta
Kingsleya hewashini
si
Alto Orinoco
Microthelphusa sp. A
si
Alto Orinoco
si
no
Microthelphusa barinensis
si
Alto Apure
no
Microthelphusa bolivari
si
Caroní
no
Microthelphusa sp. B
si
Alto Orinoco
no
Microthelphusa sp. C
si
Alto Orinoco
no
Microthelphusa sp. D
si
Alto Orinoco
no
Pao
Microthelphusa racenisi
si
Prinothelphusa eliae
no
Fredius adpressus adpressus
si
no
no
Parguaza
no
607
si
CRUSTÁCEOS
DECÁPODOS DE LA ORINOQUIA VENEZOLANA: BIODIVERSIDAD,
CONSIDERACIONES BIOGEOGRÁFICAS Y CONSERVACIÓN
O. Lasso-Alcalá.
Taxa
Endémica
Subcuenca, río, subregión
Vulnerable
Comerciales
Consumo
Fredius adpressus piaroensis
si
Cuao
no
Fredius beccari
no
Fredius chafanjoni
si
Alto Orinoco
no
Fredius cuaoensis
si
Alto Orinoco
no
Fredius estevisi estevisi
no
Caroní
no
si
Fredius estevisi siapensis
no
Alto Orinoco
no
si
Fredius itkaui
no
Rio Negro
no
Fredius platyacanthus
si
Caura-Caroní
Fredius relexifrons
no
Fredius stenolobus
no
Oedothelphusa orientalis
si
Morichal Largo
no
Orthothelphusa holthuisi
si
Alto Apure
no
Rodriguezus trujillensis
si
Apure
no
no
no
Familia Gecarcinidae
no
no
Ocypode quadrata
no
no
Uca rapax
no
no
Uca vocator
no
no
Ucides cordatus
no
no
Aratus pissoni
no
no
Armases angusticeps
no
no
Armases benedicti
no
no
Armases rubripes
no
no
Goniopsis cruentata
no
no
Sesarma rectun
no
no
Sesarma curacaoensis
no
no
Metasesarma rubripes
no
no
Cardisoma guanhumi
Familia Ocypodidae
Familia Grapsidae
608
si
Ornamentales
BIODIVERSIDAD Y ÁREAS PRIORITARIAS PARA LA
CONSERVACIÓN EN LA ORINOQUIA
C. Suárez.
Anexo 13.
Sistemas de clasiicación de humedales.
Nombre
Descripción
Referencia
Clasiicación nacional de humedales de
Estados Unidos
Clasiicación jerárquica que contiene 5 niveles que describen los componentes de un humedal, nombre, vegetación, sustrato, textura, régimen de agua,
química del agua y suelo. Esta clasiicación contiene hábitats con vegetación y
sin vegetación.
Cowardin et al. (1979), Cowardin y Golet (1995).
Clasiicación hidrogeomorfológica
de Australia
Basada en geoformas y régimenes de agua con subdivisiones adicionales basadas en tamaño, forma, calidad del agua y características de la vegetación.
Semeniuk (1987), Semeniuk y
Semeniuk (1997).
Clasiicación de humedales en los países del
occidente Europeo:
Corine Biotopos(1991)
Clasiicación de hábitats paleoárticos (1996)
EUNIS Clasiicación de habitats (2002)
(European Nature Information System)
Estándares europeos para la descripción jerárquica de áreas naturales o
seminaturales, incluyendo hábitat de humedal. Los hábitats son identiicados
por sus facies y su lora.
La clasiicación de hábitats de EUNIS (2002) integra la anterior clasiicación
(CORINE – Biotopos, clasiicación de hábitats paleo-árticos) y establece una
unión con otros tipos de clasiicación (CORINE-Land-Cover, el sistema de
clasiicación nórdico y otros sistemas nacionales).
European Communities
(1991), Devillers y DevillersTerschuren (1996), Davies y
Moss (2002).
Sistema de clasiicación Ramsar para
humedales
Listado jerárquico de hábitat de humedal basado en la clasiicación nacional
de humedales de USA. Esta ha sido modiicada en varias ocasiones desde su
introducción en 1989, para incorporar hábitat del interés de las partes contratantes de la convención Ramsar.
Scout y Jones (1995),
Ramsar Bureau (2000).
Clasiicación de humedales del
Mediterráneo MedWet
Listado jerárquico de hábitat de humedal basado en la clasiicación nacional
de humedales de USA, con modiicaciones realizadas para relejar el rango de
hábitat de humedal alrededor del mediterráneo. Un sotware que acompaña la
metodología permite otras clasiicaciones usadas comúnmente en la región.
Hecker et al. (1996)
Clasiicación de humedales de Canadá
Listado jerárquico de hábitat basado en amplia isonomía e hidrología,
geomorfología y isonomía vegetal. Una caracterización adicional es basada en
elementos químicos de los hábitats.
National Wetlands
Working Group (1997), Zoltai
y Vitt (1995).
Clasiicación de humedales de
Sur África
Adaptación de la clasiicación de humedales de “Cowardin” en USA. Incluye
adaptaciones que relejan los aspectos funcionales de los humedales basado en
geomorfología y características hidrológicas. Esta clasiicación es jerárquica y
capaz de acomodar todos los tipos de humedales en la región.
Dini y Cowan (2000).
Clasiicación de humedales de Asia
Basada en formas de la tierra y régimenes de agua. Esta clasiicación puede
ser emanada a partir de la información principal de campo (inventarios) y
ampliada con información en vegetación, tamaño, y calidad de agua.
Finlayson et al. 2002a y Finlayson et al. 2002b.
Fuente: Adaptado de Ramsar Handbook 10. Wetland inventory. A Ramsar framework for wetland inventory. Ramsar handbooks for the wise use of wetlands. 2nd edition,
2003.
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